Name: Bewertung des metabolischen Profils der primäre Leukämie-Zellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 21 s
Description: Erfahren Sie die Isolierung und metabolische Analyse primärer Leukämiezellen aus Knochenmark mittels Dichtegradientenzentrifugation. Diese Methode ermöglicht Echtzeitmessungen für personalisierte Therapieansätze.

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Wir möchten den tschechischen Pediatric Hematology Zentren zu danken. Diese Arbeit wurde unterstützt durch Grant des Gesundheitsministeriums (NV15-28848A), vom Gesundheitsministerium der Tschechischen Republik, University Hospital Motol, Prag, Tschechische Republik 00064203 und vom Ministerium für Bildung, Jugend und Sport NPU ich nr. LO1604.

Alle Proben stammen die Patienteneinverständnis der Eltern oder Erziehungsberechtigten der Kinder mit Zustimmung der Ethikkommission der Karlsuniversität in Prag, Tschechische Republik, die Studie keine. NV15-28848A.
1. Vorbereitung der Reagenzien
<ol><li>Bereiten Sie 500 mL PBS durch Auflösen von 137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 4,3 mM Na2HPO4, 1,47 mM KH2PO4in DdH2O. anpassen der pH-Wert 7,4 mit HCl. entkeimen durch Autoklavieren vor.</li>
	<li>100 mL RPMI Medium vorbereiten: RPMI-1640 Medium mit L-Alanyl-Glutamin ergänzt mit 10 % fetalen bovine Serum (FBS), Penicillin (100 U/mL) und Streptomycin (100 μg/mL).</li>
	<li>50 mL 0,1 M Nahco33 in destilliertem Wasser vorzubereiten. Stellen Sie den pH-Wert auf 8.1, Filter (0,22 μm) zu sterilisieren und Lagerung bei 4 ° C. Hinweis: Für zwei 8-Brunnen extrazelluläre Flussmittel Analyzer Platten, bereiten Sie 250 μl 0.1 M Nahco33 pH 8.1 vor.</li>
	<li>Bereiten Sie 1 mL 2 M D-Glucose in destilliertem Wasser. Filter (0,22 μm) zu sterilisieren und Lagerung bei-20 ° C.</li>
	<li>Bereiten Sie 100 μl 1 mm Oligomycin A in Ethanol. Filter (0,22 μm) zu sterilisieren und Lagerung bei-20 ° C.</li>
	<li>Bereiten Sie 250 μL 1 M 2-Deoxy-D-Glucose (2-DG) in minimalen DMEM (Dulbeccos geändert Eagle Medium). Auf 37 ° C warm und passen Sie den pH auf 7,4 (durchführen von pH-Messung bei 37 ° C). Filter (0,22 μm) zu sterilisieren und Lagerung bei-20 ° C.</li>
	<li>Bereiten Sie 100 μl 1 mm FCCP (Carbonyl Zyanid-p-Trifluoromethoxyphenylhydrazone) in DMSO. Filter (0,22 μm) zu sterilisieren und Lagerung bei-20 ° C.</li>
	<li>Bereiten Sie 100 μl 1 mm Rotenon in Ethanol. Filter (0,22 μm) zu sterilisieren und Lagerung bei-20 ° C.</li>
	<li>Bereiten Sie 100 μL von 1 mg/mL Antimycin A in Ethanol. Filter (0,22 μm) zu sterilisieren und Lagerung bei-20 ° C.</li>
	<li>Kurz vor dem Gebrauch bereiten Sie 10 mL der Glykolyse Stresstest Medium vor. Erwärmen Sie minimale DMEM auf 37 ° C im Wasserbad und passen Sie den pH auf 7,4 (durchführen von pH-Messung bei 37 ° C).</li>
	<li>Bereiten Sie vor dem Gebrauch 10 mL Zelle Mito Stresstest Medium mit BSA. Minimale DMEM mit 2 mM L-Glutamin, 10 mM D-Glucose, 1 mM HEPES (pH-Wert 7,4), 1 mM Pyruvat und 0,1 % BSA (bovine Serum Albumin) ergänzen. Auf 37 ° C im Wasserbad erwärmen Sie und passen Sie den pH auf 7,4 (durchführen von pH-Messung bei 37 ° C).</li>
	<li>Bereiten Sie vor dem Gebrauch 10 mL Zelle Mito Stresstest Medium ohne BSA. Minimale DMEM mit 2 mM L-Glutamin, 10 mM D-Glucose, 1 mM HEPES (pH 7,4) ergänzen und 1 mM Pyruvat. Erwärmen Sie Zelle Mito Stresstest Medium ohne BSA auf 37 ° C im Wasserbad und passen Sie den pH auf 7,4 (durchführen von pH-Messung bei 37 ° C). Hinweis: BSA auf der Zelle Mito Stresstest Medium hinzugefügt, da die Zellen besser auf FCCP zu reagieren, wenn das Medium mit BSA ergänzt wird (verschiedene Bedingungen getestet wurden). Zelle Mito Stresstest Medium ohne BSA dient zum Laden der Häfen, wie vom Hersteller nicht empfohlen wird mit BSA im Medium.</li>
</ol>2. Isolierung von mononukleären Zellen aus dem Knochenmark
Hinweis: Im Idealfall sollte Messung der metabolischen Zustand des primären Leukämie-Zellen sofort nach Knochenmark Sammlung und Zelle Isolation starten. Dennoch konnte relevante Daten auch ermittelt werden, aus den Zellen isoliert nach Transport von anderen Hämatologie-in der Tschechischen Republik Zentren. Führen Sie alle Teilschritte in eine sterile Gewebekultur Kapuze.
<ol><li>PBS und das Dichte Gradienten Medium auf Zimmertemperatur aufwärmen.</li>
	<li>Verdünnen der Knochenmarkprobe Leukämie-Patienten mit PBS, in einem Verhältnis von 1:1. Stellen Sie sicher, dass die Probe mindestens 80 % der leukämischen Blasten enthält.</li>
	<li>Bestimmen Sie den Anteil der Blasten durch Durchflusszytometrie mit bestimmten CD-Markern für Immunophenotype Charakterisierung von Zelltypen. Nach gradient Dichtetrennung Nukleinsäure-positive Ereignisse mit einem nuklearen Farbstoff zu erkennen um die gesamte Zellzahl zu etablieren.</li>
	<li>Bestimmen Sie anschließend mit speziellen CD-Markern für jede Art von Leukämie Leukämie-Zellen: B-ALL (CD19, CD45), T-ALL (CD3, CD4, CD8, CD5, CD7, CD99) und AML (CD45, CD33 und spezifische myeloischer Marker)24. Teilen Sie die Zahl der Leukämiezellen für spezifische CD Marker positiv von allen nuklearen Zellen zu bestimmen, den Anteil der Leukämiezellen Blast. Hinweis: Das Knochenmark hat in die Röhrchen mit Antikoagulanzien gesammelt werden.</li>
	<li>Sorgfältig Schicht 6 mL verdünnten Knochenmarkprobe über 6 mL des Dichte Gradienten Mediums in einem 15 mL konische Röhrchen. Zentrifugieren Sie bei 400 X g für 35 min bei 4 ° C in ein Schwingen-Eimer-Rotor ohne Bremse. Hinweis: Größere Volumen der Probe konnte in mehr Aliquote unterteilt werden oder 50 mL konische Rohr mit der größeren Dichte Gradienten Medium eingesetzt werden.</li>
	<li>Übertragen Sie die Interphase-Schicht besteht aus mononukleären Zellen (Abbildung 1) mit einer Pasteurpipette, sorgfältig auf eine neue konische 50 mL-Tube mit 5 mL PBS werden. Zentrifugieren Sie bei 400 × g für 10 min bei 4 ° C in ein Schwingen-Eimer-Rotor. Hinweis: Übertragen Sie alle mononukleären Zellschichten in ein einzelnes 50 mL konische Röhrchen mit 5 mL PBS</li>
	<li>Den Überstand abgesaugt und Aufschwemmen der Zelle Pellet in 2 mL sterile PBS. Zählen Sie die Zellen mit einem Hemocytometer. Hinweis: Die Zahl der Leukämiezellen in 1 mL von angesaugte Knochenmark unterscheidet sich erheblich zwischen Patienten25.</li>
</ol>3. Übernachtung Kultivierung von mononukleären Zellen
Hinweis: Führen Sie alle Teilschritte in einem sterilen Gewebekultur-Haube.
<ol><li>Bereiten Sie zwei T75 Fläschchen mit 20 mL RPMI. Fügen Sie zu jedem Kolben 30 x 106 isoliert mononukleären Zellen hinzu. Inkubieren Sie die Zellen mit den Kolben aufstehen für 16 – 24 h um 5 % CO2 und 37 ° c</li>
</ol>4. Vorbereitung der Zellplatten Klebstoff beschichtet
<ol><li>Zwei 8-Brunnen extrazelluläre Flussmittel Analyzer Platten zu beschichten. Hinweis: Führen Sie die Beschichtung in einem sterilen Gewebekultur-Haube.</li>
	<li>2.2 μL der Zelle Klebstoff hinzufügen (Dichte: 2,54 mg/ml) zu 250 μl 0.1 M Nahco33, pH 8,1 und Pipette sofort 12,5 μl der Lösung in jede Vertiefung. Hinweis: Lager Klebelösungen Zelle kann unterscheiden sich in ihrer Dichte, die Lautstärke entsprechend Nahco33 hinzugefügt.</li>
	<li>Lassen Sie die Platten sitzen in der Haube für ca. 20 min, dann Aspirieren des Zelle Klebstoffs und jeweils gut zweimal mit 200 μL steriles Wasser zu waschen. Lassen Sie es sich in der Haube bei geöffnetem Deckel bis Brunnen trocken sind.</li>
	<li>Verwenden Sie die Platten direkt oder sparen Sie bis zu 1 Woche bei 4 ° C mit der Felge in Paraffin Film zur Vermeidung von Kondensation gewickelt. Sicherstellen Sie, dass die Platten auf bei Raumtemperatur (ca. 20 min) in der Haube erwärmt werden vor der Aussaat der Zellen.</li>
</ol>5. die Hydratation der Sensorkassette
Hinweis: Hydrat zwei 8-Brunnen extrazelluläre Flussmittel Analyzer Patronen.
<ol><li>Trennen Sie das Dienstprogramm-Platte und der Sensorkassette. Legen Sie die Sensor-Steckmodul umgedreht auf dem Labortisch.</li>
	<li>Füllen Sie jeweils auch der Dienstprogramm-Platte mit 200 μL Kalibrator. Füllen Sie jeder Graben um die Außenseite der Brunnen mit 400 μl der Kalibrator.</li>
	<li>Das Dienstprogramm-Platte, die jetzt den Kalibrator enthält zurückzukehren Sie der Sensorkassette.</li>
	<li>Legen Sie die Patrone Versammlung in eine befeuchtete, nicht-CO2, 37 ° C Inkubator über Nacht.</li>
	<li>Schalten Sie den extrazellulären Flux-Analyzer und lassen Sie es warm auf 37 ° C über Nacht.</li>
</ol>(6) Aussaat Zellen in Zellplatten Klebstoff beschichtet
Hinweis: Für die Glykolyse Stresstest, verwenden Sie Glykolyse Stresstest Medium. Verwenden Sie für Zelle Mito Stresstest Zelle Mito Stresstest Medium mit BSA.
<ol><li>Samenzellen für die Glykolyse-Stress-Test und die Zelle Mito Stresstest in separaten Platten. Verwenden Sie für jeden Test Zellen aus einer Flasche mit Übernachtung Kultur.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie Zellen bei 200 X g für 5 min bei Raumtemperatur. Zellen in 1 mL des entsprechenden Mediums Aufschwemmen und sie zählen.</li>
	<li>Der letzte Band der 400 μl (Verwendung in anderer geeigneter Form) 4 x 106 von lebenden Zellen hinzufügen.</li>
	<li>Platte 50 μL der Zellsuspension in Brunnen B-G. Sicherstellen Sie, dass in einem gut 500.000 Zellen ausgesät werden. Anmerkung: Es ist wichtig, genau 500.000 Zellen pro Bohrloch Saatgut wie keine andere Normalisierung durchgeführt wird. Auf diese Weise können die Ergebnisse von anderen Patienten verglichen werden. Die optimale Anzahl von Wiederholungen ist sechs, wie hier beschrieben ist. Mit weniger Wiederholungen wird nicht empfohlen, da Primärzellen manchmal fälschlicherweise Verhalten konnten.</li>
	<li>Fügen Sie 180 μL des entsprechenden Mediums in Vertiefungen A und H (diese Brunnen dienen als eine Hintergrundkorrektur).</li>
	<li>Zentrifugieren Sie die Platte 400 X g für 5 min bei Raumtemperatur mit Bremse auf 1 gesetzt.</li>
	<li>Brunnen B-G in zwei 8-Brunnen extrazelluläre Flussmittel Analyzer Platten fügen Sie 130 μL des entsprechenden Mediums langsam und vorsichtig hinzu. Bestätigen Sie visuell, dass die Zellen durch Betrachtung unter dem Mikroskop stabil auf den Boden der Näpfchen eingehalten werden.</li>
	<li>Stellen Sie die Platte in eine feuchte, nicht-CO2und 37 ° C Inkubator für 30 min.</li>
</ol>7. laden die Sensor-Steckmodul
<ol><li>Bereiten Sie für den Stresstest Glykolyse 250 μL jeder der 100 mM Glukose, 20 μM Oligomycin A und 1 M 2-DG, alles in Glykolyse Stresstest Medium.</li>
	<li>Die Zelle Mito-Stress-Test Vorbereitung 250 μL jeder von 20 μM Oligomycin A, 15 μM FCCP, 30 μM FCCP und einer Mischung von 10 μM Rotenon und 10 μg/ml Antimycin A, alle in Zelle Mito Stresstest Medium ohne BSA. Hinweis: Injektion von zwei Konzentrationen von FCCP in einem Assay wird empfohlen, da es nicht genug Patienten Material für die FCCP Titration. Dennoch sollten die Konzentrationen der Forscher ermittelt werden.</li>
	<li>Laden Sie die Verbindungen in den entsprechenden Injektor Häfen der Patrone wie folgt (Tabelle 1):</li>
</ol>8. Einrichten des Programms
<ol><li>Richten Sie für den Stresstest Glykolyse das Programm wie in Tabelle 2beschrieben.</li>
	<li>Richten Sie für die Zelle Mito-Stress-Test das Programm wie in Tabelle 3beschrieben.</li>
	<li>Starten Sie das Programm. Die Kalibrator Platte mit der Assay-Platte (Aufforderung) zu ersetzen.</li>
</ol>9. Auswertung und Interpretation der Ergebnisse
<ol><li>In die Glykolyse Stresstest-Ergebnisse Subtrahieren des niedrigsten ECAR-Wertes nach 2-DG Injektion von anderen ECAR-Werten. Hinweis: Dieser niedrigsten Wert stellt die nicht-glykolytische Übersäuerung. In der Regel ist der niedrigste Wert von 4th -Messung.</li>
	<li>Berechnen Sie basale Versauerung, Glykolyse, maximale Glykolyse und glykolytische Reserve Parameter von glykolytische Funktion (Abbildung 2A). Nach Abzug des niedrigsten Wertes der ECAR, berechnen basale Versauerung als Mittel der ECAR aus den ersten drei Messpunkten (weglassen den ersten ECAR Wert, es unterscheidet sich wesentlich von den anderen beiden), Glykolyse als Mittel der ECAR aus drei Messung berechnen Punkte nach Glukose-Injektion und maximale Glykolyse zu berechnen, wie ein Mittelwert von ECAR aus drei Messungen nach Oligomycin eine Injektion weist. Berechnen Sie Glycolytic Reserve als maximale Glykolyse minus Glykolyse. Hinweis: Alternativ für maximale Glykolyse Berechnung verwenden Sie den höchsten ECAR-Wert aus den drei Punkten gemessen.</li>
	<li>Subtrahieren Sie in die Zelle Mito Stresstest-Ergebnisse den niedrigsten Wert der OCR nach Rotenone/Antimycin A Injektion von anderen OCR-Werten.</li>
	<li>Basalen Atmung, ATP-Produktion, maximale Atmung und Kapazitätsreserven Parameter von mitochondrialen Funktion (Abb. 2 b) zu berechnen. Nach Abzug des niedrigsten Wertes der OCR, basale Atmung als Mittel der OCR aus den ersten drei Messpunkten zu berechnen. Hinweis: Maximale Atmung ist der höchste Wert der OCR nach FCCP Injektion.</li>
	<li>Subtrahieren Sie für die ATP-Produktion-Berechnung den Mittelwert der drei OCR Messpunkte nach Oligomycin A Injektion von basaler Atmung. Freie Kapazitäten als die maximale Atmung abzüglich der basalen Atmung zu berechnen. Hinweis: Berechnen Sie immer die maximale Atmung aus der OCR Wert, unabhängig von der verwendeten Konzentration FCCP.</li>
</ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Das oben beschriebene Protokoll ermöglicht die Messung der Stoffwechselaktivität von OCR und ECAR Werte in primären leukämischen Blasten abgeleitet von Patienten mit akute lymphoblastische Leukämie (ALL) bewertet oder akute myeloische Leukämie (AML). Der Vorteil der Messung mit einer extrazellulären Flux-Analyzer ist, dass es die Erkennung von metabolischen Profils in Echtzeit in lebenden Zellen ermöglicht. Jeder Schritt in das angegebene Protokoll konnte im wesentlichen je nach Zelltyp angepasst werden, was man studiere...

Die metabolischen Profils ist eines der Hauptmerkmale von Zellen und veränderten Bioenergetik gelten jetzt als eines der Markenzeichen von Krebs1,2,3. Darüber hinaus könnten Veränderungen im Stoffwechsel-Setup bei der Behandlung von Krebs durch gezielte Transduktion Signalwege oder enzymatische Maschinerie der Krebs Zellen4,5,6verwendet werden. Zu wissen, die metabolische Veranlagung von Krebszellen ist also ein Vorteil und kann helfen, die aktuelle Therapie zu verbessern.
Es gibt eine Fülle von bereits etablierten Methoden, die die Stoffwechselaktivität der Zellen in Kultur beurteilen können. Über Glykolyse, Glukoseaufnahme kann gemessen werden durch die radioaktive Markierung mit 2-NBDG (2-(N-(7-Nitrobenz-2-oxa-1,3-diazol-4-yl)Amino)-2-Deoxyglucose) oder extrazellulären Laktatwerte gemessen enzymatisch7,8. Fettsäure-Oxidationsrate ist ein anderer metabolischer Parameter gemessen isotopisch beschriftete Palmitat9,10. Sauerstoff-Verbrauch ist eine Methode zur Bestimmung der mitochondrialen Aktivität in den Zellen11,12, zusammen mit der mitochondrialen Membran mögliche Bewertung13,14, ATP/ADP (Adenosin am meisten benutzt 5 '-Triphosphat/Adenosin-5′-diphosphat) Verhältnis Messung15 oder insgesamt intrazellulären ATP Messung16. Signalwege, die bekanntermaßen Stoffwechselvorgänge regulieren konnte vom Protein Quantifizierungen festgestellt werden und kann das Verständnis der metabolischen Messungen17,18,19verbessern.
Aber alle diese Methoden messen nur eine oder im besten Fall ein paar metabolische Parametern in einer Probe gleichzeitig. Wichtig ist, kann die gleichzeitige Messung der Sauerstoff-Verbrauch (OCR) und extrazelluläre Übersäuerung (ECAR) durch die extrazelluläre Flux-Analyse durch, z.B. Seepferdchen XFp Analyzer erreicht werden. OCR ist ein Indikator für die mitochondriale Atmung und ECAR ist vor allem das Ergebnis der Glykolyse (CO2 -Produktion möglicherweise erhebt ECAR Zellen mit hohen Oxidative Phosphorylierung Tätigkeit können wir nicht ignorieren)20. Bisher wurden verschiedene Zelltypen untersucht, mit diesen Analysatoren21,22,23.
Hier beschreiben wir das Protokoll für die extrazelluläre Flussmittel Analyse der primären Blasten (Leukämiezellen abgeleitet aus den unreifen hämatopoetische Phase) von Leukämie-Patienten. Nach bestem Wissen und gewissen ist ein spezielles Protokoll für primäre Blasten noch nicht verfügbar.

<table><tbody><tr><td>RPMI 1640 Medium, GlutaMAX Supplement</td><td>Gibco, ThermoFisher Scientific</td><td>61870-010</td><td></td></tr><tr><td>Fötales Rinderserum</td><td>Biosera</td><td>FB-1001/100</td><td></td></tr><tr><td>Antibiotikum-Antimykotikum (100x)</td><td>Gibco, ThermoFisher Scientific</td><td>15240-062</td><td></td></tr><tr><td>Natriumbicarbonat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5761-500G</td><td></td></tr><tr><td>D-(+) Glukose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7021-100G</td><td></td></tr><tr><td>Oligomycin A</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>75351-5MG</td><td></td></tr><tr><td>2-Deoxy-D-glucose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8375-1G</td><td></td></tr><tr><td>FCCP</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C2920-10MG</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8418-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Rotenon</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R8875-1G</td><td></td></tr><tr><td>Antimycin A von Streptomyces sp.</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A8674-25MG</td><td></td></tr><tr><td>Seahorse XF Base Medium, 100 mL</td><td>Agilent Technologies</td><td>103193-100</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutaminlösung, 200 mM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7513-100ML</td><td></td></tr><tr><td>HEPES-Lösung, 1 M, pH 7,0-7,6</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H0887-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Natriumpyruvat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5280-25G</td><td></td></tr><tr><td>Rinderserum Albumin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2153-10G</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Paque Plus</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>GE17-1440-02</td><td>Dichtegradient mittel</td></tr><tr><td>Seepferdchen XFp FluxPak</td><td>Agilent Technologies</td><td>103022-100</td><td></td></tr><tr><td>Corning&trade; Cell-Tak Zell- und Gewebekleber</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>CB40240</td><td></td></tr><tr><td>Seepferdchen-Analysator XFp</td><td>Agilent Technologies</td><td>S7802A</td><td></td></tr><tr><td>Seepferdchen XFp Zellkultur-Miniplatte</td><td>Agilent Technologies</td><td>103025-100</td><td></td></tr></tbody></table>

bewertung des metabolischen profils der primäre leukämie-zellen

Assessment of the Metabolic Profile of Primary Leukemia Cells

Die metabolische Anforderung von Krebszellen kann überleben und die Wirksamkeit der Behandlung negativ beeinflussen. Heutzutage ist die pharmazeutische Ausrichtung der Stoffwechselwege in vielen Arten von Tumoren getestet. Charakterisierung von Krebs Zelle metabolische Setup ist also unumgänglich, um gezielt den richtigen Weg, um das Gesamtergebnis des Patienten zu verbessern. Leider in der Mehrzahl der Krebserkrankungen, die bösartigen Zellen sind ziemlich schwierig, in größerer Zahl zu erhalten und die Gewebeentnahme ist erforderlich. Leukämie ist eine Ausnahme, wo eine ausreichende Anzahl an leukämischen Zellen aus dem Knochenmark isoliert werden. Hier bieten wir ein detailliertes Protokoll für die Isolierung der leukämischen Zellen aus dem Knochenmark Leukämie Patienten und anschließende Analyse ihrer metabolischen Zustand mit extrazellulären Flux-Analyzer. Leukämischen Zellen sind durch die Dichtegradienten isoliert, die ihre Lebensfähigkeit nicht beeinträchtigt. Anbau als nächstes hilft sie zu regenerieren, damit der metabolische Zustand gemessen ist der Zustand der Zellen unter optimalen Bedingungen. Dieses Protokoll ermöglicht konsistente, gut standardisierte Ergebnisse, die für die personalisierte Therapie genutzt werden könnten.

Abbildung 3 zeigt die Kurven nach Glykolyse Stresstest und Zelle Mito Stresstest Messungen der leukämischen Blasten aus dem BCP-ALL (B-Zelle Vorläufer akute lymphoblastische Leukämie) und AML (akute myeloische Leukämie) Patienten. Die Berechnung der metabolischen Parametern aus diesen Messungen wird ebenfalls angezeigt. 500.000 Zellen pro Bohrloch wurden ausgesät und alle Messungen erfolgten in Hexaplicates.
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Hier präsentieren wir ein Protokoll für die Isolierung der leukämischen Zellen aus dem Knochenmark Leukämie Patienten und Analyse ihrer metabolischen Zustand. Bewertung des metabolischen Profils der primäre Leukämie-Zellen könnte dazu beitragen, um die Nachfrage von Primärzellen besser zu charakterisieren und könnte bis zu mehr personalisierte Medizin.

Bewertung des metabolischen Profils der primäre Leukämie-Zellen

The metabolic requirement of cancer cells can negatively influence survival and treatment efficacy. Nowadays, pharmaceutical targeting of metabolic ...

Diese Methode kann helfen, wichtige Fragen bezüglich Metabolische Pfad Einrichtung in Leukämie-Zellen zu beantworten. Der Hauptvorteil dieser Technik ist, dass sie die Messung des Stoffwechsels von primären Leukämiezellen in Echtzeit in lebenden Zellen ermöglicht. Beginnen Sie mit der Verdünnung einer Knochenmarkprobe, die von einem Leukämiepatienten in PBS im Verhältnis eins zu eins erhalten wurde.Sorgfältig sechs Milliliter der verdünnten Knochenmarkprobe über sechs Milliliter frisch präpariertes Dichtegradientenmedium in einem 15 Milliliter konischen Rohr schichten und die Zellen durch Dichtegradientenzentrifugation trennen. Verwenden Sie eine Pasteur Pipette, um die Schnittstellenschicht mononukleistischer Zellen sorgfältig auf ein neues 50-Milliliter-Konusrohr mit fünf MilliliterPBS für eine Zentrifugationswäsche zu übertragen. Dann setzen Sie das mononukleäre Zellpellet in zwei Millilitersterilen PBS zum Zählen wieder aus.Verdünnen Sie die Zellen auf dreimal 10 bis die sieben Zellen pro Milliliter Konzentration. Und fügen Sie jeweils einen Milliliter Zellen zu zwei T75-Flaschen hinzu, die 20 Milliliter RPMI-Medium für eine 16- bis 24-stündige Inkubation bei 37 Grad Celsius un

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Research

Forschung

JoVE Journal

Cancer Research

Krebsforschung

Dieses Protokoll bietet einen biochemischen Ansatz zur Messung der extrazellulären Ansäuerungsrate (ECAR) und der Sauerstoffverbrauchsrate (OCR) von primären leukämischen Zellen mit einem extrazellulären Fluss-Assay. Die Beurteilung des metabolischen Profils dieser Zellen hilft, ihre Bedürfnisse zu charakterisieren, was zu einer personalisierten Therapie führt.

Extrazellulärer Flux-Assay: Eine Methode zur Messung des metabolischen Profils von Zellen

Rezeptortyrosinkinasen sind bei vielen Krebs ektopisch exprimiert und sind als therapeutische Ziele bei akuter Leukämie identifiziert. Dieses Manuskript beschreibt eine effiziente Strategie für die präklinische Evaluierung von Tyrosinkinase-Inhibitoren für die Behandlung der akuten Leukämie.

Präklinische Evaluierung von Tyrosinkinase-Inhibitoren für die Behandlung von akuter Leukämie

Der vorliegende Bericht fasst ein Protokoll zusammen, das verwendet werden kann, um den Einfluss der Mikroumgebungsnische des Knochenmarks auf leukämische Zellen zu modellieren, wobei der Schwerpunkt auf der Anreicherung der chemoresistentesten Subpopulation liegt.

Modeling Chemotherapie beständig Leukämie<em&gt; In Vitro</em

Neutrophile sind die am häufigsten vorkommende Art von weißen Blutkörperchen. Die Isolierung von Neutrophilen aus menschlichem Blut durch die Dichtegradiententrennungsmethode und die Differenzierung von humanen promyelozytären (HL60) Zellen entlang des granulozytären Weges werden hier beschrieben; ihre Rolle bei der Empfindlichkeit von Lymphomzellen gegenüber Anti-Lymphom-Wirkstoffen zu testen.

Neutrophilen-Isolierung und Analyse zur Bestimmung ihrer Rolle in der Lymphom-Zellempfindlichkeit therapeutische Mittel

Das hier beschriebene Protokoll stellt eine einfache und reproduzierbare Methode dar, die Umkehrphasen-Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (RP-HPLC) verwendet, um den Purinstoffwechsel an chronischen lymphatischen Leukämie (CLL)-Zellen zu messen, die unter verschiedenen Bedingungen kultiviert wurden.

HPLC-basierten Assay extrazelluläre Nucleotid / Nukleosid Metabolismus in menschlichen chronischer lymphatischer Leukämie-Zellen zu überwachen

Nachweis von minimal oder messbare Resterkrankung (MRD) ist eine wichtige prognostische Biomarker für die Verfeinerung der Risikobewertung und Vorhersage von Rückfällen bei akuter myeloischer Leukämie (AML). Diese umfassende Leitlinien und Empfehlungen mit best Practices für konsistente und genaue Identifizierung und Nachweis von MRD, können helfen, effektive Entscheidungen für AML-Behandlung.

Umfassendes Protokoll zur Probe und Prozess des Knochenmarks zur Messung von messbaren Resterkrankung und leukämischen Stammzellen in der akuten myeloischen Leukämie

Wir skizzieren ein Protokoll zur gleichzeitigen Ausdruck der Leukämie Stammzell-Marker auf primäre akute myeloische Leukämie-Zellen durch Durchflusszytometrie zu erkennen. Wir zeigen, wie Sie drei Vorläuferzellen Populationen und eine vermeintliche LSC Bevölkerung mit zunehmendem Grad der Reifung zu quantifizieren. Wir bestätigte das Vorhandensein dieser Populationen in entsprechenden Patienten-abgeleitet-Xenotransplantate.

Flow Cytometry um Leukämie-Stammzellen in primäre akute myeloische Leukämie und Patienten-abgeleitet-Xenotransplantate bei Diagnose und folgen bis zu schätzen

Wir beschreiben eine Methode zur Verwendung von Multiparameter-Durchflusszytometrie zum Nachweis von mitochondrialen reaktiven Sauerstoffspezies (ROS) in murinen gesunden hämatopoetischen Stamm- und Vorläuferzellen (HSPCs) und Leukämiezellen aus einem Mausmodell akuter myeloischer Leukämie (AML), das von MLL-AF9.

Flow Cytometric Analysis of Mitochondrial Reactive Oxygen Species in Murine Hematopoietic Stem and Progenitor Cells and MLL-AF9 Driven Leukemia

Hier wird ein detailliertes Protokoll zur Isolierung und Charakterisierung von Knochenmark-Mikroumgebungspopulationen aus murinen Modellen myelodysplastischer Syndrome und akuter myeloischer Leukämie vorgestellt. Mit dieser Technik werden Veränderungen in der nicht-hämatopoetischen Knochenmarknische, einschließlich der endothelialen und mesenchymalen Stromazellen, mit Fortschreiten der Erkrankung identifiziert.

Identifizierung von Knochenmark-Mikroumgebungspopulationen beim myelodysplastischen Syndrom und der akuten myeloischen Leukämie

Dieses Protokoll beschreibt ein Verfahren zur Einleitung der Differenzierung menschlicher hämatopoietischer Stamm- und Vorläuferzellen, die aus dem Knochenmark und peripheren mononuklearen Blutzellen des Patienten stammen. Der Test verwendet ein halbfestes Kulturmedium, das die Verpflichtung der erythroiden und myeloiden Linie unterstützt und standardisierte Kennzahlen für die reproduzierbare Kolonieklassifikation für die präklinische Wirkstoffcharakterisierung.

Koloniebildender Unit-Assay, angepasst für patientenabgeleitetes Knochenmark und periphere mononukleare Blutzellen

Erfahren Sie die Isolierung und metabolische Analyse primärer Leukämiezellen aus Knochenmark mittels Dichtegradientenzentrifugation. Diese Methode ermöglicht Echtzeitmessungen für personalisierte Therapieansätze.

Bewertung des metabolischen Profils der primäre Leukämie-Zellen

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