Name: Generation von Gerüst-frei, dreidimensionale Insulin mit dem Ausdruck Pancreatoids vom Maus Pankreas Stammväter In-vitro- (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 33 s
Description: Erfahren Sie die Generierung von insulinexprimierenden 3D-Pancreatoiden aus murinen Pankreas-Stammzellen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung endokriner Zellentwicklung im mesenchymalen Kontext für Diabetesforschung.

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Wir danken Jolanta Chmielowiec für hilfreiche Diskussion über das Protokoll und das Manuskript. Wir danken auch Benjamin Arenkiel für den Zugriff auf confocal Mikroskop. Diese Arbeit wurde unterstützt von der NIH (P30-DK079638, m.b.) und T32HL092332-13, Buchdrucker und m.b., der McNair Medical Foundation (m.b.) und der konfokalen Kern auf das BCM geistigen and Developmental Disabilities Research Center (NIH U54 HD083092 aus dem Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development).

Alle Tierversuche, die in dieser Methode beschriebenen stimmten die institutionellen Animal Care und Nutzung Ausschuss des Baylor College of Medicine.
1. Vorbereitung der Maus embryonalen Tag 10.5 Pankreas Stammväter
Hinweis: Dieses Protokoll muss nicht erst in Schritt 2, unter sterilen Bedingungen einzuhalten, aber es eignet sich optimal zum Sterilisieren Dissektion Werkzeuge und sprühen Sie mit 70 % igem Ethanol vor dem Gebrauch.
<ol><li>Um für die Dissektion einzurichten, füllen Sie einen Eiskübel und stellen Sie einen Behälter von Phosphat gepufferte Kochsalzlösung (PBS) im Eis. Reinigen Sie zwei feine Spitzen Pinzette und Schere Dissektion mit 70 % Ethanol. Legen Sie in der Nähe der Dissektion, ein Behälter mit mindestens drei Borosilikat Kapillare Rohre, eine Mund-Pipette, ein Feuerzeug und 1.000 µL Pipettenspitzen gefiltert.<ol>
<li>Bereiten Sie mindestens 1 mL kalte Dispase 1,25 mg/mL verdünnt in sterilisierten Wasser und Platz in den zweiten Brunnen von einem 12-well-Platte auf dem Eis. Setzen Sie PBS in die erste, dritte und vierte Platte Brunnen der 12 gut. Platz 1 mL 0,05 % Trypsin in 1,5 mL tube auf Eis. Einen schütteln Inkubator 37 oc Vorwärmen</li>
	</ol>
</li>
	<li>Einschläfern Sie e10.5 timed-schwangeren Mäusen nach IACUC Richtlinien. Sprühen Sie den Bauch mit 70 % Ethanol, das Zwerchfell Puffernummern und Reinigen der Region vor einen v-förmigen Einschnitt in den Genitalbereich der Maus mit Schere und Pinzette. Hinweis: Darstellung eines vaginalen Steckers in dieses Protokoll zeigt Tag 0,5. Mit 5 - 6 Wochen alten Mäusen, wirkt eine Gewichtszunahme von mehr als 2 g als eine sekundäre Maßnahme der erfolgreichen Imprägnierung.<ol>
<li>Verbrauchsteuern Sie sorgfältig die Gebärmutter durch einen Schnitt zu machen, an die obersten seitlichen Abschnitte der Gebärmutter, zieht das Organ nach oben von der Maus, und nach dieser Einschnitt bis in den Genitalbereich vor auf der gegenüberliegenden Seite wiederholen. Legen Sie sie in einer 10 cm Petrischale mit kaltem PBS. Hinweis: Es ist möglich, Organellen aus e11.5 distanzierte Zellen zu erhalten, aber im Gegensatz zu den e10.5 Pancreatoids, diese Organellen noch nicht gekennzeichnet sind und somit nicht in der Lage weiterhin können, in alle drei großen Pankreas Linien zu unterscheiden.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Platzieren Sie unter dem Mikroskop leicht Dissektion der Petrischale und öffnen Sie vorsichtig des uterinen Gewebes indem zwei Pinzetten zwischen jedem Embryo und peeling Gewebe Weg von dem Dottersack. Transferieren Sie die Embryonen durch das Greifen der Dottersack sanft mit Zange und in einer 10 cm Petrischale mit frischem, kaltem PBS. Legen Sie die Petrischale auf Eis. Hinweis: Es ist wichtig, heedfully zu entfernen Embryonen, vorzugsweise innerhalb der Dottersack beibehalten, wenn gewaltsame Entfernung der Nabelschnur, Rippen Gewebe des Embryos und die strukturelle Integrität ziehen kann.</li>
	<li>Legen Sie mehrere PBS Tropfen auf einer 10 cm Petrischale Deckel. Verwenden Sie diese Tröpfchen auf den Embryotransfer bei Dissektion extraembryonic Gewebe entfernt werden, um die Sichtbarkeit zu gewährleisten. Transfer eines Embryos zu einem Rückgang der PBS und entfernen Sie vorsichtig aus dem Dottersack mit Pinzette, während die restlichen Embryonen mit PBS-Puffer auf dem Eis (Abb. 1A) bleiben. Entfernen Sie den Kopf vor dem Verschieben des Embryos zu einem neuen PBS mit Pinzette leicht den Embryo, keine Beschädigung des Gewebes (Abbildung 1B) schöpfen. Hinweis: Das Gewebe müssen immer häufiger auf frischen PBS Tröpfchen übertragen werden, als hier, je nach Deckkraft der Flüssigkeit beschrieben.<ol>
<li>Entfernen Sie in einem neuen PBS-Tropfen die vordergliedmaße Knospen mit Pinzette (Abbildung 1B). Setzen Sie Zange in die Öffnung, wo Leib Knospe anwesend war und sanft reißen nur die meisten externe Gewebe anterior (Abbildung 1B). Embryo zu drehen und in Richtung posterior, Halt an die Megalosauridae Knospe zu wiederholen. An dieser Stelle sollte der Magen-Darm-Trakt sichtbar ist (Abbildung 1B).</li>
		<li>Die hintere Region des Magen-Darm-Trakt hat eine leichte Biegung (Abb. 1F). Zange hinter dieser Biegung in die Öffnung zwischen den Magen-Darm-Trakt und die Wirbelsäule Region der Körperwand einfügen. Lösen Sie den Magen-Darmtrakt, langsam nach oben arbeiten, bis die meisten frontzahngebiet erreicht ist (Abbildung 1B-E), wo die kardialen Region verbindet. OPTIONAL: Entfernen Sie das ursprüngliche Herz und die Leber Knospen aus den ventralen Regionen des Gastrointestinaltraktes, verlassen nur die kontinuierliche Darm Rohr. Die ersten paar Male dieses Protokoll erfolgt es könnte einfacher sein, das Herz und die Leber zu verlassen, wie ventrale Wahrzeichen bis der Morphologie des Magen-Darm-Trakt und der dorsalen Pankreas Knospe mehr sind vertraut (Abbildung 1C und D ).</li>
		<li>Übertragen Sie den Magen-Darm-Trakt auf das frische PBS Tröpfchen.</li>
		<li>Nehmen Sie Zange und Kneifen Sie sanft das Gewebe unterhalb der überstehenden Knospe und den Darm und heben Sie das äußere Gewebe aus (Abbildung 1-D-F). Hinweis: Die dorsale Pankreas Knospe befindet sich zwischen Magen und Darm (Abbildung 1C-G). Die Pankreatische Knospe unter sollte aussehen wie eine Runde, knorrigen Struktur (Abb. 1G).</li>
		<li>Zange zu platzieren, wo verbindet die Knospe zum Darm und Prise nach oben um die Knospe (Abbildung 1G) zu lösen. Waschen Sie einmal in einer neuen PBS-Blase vor der Übertragung der Knospe in den ersten Brunnen 12-well-Platte in kaltem PBS auf Eis. Wiederholen Sie, bis alle Knospen sind von Embryonen aufgenommen und in die erste Bohrung 12-well-Platte.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Legen Sie die 12 gut Gericht unter dem Mikroskop leicht Dissektion. Die Anzahl der pankreatischen Knospen erfolgreich seziert, um später das Split-Verhältnis zu berechnen.<ol>
<li>Ort eine gefilterte 1.000 µL PIPETTENSPITZE in die Mund-Pipette mit einem Kapillarröhrchen angebracht. Flamme der Kapillare zu sterilisieren und erstellen eine Biegung in der Röhre für die Benutzerfreundlichkeit. Verwenden Sie die Kapillare Knospen auf die zweite gut mit kaltem Dispase-Lösung für 2 min zu übertragen, bevor er auf den dritten Brunnen mit sauberem PBS (Abbildung 1G). Hinweis: Beim Übertragen von Knospen aus Dispase, PBS, berühren Sie das Gewebe an der Spitze des kapillarröhrchens. Wenn das Gewebe an der Spitze der Röhre stecken, pipette rauf und runter oder schütteln in die saubere PBS-Lösung bis gelockert.</li>
		<li>Pipette Knospen rauf und runter, und auf der vierten Brunnen mit sauberem PBS übertragen. Schließlich verwenden die Kapillare Gerät Transfer Knospen an der 1,5 mL Tube mit 0,05 % Trypsin. Legen Sie das Rohr in den vorgewärmten 37 oC-Shaker und schütteln Sie bei 1.500 u/min für 4 Minuten.</li>
		<li>Wirbel für ca. 10 s sofort legen Sie dann den Schlauch in eine Zentrifuge und Spin für 5 min bei 200 g. entfernen alle aber etwa 50 µL der Lösung vorsichtig, nicht zentrifugiert Zellen (Abbildung 1G) stören.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Kultivierung dissoziierte Vorfahren um Pancreatoids zu bilden
Hinweis: Die folgenden sollte in einer sterilen Atmosphäre in einem standard Gewebekultur Haube, mit sterilen Standardverfahren durchgeführt werden.
<ol><li>Fügen Sie für jede Knospe gesammelt 400 µL Organogenese Medien16,17 (Tabelle 1 hinzu) zu zentrifugiert Zellen. Pulse Wirbel dreimal und Platte 100 µL pro Bohrloch einer niedrigen Anlage 96 Platte gut, Aufteilung Knospen im Verhältnis 1:4 (Abbildung 1G).</li>
	<li>Überprüfen Sie unter dem Mikroskop zu visualisieren Zellen frei schwebend (Abbildung 1H) getrennt. Legen Sie die Kulturschale in einem Inkubator 37 oC mit 5 % CO2 auf einer Wippe bei mittlerer Geschwindigkeit.</li>
	<li>Überwachen Sie den Fortschritt der Pancreatoids täglich. Ersetzen Sie mit 100 µL frische Medien alle 3 Tage sorgfältig pipettieren unter mikroskopischer Kontrolle in der Kapuze, wobei den Pancreatoid in den Brunnen zu entfernen. Alternativ können frische 100 µL der Medien einen neuen Brunnen und Pancreatoid mit übertragen hinzugefügt werden, dass das Borosilikatglas Kapillarrohr befestigt Mund Pipette und 1000 µL PIPETTENSPITZE gefiltert.</li>
</ol>3. Verarbeitung Pancreatoids für Immunofluorescent Imaging
<ol><li>Um Pancreatoids für immunofluorescent Bilder bearbeiten zu können, bereiten Sie zuerst 4 % Paraformaldehyd/PBS, pH7.4 (PFA) Lösung. Platz 50 µL 4 % PFA in Vertiefungen der 96 gut Platte.<ol>
<li>Mit dem Kapillarröhrchen Borosilikat und Mund Pipette mit der gefilterten PIPETTENSPITZE 1.000 µL, transfer Pancreatoids vom Nährmedium unter Medien so wenig wie möglich in den frischen Brunnen mit 4 % PFA. Legen Sie auf die Wippe bei Raumtemperatur 15 Minuten.</li>
		<li>Übertragen Sie Pancreatoids von 4 % PFA in einen Brunnen mit 100 µL frische PBS rock bei Raumtemperatur für 5-10 min. Wiederholung für eine Gesamtmenge von drei frische PBS wäscht. Hinweis: Das Protokoll kann hier mit Pancreatoids gespeichert in 100 µL PBS bei 4 oC für bis zu eine Woche pausiert werden.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Für die Wholemount Bildgebung (empfohlen, wenn Antikörper geeignet, alternativer Ansatz in Abschnitt 3.3 sind. und Mikroskopie in 3.4.), übertragen von PBS in 50 µL 5 % Esel Serum mit 1 X PBS-Puffer mit 0,1 % nichtionische Reinigungsmittel (PBST) zu blockieren. Rock über Nacht bei 4 oC oder alternativ für 4 h bei Raumtemperatur.<ol>
<li>Pancreatoids zu übertragen, um einen neuen Brunnen mit primären Antikörper in 50 µL 5 % Esel Serum in 1 verdünnt X PBST. Optimal, Rock für 24 h bei 4 oC (mindestens 12 h aber bis zu 36 h). Hinweis: Antikörper aufgeführt in der Tabelle der Materialien gegen Chga (1: 100), DBA (1: 400), Vim (1: 400) und Pdx1 (1: 100) eignen sich für Wholemount Färbung; andere Antikörper können Optimierung erfordern.</li>
		<li>Übertragen Sie Pancreatoids zu einem Brunnen mit 100 µL frisches PBST waschen und rock für 30 min bei Raumtemperatur. Wiederholen Sie diesen Schritt für eine Gesamtmenge von drei frisches PBST wäscht.</li>
		<li>Pancreatoids zu übertragen, um einen neuen Brunnen, sekundäre Antikörper in 50 µL 5 % Esel Serum in 1 verdünnt enthält X PBST. Schützen Sie die Platte vor Licht und in 4 oC, optimal 24 Stunden (mindestens 12 h aber bis zu 36 h) rocken. Hinweis: Alle Sekundärantikörper aufgeführt in der Tabelle der Werkstoffe und DAPI nuklearen gegenfärbung eignen sich für Wholemount Färbung.</li>
		<li>Pancreatoids zu übertragen, um einen neuen Brunnen mit 100 µL 1 x PBST und Rock bei Raumtemperatur für 30 min. Wiederholung für eine Gesamtmenge von drei Wäschen in 1 X PBST. In der dritten und letzten Wäsche hinzufügen 300 nM DAPI.</li>
		<li>Schließlich stecken Sie in 100 µL von reinen PBS und bei 4 oC lichtgeschützt für bis zu einer Woche vor Bildgebung durch konfokale Mikroskopie, obwohl beste Ergebnisse aus Bildgebung unmittelbar nach der Färbung kommen. Um zu verhindern, dass Bewegung der Pancreatoids während der Aufnahme aber Austrocknen zu verhindern, legen Sie jede Pancreatoid in ein Tröpfchen 20 µL PBS. Wenn Pancreatoids nicht noch bleiben, reduzieren Sie PBS-Lautstärke.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Übertragen Sie für Gefrierschnitte Pancreatoids von PBS in 30 % Saccharoselösung über Nacht bei 4 oC.<ol>
<li>Einbetten von Medien in einer Blase unter dem Mikroskop Dissektion hinzufügen. Mit Pinzette unter mikroskopischer Kontrolle, Einweichen Sie Pancreatoids indem sanft durch das Einbetten von Medien mehrmals auf Rest Saccharose zu entfernen, bevor Sie auf eine Gewebe-Block mit gefrorenen Einbetten von Medien übertragen.</li>
		<li>Legen Sie das Gewebe Block auf Trockeneis bis gefroren und Abschnitt auf Kryostaten bei 8 µm. Hinweis: Abschnitte können bei-80 oC oder Immunostained sofort gespeichert werden.</li>
		<li>Lassen Sie Abschnitte von-80 oC auftauen bei Raumtemperatur ca. 5 Minuten trocknen. Zeichnen Sie eine hydrophobe Barriere mit dem hydrophoben PAP-Stift auf das Gewebe und den Block mit 5 % Esel Serum verdünnt in 1 X PBST für 30 min bei Raumtemperatur.</li>
		<li>Entfernen Sie Medien zu und ersetzen Sie sofort mit Primärantikörper verdünnt in 5 % Esel Serum verdünnt 1 X PBST Übernachtung im 4 oC.</li>
		<li>Die primäre Lösung entfernen und waschen Gewebe dreimal mit 1 X PBST für 10 Minuten. Im Anschluss daran fügen Sekundärantikörper Lösung verdünnt in 5 % Esel Serum verdünnt in 1 X PBST für 1 h bei Raumtemperatur und Folien vor Licht schützen.</li>
		<li>Die sekundäre Lösung entfernen und waschen Folien dreimal in 1 X PBST für 10 Minuten. In der letzten Wäsche hinzufügen 300 nM DAPI.</li>
		<li>Entfernen von Medien und Montage Medien und einem deckgläschen hinzufügen. Store gleitet lichtgeschützt in 4 oC bis bereit zum Bild.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Isolierung von RNA aus Pancreatoids für die Protokoll-Analyse
<ol><li>Sammeln Sie Pancreatoids mit Borosilikat-Kapillare mit einer Mund-Pipette mit einem gefilterten 1.000 µL PIPETTENSPITZE für Sterilität und Ort in 500 µL Säure Guanidinium Thiocyanat-Phenol-Chloroform-Lösung in einem 1,5 mL Röhrchen verbunden. Bei-80 oC lagern Sie oder gehen Sie sofort zur RNA-Isolierung.</li>
	<li>Tauen Sie für RNA-Isolierung Proben auf Eis auf, wenn nötig und 100 µL Chloroform. Vortex gut und Platz in 4 oC für 15 min. Vorkühlen eine Zentrifuge, 4 oC.<ol>
<li>Legen Sie Rohre in Zentrifuge und Spin für 20 min bei 12.000 g bei 4 oC.</li>
		<li>Entfernen Sie vorsichtig die Rohre, um die Trennung der Schichten nicht zu stören. Mit einer 200 µL Pipette, sammeln Sie die klare wässrige Lösung und setzen Sie eine neue 1,5 mL Tube, hinterlässt eine kleine Menge an Puffer aus den weißen Protein Layer und Rosa DNA-Layer. Berühren Sie nicht die Spitze der Pipette an nichts in diesem Prozess, und berühren Sie nicht die Wände der 1,5 mL Tube.</li>
		<li>Die neue Röhre mit der wässrigen Schicht und Vortex fügen Sie 500 µL 100 % Isopropanol hinzu. Lassen Sie sich bei Raumtemperatur für 20 min, länger auf dem Eis oder für maximale Niederschläge lassen über Nacht bei-20 oC.</li>
		<li>Zentrifugieren Sie bei 12.000 g für 15 min bei 4 oC, pellet-RNA. Entfernen Sie das Isopropanol ohne zu stören das Pellet. Hinweis: Da Pancreatoids klein sind, ist es wahrscheinlich das Pellet nicht angezeigt werden.</li>
		<li>Fügen Sie kalt, 75 % Ethanol und invertieren Sie das Rohr mehrmals. In der Zentrifuge und drehen Sie sich mit 9.000 x g für 10 min bei 4 oC. Remove Ethanol und Spin für 2 min bei 9.000 x g.</li>
		<li>Verwenden Sie 200 µL Pipette, um alle restlichen Ethanol in das Rohr zu entfernen, ohne Kontakt mit der Region, in dem, der das Pellet in befindet. Lassen Sie die Kappe auf dem Rohr für 5-10 min bei Raumtemperatur zur Verdunstung von restlichen Ethanol zu gewährleisten geöffnet.</li>
		<li>Aufschwemmen Sie Pellet durch Vortexen in 20 µL Nuklease-freies Wasser. Optional: Die RNA Wärmeregelung 65 oC für 3 min und sofort zurück aufs Eis. RNA kann bei-80 oC gelagert oder sofort für reverse Transkription und qPCR verwendet werden.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Produzieren Sie das Fortschreiten der Kultur zellmodelle ist entscheidend für richtig Modellentwicklung, klinisch relevante Zelltypen, Wirksamkeit von Medikamenten oder sogar Transplantation Patienten. Jedoch künstlich Rekapitulation Entwicklung in einer Petrischale ist eine Herausforderung, da sind wir noch weit davon entfernt, das Verständnis der Mechanismen der Organogenese und Physiologie in-vivo. So sind in-vitro- Zellen ineffizient erzeugt, nicht voll funktionsfähig, nicht für längere Zeit beibeha...

Abgrenzung der Mechanismen für die normale Entwicklung und die Physiologie ist ausschlaggebend für die Ätiologie der Erkrankung zu verstehen und letztlich Behandlungsmethoden zu kultivieren. Während der Kultivierung und Differenzierung von Stammzellen schnelle und Hochdurchsatz-Analyse der Entwicklung ermöglicht, es ist begrenzt durch die vorhandenen Körper des Wissens über Mechanismen reguliert Zelle Schicksal und künstlich rekapituliert Entwicklung in einem relativ homogene, zweidimensionalen Zustand1,2. Nicht nur in Vivo Entwicklung beeinflusst von äußeren Einflüssen, mit verschiedenen Zelltypen in der Nische und Milieu bietet Parakrine Signale und organisatorische Unterstützung, Organogenese führen, sondern die Funktion dieser Zellen beruht auch auf ihre Umgebung für Führung3,4,5. Angesichts der Bedeutung von diesen externen Cues, die Grenzen der Differenzierung Protokolle und die mühsame Art der in Vivo Mausmodelle, Neuanlagen werden mussten grundlegende Entwicklungsprozesse und Physiologie experimentell zu untersuchen.
Die Entstehung von Protokollen, dreidimensionale, komplexe Organellen zu generieren bietet eine bequeme und kongruente System zur Untersuchung der Organogenese, Physiologie, Wirksamkeit von Medikamenten und sogar Pathogenese. Gründung murine Organellen für verschiedene Systeme wie der Magen6 und Darm7 unser Verständnis der Organogenese ausgedehnt haben, bietet ein Werkzeug, um Entwicklungsstörungen Komplexität mit weniger Einschränkungen als in Vivo Studie und in-vitro- Modelle. Durch diese Fortschritte bei der murinen organoide Bildung und dem Aufkommen der menschlichen pluripotenten Stammzellen Zellen, menschlichen Darm8, retinale9, renal10,11, und zerebralen12 Organellen hergestellt wurden, und dies Repertoire ist nur durch das vorhandene Wissen über die Mechanismen der Entwicklung begrenzt.
Von besonderem Interesse ist die Generation der pankreatischen Organellen, wie eine Vielzahl von Krankheiten verschiedener Pankreas Zelltypen, einschließlich acinar Zellen und Kanälen exokrinen Pankreasinsuffizienz13acinar Zellen in Pankreatitis14, Plagen und Beta-Zellen in der Diabetes-15. Erwerb von Wissen über die Entwicklung dieser verschiedenen Zelltypen konnte helfen beim Verständnis ihrer Pathologie und fungieren darüber hinaus als Plattform für personalisierte Drogentest oder Transplantation. Zuvor, Greggio Et Al. entwickelt eine Methode zum Erstellen von murinen Pankreas Organellen, die in Vivo Morphogenese rekapitulieren und entwickeln organisierte, dreidimensionale, komplexe Strukturen bestehend aus allen wichtigen Pankreas Epithelzelle 16,17-Typen. Dies ist ein großer Schritt nach vorne im Feld Pankreas, vor allem die Zellen in Vitro können biologische Untersuchungen von Beta-Zell-Entwicklung ermöglichen. Jedoch bildeten eine Knappheit von endokrinen Zellen in diesem Protokoll, es sei denn die Organellen in Gewebe transplantiert wurden, wo die Nische könnte interagieren und didaktische Hinweise17. Das Mesenchym bildet den größten Teil der Nische, Kuvertierung stark entwickelnde Epithel von frühen Stadien der Organogenese zu späteren Phasen einschließlich endokrine Delamination und Differenzierung3,4, 18. Das Zusammenspiel von dem Mesenchym mit der entwickelnden Bauchspeicheldrüse ist noch ein weiteres Beispiel für extrinsische Signalisierung und die Bedeutung der Aufrechterhaltung der in Vivo zellulären Komplexität Organogenese zu studieren.
Hier beschreiben wir, wie dreidimensionale Pankreas Organellen, genannt Pancreatoids, von dissoziierten e10.5 murinen Pankreas Stammväter generieren. Diese Pancreatoids behalten native Mesenchym, frei schwebenden Bedingungen selbst zusammensetzen und generieren alle wichtigen Pankreas Zelltypen, einschließlich eine robuste Reihe von endokrinen Betazellen19. Dieser Ansatz eignet sich am besten für die Analyse von endokrinen Entwicklung, da frühere Protokolle robuste endokriner Differenzierung fehlt. Allerdings ist unter Verwendung des Protokolls für Bauchspeicheldrüsenkrebs Organellen wie beschrieben durch Greggio Et Al. ist besser geeignet für die Analyse der pankreatischen epithelialen Verzweigungen und Morphogenese, als Verzweigung in Pancreatoids geringer.

<table><tbody><tr><td>2-Mercaptoethanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6250</td><td></td></tr><tr><td>Aspirator-Röhrchenbaugruppen für kalibrierte Mikrokapillarpipetten</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5177</td><td></td></tr><tr><td>BarnStead NanoPure Nukleasefreies Wasser</td><td>ThermoFisher</td><td>D119</td><td></td></tr><tr><td>Borosilikat-Kapillarröhrchen</td><td>Sutter Instruments</td><td>GB1007515</td><td>Außendurchmesser 1 mm, Innendurchmesser 0,75 mm, 1,5 cm Länge</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C5080</td><td></td></tr><tr><td>Zellabweisende 96-Well-Mikroplatte</td><td>Greiner Bio-One</td><td>650970</td><td>U-Boden-Zentrifuge</td></tr><tr><td>5424 R</td><td>Eppendorf</td><td>5401000013</td><td></td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>233306</td><td></td></tr><tr><td>Chromogranin-A Antikörper</td><td>Abcam</td><td>ab15160</td><td></td></tr><tr><td>Kompaktes, modulares Stereomikroskop M60</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Countess Automated Cell Counter</td><td>Invitrogen</td><td>C10310</td><td></td></tr><tr><td>Countess Cell Counter Slides</td><td>Invitrogen</td><td>C10312</td><td></td></tr><tr><td>CryoStar NX70</td><td>ThermoFisher</td><td>957000L</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-Glucose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7528</td><td></td></tr><tr><td>DAPI (4',6-Diamidin-2'-phenylindol-dihydrochlorid)</td><td>Roche</td><td>10 236 276 001</td><td>Pulver</td></tr><tr><td>DBA Antikörper</td><td>Vector Lab</td><td>RL-1032</td><td></td></tr><tr><td>Dispase II, Pulver</td><td>Gibco</td><td>17105041</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F-12, HEPES</td><td>Gibco</td><td>11330032</td><td></td></tr><tr><td>Dnase I</td><td>Invitrogen</td><td>18068-015</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 Pinzette</td><td>Fine Science Werkzeuge</td><td>11251-10</td><td>0,05 x 0,02 mm; Titan; Biologie-Tipp</td></tr><tr><td>EGF (Epidermaler Wachstumsfaktor)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E9644</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol, 200 Proof</td><td>Decon Laboratories</td><td>2716</td><td></td></tr><tr><td>Forma Steri Cycle CO2-Inkubatoren</td><td>ThermoFisher</td><td>370</td><td></td></tr><tr><td>Fluoromount-G</td><td>Southern Biotech</td><td>OB10001</td><td></td></tr><tr><td>Heparin-Natriumsalz aus der Darmschleimhaut des Schweins</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3149-10KU</td><td></td></tr><tr><td>INSM1 Antikörper</td><td>Santa Cruz BioTechnology</td><td>sc-271408</td><td>Polyklonales Maus-IgG</td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Fisher</td><td>a4164</td><td></td></tr><tr><td>Isothesie Isofluran, USP</td><td>Henry Schein</td><td>11695-6776-2</td><td></td></tr><tr><td>Insulin Antikörper</td><td>Dako</td><td>A056401</td><td>Polyklonales Meerschweinchen</td></tr><tr><td>KAPA SYBR FAST Universal</td><td>KAPA Biosystems</td><td>KK4618</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>KaryoMax</td><td>10575090 KnockOut-Serumersatz</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Invitrogen</td><td>10828028</td><td></td></tr><tr><td>Leica TCS SPE Hochauflösendes spektrales Konfokal</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>442615</td><td></td></tr><tr><td>Maus C-Peptid-ELISA</td><td>ALPCO</td><td>80-CPTMS-E01</td><td></td></tr><tr><td>Maus Ultrasensitiv Insulin ELISA</td><td>ALPCO</td><td>80-INSMSU-E01</td><td></td></tr><tr><td>MX35 Mikrotomklingen</td><td>ThermoFisher</td><td>3052835</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3817</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Normales Eselsserum</td><td>Jackson Immuno Research</td><td>017-000-121</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>158127</td><td></td></tr><tr><td>PBS 1X</td><td>Corning</td><td>21-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>Pdx1 Antikörper</td><td>DSHB</td><td>F6A11</td><td>Monoklonale Maus MIgG1</td></tr><tr><td>Peel-A-Way Einweg-Einbettungsformen</td><td>VWR</td><td>15160-157</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin-Lösung</td><td>Corning</td><td>MT30002CI</td><td></td></tr><tr><td>PMA (Phorbol 12-Myristat 13- Acetat)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1585</td><td></td></tr><tr><td>Protein LoBind Mikrozentrifugenröhrchen</td><td>Eppendorf</td><td>22431081</td><td>1,5 ml Kapazität</td></tr><tr><td>Rekombinantes humanes FGF-10 Protein</td><td>R& D Systems</td><td>345-FG</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinantes humanes FGF-saures</td><td>Peprotech</td><td>100-17A</td><td></td></tr><tr><td>rekombinantes humanes R-Spondin I Protein</td><td>R& D Systems</td><td>4546-RS</td><td></td></tr><tr><td>BenchRocker 2D</td><td>Benchmark</td><td>BR2000</td><td></td></tr><tr><td>Saccharose 500g</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S0389</td><td></td></tr><tr><td>SuperFrost Plus Objektträger</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-550-15</td><td></td></tr><tr><td>Super Pap Pen</td><td>Elektronenmikroskopie Sciences</td><td>71310</td><td></td></tr><tr><td>Thermomixer R</td><td>Eppendorf</td><td>05-412-401</td><td></td></tr><tr><td>Tissue Tek O.C.T. Compound</td><td>Sakura</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>TRIzol Reagenz</td><td>Invitrogen</td><td>15596018</td><td></td></tr><tr><td>TrypLE Express</td><td>Invitrogen</td><td>12604039</td><td>(1x), kein Phenolrot</td></tr><tr><td>Trypanblau Stain</td><td>Invitrogen</td><td>15250061</td><td>Für Zellzählobjektträger</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0,05% )</td><td>Corning</td><td>25-052-CI</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0,25 %)</td><td>Gibco</td><td>25200072</td><td>Phenolrot</td></tr><tr><td>mit extrem geringer Bindung 24-Well-Platte</td><td>Corning</td><td>3473</td><td></td></tr><tr><td>Sphäroidplatte mit extrem geringer Bindung 96-Well-Corning</td><td></td><td>4520</td><td></td></tr><tr><td>Vimentin-Antikörper</td><td>EMD Millipore</td><td>AB5733</td><td>Polyklonales Hühnchen-IgY</td></tr><tr><td>Vortex Genie</td><td>BioExpres</td><td>S-7350-1</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632 Dihydrochlorid</td><td>R& D Systems</td><td>1254</td><td>Auch bekannt als ROCK-Inhibitor</td></tr><tr><td>Zeiss 710 Konfokalmikroskop</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

generation von gerüst-frei, dreidimensionale insulin mit dem ausdruck pancreatoids vom maus pankreas stammväter in-vitro-

Generation of Scaffold-free, Three-dimensional Insulin Expressing Pancreatoids from Mouse Pancreatic Progenitors In Vitro

Die Bauchspeicheldrüse ist ein komplexes Organ, bestehend aus vielen verschiedenen Zelltypen, die zusammen arbeiten, um Blut-Glukose-Homöostase und die Verdauung zu regulieren. Diese Zelltypen gehören Enzym-sezernierenden acinar Zellen, einem verzweigten ductal System für den Transport von Enzymen, die Darm- und Hormon-produzierende endokrine Zellen verantwortlich.
Endokrine Beta-Zellen sind die einzige Zelltyp im Körper, die produzieren Insulin um den Blutzuckerspiegel zu senken. Diabetes, eine Krankheit, gekennzeichnet durch einen Verlust oder Dysfunktion des Beta-Zellen, erreicht epidemische Ausmaße. Daher ist es unentbehrlich, Protokolle, um Beta-Zell-Entwicklung zu untersuchen, die zu screening-Zwecken verwendet werden können, die Droge und zellbasierte Therapie ableiten. Während die experimentelle Untersuchung der Maus Entwicklung unverzichtbar ist, sind in Vivo Studien mühsam und zeitaufwändig. Kultivierte Zellen bieten eine sehr komfortable Plattform für das Screening; Allerdings sind sie nicht in der Lage, die zellulären Vielfalt, architektonische Organisation und zellulären Interaktionen gefunden zu erhalten in-vivo. Daher ist es wichtig, die Entwicklung neuer Instrumente zur Untersuchung der Pankreas Organogenese und Physiologie.
Epitheliale Zellen der Bauchspeicheldrüse entwickeln in enger Zusammenarbeit mit Mesenchym vom Beginn der Organogenese, wie Zellen zu organisieren und in das komplexe, physiologisch zuständigen Erwachsenen Organ zu unterscheiden. Die Bauchspeicheldrüse Mesenchym bietet wichtige Signale für die endokrine Entwicklung, von die viele auch noch nicht, so schwierig, während der in-vitro- Kultur rekapitulieren verstanden sind. Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Kultur dreidimensionale, zelluläre komplexe Maus Organellen, die Mesenchym, genannt Pancreatoids zu behalten. Die e10.5 murinen Pankreas Knospe seziert, dissoziiert und in ein Gerüst-freie Umgebung kultiviert. Dieser schwimmenden Zellen zusammensetzen selbst, mit Mesenchym umhüllt die Entwicklung Pancreatoid und eine robuste Reihe von endokrinen Beta-Zellen, die zusammen mit den acinar und die Kanal-Zellen entwickeln. Dieses System kann verwendet werden, um die Zelle Schicksal Entschlossenheit, Aufbauorganisation und Morphogenese, Zell-Zell-Interaktionen während der Organogenese, oder für die Droge, kleines Molekül oder genetisches Screening studieren.

Sorgfältige Dissektion von mäuseembryonen am e10.5 aus dem uterinen Horn sollte unbeschädigte Embryonen mit PBS-Puffer für weitere Dissektion (Abb. 1A) ergeben. Der Magen-Darm-Trakt kann der Embryo (Abbildung 1B), schönem Unterscheidung der dorsalen Pankreas Knospe an der Kreuzung der Darm und Magen (Abbildung 1C-F) effizient entfernt werden. Die e10...

Hier präsentieren wir ein Protokoll, um Insulin mit dem Ausdruck 3D murinen Pancreatoids von Pankreas Stammväter frei schwebenden e10.5 getrennt und die damit verbundenen Mesenchym zu generieren.

Generation von Gerüst-frei, dreidimensionale Insulin mit dem Ausdruck Pancreatoids vom Maus Pankreas Stammväter In-vitro-

The pancreas is a complex organ composed of many different cell types that work together to regulate blood glucose homeostasis and digestion. These cell ...

Diese Methode könnte dazu beitragen, Schlüsselfragen im Bereich der Bauchspeicheldrüse zu beantworten, indem sie diese Pankreatoiden verwendet, um zu verstehen, wie sich endokrine Zellen in einer architektonisch und zellulär komplexen Umgebung bilden. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass die Pankreatoiden aufgrund des Einschlusses des umgebenden Mesenchyms endokrine Zellen entwickeln. Im Allgemeinen werden Personen, die neu in dieser Methode sind, Schwierigkeiten haben, da die Bauchspeicheldrüse mit e10,5 sehr klein ist.Und die Dissektion ist entscheidend für die Bildung von Pankreatoiden, um genügend nicht kontaminierendes Gewebe zu erhalten. Um das Sezieren vorzubereiten, füllen Sie einen Eiskübel und stellen Sie einen Behälter mit phosphatgepufferter Kochsalzlösung in das Eis. Reinigen Sie zwei Pinzetten mit feiner Spitze und eine Präparierschere mit 70 % Ethanol.Stellen Sie in der Nähe des Präparierbereichs einen Behälter mit mindestens drei Borosilikat-Kapillarröhrchen, einem Feuerzeug und gefilterten 1000-Mikroliter-Pipettenspitzen auf. Als nächstes pipettieren Sie mindestens einen Milliliter 1,25 Milligramm pro Milliliter kalte Dispase, verdünnt in sterilisiertem Wasser, in die zweite Vertiefung einer 12-Well-Platte auf Eis. Pipettieren Sie PBS in die erste, dritte und vierte Vertiefung der 12-Well-Platte.Pipettieren Sie außerdem einen Milliliter 0,05 % Trypsin in ein 1,5-Milliliter-Röhrchen auf Eis. Nach dem Einschläfern von e10.5 zeitgesteuerten trächtigen Mäusen gemäß den IACUC-Richtlinien besprühen Sie den Bauch mit 70% Ethanol, um die Region zu reinigen. Machen Sie dann mit Schere und Pinzette einen V-förmigen Schnitt im Genitalbereich der Maus und setzen Sie den Schnitt bis zum Zwerchfell fort.Schneiden Sie die Gebärmutter vorsichtig heraus, indem Sie einen Schnitt an den obersten seitlichen Teilen der Gebärmutter machen, das Organ nach oben von der Maus weg ziehen und diesem Schnitt bis in die Genitalregion folgen, bevor Sie ihn auf der gegenüberliegenden Seite wiederholen. Legen Sie die herausgeschnittene Gebärmutter in eine 10 Zentimeter große Petrischale mit dem kalten PBS. Legen Sie die Petrischale unter ein Lichtmikroskop und öffnen Sie vorsichtig das Gebärmuttergewebe, indem Sie zwei Pinzetten zwischen jeden Embryo legen und das Gewebe vom Dottersack entfernen.Übertragen Sie die Embryonen, indem Sie den Dottersack vorsichtig mit einer Pinzette greifen und in eine 10 Zentimeter große Petrischale mit frischem, kaltem PBS legen. Stellen Sie die Petrischale auf Eis. Geben Sie als Nächstes mehrere PBS-Tropfen auf den 10 Zentimeter großen Petrischalendeckel.Verwenden Sie diese Tröpfchen, um den Embryo während der Dissektion zu übertragen, während extraembryonales Gewebe entfernt wird, um die Sichtbarkeit zu gewährleisten. Übertragen Sie einen Embryo in einen PBS-Tropfen und entfernen Sie ihn vorsichtig mit einer Pinzette aus dem Dottersack, während die restlichen Embryonen in PBS auf Eis bleiben. Entfernen Sie den Kopf, bevor Sie den Embryo in einen neuen PBS-Tropfen setzen, indem Sie eine Pinzette verwenden, um den Embryo leicht zu schöpfen, ohne das Gewebe zu beschädigen.Entfernen Sie in einem neuen PBS-Tropfen die vier Gliedmaßenknospen mit einer Pinzette. Platzieren Sie die Pinzette in der Öffnung, in der sich die Gliedmaßenknospe befand, und reißen Sie vorsichtig nur das äußerste Gewebe nach vorne. Drehen Sie den Embryo und wiederholen Sie den Vorgang in hinterer Richtung, wobei Sie an der Knospe der hinteren Gliedmaßen anhalten.Zu diesem Zeitpunkt sollte der Magen-Darm-Trakt sichtbar sein. Der hintere Bereich des Magen-Darm-Trakts weist eine leichte Biegung auf; Führen Sie hinter dieser Biegung eine Pinzette in die Öffnung zwischen dem Magen-Darm-Trakt und der Wirbelsäulenregion an der Körperwand ein. Lösen Sie den Magen-Darm-Trakt und arbeiten Sie sich langsam nach oben, bis der vorderste Bereich erreicht ist, an dem sich die Herzregion verbindet.In den folgenden Schritten ist es wichtig, das umgebende Gewebe in der Kultur zu vermeiden, um die Pankreatoiden nicht mit nicht-pankreatischem Gewebe zu kontaminieren. Wenn Du jedoch nicht die ganze Bauchspeicheldrüsenknospe nimmst, wird die Anzahl und Größe der Bauchspeicheldrüsen beeinträchtigt. Übertragen Sie den Magen-Darm-Trakt auf das frische PBS-Tröpfchen.Fahren Sie fort, das äußere Gewebe zu entfernen, das den Magen-Darm-Trakt umgibt. Sobald dieses äußere Gewebe entfernt ist, kann die Bauchspeicheldrüsenknospe hinter den Leberknospen, zwischen Magen und Darm, sichtbar gemacht werden. Nehmen Sie dann eine Pinzette und kneifen Sie das Gewebe unter der hervorstehenden Knospe im Darm vorsichtig zusammen und heben Sie die Bauchspeicheldrüsenknospe leicht ab.Nach dem Einklemmen der Region, in der die Knospe mit dem Darm verbunden ist, wird die Knospe getrennt. Wasche die Blüten einmal in einer neuen PBS-Blase, bevor Du sie in die erste Vertiefung der 12-Well-Platte gibst und PBS auf Eis kalt stellst. Wiederholen Sie den Vorgang, bis alle Knospen aus den Embryonen entnommen und in die erste Vertiefung der 12-Well-Platte gelegt wurden.Legen Sie als Nächstes die 12-Well-Schale unter das Lichtdissektionsmikroskop. Zähle die Anzahl der erfolgreich präparierten Bauchspeicheldrüsenknospen, um später das Teilungsverhältnis zu berechnen. Setzen Sie eine gefilterte 1000-Mikroliter-Pipettenspitze in die Pipette ein, an der das Kapillarröhrchen befestigt ist.Flammsterilisieren Sie das Kapillarrohr und erzeugen Sie eine Biegung im Rohr, um die Verwendung zu erleichtern. Verwende die Kapillare, um die Knospen zwei Minuten lang in die zweite Vertiefung mit kalter Dispaselösung zu übertragen, bevor du sie in die dritte Vertiefung mit sauberem PBS überträgst. Pipettiere die Knospen auf und ab und übertrage sie in die vierte Vertiefung mit sauberem PBS.Zum Schluss überträgst Du die Knospen mit dem Kapillargerät in das 1,5-Milliliter-Röhrchen mit 0,05 % Trypsin. Legen Sie das Röhrchen in den vorgewärmten 37 Grad Celsius Shaker und schütteln Sie es vier bis fünf Minuten lang bei 1.500 U/min. Nachdem Sie das Röhrchen etwa 10 Sekunden lang vortext haben, legen Sie es sofort in die Zentrifuge und drehen Sie es fünf Minuten lang bei 200 g.Entfernen Sie vorsichtig alle bis auf etwa 50 Mikroliter der Lösung, um die zentrifugierten Zellen nicht zu stören. Für jede Knospe, die bei 400 Mikrolitern Organogenesemedium gesammelt wird, in die zentrifugierten Zellen wird der Pulswirbel dreimal gepulst und 100 Mikroliter pro Vertiefung einer 96-Well-Platte mit geringer Bindung aufgetragen, wobei die Knospen im Verhältnis eins zu vier geteilt werden. Überprüfen Sie unter dem Mikroskop, um dissoziierte Zellen frei schwebend zu sehen.Stellen Sie dann die Kulturschale in einen 37 Grad Celsius heißen Inkubator mit 5% Kohlendioxid auf einer Wippe bei mittlerer Geschwindigkeit. Eine sorgfältige Dissektion von Mausembryonen bei e10.5 aus dem Gebärmutterhorn sollte unbeschädigte Embryonen in PBS für eine weitere Dissektion erhalten. Der Magen-Darm-Trakt kann effizient aus dem Embryo entnommen werden, so dass die dorsale Pankreasknospe an der Verbindung von Darm und Magen unterschieden werden kann.In Organogenese-Medien organisieren sich diese frei schwebenden, gerüstfreien Zellen selbst und organisieren sich zu dreidimensionalen Pankreatoiden, die wachsen und mindestens 10 Tage in Kultur bestehen bleiben. Die Anwendung eines Proteinkinase-C-Aktivators in hohen Konzentrationen verändert die Morphologie der sich entwickelnden Pankreatoiden, was zu locker assoziierten Epithelzellen und einer verstärkten Verzweigung führt. Darüber hinaus ermöglicht die Verwendung transgener Tiere die Visualisierung von Zellen bei der Differenzierung in Echtzeit.Um die Assoziation von Pankreas-Mesenchymgewebe mit Pankreosepithelzellen zu beurteilen, kann eine Immunfärbung für Marker jedes Gewebes durchgeführt werden. Die Immunfärbung eines Gangmarkers mit einem endokrinen Marker und Zellkernen zeigt die Bildung mehrerer Linien bei Pankreatoiden. Ein Mesenchymmarker, der mit einem Pankreasvorläufermarker kogefärbt ist, zeigt, dass das Mesenchym das Pankreatoid umhüllt.Die Entwicklung von Betazellen wird durch Färbung des Epithelmarkers und des Betazellmarkers nachgewiesen. Mittels quantitativer PCR-Analyse können Transkripte von Vorläuferzellen und differenzierenden Zellen wie Vorläufergene und differenzierte Marker beurteilt werden. Einmal gemeistert, kann diese Technik in etwa einer Stunde durchgeführt werden, einschließlich Vorbereitungszeit, wenn sie richtig ausgeführt wird.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie Sie die Dissektion durchführen, um Pankreasgewebe von 10,5 Mäusen zur Erzeugung von Pankreatoiden zu gewinnen. Wenn Sie dieses Verfahren versuchen, ist es wichtig, daran zu denken, den Magen-Darm-Trakt vorsichtig von den Embryonen zu entfernen, da es sonst sehr schwierig sein wird, die Bauchspeicheldrüsenknospe zu finden. Im Anschluss an dieses Verfahren können weitere Methoden wie GSIS und ELISA durchgeführt werden, um zusätzliche Fragen zu beantworten, z. B. wie viel Insulin oder C-Peptid nach der Glukosestimulation produziert wird.Nach ihrer Entwicklung ebnete uns diese Technik den Weg, um die morphologischen Folgen der PKC-Aktivierung mit kleinen Molekülen zu erforschen. Eine Möglichkeit, dieses System weiter zu implementieren, um die Wirkung des Transkriptionsfaktors der Expression zu untersuchen und sogar wichtige Epistase-Experimente durchzuführen.

generation-scaffold-free-three-dimensional-insulin-expressing

Research

Forschung

JoVE Journal

Developmental Biology

Entwicklungsbiologie

Eine dreidimensionale klonogene Test, dass Pankreas-like Vorläuferzellen in Insulin-exprimierenden Kolonien unterscheiden können beschrieben. Diese Methode nutzt die Vorteile von halbfesten Medien mit Methylcellulose, Matrigel und Wachstumsfaktoren, in denen einzelne Vorläuferzellen proliferieren und...

A Quantitative Assay für Insulin-exprimierenden Koloniebildende Vorläufern

Hier beschreiben wir ein Verfahren zur Isolierung, Kultur und Manipulation von embryonalen Maus Bauchspeicheldrüse. Dies stellt eine...

Ein System für<em&gt; Ex vivo</em&gt; Kultivierung von embryonalen Pankreas

Die in diesem Protokoll beschriebenen dreidimensionalen Kulturverfahren rekapituliert Bauchspeicheldrüse Entwicklung von verteilten embryonalen Maus-Pankreasvorläuferzellen, einschließlich ihrer erheblichen Ausweitung, Differenzierung und Morphogenese in einem verzweigten Organ. Dieses Verfahren ist zugänglich Bildgebung, funktionelle Störungen und Manipulationen der Nische.

In-vitro-Pankreas Organogenese von Dispersed embryonalen Maus-Vorläufer

In vitro - Kolonie - Assays Selbsterneuerung und Differenzierung von Vorläuferzellen , isoliert aus adulten murinen Bauchspeicheldrüse sind entwickelt zu detektieren. In diesen Assays geben Bauchspeicheldrüsen Progenitoren Anlass zu Zellkolonien in 3-dimensionalen Raum in Methylcellulose-enthaltende halbfeste Medium. Protokolle für die sind einzelne Zellen und Charakterisierung von einzelnen Kolonien Handhabung beschrieben.

In - vitro - Assays für Colony Tri-potente Progenitorzellen Charakterisieren von den Adult Murine Pancreas Isoliert

Dieses Protokoll zeigt die Mäuseinselisolation und die Aussaat auf ein dezelluläres Gerüst. Gerüstunterstützte Inselchen wurden in das epididymale Fettpolster von Streptozotocin (STZ) -induzierten diabetischen Mäusen transplantiert. Islets überlebten an der Transplantationsstelle und umkehrten den hyperglykämischen Zustand.

Gerüstgestützte Transplantation von Inseln in der epididymalen Fettauflage von diabetischen Mäusen

Hier präsentieren wir ein detailliertes Protokoll zur Unterscheidung von menschlicher pluripotenter Stammzellen (hPSCs) in Bauchspeicheldrüse/Zwölffingerdarm Homeobox Protein 1+ (PDX1+) Zellen für die Erzeugung von Pankreas Linien auf Basis des-Kolonie Typ Monolage Wachstums der einzelne Zellen zu trennen. Diese Methode ist geeignet für die Herstellung von homogenen hPSC-abgeleitete Zellen, Genmanipulation und Überprüfung.

Effiziente Generation der Bauchspeicheldrüse/Zwölffingerdarm Homeobox Protein 1+ Posterior Foregut/Bauchspeicheldrüsen-Vorfahren aus hPSCs in Haftung Kulturen

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine verbesserte Methode zur Erhöhung der Koexpression von PDX1- und NKX6.1-Transkriptionsfaktoren in Pankreas-Vorläuferzellen aus humanen pluripotenten Stammzellen (hPS-Zellen) in planaren Monoschichten. Dies wird erreicht, indem die frische Matrix aufgefüllt, die Zelldichte manipuliert und die endodermalen Zellen dissoziiert werden.

Differenzierung humaner pluripotenter Stammzellen zu Betazellvorläufern der Bauchspeicheldrüse in einem 2D-Kultursystem

Die Differenzierung von Stammzellen in Inselzellen bietet eine alternative Lösung zur herkömmlichen Diabetesbehandlung und Krankheitsmodellierung. Wir beschreiben ein detailliertes Stammzellkulturprotokoll, das ein kommerzielles Differenzierungskit mit einer zuvor validierten Methode kombiniert, um die Herstellung von Insulin sezernierenden, aus Stammzellen gewonnenen Inseln in einer Schale zu unterstützen.

Differenzierung humaner pluripotenter Stammzellen zu insulinproduzierenden Inselclustern

Dieser Artikel stellt ein Protokoll für die gerichtete Differenzierung und funktionelle Analyse von β-zellähnlichen Zellen vor. Wir beschreiben optimale Kulturbedingungen und Passagen für humane pluripotente Stammzellen, bevor insulinproduzierende Pankreaszellen erzeugt werden. Die sechsstufige Differenzierung schreitet von der endgültigen Endodermbildung bis hin zu funktionellen β-Zell-ähnlichen Zellen fort, die Insulin als Reaktion auf Glukose absondern.

Optimiertes Protokoll zur Erzeugung funktioneller Insulin-sezernierender Zellen der Bauchspeicheldrüse aus humanen pluripotenten Stammzellen

Wir bieten ein minimalinvasives Protokoll für die intramuskuläre Transplantation von von humanen Stammzellen abgeleiteten Pankreas-Stammzellinseln in immundefiziente Mäuse für die In-vivo-Implantation und nachgelagerte Analyse.

Intramuskuläre Transplantation von humanen pluripotenten Stammzellen-abgeleiteten endokrinen Zellen der Pankreasbildung bei Mäusen

Erfahren Sie die Generierung von insulinexprimierenden 3D-Pancreatoiden aus murinen Pankreas-Stammzellen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung endokriner Zellentwicklung im mesenchymalen Kontext für Diabetesforschung.

Generation von Gerüst-frei, dreidimensionale Insulin mit dem Ausdruck Pancreatoids vom Maus Pankreas Stammväter In-vitro-

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