Name: Charakterisierung der Thymus-abhängig und Thymus-unabhängige Immunglobulin Isotype Antworten bei Mäusen mit Enzym-linked Immunosorbentprobe Assay (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-07T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 15 s
Description: Erfahren Sie, wie man ELISA zur Charakterisierung thymusabhängiger und thymusunabhängiger Immunglobulin-Isotyp-Antworten bei Mäusen nutzt. Diese Methode ermöglicht zuverlässige quantitative Messungen von B-Zell-Aktivierung und humoraler Immunität.

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Diese Studie wurde unterstützt von den National Institutes of Health Zuschüsse R01 CA158402 (P. xxx) und R21 AI128264 (P. Xie), dem Department of Defense gewähren W81XWH-13-1-0242 (s. Xie), ein Pilot Award vom Cancer Institute of New Jersey durch Grant Nummer P30CA072720 vom National Cancer Institute (s. xxx), ein Busch biomedizinische Grant (s. xxx), Victor Stollar Stipendiat (A. Lalani) und Anne B. und James B. Leathem Fellowship (S. Zhu).

Dieses Protokoll folgt den Richtlinien des institutionellen Tierforschung Ethik-Kommission der Rutgers University. Alle Mäuse dienen nach NIH-Richtlinien und eine tierische Protokolls durch die institutionelle Animal Care and Use Committee genehmigt.
1. Vorbereitung von Mäusen und Sammlung von naiven Maus Sera
<ol><li>Halten Sie alle Mäuse für Immunisierung Experimente in einem bestimmten Pathogen-freies Tierhaus.</li>
	<li>Mäuse, die die gleichen Eltern und Käfige für Immunisierung Studien Teilen Steuern Gebrauch Geschlecht abgestimmt, junger Erwachsener (8 – 12 Wochen alt) ko und stellt.</li>
	<li>Planen Sie die Immunisierung und Serum Sammlung Zeitpläne wie in Abbildung 1dargestellt.</li>
	<li>Ernten Sie naiv Serum von jeder Maus 7 Tage (-7 Tage) vor der Impfung. Folgen Sie den Retro-Orbital Blutungen und Serum Vorbereitung Anweisungen wie unten in Schritt 4 beschrieben.</li>
</ol>2. Vorbereitung der TNP-Polysaccharid (ein TI-Antigen) und TNP-KLH (ein TD-Antigen)
<ol><li>Lösen Sie die Antigen-Pulver mit sterilen PBS-Puffer (pH 7,4) gründlich zu 0,5 mg/mL von TNP-Polysaccharid-Lager und 1 mg/mL der Stammlösungen TNP-KLH. Aliquoten jedes Antigen Lösung in sterilen Microfuge Röhren bei 0,5 mL/Tube auf Lager, und halten Sie die Aliquote bei-80 ° C für die langfristige Lagerung. Vermeiden Sie mehrere Einfrieren und Auftauen von Antigen Aliquote.</li>
	<li>Am Tag Injektion berechnen das Volumen der TNP-Polysaccharid (50 µg/100 µL/Maus) oder TNP-KLH (100 µg/100 µL/Maus) musste nach der Anzahl der Mäuse injiziert werden. Tauen Sie entsprechende Anzahl von TNP-Polysaccharid oder TNP-KLH Aliquote bei Raumtemperatur (RT).</li>
	<li>TNP-KLH Injektionslösung zuerst verdünnen Sie Alaun Adjuvans (40 mg/mL) mit 3 Bände von sterilen PBS, eine Endkonzentration von 10 mg/mL. Stellen Sie sicher, dass die Alaun adjuvante Mischung gut abgehängte vor Verdünnung ist.</li>
	<li>Gleiches Volumen von 10 mg/mL Alaun adjuvante Gülle aus Schritt 2.3 und die aufgetauten TNP-KLH-Lösung (1 mg/mL) in eine 5 mL-Polypropylen-Rohr zu kombinieren, gut mischen und Inkubation bei 37 ° C für 30 min. dieser TNP-KLH/Alaun mischen frisch vor der Injektion vorbereiten.</li>
</ol>3. Immunisierung von Mäusen
<ol><li>Führen Sie intraperitoneal (i.p.) Injektion von TNP-Polysaccharid oder TNP-KLH/Alaun, die Mäuse mit 1 mL Insulinspritzen in einem Biosafety-Schrank zu immunisieren. Stechen Sie die Nadel im ca. 30° Winkel vorzugsweise im unteren rechten Quadranten von jeder Maus-Injektion in den inneren Organen zu verhindern.</li>
	<li>I.p. 100 µL der TNP-Polysaccharid per Mausklick am Tag 0 für TI Ag Immunisierung (Abb. 1A) zu injizieren.</li>
	<li>I.p. 200 µL der TNP-KLH/Alaun-Mix (frisch zubereitet im Schritt 2.4) per Mausklick am Tag 0 für TD Ag Immunisierung zu injizieren. Wiederholen Sie die gleichen Injektion am Tag 21 als eine Auffrischimpfung für Speicher-Studien (Abbildung 1B).</li>
	<li>Nach der Injektion jede Maus zu seinem Käfig zurückkehren und die injizierten Mäusen in bestimmten Pathogen-freies Zustand zu halten.</li>
</ol>4. Retro-Orbital Blutungen und Serum-Vorbereitung
<ol><li>Maus-Sera zu verschiedenen Zeitpunkten zu ernten: für TNP-Polysaccharid Impfung sammeln Maus Sera am Tag -7 und 7 (Abb. 1A); für TNP-KLH/Alaun-Immunisierung sammeln Sie Maus Sera am Tag -7, 7, 14 und 28 (Abbildung 1B).</li>
	<li>Für Retro-Orbital Blutungen jede Maus mit 5 % Isofluran für 1 – 2 min. in einer Biosafety Schrank25zu betäuben. Führen Sie Pedal Reflex um ausreichende Anästhesie des jede Maus zu gewährleisten.</li>
	<li>Halten Sie die narkotisierten Maus in der einen Hand mit Zeigefinger und Daumen ziehen die Haut um den Augapfel zurück, so dass der Augapfel aus der Steckdose25hineinragt. Legen Sie eine nicht-heparinisierten Pasteurpipette oder Kapillarrohr in einem Winkel von 45° in den inneren Augenwinkel die Augenhöhle unter den Augapfel-25.</li>
	<li>Üben Sie sanften Druck nach unten und drehen Sie die Pipette oder Rohr sanft zu brechen in die Vene und 150 – 200 µL Blut in die Pipette oder Rohr zu sammeln. Sofort das Blut zu übertragen, um einem sterilen 1,5 mL Microfuge Rohr und die Maus in seinen Käfig zu erholen zurück.</li>
	<li>Lassen Sie das Blut, die Proben bei RT für 1 – 2 h zur Koagulation sitzen.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie die blutkoagel Proben bei 13.000 X g für 10 min bei 4 ° C. Übertragen Sie das klare Serum auf das Blutgerinnsel zu einem neuen sterilen 1,5 mL Microfuge Schlauch.</li>
	<li>Wiederholen Sie Schritt 4.6 noch einmal residual Blutgerinnsel entfernen und das klare Serum zu sammeln.</li>
	<li>Aliquoten das Serum in sterilen 1,5 mL Microfuge Röhren bei 50 µL/Tube, und speichern Sie die Sera bei-80 ° C.</li>
	<li>Wechseln Sie das Auge für Blutungen zu unterschiedlichen Zeitpunkten, so dass jedes Auge höchstens zweimal für das ganze Experiment ausgeblutet ist. Am Terminal Blutungen sammeln Sie bis zu 1 mL Blut aus jeder Maus vor Euthanasie. Einschläfern Sie die Maus mit 5 % CO2 gefolgt von zervikale Dislokation. Hinweis: Milz B-Zellen für Durchfluss durchflusszytometrischen Untersuchungen und in-vitro- Kultur-Studien geerntet werden können. Wir bereiten auch genomischen DNA aus splenocyten, den Genotyp der jede Maus zu überprüfen.</li>
</ol>(5) Maus Ig Isotype-spezifischen ELISA
<ol><li>
Bereiten Sie den Puffer und Lösungen vor ELISA.
	<ol>
<li>Bereiten Sie 500 mL Kupplung Puffer (PBS, pH 7.4).</li>
		<li>500 mL Waschlösung vorbereiten (PBS-T (0,05 % Tween 20), pH 7.4).</li>
		<li>Bereiten Sie 100 mL Puffer blockiert (1 % BSA mit PBS-Puffer, pH 7,4, bei 4 ° C gelagert).</li>
		<li>Bereiten Sie 1 L Substratpuffer (1 M Diethanolamin, pH 9,8 (97 mL Diethanolamin in 1 L H2O, pH mit 10 M HCl eingestellt) und 0,5 mM MgCl2). Schützen Sie durch die Flasche mit Alufolie umwickeln der Substratpuffer vor Licht. Shop bei 4 ° C.</li>
		<li>100 mL Stopp-Lösung (3 M NaOH) vorzubereiten.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Die ELISA-Platten zu beschichten:
	<ol>
<li>Für total Serum Ig Isotype ELISA, 96-Well-Immuno Platten mit 10 µg/mL Isotype-spezifische erfassen polyklonale Ziege Anti-maus Ig Mantel (M, G1, G2a, G2b, G3, A oder E) Abs in Kupplung Puffer (PBS) in 100 µL/Well.</li>
		<li>Für TNP-spezifische Ig Isotype ELISA Mantel 96-Well-Immuno Platten mit 10 µg/mL von TNP(38)-BSA mit PBS-Puffer bei 100 µL/Well.</li>
		<li>Für hohe Affinität TNP-spezifische Ig Isotype ELISA Mantel 96-Well-Immuno Platten mit 10 µg/mL von TNP(3)-BSA mit PBS-Puffer bei 100 µL/Well26. Über Nacht inkubieren Sie die Platten bei 4 ° C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Waschen Sie nach der Beschichtung Inkubation die Platten 2 Mal mit 200 µL/Well des PBS-T. Verwerfen der Waschpuffer und Fleck Trocknen der Platten (tippen Sie auf jede Platte auf dem Kopf stehend auf einem Stapel Papier Handtücher) nach jedem Waschen.</li>
	<li>Blockieren die Platten: Fügen Sie 200 µL/Well des Blocking-Puffer (1 % BSA mit PBS-Puffer) in den beschichteten Platten und inkubieren Sie die Platten für 1 h bei RT</li>
	<li>
Während die Platten blockiert sind, bereiten Sie Verdünnungen der Ig Isotype Standards und Serumproben in Blocking-Puffer in einer separaten, unbehandelte 96-Well-Platte bei 150 µL/Well.
	<ol>
<li>250 ng/mL Ig Isotype Normen als Ausgangspunkt Standardkonzentration (St01) vorzubereiten und zu treffen 7 bis 10 von 1:2 serielle Verdünnungen der Ig Standards (St02 St07 oder St10, Abbildung 2A).</li>
		<li>Bereiten Sie Maus Serum Proben bei einer Verdünnung von 1: 100 oder 1: 500 Faktor als Ausgangspunkt Verdünnung und 3 oder 4 01:10 serielle Verdünnungen für insgesamt Ig Isotype oder 1:5 serielle Verdünnungen für TNP-spezifische Ig Isotype jeder Serum-Probe (Abb. 2A). Bereiten Sie für IgE ELISA Maus Serumproben mit dem 1:2 Verdünnungsfaktor als Ausgangspunkt Verdünnung, und machen Sie 3 von 1:5 Verdünnungsreihen jeder Serum-Probe.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Nach der Blockierung, waschen Sie die Platten aus Schritt 5.4 dreimal mit 200 µL/Well des PBS-T und Fleck Trocknen der Platten nach jedem Waschen.</li>
	<li>Übertragen Sie 100 µL/Well verdünnten Ig Isotype Standards (geeignet für die Erfassung und Erkennung Abs) und verdünnten Serumproben aus Schritt 5.5 an den Platten im Schritt 5.6 vorbereitet. Über Nacht inkubieren Sie die Platten mit den Standards und Proben bei 4 ° C.</li>
	<li>Waschen Sie die Platten 3 Mal mit 200 µL/Well des PBS-T und Fleck Trocknen der Platten nach jedem Waschen.</li>
	<li>In jeder Platte hinzufügen 100 µL/Well von 10 µg/mL eine entsprechende alkalische Phosphatase (AP)-konjugierten Isotype-spezifische Ziege Anti-maus Ig (M, G1, G2a, G2b, G3, A oder E) Abs in Blocking-Puffer verdünnt.</li>
	<li>Inkubieren Sie die Platten mit AP-konjugierten Abs für 1-2 h bei RT Inkubieren Sie für die Erkennung von IgE die Platten für 1 – 2 h bei 37 ° c</li>
	<li>Bereiten Sie 1 mg/mL Substratlösung durch zwei Tabletten 5 mg Phosphatase Substrat in 10 mL Substratpuffer auflösen.</li>
	<li>Jede Platte 5 Mal mit 200 µL/Well des PBS-T waschen und Fleck Trocknen der Platten nach jedem Waschen.</li>
	<li>100 µL/Well der Substratlösung in jeder Platte hinzufügen. Lassen Sie die Reaktion bei RT, zu entwickeln, die in der Regel nur wenige Minuten dauert.</li>
	<li>
Lesen Sie jede Platte bei 405 nm unter Verwendung eines Mikrotestplatte Lesers mit der zugehörigen Software.
	<ol>
<li>Klicken Sie auf "Einstellungen" um die Wellenlängen "Lm1" eingestellt "405 nm" und klicken Sie auf "OK".</li>
		<li>Klicken Sie auf "Vorlage", "leer" Brunnen, Brunnen "Standards" und "unbekannt" Brunnen gemäß den 96-Well-Platte-Einstellungen zuweisen.</li>
		<li>"Standards" Brunnen klicken Sie auf "Serie", um "Erstmuster"als"St01" festlegen, wählen "Starten von" an "oben" und "repliziert" als "2" gesetzt. Überprüfen Sie"Probe DescriptoR" und "Standardwert": Wählen Sie "Geräte"als"ng/mL", "Start-Wert" als "250", "Schritt", als "2" gesetzt. Klicken Sie auf "OK".</li>
		<li>Klicken Sie auf "Lesen" um der Platte zu lesen, wenn die meisten standard erreicht konzentrierten eine optische Dichte (OD) von ~ 1.</li>
		<li>Klicken Sie im Menü "Datei" und klicken Sie auf "Speichern", um die Datei zu speichern.</li>
		<li>Klicken Sie auf "Lesen", um die Platte wieder zu lesen, nähert sich der konzentrierteste Standard OD405 von ~ 1.5, 2 und 2,5, beziehungsweise.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Stoppen Sie die Reaktion durch Zugabe von 25 µL/Well von 3 M NaOH. Führen Sie die Schritte 5.12 um 5.15 für eine Platte zu einem Zeitpunkt.</li>
	<li>
ELISA Datenanalyse mit Hilfe der Software der Mikrotestplatte Leser zugeordnet:
	<ol>
<li>Überprüfen Sie die OD405-Werte der Ig Isotype Standards lesen Sie Dateien und wählen Sie eine entsprechende Lesung mit guten linearen Bereich der Standards für detaillierte Datenanalyse.</li>
		<li>Wählen Sie das passende 4-Parameter Programm standard Kurven Plotten. Überprüfen Sie die Koeffizienten der Standardkurve (R2), die > 0,98 gute Datenqualität sicherzustellen werden muss.</li>
		<li>Überprüfen Sie, ob die OD405-Werte jeder Probe sinken mit zunehmender Verdünnungsfaktoren. Rufen Sie die Konzentration von allen verdünnten Probe Brunnen durch Klicken auf "Unbekannten ab".</li>
		<li>Wählen Sie eine geeignete gut jeder Probe mit OD405 im linearen Bereich der Ig Isotype Standardkurve für die Berechnung der Konzentration.</li>
		<li>Das Serum Ig Isotype Konzentration von jeder Probe mit Hilfe der Formel zu berechnen: Serum Ig Konzentration = ausgewählte gut Konzentration x Verdünnungsfaktor.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Plotten von Grafiken und statistischen Analysen mit Hilfe einer entsprechenden Software9,10,11. Stellen Sie vertikale Streudiagrammen Serum Ig Isotype Ebenen, die Ig-Antworten zum gleichen Zeitpunkt zu vergleichen. Machen Sie für TD Speicher Antwort Studien die Zeitverlauf Wirkungs-Kurven, die Ig Isotype Antworten vor und nach der Auffrischimpfung zu untersuchen. Verwenden Sie Fehlerindikatoren Standardabweichung (SD) der einzelnen Proben zeigen. Um Ig Isotype Reaktionen zwischen zwei Genotypen von Mäusen zu vergleichen, verwenden des ungepaarten t -Tests für zwei-tailed Daten um die statistische Signifikanz bestimmen. Festlegen der p -Wert < 0,05 als deutlich anders.</li>
</ol>

Die Autoren haben keinen finanziellen Interessenkonflikt.

Hier beschreiben wir das Protokoll für die Charakterisierung von TD und TI Ig Isotype Reaktionen bei Mäusen mittels ELISA. Erfolgreiche Umsetzung dieses Protokolls erfordert die Verwendung von Materialien, die in Tabelle 1, einschließlich ELISA-Assay-Platten, Immunisierung Ags, Maus Ig Isotype-spezifische Antikörper und Normen angegeben. Darauf sollte geachtet werden, vermeiden die Verwendung von Gewebekultur behandelt Platten für ELISA. Verdünnungen der Standards und Serumproben sollten in separaten unb...

B-Lymphozyten sind der Hauptakteur in humorale Immunität und die einzige Zelltyp bei Säugetieren, die in der Lage, die Produktion von Antikörpern, auch als Immunglobuline (Ig)1,2bezeichnet sind. Abgesondert von B-Zellen Antikörper bieten eine gewaltige Verteidigung gegen eindringende Krankheitserreger über vielfältige Mechanismen, einschließlich Neutralisation, Opsonization und Komplementaktivierung führt zu schützende Immunität3. Sekretion von Antikörpern durch B-Zellen wird erst nach der vollständigen Aktivierung von bestimmten B-Zellen, die erfordert in der Regel zwei unterschiedliche Signale,3erreicht. Signal 1 wird durch die direkte Bindung des Antigens (Ag) an den B-Zell-Rezeptor (BCR) ausgedrückt auf der Oberfläche von bestimmten naive B Zellen3weitergeleitet. Abhängig von der Quelle des Signals 2 kann Thymus-abhängig (TD) oder Thymus-unabhängige (TI)3,4B-Zell-Aktivierung unterteilt werden. Ein TD-Antigen-Reaktion liefert Signal 2 aktivierten cognate CD4 T (TH)-Helferzellen, die CD154, die Liganden für den co-stimulatory-Rezeptor CD40 ausgedrückt auf B Zellen1,2,3zum Ausdruck bringen. Ein TI-Antigen-Reaktion, Signal 2 entstammt entweder Engagement von Toll-Like-Rezeptoren (TLRs bei Typ 1 TI-Ag) oder umfangreiche Vernetzung der BCR (bei Typ-2 TI Ag) auf der B-Zellen3,4. Typ 1 TI (TI-1) Antigene sind mikrobielle Liganden der TLRs, einschließlich der bakteriellen Lipopolysacchariden (LPS), virale RNA und mikrobielle CpG-DNA4,5. Typ 2 TI (TI-2) Antigene haben stark repetitiven Struktur und liefern längere und anhaltende Signalisierung zu B-Zellen durch mehrere Vernetzung der BCR4,6. Typische Beispiele für TI-2-Antigene sind Pneumokokken Polysaccharide und Hapten konjugierte Polysaccharid-6,-7. TD und TI Antigene können robuste Antigen-spezifische IgM Antworten entlocken und induzieren können auch die Produktion von Isotype geschalteten Antikörpern (IgG, IgA und IgE) mit der Hilfe von antigenpräsentierende Zellen (APCs) wie Dendritische Zellen (DCs)1 ,2,3. Darüber hinaus TD und TI Antigene sind in der Lage, Speicher-Reaktionen mit Hilfe von APCs induzieren, aber TD Antigene sind effizienter, induzierende Speicher B-Zell-Generation3,8.
In diesem Protokoll sind TD und TI Ig Antworten bei Mäusen durch intraperitoneale (i.p.) Immunisierung mit Hapten konjugiert Modell Antigene 2,4,6-Trinitrophenyl-Keyhole Limpet Hemocyanin (TNP-KLH) und TNP-Polysaccharid (Neutral, stark verzweigte ausgelöst. und hoher Masse), bzw.9,10,11. TD Antigene sind in der Regel mit Adjuvans zur die Produktion von Antikörpern12zu erhöhen. Hier in unserem Protokoll TNP-KLH mit Alaun, eine häufig verwendete adjuvante Impfung Studien12injiziert. Andere Beispiele für Hilfsstoffe, die verwendet werden können vollständig oder unvollständig Freund des Adjuvans (CFA oder IFA), Monophosphoryl-Lipid A / Trehalose Dicorynomycolate ("Ribi" adjuvante) und CpG oligodeoxynukleotiden, etc.13, 14. nach der Immunisierung, Maus Sera werden zu verschiedenen Zeitpunkten geerntet und TNP-spezifischen Antikörper im Serum quantifiziert mit Ig Isotype-spezifischen Enzym-linked Immunosorbentprobe Assay (ELISA)9,10, 11.
ELISA ist ein Teller-basierte Assay, der weithin als Diagnosewerkzeug in der Medizin und auch als analytisches Werkzeug in der biomedizinischen Forschung15,16verwendet wird. Es dient zum erkennen und quantifizieren Analyten einschließlich Antikörper, Hormone, Zytokine, Chemokine, und verschiedene Antigene, etc.. ELISA kann in verschiedenen Formaten, einschließlich direkte, indirekte, Sandwich und wettbewerbsfähigen ELISA15,16durchgeführt werden. Im Allgemeinen geht es um die Immobilisierung des Antigens an einer festen Oberfläche, in der Regel einer 96-Well Mikrotiterplatte, die mit einem primären Antikörper inkubiert. Nach der Inkubation wird die ungebundene Antikörper abgewaschen. In eine direkte ELISA der primäre Antikörper direkt mit einem Enzym (in der Regel Meerrettich Peroxidase oder alkalische Phosphatase), die einem chromogenen Substrat um einen sichtbaren Farbumschlag erkannt durch ein Signal-Erkennung-Instrument wie Ausbeute Spalten kann konjugiert ist ein Spektralphotometer15,16. Im Gegensatz dazu, wenn ein Enzym-linked Sekundärantikörper verwendet wird, um den primären Antikörper binden, dann gilt dies als eine indirekte ELISA15,16. Direkte ELISA ist schneller während indirekte ELISA empfindlicher15,16. In einem Sandwich ELISA die Platten sind mit einem "einfangen" Antikörper verwendet, um das Antigen des Interesses an den Proben zu immobilisieren beschichtet, und dann das aufgenommene Antigen erkannt werden, von einem anderen "detektionsantikörper" in eine direkte oder indirekte Weise15, 16. Sandwich ELISA bietet hohen Spezifität, da das Antigen durch zwei verschiedene Antikörper an das Antigen erkannt wird. In einem wettbewerbsfähigen ELISA die Konkurrenz zwischen Probe Antigen und die Platte gebundene Antigen für die Bindung an den Primärantikörper ansässig ist, und dann die Antigenkonzentration in der Probe wird durch die Messung des Rückgang der Signal vom Substrat quantifiziert 15 , 16. wettbewerbsfähige ELISA durchgeführt werden kann, mit dem oben genannten direkten oder indirekten-Format und eignet sich für die Erkennung von kleinen Antigene mit nur ein Epitop15,16.
Alternative Verfahren zur Messung der Antikörper gehören Radio-Immunoassay (RIA), Electrochemiluminescence (ECL) Assay und Surface Plasmon Resonance (SPR) assay17. RIA war, dass die ersten Immunoassay entwickelt, dass die Maßnahmen die Anwesenheit eines Antigens (oder Antikörper) mit hoher Spezifität und Sensitivität mit radioaktiven Reagenzien18,19. Jedoch, aufgrund von Bedenken der radioaktiven Toxizität, Entsorgungskosten, Haltbarkeit und spezielle Lizenzen mit radioaktiven Stoffen zu arbeiten, ELISA ist eine bessere und bequemere Technik für gemeinsame nutzt20,21. ECL ist ein hochsensibler Assay in der Chemilumineszenz-Reaktionen werden initiiert, unter Verwendung der Elektrizität, um hoch reaktive Spezies aus stabilen Vorstufen auf der Oberfläche der Elektrode zu generieren, und können verwendet werden, um die Menge des Analyten zu messen (z. B. Antigene oder Antikörper)22. Allerdings erfordert ein spezielles Instrument ECL und somit nicht so breit als ELISA23eingesetzt. SPR ist ein direkter Assay, die verwendet werden kann, um die Bindung des Liganden zu messen (zB., Antikörper), immobilisiert Moleküle (zB., Antigene) auf einem Sensor chip-Oberfläche24. SPR erkennt die Interaktionen in Echtzeit sehr spezifisch und erfordert nicht die Verwendung von markierten Reagenzien wie ELISA. Allerdings erfordert eine spezielle Ausrüstung SPR auch und hat eine geringeren Empfindlichkeit als ELISA17. Angesichts der Einschränkungen der alternativen Methoden, ist ELISA die am besten geeignete und günstige Technik für unsere Zwecke in diesem Protokoll. Hier beschreiben wir die Verwendung von Sandwich ELISA für die Analyse der gesamten Ig Isotype Ebenen und das Verfahren der indirekten ELISA für die Analyse der Antigen-spezifische Ig Klassen.

<table><tbody><tr><td>VersaMax Tunable Microplate Reader</td><td>MDS Analytical Technologies</td><td>VERSAMAX</td><td>Ausrüstung zum Lesen der Platten</td></tr><tr><td>SOFTmax PRO 5.3</td><td>MDS Analytical Technologies</td><td>SOFTmax PRO 5.3</td><td>Software für den Plattenleser</td></tr><tr><td>GraphPad Prism</td><td>GraphPad</td><td>Prism</td><td>Software für Grafik und Statistik</td></tr><tr><td>TNP-AECM-Polysaccharid (FICOLL)</td><td>Biosearch Technologies</td><td>F-1300-10</td><td>A TI Ag für die Immunisierung</td></tr><tr><td>TNP-KLH</td><td>Biosearch Technologies</td><td>T-5060-5</td><td>A TD Ag für die Immunisierung</td></tr><tr><td>TNP(38)-BSA</td><td>Biosearch Technologies</td><td>T-5050-10 (Konjugationsverhältnis: 38)</td><td>Coating Ag für TNP-spezifischen ELISA</td></tr><tr><td>TNP(3)-BSA</td><td>Biosearch Technologies</td><td>T-5050-10 (Konjugationsverhältnis: 3)</td><td>Coating Ag für hochaffine TNP-spezifisches Ig-Imjektiv-Alaun</td></tr><tr><td></td><td>Fisher Wissenschaftlich&nbsp;</td><td>PI-77161</td><td>Alaun-Adjuvans für die Immunisierung</td></tr><tr><td>Falcon Polypropylen-Röhrchen</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>14-959-11A</td><td>Zur Inkubation von TNP-KLH/alaun</td></tr><tr><td>BD Insulinspritze</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>14-829-1B</td><td>Für die i.p. Injektion von</td></tr><tr><td>Immuno 96-Well-Platten von Mäusen, Flachboden-Fisher</td><td>Scientific&nbsp;</td><td>14-245-61</td><td>Für ELISA</td></tr><tr><td>Unbehandelte 96-Well-Mikrotiterplatten, Rundboden</td><td>VWR</td><td>82050-622</td><td>Für serielle Verdünnungen von Standards und Proben</td></tr><tr><td>Phosphatase-Substrat, 5 mg Tabletten</td><td>Sigma</td><td>S0942-200TAB</td><td>AP-Substrat</td></tr><tr><td>Diethanolamin</td><td>VWR</td><td>IC15251690</td><td>Ein Bestandteil des AP-Substratpuffers</td></tr><tr><td>Ziegen-Anti-Maus-IgM</td><td>SouthernBiotech</td><td>1020-01</td><td>Capture Ab für Maus IgM Ziege</td></tr><tr><td>Anti-Maus IgG1</td><td>SouthernBiotech</td><td>1070-01</td><td>Capture Ab für Maus IgG1</td></tr><tr><td>Ziege Anti-Maus IgG2a</td><td>SouthernBiotech</td><td>1080-01</td><td>Capture Ab für Maus IgG2a</td></tr><tr><td>Ziege Anti-Maus IgG2b</td><td>SouthernBiotech</td><td>1090-01</td><td>Capture Ab für Maus IgG2b</td></tr><tr><td>Ziege Anti-Maus IgG3</td><td>SouthernBiotech</td><td>1100-01</td><td>Capture Ab für Maus IgG3</td></tr><tr><td>Ziege Anti-Maus IgA</td><td>SouthernBiotech</td><td>1040-01</td><td>Capture Ab für Maus IgA</td></tr><tr><td>Ziege Anti-Maus IgE</td><td>SouthernBiotech</td><td>1110-01</td><td>Capture Ab für Maus</td></tr><tr><td>IgE AP-Ziege Anti-Maus</td><td>IgM SouthernBiotech</td><td>1020-04</td><td>Detection Ab für Maus</td></tr><tr><td>IgM AP-Ziege Anti-Maus IgG1</td><td>SouthernBiotech</td><td>1070-04</td><td>Detection Ab für Maus IgG1</td></tr><tr><td>AP-Ziege Anti-Maus IgG2a</td><td>SouthernBiotech</td><td>1080-04</td><td>Detection Ab für Maus IgG2a</td></tr><tr><td>AP-Ziege Anti-Maus IgG2b</td><td>SouthernBiotech</td><td>1090-04</td><td>Detection Ab für Maus IgG2b</td></tr><tr><td>AP-Ziege Anti-Maus IgG3</td><td>SouthernBiotech</td><td>1100-04</td><td>Detection Ab für Maus IgG3</td></tr><tr><td>AP-Ziege Anti-Maus</td><td>IgA SouthernBiotech</td><td>1040-04</td><td>Detection Ab für Maus IgA</td></tr><tr><td>AP-Ziege Anti-Maus IgE</td><td>SouthernBiotech</td><td>1110-04</td><td>Detection Ab für Maus IgE</td></tr><tr><td>Maus IgM Standard</td><td>BD Biosciences</td><td>553472</td><td>TNP-spezifisches IgM, Klon&nbsp; G155-228</td></tr><tr><td>Maus IgG1 Standard</td><td>BD Biosciences</td><td>554054</td><td>TNP-spezifisches IgG1, Klon&nbsp; 107.3</td></tr><tr><td>Maus IgG2a Standard</td><td>BD Biosciences</td><td>556651</td><td>TNP-spezifisches IgG2a, Klon&nbsp; G155-178</td></tr><tr><td>Maus IgG2b Standard</td><td>BD Biosciences</td><td>554055</td><td>TNP-spezifisches IgG2b, Klon&nbsp; 49,2</td></tr><tr><td>Maus IgG3 Standard</td><td>BD Biosciences</td><td>553486</td><td>KLH-spezifisches IgG3, Klon&nbsp; A112-3</td></tr><tr><td>Maus IgA-Standard</td><td>BD Biosciences</td><td>550924</td><td>Mineralöl-induziertes IgA, Klon&nbsp; MOPC-320</td></tr><tr><td>Maus IgE-Standard</td><td>BD Biosciences</td><td>557079</td><td>TNP-spezifisches IgE, Klon&nbsp; Nr. C38-2</td></tr></tbody></table>

charakterisierung der thymus-abhängig und thymus-unabhängige immunglobulin isotype antworten bei mäusen mit enzym-linked immunosorbentprobe assay

Characterization of Thymus-dependent and Thymus-independent Immunoglobulin Isotype Responses in Mice Using Enzyme-linked Immunosorbent Assay

Antikörper, auch bezeichnet als Immunglobuline (Ig), abgesondert von B-Lymphozyten, Plasmablasts/Plasmazellen im humorale Immunität unterschieden bieten eine gewaltige Verteidigung gegen eindringende Krankheitserreger über vielfältige Mechanismen. Ein wichtiges Ziel der Impfung ist, schützende Antigen-spezifische Antikörper, lebensbedrohliche Infektionen zu verhindern. Thymus-abhängig (TD) und Thymus-unabhängige (TI) Antigene robuste Antigen-spezifische IgM Antworten entlocken können und können auch induzieren die Produktion von Isotype geschalteten Antikörpern (IgG, IgA und IgE) sowie die Generierung von Speicherzellen B mit Hilfe durch antigenpräsentierende Zellen (APCs) bereitgestellt. Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Charakterisierung von TD und TI Ig Isotype Reaktionen bei Mäusen mit Enzym-linked Immunosorbentprobe Assay (ELISA). In diesem Protokoll sind TD und TI Ig Antworten durch intraperitoneale (i.p.) Immunisierung mit konjugierten Hapten Modell Antigene TNP-KLH (in Alaun) und TNP-Polysaccharid (mit PBS-Puffer), bzw. in den Mäusen ausgelöst. Um TD Speicher Reaktion hervorzurufen, ist eine Auffrischimpfung von TNP-KLH in Alaun 3 Wochen nach der ersten Impfung mit dem gleichen Antigen/adjuvante gegeben. Maus-Seren werden zu verschiedenen Zeitpunkten vor und nach der Immunisierung geerntet. Insgesamt Ig Serumspiegel und TNP-spezifische Antikörper sind anschließend quantifiziert mit Ig Isotype-spezifische Sandwich und indirekten ELISA, beziehungsweise. Um die Serumkonzentration von jedem Ig Isotype korrekt zu quantifizieren, müssen die Proben entsprechend verdünnt werden, um innerhalb des linearen Bereichs der standard Kurven passen. Unter Verwendung dieses Protokolls, haben wir konsequent zuverlässige Ergebnisse mit hoher Spezifität und Sensitivität erreicht. Bei Verwendung in Kombination mit anderen ergänzenden Methoden wie Durchflusszytometrie, in-vitro- Kultur der Milz B-Zellen und immunhistochemische können Färbung (IHC), dieses Protokoll Forscher, ein umfassendes Verständnis des Antikörpers zu gewinnen Antworten in einer bestimmten experimentellen Einstellung.

Wir haben dieses Protokoll verwendet, um die Rollen von einem kritischen Regler des immunen Systems, TRAF3, TI und TD Ig Isotype Antworten9,10,11zu untersuchen. TRAF3 direkt oder indirekt regelt die Signaltransduktion eine Reihe von angeborenen und der adaptiven Immunsystems Rezeptoren, einschließlich der TNF-Rezeptor-Superfamilie, Toll-Like-Rezeptoren und T-Zell-Rezeptor/CD28, unter anderem<sup ...

In diesem Artikel beschreiben wir ein Protokoll zur Charakterisierung von T-abhängigen und T-unabhängige Immunglobulin (Ig) Isotype Antworten bei Mäusen mittels ELISA. Diese Methode verwendet, allein oder in Kombination mit Flow Cytometry wird erlauben Forschern, Unterschiede in der B-Zell-vermittelten Ig Isotype Antworten bei Mäusen nach T-abhängigen und T-unabhängige Antigen-Immunisierung zu identifizieren.

Charakterisierung der Thymus-abhängig und Thymus-unabhängige Immunglobulin Isotype Antworten bei Mäusen mit Enzym-linked Immunosorbentprobe Assay

Antibodies, also termed as immunoglobulins (Ig), secreted by differentiated B lymphocytes, plasmablasts/plasma cells, in humoral immunity provide a ...

Diese Methode kann dazu beitragen, Schlüsselfragen im Bereich der Immunologie zu beantworten: Antigenimmunisierung, induzierte abhängige und unabhängige Antikörperantworten sowie B-Zell-Aktivierung und Keimzentrumsreaktionen. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie zuverlässige und quantitative Messungen der Ig-Isotyp-Reaktion mit einem direkten Vergleich der B-Zell-Aktivierung und der humoralen Immunität bei Mäusen ermöglicht. Für die TNP-Polysaccharid-Immunisierung laden Sie eine Milliliter-Insulinspritze pro Maus mit 100 Mikrolitern frisch zubereiteter Antigenlösung und führen Sie die Nadel in einem Winkel von etwa 30 Grad in den unteren rechten Quadranten jedes Tieres ein, um eine Injektion in die unteren Organe zu vermeiden.Wenn alle Mäuse injiziert wurden, bringen Sie die Tiere in ihre Käfige zurück, wo sie in einer speziellen pathogenfreien Einrichtung untergebracht werden. Zu den entsprechenden Versuchszeitpunkten werden von jedem immunisierten Tier 150 bis 200 Mikroliter Blut durch retroorbitale Blutungen entnommen und die Proben ein bis zwei Stunden lang bei Raumtemperatur gerinnen lassen. Am Ende der Inkubation zentrifugieren Sie die geronnenen Blutproben

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Dieses Video zeigt eine Methode zur Bewertung der Antikörper-Immunantwort auf einen neuartigen adjuvanten Nanoemulsionsimpfstoff bei präimmunisierten Mäusen. Die Immunisierung verstärkt die Antikörperantwort, was durch die Bestimmung der IgG-Antikörpertiter bestätigt wird.

Messung des Immunglobulin-G-Spiegels im Vergleich zu einem Testimpfstoff in einem Mausserum

Mit Effektor-Funktionen deutlich von anderen T-Zell-Untergruppen, Th17-Zellen wurden zentral bei entzündlichen Autoimmunerkrankungen in Verbindung gebracht. Diese in vitro-Differenzierung Th17-Protokoll bietet die Möglichkeit, festzustellen, ob naiven CD4 +-T-Lymphozyten in Th17-Zellen zu differenzieren und ihre Rolle in der Autoimmun-und Wirtsantwort weiter zu prüfen.

Isolierung und Differenzierung von Th17 Naive CD4-T-Lymphozyten

Hier beschreiben wir ein effizientes Verfahren zur Isolierung, Identifizierung und Reinigung von Maus-Thymus-Epithelzellen (TECs). Das Protokoll für die Untersuchung der Funktion zur normalen Thymus-T-Zell-Entwicklung, Thymus Dysfunktion und T-Zell-Rekonstitution verwendet werden.

Isolierung, Identifizierung und Reinigung von Murine Thymusepithelzellen

Die In-vitro-Analyse der Klassenschalter-Rekombination bei Mäusen ist aufgrund zytophiler IgE-Moleküle, die an Fc-Rezeptoren auf der Oberfläche von B-Zellen gebunden sind, eine Herausforderung.  Wir beschreiben eine Methode zur IgE-Detektion unter Verwendung der Trypsin-vermittelten Spaltung von oberflächengebundenem IgE vor der Fixierung und Permeabilisierung für die zytoplasmatische Fluoreszenzfärbung.

Der Nachweis von IgE-Wahre exprimierenden Maus B Lineage Cells

Dieser Bericht enthält eine detaillierte Beschreibung der Transplantation von murinem Thymian von verschiedenen gealterten Spendermäusen unter die Nierenkapsel von immundefizienten Mausempfängern. Das Ziel dieses Ansatzes ist es, die T-Zell-Entwicklung und das Thymus-Selektionsereignis in vivo zu modellieren.

Isolation und Transplantation von Different Aged Murine Thymic Grafts.

Naive CD4+ T-Zellen polarisieren in verschiedene Untergruppen, abhängig von der Umgebung zum Zeitpunkt der Aktivierung.  Die Differenzierung naiver CD4+ T-Zellen zu verschiedenen Effektor-Untergruppen kann in vitro durch die Zugabe von T-Zell-Rezeptor-Stimuli und spezifischen Zytokinsignalen erreicht werden.

Maus Naive CD4<sup&gt; +</sup&gt; T-Zell-Isolierung und<em&gt; In-vitro-</em&gt; Differenzierung in T-Zell-Populationen

Dieser Artikel beschreibt in vivo und in vitro Methoden zur Charakterisierung der thymusabsetzenden Vorläuferzellen durch die Analyse der Kinetik der Erzeugung, des Phänotyps und der Anzahl ihrer T-Zell-Nachkommen.

Charakterisierung von Thymic Einschwingzeit Vorläufern in der Mouse Embryo Verwendung<em&gt; In Vivo</em&gt; Und<em&gt; In-vitro-</em&gt; Assays

Es wird ein optimiertes Protokoll für die Erzeugung von monoklonalen Antikörpern auf Basis der Hybridom-Technologie vorgestellt. Die Mäuse wurden mit einem Immunkonjugat immunisiert. Milzzellen wurden durch PEG und einen elektrischen Impuls mit unsterblichen Myelomzellen fusioniert. Antikörper-produzierende Hybridomzellen wurden mittels HAT und antigenspezifischem ELISA-Screening selektiert.

Generation of Murine Monoclonal Antibodies by Hybridomtechnologie

In dieser Studie präsentieren wir eine neue und effektive Protokoll für die Isolierung von Lymphozyten aus Peyer Patches (PPs), die anschließend für in Vivo und in Vitro funktionelle Assays sowie Flow durchflusszytometrischen Studien des follikulären T verwendet werden können Helfer und germinal Center B-Zellen.

Entwirren Key Player der humoralen Immunität: erweiterte und optimierte Lymphozyten isoliert Protokoll von Murine Peyer Patches

Wir beschreiben hierin eine einfache Analyse der Heterogenität des murinen Immun-B-Zell-Kompartiments im Peritoneum-, Milz- und Knochenmarkgewebe mittels Durchflusszytometrie. Das Protokoll kann angepasst und auf andere Mausgewebe ausgedehnt werden.

Durchflusszytometrische Charakterisierung der Entwicklung von Murinen B-Zellen

Wir bieten ein detailliertes Protokoll für die Isolierung und Identifizierung seltener antigenspezifischer T-Zellpopulationen in der Lunge von Mäusen durch magnetische T-Zell-Anreicherung und Peptid:Major Histocompatibility Complex (MHC)-Tetramere.

Identifizierung seltener antigenspezifischer T-Zellen aus der Lunge von Mäusen mit Peptid:Major-Histokompatibilitätskomplex-Tetrameren

Erfahren Sie, wie man ELISA zur Charakterisierung thymusabhängiger und thymusunabhängiger Immunglobulin-Isotyp-Antworten bei Mäusen nutzt. Diese Methode ermöglicht zuverlässige quantitative Messungen von B-Zell-Aktivierung und humoraler Immunität.

Charakterisierung der Thymus-abhängig und Thymus-unabhängige Immunglobulin Isotype Antworten bei Mäusen mit Enzym-linked Immunosorbentprobe Assay (Video) | JoVE Journal

Charakterisierung der Thymus-abhängig und Thymus-unabhängige Immunglobulin Isotype Antworten bei Mäusen mit Enzym-linked Immunosorbentprobe Assay

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