Name: Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung von kardialen Stammzellen von Erwachsenen Maus Herzen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 45 s
Description: Erfahren Sie die Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung kardialer Stammzellen aus erwachsenen Mäuseherzen. Diese kosteneffiziente Methode ermöglicht Studien zur kardiovaskulären Regeneration und Herzinsuffizienztherapie.

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Diese Arbeit wird in Teilen, durch die National Institutes of Health Zuschüsse HL-113281 und HL116205, Paras Kumar Mishra unterstützt.

Gehäuse, Anästhesie und Opfer von Mäusen wurden nach dem genehmigten Protokoll der IACUC von der University of Nebraska Medical Center durchgeführt.
(1) Materialien
<ol><li>Einsatz 10 bis 12 Wochen alten C57BL/6J schwarz können auch männliche Mäuse auf der institutionellen Tierhaus für die Isolierung von CSCs. CSCs im Haus gehalten werden von nicht-schwangeren weiblichen Mäusen isoliert.</li>
	<li>Alle notwendigen chirurgischen Instrumente, einschließlich Chirurgische Scheren, feine Chirurgische Scheren, gebogener Schaft Zange und einer chirurgischen Klinge durch Autoklavieren zu sterilisieren Sie vor der Euthanasie der Maus.</li>
	<li>CSC-Isolierung-Puffer in einem sterilisierten Zustand vorzubereiten und bei 4 ° C auf dem Eis aufbewahren. Diese Puffer sind Polysucrose und eine Natrium-Diatrizoate-Lösung angepasst an eine Dichte 1,077 g/mL, unvollständige Dulbecco geändert Adlers Medium, 1 X Ham ausgewogen Salzlösung (HBSS) und Zell-Kultur-Klasse 1 x Phosphat-gepufferte Kochsalzlösung (PBS). Bereiten Sie eine 1 % Kollagenase II-Stammlösung (filtriert und sterilisiert) und eine 0,2 % funktionierende Lösung in HBSS vor.</li>
	<li>Halten Sie die Gewebekultur-Materialien in den sterilisierten Zustand in der Biosicherheit Kabinett, einschließlich einer 10-mm-Petrischale, ein 6-Well-Platte, einer 24-Well-Platte, t-25 T-75 Kulturflaschen, 15 mL und 50 mL konische Röhrchen und Einweg-serologische Pipetten mit 40 µm und 100 -µm Zelle Siebe mit 0,22 µm filtern.</li>
	<li>Sterilisieren Sie 10-µL und 200 µL 1.000 µL Pipettenspitzen von Autoklaven.</li>
	<li>Verwenden Sie puderfreie Nitril-Handschuhe und 70 % Ethanol, um einen sterilen Zustand während des Experiments zu erhalten.</li>
	<li>Verwenden Sie 10 % Bleichmittel als Desinfektionsmittel.</li>
	<li>Verwenden Sie handelsübliche CSC Wartung und Herzzellen Differenzierung Medium für die Kultur und die Differenzierung des CSCs, beziehungsweise.</li>
</ol>(2) Isolationsmethode kardiale Stammzellen
<ol><li>Vier bis fünf männlichen Erwachsenen (oder nicht-trächtige Weibchen) einschläfern Mäuse mit einer CO2 -Kammer. Befestigen Sie jede Maus Arme auf einem separaten Dissektion Karton mit Stiften oder klebrigen Bänder.</li>
	<li>Sprühen Sie 70 % igem Ethanol auf die Maus, um äußere Keime loszuwerden und pflegen den sterilisierten Zustand während der Ernte des Herzens. Machen Sie einen Schnitt mit der Schere in der Mitte des Bauches und schneiden Sie die Haut vom Bauch bis zu den Thorax in einer geraden Linie. Entfernen Sie die Haut von beiden Seiten der mittleren Schnitt um den Bauchbereich Haut und Haaren zu löschen. Schneiden Sie Scheren und Pinzetten, die Membran unterhalb des Brustkorbs.</li>
	<li>Öffnen Sie die Brusthöhle der Maus durch Schneiden des Brustkorbs in der Kapuze. Setzen Sie das Herz und entfernen Sie das Blut nahe dem Herzen. Waschen Sie die Umgebung des Herzens mit eiskaltem PBS get rid of Blut in der Nähe des Herzens.</li>
	<li>Das Herz mit chirurgische Schere und Pinzette zu sezieren. Legen Sie das Herz in einer 100-mm-Petrischale mit 10 mL eiskaltem PBS.</li>
	<li>Pocht das Herz mit gebogenen Schaft Pinzette und entfernen Sie das restliche Blut im Inneren des Herzens.</li>
	<li>Verwenden Sie das ganze Herz für die Isolierung von CSCs.</li>
	<li>Übertragen Sie alle vier oder fünf ganze Herzen auf eine 50 mL konische Röhrchen mit 10 mL eiskaltes HBSS. Halten Sie das Rohr auf dem Eis bis Weiterverarbeitung.</li>
	<li>Wischen Sie innerhalb und außerhalb eines Biosafety Schrank mit 70 % Ethanol, eine sterilisierte Umgebung zu schaffen. Sterilisieren Sie die Herz-haltige Rohr- und andere benötigten Materialien mit 70 % Ethanol. Legen Sie das Herz-haltigen Rohr in die Biosicherheit Schaltschrank für die Weiterverarbeitung.</li>
	<li>Übertragen Sie die Herzen auf einer 100-mm-Petrischale mit 10 mL eiskaltes HBSS. Waschen Sie die Herzen wieder durch Abtasten um jede verbleibende Blut im Inneren des Herzens zu entfernen. Ändern Sie die HBSS-Lösung nach jedem Waschen um die vollständige Entfernung des Blutes zu gewährleisten.</li>
	<li>Schneiden Sie die Herzen mit feinen Chirurgische Scheren oder einer chirurgischen Klinge in einer 100-mm-Petrischale mit ca. 5-7 mL HBSS Lösung in kleine Stücke. Halten Sie jedes Herz mit einer Zange und verwenden Sie ein paar feine Chirurgische Scheren oder einer chirurgischen Klinge, um das Herz in 2 - 4 mm Stücke geschnitten. Wechseln Sie die HBSS Lösung häufig um Blut-freie HBSS sicherzustellen. Zerkleinere die Herzen in der HBSS-Lösung.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie dem Hackfleisch / Gewebe bei 500 X g bei 4 ° C für 5 min. verwerfen des Überstands und halten Sie das Pellet.</li>
	<li>Das Pellet in 5-6 mL 0,2 % Kollagenase II Lösung in einem 50 mL konische Röhrchen aufzuwirbeln. Das Volumen der Kollagenase-Lösung sollte fast 1,5 - bis 2-Fach auf das Volumen des Geschosses. Hinweis: für die Verdauung von Gewebe, 0,2 % Kollagenase ich und 2,5 U/mL Dispase-Lösung 0,2 % Kollagenase II ersetzen kann. Verwenden Sie zum fast gleichen Volumen Dispase Lösung für die Kollagenase ich Lösung.</li>
	<li>Mischen Sie das Pellet mit 0,2 % Kollagenase II Lösung durch rühren das Rohr oder rockt die Röhre auf einen Shaker bei 75 X g für 45-60 min bei 37 ° C. Schütteln Sie das Rohr von Hand nach alle 20-30 min um die Lyse zu verbessern.</li>
	<li>Genannte lysierten Gewebe Mix mit einer serologischen 5-mL-Pipette mit einer 1-mL-Pipettenspitze Gewebe Klumpen in die einzelne Zelle Suspension zu distanzieren. Hinweis: Um die maximale Erholung des CSCs erhalten, genannte Lyse Mischung mindestens 5 min lang. Wenn die Klumpen Gewebe relativ groß sind, schneiden Sie die Spitze einer 1-mL-Pipette-Spitze mit einer Schere oder einem chirurgischen Klinge und verwenden Sie es für Verreibung.</li>
	<li>Stoppen Sie die enzymatische lyse des Gewebes durch Zugabe von handelsüblichen CSC Wartung Medium. Fast 2-3 x so viel Wartung Medium als das Volumen des lysierten Gewebes im Schritt 2.14 hinzufügen.</li>
	<li>Ein 100 µm Zelle Sieb keine unverdauten Gewebe Stücke entfernen durchlaufen Sie die verdauten Zellsuspension.</li>
	<li>Wiederholen Sie Schritt 2.16 mit einem 40 µm Zelle Sieb.</li>
	<li>Trennen der Zellen durch Dichte-Gradienten-Zentrifugierung. Für die Trennung von Zellen überlagern Sie sanft ein gleiches Volumen an das Filtrat über Polysucrose und Natrium-Diatrizoate-Lösung. Beispielsweise fügen Sie zunächst 20 mL Polysucrose und Natrium-Diatrizoate-Lösung in einem 50 mL konische Röhrchen und fügen Sie dann 20 mL Filtrat aus Schritt 2.17 über die Polysucrose und Natrium-Diatrizoate-Lösung. Hinweis: Prewarm die Polysucrose und Natrium-Diatrizoate-Lösung bei 37 ° C vor dem verwenden mit den Zellen. Fügen Sie das Filtrat aus Schritt 2.17 über die Polysucrose und Natrium Diatrizoate Lösung, sehr vorsichtig und langsam zu vermeiden, eine Vermischung der beiden Lösungen. Dies gilt als ein entscheidender Schritt.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie die Röhrchen mit beiden Lösungen bei 500 X g für 20 min bei Raumtemperatur mit einer Schaukel-Eimer-Zentrifuge. Legen Sie die Zentrifuge bei niedrigeren Drehzahlen zu vermeiden, mischen die beiden Lösungen beschleunigen und Abbremsen und für die ordnungsgemäße Trennung des CSCs. Dies ist ein wichtiger Schritt im CSC-Isolierung. Habe das Rohr mit dem Farbverlauf Mischung sehr langsam ohne Störung in der Zentrifuge und setzen Sie ihn für Zentrifugation.</li>
	<li>Nehmen Sie die buffy Mantel zusammen mit extra Lösung aus der oberen Schicht mit einer 1-mL-Pipette oder einem Kunststoff Pasteurpipette in eine sterilisierte 15-mL-Tube. Diese buffy Schicht enthält das CSCs. Hinweis: Nehmen Sie zusätzliche Vorsichtsmaßnahme beim Pipettieren der buffy Mantel nicht, nehmen Sie die Polysucrose und Natrium Diatrizoate Lösung Schicht, weil es giftig für CSCs.</li>
	<li>Die Zellsuspension aus Schritt 2.20 ein gleiches Volumen von CSC Wartung Medium hinzu und mischen Sie es richtig, um die verbleibende Polysucrose und Natrium Diatrizoate Lösung, neutralisieren, falls vorhanden.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie die oben genannten Zellsuspension bei 500 X g für 5 min bei 4 ° C. Verwerfen Sie den überstand.</li>
	<li>Das Pellet in 7-10 mL unvollständig DMEM Medium Aufschwemmen und 500 X g für 5 min bei 4 ° C, um loszuwerden, alle restlichen Polysucrose und Natrium Diatrizoate Lösung zentrifugieren.</li>
	<li>Sammeln Sie die Pellets, die gereinigten CSCs enthält.</li>
	<li>Aufschwemmen Sie das Pellet in 1 mL CSC Wartung Medium, zählen Sie, wie CSC und verwenden Sie das Pellet für Kultur. Um die CSC-Nummer zu zählen, verwenden Sie Trypan blau Färbung und eine Hemocytometer. Mit vier männlichen Mäusen Herzen ist die Ausbeute des CSCs ~1.8 Millionen.</li>
	<li>Samen des CSCs in einer Kultur 6-Well-Platte beschichtet mit 0,02 % Gelatine-Lösung mit 0,5 % Fibronektin. Verwenden Sie 2 mL komplette Wartung Medium für die Aussaat. Inkubieren Sie die Kultur-Platte in einem Inkubator bei 37 ° C mit 5 % CO2.</li>
	<li>Ersetzen Sie das Medium der Kultur CSCs mit kompletten CSC Wartung Medium jeden Tag bis zum dritten Tag. Danach ändern Sie das Medium an wechselnden Tagen.</li>
	<li>Bestimmen Sie das Wachstum des CSCs, indem sie unter dem Mikroskop zu beobachten.</li>
</ol>3. Kultur Wartung und Durchgang von kardialen Stammzellen
<ol><li>Kultur der isolierten CSCs in einem handelsüblichen Wartung Medium. Ersetzen Sie das Kulturmedium mit frischen Wartung Medium, jeden zweiten Tag. Wenn die CSC Kultur Konfluenz erreicht hat, übertragen das CSCs auf eine neue Platte beschichtet mit Gelatine und Fibronektin, wie in Schritt 2.26 erwähnt. Die kultivierten CSCs durch enzymatische Zelle Dissoziation Puffer abnehmen. Folgen Sie das Standardprotokoll der Zelle Dissoziation aus der Kultur-Platte. Zu diesem Zeitpunkt gelten CSCs in der Passage 0 (P0) Bühne.</li>
	<li>Kultur P0 CSCs in eine neue Gelatine und Fibronektin-beschichtete Platte in komplette CSC-Wartung-Medium bei 37 ° C in einem 5 % CO2 Inkubator, konfluierende werden lassen, und dann folgen Schritt 3.1 Durchgang 1 (P1) CSCs. Store P1 CSCs in flüssigem Stickstoff oder verwenden sie für Erfahrungen rungen.</li>
	<li>0,5 Millionen Samenzellen in einer 6-Well-Platte oder 1 Million Zellen in t-25, die CSC Kultur in seiner Anfangsphase beizubehalten.</li>
	<li>Durchgang des CSCs bei 85-90 % Zusammenfluss. CSCs können Wartung Mittel-bis zu vier bis sechs Wochen kultiviert werden. Hinweis: Bewahren Sie die ursprünglichen Aussaatdichte des CSCs relativ hoch (40-50 %) da bei einem niedrigeren Aussaatdichte CSCs ihrer Morphologie, flachen und länglichen ändern können.</li>
</ol>4. Charakterisierung der kardialen Stammzellen
<ol><li>Um die kultivierten CSCs zu charakterisieren, beobachten sie unter einem Phagen-Kontrast oder ein Hellfeld Mikroskop. Das Ziel eines fluoreszierenden Mikroskops die CSC-haltigen Platte auflegen. Legen Sie die Vergrößerung relativ gering (10 X), die Zellen zu konzentrieren. Verwenden Sie Phasenkontrast-Blende, um die Zellen zu beobachten. Erhöhen Sie die Vergrößerung auf 20 X durch eine Änderung der Objektivlinse und Bild das CSCs erhöhen das Ziel, 40 X und Bild das CSCs. In zwei Tagen das CSCs erscheinen fast runde Form, sondern die Größe der Zelle steigt mit der Zeit und in sieben Tagen, CSCs erscheinen fast zylindrisch (Abbildung 1A - 1 C).</li>
	<li>Immunostaining des CSCs mit Markern der Pluripotenz/Stemness (OCT4, SOX2 und Nanog), Verbreitung (Ki-67) (Abbildung 2A - 2D) und kardialen Ursprungs/Progenitorzellen (Sca-1, NKX2-5 oder GATA4) durchführen (Abb. 3A - 3 C).<ol>
<li>Für die Immunostaining des CSCs Samen 10.000 CSCs in einer Kultur 24-Well-Platte.</li>
		<li>Am nächsten Tag (nach 18-24 h), beheben das CSCs in 300 µL 4 % Paraformaldehyd für 10 Minuten.</li>
		<li>Das CSCs mit 500 µL eiskaltem PBS waschen 3 X mit 5-min-Takt.</li>
		<li>Permeabilize das CSCs mit 300 µL 0,2 % Triton x-100 für 10 min in PBS verdünnt.</li>
		<li>Das CSCs mit 500 µL eiskaltem PBS waschen 3 X mit 5-min-Takt.</li>
		<li>Führen Sie die Sperrung des CSCs mit 300 µL 1 % BSA in PBST verdünnt (PBS + 0,1 % Tween 20) oder 300 µL 10 % normales Huhn Serum für 1 h in PBST verdünnt.</li>
		<li>Das CSCs in 200 µL Primärantikörper verdünnt in blocking-Lösung über Nacht bei 4 ° c inkubieren Verdünnen Sie den primären Antikörper, wie das Datenblatt von Antikörpern oder nach Standardisierung empfohlen.</li>
		<li>Das CSCs mit 500 µL eiskaltem PBS waschen 3 X mit 5-min-Takt.</li>
		<li>Inkubieren Sie das CSCs in 200 µL der Sekundärantikörper in blocking-Lösung verdünnt (siehe Schritt 4.2.6) für 1 h bei Raumtemperatur. Verdünnen Sie den sekundären Antikörper wie das Datenblatt von Antikörpern oder nach Standardisierung empfohlen.</li>
		<li>Das CSCs mit 500 µL eiskaltem PBS waschen 3 X mit 5-min-Takt.</li>
		<li>Counterstain CSCs mit 200 µL DAPI (1 µg/mL) für 5 min in PBS verdünnt.</li>
		<li>Waschen Sie das CSCs 1 X mit 500 µL eiskaltem PBS. Fügen Sie dann 300 µL eiskaltem PBS in jede Vertiefung.</li>
		<li>Durchführen Sie Bildgebung mit einem Fluoreszenzmikroskop. Folgen Sie den Anweisungen von fluoreszierend imaging, um direktes Licht auf die Platte zu vermeiden. Halten Sie die Kultur-Platte unter die Lupe genommen. Konzentrieren Sie sich die Zellen bei verschiedenen Vergrößerungen. Beobachten Sie die Zellen unter Phasenkontrast-und/oder andere Erregung Filter und speichern Sie die Bilder.</li>
		<li>Speichern Sie die Platte im Dunkeln bei 4 ° C.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. Differenzierung der kardialen Stammzellen in Cardiomyocyte
<ol><li>Für die Differenzierung von CSCs Samen 500.000 CSCs in einem 6-Well-Platte mit 2 mL Prewarm (37 ° C) im Handel erhältlichen CSC Wartung Medium.</li>
	<li>Inkubieren Sie die Platte enthält das CSCs in eine CO2 Inkubator bei 37 ° c Das CSCs zu befestigen und vermehren sich bis südlich konfluierende Wachstum zu ermöglichen. Wenn das Medium gelb dargestellt wird, ersetzen Sie das Kulturmedium mit frischen Wartung Medium.</li>
	<li>Bei 85-90 % Konfluenz, ersetzen Sie die Wartung Medium mit 2 mL Prewarm (37 ° C) Kardiomyozyten Differenzierung Medium. Bis zu 2-3 Wochen inkubieren Sie die Platte in eine CO2 Inkubator bei 37 ° C.</li>
	<li>Ändern der Differenzierung Medium jeder 2-3 d. beobachten das CSCs Morphologie unter dem Mikroskop jedes Mal während des Mediums ändern, um die guten Kulturbedingungen sicherzustellen.</li>
	<li>Nach 12 d von CSC Kultur in Differenzierung Medium Bild das CSCs für Differenzierung Marker nach einem standard Immunostaining Protokoll (siehe Schritte 4.2.1 - 4.2.14). Speichern Sie die fluoreszierenden Bilder für den Ausdruck der Kardiomyozyten Marker (Abbildung 4A - 4 b).</li>
</ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Die entscheidenden Schritte dieses CSC-Isolierung-Protokolls sind wie folgt. (1) ein sterilisierter Zustand ist für die Extraktion der Herzen von den Mäusen einzuhalten. Eine Kontamination während der Extraktion des Herzens beeinträchtigen die Qualität des CSCs. 2) Blut muss vollständig entfernt werden, bevor trippelnd Herzens, die durch mehrere Wäschen von ganzem Herzen und dem Herzen Stücke mit HBSS Lösung erfolgt. (3) das Herz-Stück müssen vollständig in einer einzelligen Suspension mit Kollagenase Lösung lysiert werd...

Ischämische Herzkrankheiten, einschließlich Myokardinfarkt (MI), ist eine der Hauptursachen des Todes rund um die Welt1. Stammzell-Therapie für die Regeneration Tote Herzmuskel bleibt ein wichtiger Ansatz zur Verbesserung der Herzfunktion eine MI Herz2,3,4,5. Verschiedene Arten von Stammzellen haben, Tote Herzmuskel wieder aufzufüllen und die Herzfunktion eines MI Herzens zu verbessern. Sie können im großen und ganzen in6 und Erwachsenen Stammzellen embryonaler Stammzellen eingeteilt werden. In adulten Stammzellen wurden verschiedene Arten von Stammzellen, wie Knochenmark gewonnenen mononukleären Zellen7,8, mesenchymale Stammzellen aus dem Knochenmark9,10, Fettgewebe verwendet 11,12, und Nabelschnur13und CSCs14,15. Stammzellen können kardiale Erholung durch endokrine und/oder parakrine Aktionen16,17,18,19,20fördern. Jedoch ist eine große Einschränkung der Stammzell-Therapie eine ausreichende Anzahl von Stammzellen erhalten, das vermehren und/oder gegenüber einem bestimmten kardialen Linie21,22unterscheiden können. Autologen und allogenen Transplantation von Stammzellen ist eine wichtige Herausforderung in Stammzell-Therapie-9. CSCs könnte ein besserer Ansatz zur kardialen Regeneration, denn sie aus dem Herzen stammen und sie können als nicht-kardialen Stammzellen leichter ins Herz Linien differenziert. Also, es reduziert das Risiko von Teratom. Darüber hinaus könnte die endokrinen und parakrine Effekte des CSCs, wie Exosomen und MiRNAs abgeleitet von CSCs, effektiver als andere Arten von Stammzellen. CSCs bleibt daher eine bessere Option für kardialen Regeneration23,24.
Obwohl CSCs ein besserer Anwärter zur kardialen Regeneration in einem MI Herzen aufgrund ihrer kardialen Ursprungs sind, ist eine große Einschränkung mit CSCs weniger Ertrag aufgrund des Fehlens einer effizienten Isolierung-Methode. Eine weitere Einschränkung könnte beeinträchtigt Differenzierung des CSCs in Richtung Herzzellen Lineage2,25,26,27. Um diese Einschränkungen zu umgehen, ist es wichtig, ein effizientes Protokoll für CSC-Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung in Richtung Herz Linie zu entwickeln. Es gibt keine einzige akzeptable Marker für CSCs und eine spezifische Zelloberfläche Marker-basierte Isolation des CSCs ergibt weniger CSCs. Hier, standardisieren wir einen einfachen Farbverlauf Zentrifugation Ansatz zur CSCs aus dem Herzen der Maus zu isolieren, ist kostengünstig und führt zu einer erhöhten Rendite von CSCs. Diese isolierten CSCs können für spezifische Zelloberfläche Marker durch Fluoreszenz-aktivierte Zelle kurzschließen ausgewählt werden. Neben CSCs isoliert haben wir ein Protokoll für CSC-Kultur, Charakterisierung und Differenzierung gegenüber Cardiomyocyte Abstammung. So präsentieren wir eine elegante Methode um zu isolieren, zu charakterisieren, Kultur, und CSCs von Erwachsenen Mäuseherzen (Abbildung 5) zu unterscheiden.

<table><tbody><tr><td>Mäuse</td><td>The Jackson laboratory, USA</td><td>Best.-Nr. 000664</td><td></td></tr><tr><td>Antikörper:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>OCT4-Abcam</td><td></td> <td>ab18976 (Kaninchen polyklonal)</td><td>OCT4-Primärer Antikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>SOX2</td><td>Abcam</td><td>ab97959 (Kaninchen polyklonal)</td><td>SOX2-Primärer Antikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Nanog</td><td>Abcam</td><td>ab80892 (Kaninchen polyklonal)</td><td>Nanog-Primärer Antikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Ki67</td><td>Abcam</td><td>ab16667 (Kaninchen polyklonal)</td><td>Ki67-Primärantikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Sca I</td><td>Millipore</td><td>AB4336 (Kaninchen polyklonal)</td><td>Sca I Primärer Antikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>NKX2-5</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-8697 (Kaninchen polyklonal)</td><td>NKX2-5-Primärer Antikörper - 1:50 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>GATA4</td><td>Abcam</td><td>ab84593 (Kaninchen polyklonal)</td><td>GATA4-Primärer Antikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>MEF2C</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-13268 (Ziege polyklonal)</td><td>MEF2C-Primärer Antikörper - 1:50 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Troponin I</td><td>Millipore</td><td>MAB1691 (Maus monoklonal)</td><td>Troponin I-Primärer Antikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Actinin</td><td>Millipore</td><td>MAB1682 (Maus monoklonal)</td><td>Actinin-Primärer Antikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>ANP</td><td>Millipore</td><td>AB5490 (Maus polyklonal)</td><td>ANP-Primärer Antikörper - 1:100 Verdünnung, Sekundärer Antikörper - 1:200 Verdünnung, in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Alex Fluor-488 checken Anti-Kaninchen Life-Technologie</td><td></td><td>Ref. Nr. A21441</td><td></td></tr><tr><td>Alex Fluor-594 Anti-Kaninchen-Technologie für Ziegen</td><td>Life-Technologie</td><td>Ref-Nr. A11012</td><td></td></tr><tr><td>Alex Fluor-594 Anti-Kaninchen Anti-Ziegen-Technologie</td><td>Life-Technologie</td><td>Ref.-Nr. A11078</td><td></td></tr><tr><td>Alex Fluor-488 Checken Anti-Maus Life-Technologie</td><td></td><td>Ref.-Nr. A21200</td><td></td></tr><tr><td>Alex Fluor-594 Checken Anti-Ziegen-Life-Technologie</td><td></td><td>Ref-Nr. A21468</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Katalognummer</td><td>Kommentare</td></tr><tr><td>Kulturmedium: </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CSC Erhaltungsmedium</td><td>Millipore</td><td>SCM101</td><td>Hinweis: Für die CSC-Kultur wurde PBS oder unvollständiges DMEM-Medium zum Waschen der Zellen verwendet</td></tr><tr><td>Kardiomyozyten Differenzierungsmedium</td><td>Millipore</td><td>SCM102</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5546</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Katalognummer</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Cell Isolation Puffer:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Polysaccharose- und Natriumdiatrizoatlösung (Histopaque1077)</td><td>Sigma</td><td>10771</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Gibco</td><td>2018-03</td><td></td></tr><tr><td>Kollagenase I</td><td>Sigma</td><td>C0130</td><td></td></tr><tr><td>Dispase-Lösung</td><td>STEMCELL Technologies</td><td>7913</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>LONZA</td><td>S1226</td><td></td></tr><tr><td>StemPro Accutase Zelldissoziationsreagenz</td><td>Thermowissenschaftlich</td><td>A1110501</td><td></td></tr><tr><td><stark>Andere Reagenzien:</stark> </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A7030</td><td></td></tr><tr><td>Normales kontrolliertes Serum</td><td>Vektorlabor</td><td>S3000</td><td></td></tr><tr><td>DAPI-Lösung</td><td>Applichem</td><td>A100,0010</td><td>Dapi, Arbeitskonzentration-1 & Mikro; g/mL</td></tr><tr><td>Trypanblau</td><td>Biorad</td><td>145-0013</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>Sigma</td><td>T4049</td><td></td></tr><tr><td>StemPro Accutase Zelldissoziationsreagenz</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A1110501</td><td></td></tr><tr><td>Formaldehyd</td><td>Sigma</td><td>158127</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>ACROS</td><td>Cas Nr. 900-293-1</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Fisher Sceintific</td><td>Lot Nr. 160170</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Name</strong</td><td>>Unternehmen</td><td><>Katalognummer</td><td>Kommentare</td></tr><tr><td><>Gewebekulturmaterialien:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>100 mm Petrischale</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-Well-Platte</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>24-Well-Platte</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>T-25 Kolben</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>T-75 Kolben</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>15 ml konisches Röhrchen</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>50 mL konisches Röhrchen</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>40 & Mikro; m Zell-Färbegerät</td><td>Fisher Scientific</td><td>22363547</td><td></td></tr><tr><td>100 &micro; m Zell-Färber</td><td>Fisher Scientific</td><td>22363549</td><td></td></tr><tr><td>0,22 &micro; m Filter</td><td>Fisher Scientific</td><td>09-719C</td><td></td></tr><tr><td>10 mL Spritze</td><td>BD</td><td>Ref Nr. 309604</td><td></td></tr><tr><td>10 &micro; L, 200 & Mikro; L, 1000 &Mikro; L Pipettenspitzen</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 mL, 10 mL, 25 mL Einwegpipette aus Kunststoff</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company<</td><td>strong>Katalognummer</td><td><>Kommentare</td></tr><tr><td>Instrumente</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zentrifugenmaschine</td><td>Thermo Scientific</td><td>LEGEND X1R Zentrifuge</td><td></td></tr><tr><td>EVOS Mikroskop</td><td>Life-Technologie</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Automatisierter Zellzähler</td><td>Biorad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zellzählobjektträger</td><td>Biorad</td><td>145-0011</td><td></td></tr><tr><td>Pippte Aid</td><td>Thermo Scientific</td><td>S1 Pipettenfüller</td><td></td></tr><tr><td>Name<</td><td> strong>Company</td><td>Katalognummer</td><td>Kommentare</td></tr><tr><td>Chirurgische Instrumente:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Schere</td><td>Feines wissenschaftliches Werkzeug</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Feine chirurgische Schere</td><td>Feines Scientific Tool</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kurvenschaftzange</td><td>Feines wissenschaftliches Werkzeug</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Klinge</td><td>Fine Scientific Tool</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

isolierung, charakterisierung und differenzierung von kardialen stammzellen von erwachsenen maus herzen

Isolation, Characterization, and Differentiation of Cardiac Stem Cells from the Adult Mouse Heart

Myokardinfarkt (MI) ist eine der Hauptursachen für Morbidität und Mortalität auf der ganzen Welt. Ein wesentliches Ziel der regenerativen Medizin ist der Tote Herzmuskel nach MI wieder aufzufüllen. Obwohl mehrere Strategien verwendet wurden, um den Herzmuskel zu regenerieren, bleibt Stammzell-Therapie einen wichtigen Ansatz für Tote Herzmuskel eines MI Herzens wieder aufzufüllen. Beweise sammeln schlägt das Vorhandensein von resident kardiale Stammzellen (CSCs) in das Erwachsene Herz und ihre endokrine und/oder parakrine Effekte auf die kardialen Regeneration. CSC-Isolierung und deren Charakterisierung und Differenzierung in Richtung Herzmuskelzellen, vor allem Kardiomyozyten bleibt jedoch eine technische Herausforderung. In der vorliegenden Studie haben wir eine einfache Methode zur Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung von CSCs aus dem Herzen der erwachsenen Maus. Hier beschreiben wir eine Dichte Gradienten Methode zur Isolierung von CSCs, wo das Herz durch eine 0,2 % Kollagenase II Lösung verdaut wird. Um das isolierte CSCs zu charakterisieren, haben wir den Ausdruck von CSCs/Cardiac Marker, Sca-1, NKX2-5 und GATA4 und Pluripotenz/Stemness Marker OCT4, SOX2 und Nanog ausgewertet. Wir bestimmt auch die Proliferation Potenzial der isolierten CSCs durch sie in einer Petrischale züchten und die Bewertung des Ausdrucks der Verbreitung Markierung Ki-67. Für die Bewertung der Differenzierung Potenzial des CSCs, wählten wir sieben - zehn - Tage kultiviert CSCs. Wir übertragen sie auf eine neue Platte mit einem Cardiomyocyte Differenzierung Medium. Sie werden in einer Zelle-Kultur-Inkubator für 12 Tage inkubiert, während die Differenzierung Medium alle drei Tage gewechselt wird. Die differenzierte CSCs express Cardiomyocyte-spezifische Marker: Actinin und Troponin ich. So CSCs isoliert mit diesem Protokoll haben Stemness und kardialen Marker, und sie haben ein Potenzial für Proliferation und Differenzierung in Richtung Cardiomyocyte Abstammung.

In der vorliegenden Studie werden CSCs von 10 bis 12 Wochen alten C57BL/6J männliche Mäuse Herz isoliert. Hier haben wir eine einfache Methode für CSC-Isolierung und Charakterisierung mit Hilfe von Markern der Pluripotenz präsentiert. Wir stellten auch eine elegante Methode zur Differenzierung der CSC und die Charakterisierung von CSCs, die in Richtung Herzzellen Linie unterschieden. Wir beobachteten eine Spindel Form Morphologie des 2 -, 3-Tage-kultivierte CSCs unter dem Phasenkontrast-M...

Das übergeordnete Ziel dieses Artikels soll das Protokoll zur Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung von kardialen Stammzellen (CSCs) aus dem Herzen der erwachsenen Maus zu standardisieren. Hier beschreiben wir eine Dichte Gradienten Zentrifugation Methode, murine CSCs zu isolieren und ausgearbeiteten Methoden für CSC-Kultur, Proliferation und Differenzierung in Herzmuskelzellen.

Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung von kardialen Stammzellen von Erwachsenen Maus Herzen

Myocardial infarction (MI) is a leading cause of morbidity and mortality around the world. A major goal of regenerative medicine is to replenish the dead ...

Das übergeordnete Ziel dieses Artikels ist es, das Protokoll für die Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung von Herzstammzellen, CSCs aus dem Adult Mouse Heart, zu standardisieren. Diese Methode kann helfen, wichtige Fragen im Bereich der Herz-Kreislauf-Erkrankungen und der regionalen Therapie wie Herzstammzelltherapie und Herzinsuffizienz zu beantworten. Der Hauptvorteil dieser Technik ist, dass sie kostengünstig ist, mit hoher Hilfe in kurzer Zeit.Starten Sie dieses Experiment, indem Sie alle notwendigen Materialien, Instrumente und Isolationspuffer in einem sterilisierten Zustand vorbereiten, wie im Protokoll beschrieben. Nachdem Sie die Haut aus dem Bauch einer eingeschläferten Maus entfernt haben, schneiden Sie den Brustkorb in der sterilen Kapuze, um die Brusthöhle zu öffnen. Setzen Sie das Herz aus und entfernen Sie dann das Blut in der Nähe des Herzens mit einer Ein-Milliliter-Spritze.Um Blut in der Nähe des Herzens zu entfernen, waschen Sie die Umgebung mit eiskaltem PBS. Mit chirurgischen Scheren und Pinzetten, um das Herz zu sezieren, legen Sie es in eine 100 Millimeter Petrischale mit 10 Milliliter eiskalte PBS. Verwenden Sie gekrümmte Schaftzangen, um das Herz zu lähmen, und entfernen Sie das Restblut im Herzen.Übertragen Sie vier bis fünf isolierte Herzen auf eine 100 Milliliter Petrischale mit 10 Millilitereise. Palpate die Herzen wieder, um sie zu waschen und entfernen Sie restliches Blut im Herzen. Um die vollständige Entfernung des Blutes zu gewährleisten, ändern Sie die HBSS-Lösung nach jeder Wäsche.Halten Sie jedes Herz mit einer Zange und verwenden Sie eine chirurgische Klinge, um jedes Herz in zwei bis vier Millimeter Stücke in einer 100-Millimeter-Petrischale zu schneiden, die fünf bis sieben Milliliter HBSS enthält. Ändern Sie häufig die Lösung, um eine vollständige Blutentnahme zu gewährleisten. Schließlich, hacken Sie die Herzen in der HBSS-Lösung.Zentrifugieren Sie die gehackten Herzen in einem 50 Milliliter konischen Rohr bei 500 mal G, bei vier Grad Celsius für fünf Minuten, und dann den Überstand entsorgen. Fügen Sie fünf bis sechs Milliliter, 0,2%Collagenase II Lösung auf das Pellet, um das Gewebe zu verdauen. Das Pellet gründlich wieder aufhängen, indem man die Röhre auf einem Shaker bei 75-fachem G, bei 37 Grad Celsius für 45 bis 60 Minuten schaukelt.Alle 20 bis 30 Minuten das Rohr kräftig von Hand schütteln, um die Lyse zu verbessern. Trituieren Sie den lysierten Gewebemix mit fünf Millilitern serologischer Pipette und einer Ein-Milliliter-Pipettenspitze, um den Gewebeklumpen in die einzellige Suspension zu dissoziieren. Um die enzymatische Lyse des Gewebes zu stoppen, fügen Sie zwei- bis dreimal so viel kommerziell erhältliches CSC-Wartungsmedium hinzu wie das Volumen des lysierten Gewebes.Passieren Sie die verdaute Zellsuspension durch ein 100 Mikrometer Zellsieb, das auf einem 50 Milliliter konischen Rohr platziert wird, um unverdaute Gewebestücke zu entfernen. Um die Zellen auf Dichtegradientzentrifugation zu trennen, fügen Sie 37 Grad Celsius, vorgewärmt, Polysucrose und Natriumdiatrizoat Lösung zu einem 50 Milliliter konischen Rohr. Dann sanft und langsam fügen Sie ein gleiches Volumen von Filtrat über die Lösung, vermeidung jede Mischung der beiden Lösungen.Es ist wichtig, Filtrat über Polysucrose und Natriumdiatrizoat Lösung langsam ohne Mischen durch Kippen des Rohres bei 45 Grad und gegen die Wand des Rohres hinzuzufügen. Setzen Sie keine Polysucrose- und Natriumdiatrizoatlösung über Filtrat bei. Legen Sie das Rohr sehr langsam in eine Schwenk-Eimer-Zentrifuge, um sicherzustellen, dass die Lösungen nicht stören.Zentrifuge bei 500 mal G für 20 Minuten bei Raumtemperatur bei einer niedrigeren Beschleunigungs- und Verzögerungsgeschwindigkeit eingestellt, um das Mischen der beiden Lösungen zu vermeiden, und für eine ordnungsgemäße Trennung der Herzstammzellen. Es ist wichtig, die Gradientenlösung sehr sorgfältig und ohne Störung in der Zentrifuge zu setzen. Setzen Sie die Beschleunigung und Verzögerung der Zentrifuge muss bei der niedrigsten Geschwindigkeit sein, wie ein oder null.Verwenden Sie eine 1-Millimeter-Pipette, um die buffy Schicht mit den CSCs zusammen mit zusätzlicher Lösung von der oberen Schicht auf ein 15 Milliliter sterilisiertes Rohr zu übertragen. Fügen Sie ein gleiches Volumen von CSC-Wartungsmedium hinzu, und mischen Sie es richtig, um die Rest-Polysucrose- und Natriumdiatrizoatlösung zu neutralisieren. Zentrifugieren Sie diese Suspension bei 500 mal G für fünf Minuten bei vier Grad Celsius.Entsorgen Sie den Überstand. Wiederholen Sie das Waschen von CSCs mit unvollständiger DMEM-Lösung mindestens zwei Mal. Zentrifuge bei 500 mal G für fünf Minuten bei vier Grad Celsius, um jede Rest-Polysucrose- und Natriumdiatrizoatlösung loszuwerden.Nach dem Entfernen des Überstandes setzen Sie das Pellet, das gereinigte CSCs enthält, in einem Milliliter CSC-Wartungsmedium wieder auf und zählen Sie dann die Zellen. Säen Sie die CSCs in einer Sechs-Brunnen-Kulturplatte, die mit einer 0,02%igen Gelatinelösung mit 0,5% Fibronectin beschichtet ist, und fügen Sie zwei Milliliter komplettes Pflegemedium hinzu. Wachsen Sie die Zellen bei 37 Grad Celsius in 5%CO2.Wenn die CSC-Kultur die Koninfluenza erreicht, übertragen Sie die Zellen auf eine neue Gelatine- und Fibronectin-beschichtete Platte, wie im Textprotokoll beschrieben. Kultur diese übertragen P0 CSCs in komplette CSC Wartungsmedium bei 37 Grad Celsius in einem 5%CO2-Inkubator bis zum Einfluss. Wiederholen Sie den Zelltransfer auf eine neue Platte, um P1-CSCs herzustellen, die für weitere Experimente verwendet werden können.Um die CSC-Kultur in ihrer Anfangsphase beizubehalten, säen Sie die Zellen weiter aus, wie im Textprotokoll beschrieben. Um die kultivierten Zellen zu charakterisieren, legen Sie die CSC-haltige Platte auf das Ziel eines Fluoreszenzmikroskops. Verwenden Sie die zehnfache Vergrößerung, um die Zellen zu fokussieren.Um die Zellen zu beobachten, verwenden Sie phasenkontrastige Blende, und erhöhen Sie die Vergrößerung auf das 20-fache, indem Sie die Objektivlinse ändern, und stellen Sie dann die CSCs ab. Nach der Durchführung der Immunfärbung, legen Sie die Kulturplatte unter das Fluoreszenzmikroskop. Fokussieren Sie die Zellen auf verschiedene Vergrößerungen, beobachten Sie die Zellen unter Phasenkontrast und verschiedenen Anregungsfiltern, und speichern Sie die Bilder.Zur Zelldifferenzierung die CSCs in einer Sechs-Brunnen-Platte mit zwei Millilitern 37 Grad Celsius, vorgewärmtem CSC-Wartungsmedium, anbauen. Wenn die Zellen 80 bis 95% Konfluenz erreichen, ersetzen Sie das Pflegemedium durch zwei Milliliter, 37 Grad Celsius, vorgewärmte Kardiomyozyten Differenzierungsmedium. Inkubieren bei 37 Grad Celsius, in einem 5%CO2 für bis zu zwei bis drei Wochen.Ändern Sie das Differenzierungsmedium alle zwei bis drei Tage. Beobachten Sie während des mittleren Wechsels die Zellmorphologie unter dem Mikroskop, um die guten Kulturbedingungen zu gewährleisten. Nach 12 Tagen die Zellen nach einem Standard-Immunstainierungsprotokoll für Differenzierungsmarker abbilden.Zwei- bis dreitage kultivierte CSCs zeigen eine spindelförmige Morphologie, wenn sie unter einem Phasenkontrastmikroskop beobachtet werden. Nach sieben Tagen Kultur zeigen sie einen Wandel in der Morphologie, der sich länglich entwickelt. Nach der Immunfärbung für Marker der Pluripotenz zeigen CSCs Ausdrücke von OCT4, SOX2 und Nanog.Darüber hinaus vermehren sich CSCs im Kulturmedium und drücken den Proliferationsmarker Ki67 aus. Um den kardialen Ursprung von CSCs zu charakterisieren, wurde die Expression von Herzmarkern untersucht, und die Zellen zeigten sich positiv für die Herzmarker Sca-1, NKX2.5 und GATA4. Nach der Kultivierung im Kardiomyozytendifferenzierungsmedium für 12 Tage zeigen differenzierte CSCs die Expression der Kardiomyozytenmarker ACTININ und TROPONIN-I.Beim Versuch dieses Verfahrens ist es wichtig, daran zu denken, dass das Mischen der Gradientenlösung und des Filtrats nicht zugelassen wird. Es ist auch wichtig, die Beschleunigung und Verzögerung auf niedrigste Geschwindigkeit einzustellen. Wer auch immer sie verunreinigt, es wird empfohlen, alle Zellisolationsprozess in einem Biosicherheitsschrank durchzuführen.Nach diesem Verfahren können andere Methoden wie magnetisch-perlenbasierte Trennung oder strömungszytomettische Zellsortierungsmethoden durchgeführt werden, um zusätzliche Fragen zu beantworten, wie z. B. wie klar die homogene Population von Herzstammzellen ist? Der Rissradius in einer Herzstammzelle ist ein großer Marker, und es gibt Unterschiede zu Kardiomyozyten. Nach der Entwicklung wird diese Technik den Weg für die Forscher auf dem Gebiet der Herz-Kreislauf-Erkrankungen ebnen, die oft hohe Ausbeute von Herzstammzellen aus dem Mausherz, die für die regenerative Therapie bei ischämischer Herzinsuffizienz wichtig sein könnte.Vergessen Sie nicht, dass die Arbeit mit chirurgischen Klinge, Bleichmittel und DMSO gefährlich sein kann, und Vorsichtsmaßnahmen wie die Verwendung von PersonalSchutzausrüstungen, PSA, sollte immer während der Durchführung dieses Verfahrens getroffen werden.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Hier beschreiben wir die Isolierung von adulten Maus cardiomyoctyes mit einem Langendorff-Perfusion-System. Die resultierenden Zellen sind Ca2 +-tolerant, elektrisch Ruhe und kultiviert und mit Adeno-oder Lentiviren, um die Genexpression zu manipulieren transfiziert werden. Ihre Funktionalität kann auch mit dem MMSYS System und Patch-Clamp-Techniken analysiert werden.

Isolierung, Kultur, und funktionelle Charakterisierung der erwachsenen Maus Cardiomyoctyes

Einzelne Kardiomyozyten aus Wildtyp- und mutierten Mäusen können aus dem Herzen isoliert werden, um ihre Kontraktilität und Kalziumtransienten zu untersuchen. Dies ermöglicht die Charakterisierung des Beitrags zellulärer Dysfunktion zur Herzfunktionsstörung aus beliebiger Ursache.

Isolation und physiologische Analyse von Maus Kardiomyozyten

Wir beschreiben eine zuverlässige Methode zur Isolierung von adulten Herzmuskelzellen der Maus. Dieses Protokoll liefert ein konsistentes Ergebnis für die Kultur von funktionellen adulten Kardiomyozyten aus einer Vielzahl von gentechnisch veränderten Mäusen.

Isolation und Kultur der erwachsenen Maus Kardiomyozyten für Cell Signaling und<em&gt; In-vitro-</em&gt; Herzhypertrophie

Dieses Protokoll beschreibt eine Schritt-für-Schritt-Methode für die reproduzierbare Isolierung und Langzeitkultur von adulten Maus-Kardiomyozyten mit hoher Ausbeute, Reinheit und Lebensfähigkeit.

Isolierung, Kultur und Transduction von erwachsenen Maus Kardiomyozyten

Menschliche Herzgewebe birgt multi perivaskuläre Vorläuferzellpopulationen, die für myokardiale Regeneration geeignet sein können. Die hier beschriebene Technik ermöglicht die gleichzeitige Isolierung und Reinigung von zwei multi stromalen Zellpopulationen , die mit nativem Blutgefäße, dh CD146 + CD34 - Perizyten und CD34 + CD146 - Adventitia - Zellen aus dem menschlichen Herzmuskel.

Isolierung von Perivaskuläre multipotenten Vorläuferzellpopulationen aus menschlichem Herzgewebe

Es sind Verfahren zur Isolierung von Sinusknoten Myozyten (SAMs) von erwachsenen Mäusen für Patch-Clamp-Elektrophysiologie oder Bildgebungsstudien demonstriert. Isolierte Zellen können direkt oder aufrechterhalten werden kann in Kultur zu ermöglichen, die Expression von Proteinen von Interesse, beispielsweise genetisch codierten Reporter verwendet.

Verfahren zur Isolierung, Kultur, und funktionelle Charakterisierung von Sinoatrialknoten Myozyten aus erwachsenen Mäusen

Dieses Protokoll wird verwendet, um einzelne vorhofflische Kardiomyozyten aus dem erwachsenen Mausherz mit einem Chunk-Verdauungsansatz zu isolieren. Dieser Ansatz wird verwendet, um rechte oder linke Vorhoffleine myozyten zu isolieren, die verwendet werden können, um Vorhoffleine Myozytenelektrophysiologie in Patch-Clamp-Studien zu charakterisieren.

Isolierung von Atrial Myozyten von erwachsenen Mäusen

Die Gewinnung einer reinen Population von Fibroblasten ist entscheidend für die Untersuchung ihrer Rolle bei der Wundreparatur und Fibrose. Beschrieben ist eine detaillierte Methode, um Fibroblasten und Myofibroblasten von unverletzten und verletzten Mausherzen zu isolieren, gefolgt von der Charakterisierung ihrer Reinheit und Funktionalität durch Immunfluoreszenz, RTPCR, Fluoreszenz-unterstützte Zellsortierung und Kollagen-Gel-Kontraktion.

Isolierung und Charakterisierung von adulten Herz-Fibroblasten und Myofibroblasten

Eine Methode wird beschrieben, um Myozyten und Nicht-Myozyten gleichzeitig von den Vorhöfen und Ventrikeln eines einzelnen erwachsenen Mausherzens zu isolieren. Dieses Protokoll führt zu konsistenten Erträgen von hochlebensfähigen Herzmyozyten und Nicht-Myozyten und beschreibt optimale zellspezifische Kulturbedingungen für Phänotypisierung und In-vitro-Analyse.

Gleichzeitige Isolierung und Kultur von Atrial Myozyten, ventrikulären Myozyten und Nicht-Myozyten aus einem erwachsenen Mausherz

Hier stellen wir ein Protokoll vor, das die Präparation von Zellkernen beschreibt. Nach Mikrodissektion und enzymatischer Dissoziation von Herzgewebe in Einzelzellen wurden die Vorläuferzellen eingefroren, gefolgt von der Isolierung von reinen lebensfähigen Zellen, die für die Einzelkern-RNA-Sequenzierung und den Einzelkern-Assay für Transposase-zugängliches Chromatin mit Hochdurchsatz-Sequenzierungsanalysen verwendet wurden.

Zellkernisolierung aus kardialen Vorläuferzellen der Maus für die Erstellung von Epigenom- und Genexpressionsprofilen mit Einzelzellauflösung

Erfahren Sie die Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung kardialer Stammzellen aus erwachsenen Mäuseherzen. Diese kosteneffiziente Methode ermöglicht Studien zur kardiovaskulären Regeneration und Herzinsuffizienztherapie.

Isolierung, Charakterisierung und Differenzierung von kardialen Stammzellen von Erwachsenen Maus Herzen

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