Name: Eine In Vivo -Methode zur Bewertung der Darm-Blut-Schranke und LEBERSTOFFWECHSEL Mikrobiota Produkte (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 54 s
Description: Erfahren Sie eine direkte Methode zur Bewertung der Darm-Blut-Schranke bei Ratten mittels Portalblutentnahme. Diese Technik ermöglicht präzise Messungen der Permeabilität und hepatischen Clearance.

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Die Arbeit wird unterstützt durch das Ministerium für Wissenschaft und Hochschulwesen Republik Polen, Diamond gewähren keine: DI2017 009247.

Die Experimente wurden an männlichen Kyoto Wistar-Ratten gemäß EU-Richtlinie 2010/63 über den Schutz der für wissenschaftliche Zwecke verwendeten Tiere durchgeführt und durch die ich bioethischen Lokalkomitees in Warschau angenommen wurden.
1. Einfügen der Zeile für die Intraintestinal Verwaltung
Hinweis: Hier schlagen wir Intracolonic Verwaltung eines Markers mit einem Katheter. Er kann durch orale Verabreichung oder Magensonde auf verschiedenen Ebenen im Verdauungstrakt z.B. Magen oder Zwölffingerdarm geändert werden. Vergessen Sie nicht, verwenden Sie Einweg-OP-Bekleidung, einschließlich op-Kittel, Haube und Handschuhe, und stellen sicher, dass die Sicherheitsvorkehrungen im Zusammenhang mit der scharfen Werkzeugen in der Chirurgie (Nadeln, etc.) verwendet, während Verfahren 1-6 folgen.
<ol><li>Schnelle Tiere über Nacht vor dem Eingriff. Führen Sie alle Verfahren in Vollnarkose, z.B. durch Injektion von Urethan 1,5 g/kg bw i.p Assess richtige Anesthetization durch das Fehlen von palpebrale und Hornhaut Reflexe und durch Zehe-Prise und Heck-Prise Methode erhalten.</li>
	<li>Verwenden Sie einen pädiatrische Foley Katheter (10F oder 8F) als ein Kolon Katheter. Markieren Sie den Katheter um das Teil anzugeben, das in den Dickdarm (ca. 8 cm) eingefügt wird.</li>
	<li>Überprüfen der Analbereich und der Hocker Inhalt im Enddarm vor dem Einführen des Katheters in den Darm. Wenn Hocker vorhanden ist, Entleeren Sie den Enddarm durch das Massieren der rektalen Bereich.</li>
	<li>Setzen Sie ein Gleitmittel (z.B. Glycerin oder Vaseline) entlang des Katheters. Befeuchten Sie den Anus und seine Umgebung mit dem Schmiermittel.</li>
	<li>Legen Sie den Katheter mit einem Reiseführer Draht ca. 8 cm über den externen analen Schließmuskel. Machen Sie langsamere vorwärts-rückwärts und kreisförmige Bewegungen. Hinweis: Halten Sie sich auf die Lage des Katheters durch abdominale Palpation beim Einführen des Katheters überprüfen.</li>
</ol>(2) minderwertige Vena Cava Katheterisierung
<ol><li>Fell in der Leistengegend zu rasieren. Abwechselnd 3 Mal die Haut mit Alkohol und Povidon-Jod zu desinfizieren und die Leistengegend mit op-Tüchern abdecken.</li>
	<li>Versuchen Sie, fühlen Sie den Puls auf die Femoral Arterie und schneiden Sie die Haut längs für die Dauer von ca. 2,0 cm an der Stelle, wo der Puls fühlbar ist.</li>
	<li>Sezieren der Faszien und Muskeln, das Neurovaskuläre Bündel zu visualisieren.</li>
	<li>Sezieren die femorale Ader aus dem neurovaskulären Bündel: erste Nerven, dann die Femoral Arterie und der Vene. Hinweis: Achten Sie während der Präparation des neurovaskulären Bündels, da kleine Zweige der femoral Ader leicht beschädigt werden können, produzieren, Blutungen.</li>
	<li>Legen Sie zwei Ligaturen auf der femoral Ader. Binden Sie der Knoten noch nicht. Fangen Sie die Enden der proximalen Ligatur mit einem Nadelhalter.</li>
	<li>Ziehen Sie vorsichtig die Ligatur enden mit dem Halter nach oben um den proximalen Teil der Vene zu schließen. Warten Sie, bis die Vene mit Blut gefüllt ist und Leben Sie den distalen Bund fürs.</li>
	<li>Machen Sie einen kleinen Schnitt (ca. 1 mm) auf die Vene zwischen dem Knoten und dem proximalen Ligatur mit einer mikrochirurgischen Schere. Legen Sie den Katheter mit Pinzette oder Nadel mit dem gebogenen Ende. Hinweis: Punktion der Vene und die gebogene Spitze der Nadel als Leitfaden für den Katheter verwenden. Lösen Sie die proximalen Ligatur beim Einführen des Katheters. Legen Sie den Katheter für 6-7,0 cm.</li>
	<li>Sichern Sie den Katheter in die femoral Ader mit zwei einzelnen chirurgischen Knoten. Die proximalen Ligatur sowie zu binden.</li>
	<li>Überprüfen Sie die Durchgängigkeit des Katheters durch den Versuch, mit einer Spritze Blutabnahme. Spülen Sie den Katheter mit 0,3 mL heparinisierten Kochsalzlösung (100 Einheiten/mL).</li>
	<li>Schließen Sie die Operationswunde mit zwei Schichten von einzelnen Stichen.</li>
</ol>(3) Pfortader Katheterisierung
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58456/58456fig1.jpg"> Abbildung 1 : Portal Katheter. Der Portal Katheter besteht aus einer Nadel OD: 0,9 mm mit einer Länge von ca. 25,0 mm [A], eine flexible Polyurethan-Katheter OD: 0,025", Länge ca. 100,0 mm [B], eine flexible Polyethylen-Spitze des Katheters OD: 0,040", ca. 15,0 mm lang [C], einen Stecker [D]. , und eine Ligatur 3/0 mit einer Länge von 100,0 mm [E]. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58456/58456fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<ol><li>Bereiten Sie den Portal Katheter nach Abbildung 1.<ol>
<li>Legen Sie das abgeschnittene Ende der Nadel (OD: 9 mm) in der Polyurethan-Katheter OD: 0,025".</li>
		<li>Binden Sie die Ligatur 3/0 an der Kreuzung der Nadel und Katheter. Hinweis: Stellen Sie sicher, dass der längere Teil der Ligatur mindestens 6 cm lang ist.</li>
		<li>Stecken Sie das Ende des Katheters OD: 0,025" in der Polyethylen-Katheter OD: 0,040".</li>
		<li>Schließen Sie den Katheter mit einem Metall- oder Kunststoff-Stecker.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Mittellinie Laparotomie<ol>
<li>Fell in den Bauch rasieren, abwechselnd Desinfizieren der Haut mit Alkohol und Povidon-Jod 3 Mal und decken den Bereich mit op-Tüchern.</li>
		<li>Schneiden Sie die Haut längs aus dem Xiphoid des Brustbeins bis zum Nabel.</li>
		<li>Schneiden Sie die Muskeln der Bauchwand entlang der weißen Linie.</li>
		<li>Erweitern Sie den Schnitt Rostral in Y-Form, so dass die xiphoid Knorpel zwischen zwei Schnitten ist.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Pfortader Dissektion<ol>
<li>Befeuchten Sie die chirurgische Tupfer mit Kochsalzlösung.</li>
		<li>Exteriorize der Blinddarm, aufsteigend und Colon transversum und Dünndarm Schleife. Setzen Sie den Darm auf der linken Seite um die Wurzel des das Mesenterium verfügbar zu machen. Hinweis: Bedecken Sie den Darm mit Gaze angefeuchtet mit einer physiologischen Kochsalzlösung, den Darm vor dem Austrocknen zu schützen.</li>
		<li>Um die Pfortader offen zu legen, bewegen Sie vorsichtig die hepatischen Lappen an den Seiten oder oben auf die Membran mit dem angefeuchteten Tupfer.</li>
		<li>Lokalisieren Sie den Teil der Pfortader, die nicht mit dem Mesenterium (in den hepatischen Hilum, ca. 5 mm lang) bedeckt ist und übergeben Sie die Ligatur 3/0 (15 cm lang) unter die Pfortader. Hinweis: Um Gewebe vor Schäden zu schützen während des Einsetzens der Ligatur, Befeuchten Sie die Ligatur mit physiologischer Kochsalzlösung.</li>
		<li>Klemmen Sie die Enden der Ligatur mit Zange und ziehen Sie es vorsichtig, um das Schiff zu stabilisieren.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Einfügung und Stabilisierung des Katheters<ol>
<li>Übergeben Sie den längeren Teil der Portal Katheter Ligatur unter den freien Teil der Pfortader und ziehen Sie ihn so, dass der Katheter direkt neben der Pfortader liegt.</li>
		<li>Stechen Sie die Nadel in die oberen mesenterialen Vene 3 mm unterhalb der Kreuzung der oberen mesenterialen Vene und die Pfortader. Halten Sie die Nadel in einem Winkel von 30° und nach der Eingabe in die Vene, reduzieren Sie den Winkel und die Nadel fast horizontal, parallel zu der Pfortader. Hinweis: Setzen Sie die Nadel auf einer Länge von ca. 6-7 mm. Die stabilisierende Ligatur sollte sanft die Pfortader anziehen, beim Einführen des Katheters.</li>
		<li>Geben Sie 1-2 Tropfen Gewebekleber an der Stelle wo die Nadel eingeführt wird. Entfernen Sie die Tupfer, die Leber zu decken.</li>
		<li>Setzen Sie den Darm wieder in die Bauchhöhle.</li>
		<li>Der Darm mit einer aufgewärmten Kochsalzlösung anfeuchten und mit angefeuchteten steriler Gaze abdecken.</li>
		<li>Überprüfen Sie die Durchgängigkeit des Katheters und spülen Sie den Katheter mit 0,3 mL heparinisierten Kochsalzlösung (100 Einheiten/mL). Hinweis: Venöses Blut spontan Rückflüsse in den Katheter.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Ende der Operation<ol>
<li>Überprüfen Sie nach 5 Minuten die Farbe der Darm und der peristaltischen Bewegungen, stellen Sie sicher, dass die mesenterialen Blutfluss aufrechterhalten wird.</li>
		<li>Schließen Sie die Bauchhöhle mit 3 Maschen: Wand-Peritoneum mit der inneren Schicht der Bauchwand Muskeln - eine kontinuierliche, resorbierbaren Naht; übrigen Muskeln der Bauchwand - eine kontinuierliche, resorbierbaren Naht; Haut und Unterhaut - einzelne, nicht resorbierbaren Fäden. Hinweis: Exteriorize den distalen Teil des Katheters um den Nabel herum.</li>
	</ol>
</li>
</ol>(4) Pfortader Blood Sampling
<ol><li>Probe Pfortader Blut zeitweise nach dem spezifischen Test-Protokoll verwendet; siehe Tabelle 1.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Kurzes Protokoll</td>
			<td>Langen Protokoll</td>
		</tr>
<tr>
<td>t0 -Basislinie (vor Intracolonic)</td>
			<td>t0 -Basislinie (vor Intracolonic)</td>
		</tr>
<tr>
<td>t1 – 5 Minuten nach der Verabreichung von intracolonic</td>
			<td>t1 – 30 min nach Intracolonic Verwaltung</td>
		</tr>
<tr>
<td>t2 – 30 min. nach der Verabreichung von intracolonic</td>
			<td>t2 – 60 min nach der Verabreichung von intracolonic</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabelle 1: Portal Blut Probenahme Protokolle für Darm Durchlässigkeit Bewertung.
Hinweis: Die Zeit zwischen aufeinanderfolgenden Blutabnahme richtet sich vor allem auf die Bioverfügbarkeit der untersuchten Substanzen und der Ort der Verwaltung (Darm, Magen usw.).
<ol start="2"><li>Öffnen Sie den Portal Katheter-Stecker und lassen Sie den Blutfluss frei.</li>
	<li>Verwendung Spritze (Vol. 2 mL) und stumpfe Nadel OD: 0,9 mm. Max. 0,7 mL Blut sammeln.</li>
	<li>Spülen Sie den Katheter mit 0,3 mL heparinisierten Kochsalzlösung (100 Einheiten/mL) und schließen Sie den Katheter-Stecker.</li>
</ol>(5) minderwertige Vena Cava Blutabnahme
<ol><li>Probe minderwertige Vena Cava Blut zeitweise nach dem spezifischen Test-Protokoll verwendet; siehe Tabelle 2.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Pfortader</td>
			<td>Minderwertige Vena cava</td>
		</tr>
<tr>
<td>t0 -Basislinie (vor Intracolonic)</td>
			<td>t0 -Basislinie (vor Intracolonic)</td>
		</tr>
<tr>
<td>t1 – 30 min nach Intracolonic Verwaltung</td>
			<td>t1 – 30 min nach Intracolonic Verwaltung</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabelle 2: Protokoll des Blutes Probenahme für Leber Freimessung und Verfolgung des Darm-Portal Blut-Leber-systemische Blut Weges.
<ol start="2"><li>Öffnen des minderwertigen Vena Cava-Katheter-Steckers und den Blutfluss frei lassen.</li>
	<li>Sammeln Sie nicht mehr als 0,7 mL Blut mit Spritze (Vol. 2 mL) und gebrochene Nadel OD: 0,9 mm.</li>
	<li>Spülen Sie den Katheter mit 0,2-0,3 mL heparinisierten Kochsalzlösung (100 Einheiten/mL) und schließen Sie den Katheter-Stecker.</li>
</ol>6. Verwaltung der Darm Durchlässigkeit Marker
<ol><li>Entfernen Sie den Führungsdraht und Pumpen Sie den Kolon Katheter Ballon, mit ausreichend Volumen von sterilem Wasser (in der Regel 1 mL aber tatsächliche ballongröße Check vor dem einsetzen). Hinweis: Der ballondurchmesser sollte 1 cm nicht überschreiten.</li>
	<li>Legen Sie die Ratte-Kopf nach unten (etwa 15 % Neigung) zur Minimierung des Risikos des Abflusses der verabreichten Lösung aus dem Dickdarm.</li>
	<li>Die getestete Substanz langsam zu verwalten (z. B. Trimethylamin, 100 mg/kg bw) mit einem Abfluss Anschluss im Kolon Katheter. Hinweis: Überschreiten Sie nicht die Lautstärke von 0,75 mL der Lösung verabreicht und die Zuführgeschwindigkeit von 0,5 mL/min, den Abfluss der verabreichten Lösung aus dem Anus zu verhindern.</li>
	<li>Nach 10 min entlüften des Katheter Ballons.</li>
	<li>Probe des Blutes von der minderwertigen Vena Cava und die Pfortader nach dem spezifischen Test-Protokoll verwendet; siehe Tabelle 1 und Tabelle 2.</li>
	<li>Einschläfern Sie Tier über anerkannte Methode.</li>
</ol>7. Berechnung der Leber Clearance
<ol><li>Leber-Clearance, verstanden als hepatische Extraktion durch die Differenz zwischen Portal Blut-Konzentration und minderwertige Vena Cava Konzentration im Blut oder durch das Verhältnis der unteren Hohlvene Portal Blut Konzentration, (1 - (minderwertige Vena Cava Konzentration Express / Pfortader Konzentration)).</li>
</ol>8. Bewertung der Substanz Konzentration n Blut Prüflinge
<ol><li>Abhängig von der Prüfsubstanz und Testmethodik vorbehaltlich der Probenmaterials entsprechenden Laborverfahren (Zentrifugation, etc.). In der vorgeschlagenen Protokolle bewerten wir TMA/TMAO und SCFA Konzentration mit Flüssigkeitschromatographie gekoppelt mit Triple-Quadrupol-Massenspektrometrie. Finden Sie eine ausführliche Beschreibung der Methode im Zusatzmaterial.</li>
</ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Die beschriebenen direkten, in Vivo, Methode zur Messung der GBB Durchlässigkeit unterhält Closetophysiological Bedingungen im Magen-Darm-System (schützt den Darm Blutfluss), und ist nahezu unbeeinflusst von Leber-und Nierenfunktion.
Der entscheidende Schritt dieser Technik ist die Einfügung des Portals Katheters. Dies muss sanft und entschlossen zur gleichen Zeit erfolgen. Eine leichte, kurze Blutungen auftreten von der korrekt durchgeführte Punktion der portalader; jedoch stoppt es,...

Die Darm-Blut-Schranke (GBB), auch bekannt als die Darmbarriere, ist ein komplexes multilayer-System, das das Darm Lumen aus dem Blutkreislauf trennt, um den Durchgang von schädlichen Verbindungen zu begrenzen, wobei die Absorption von Nährstoffen1. Es besteht aus den drei Hauptschichten: die Schleimschicht, Epithel und Lamina Propria.
Zahlreiche Faktoren können die GBB Integrität und Funktion2auswirken. Es hat sich gezeigt, dass GBB gestört ist, im Magen-Darm- und intestinalem Krankheiten, einschließlich Herz-Kreislauf-und Stoffwechselerkrankungen3, was zu einer erhöhten Passage der Darm bakteriellen Stoffwechselprodukte an die Blutbahn4führen kann. Eine erhöhte Durchdringung der Darm bakteriellen Stoffwechselprodukte beeinträchtigen die Funktion des gesamten Organismus. Zum Beispiel, zeigen neuere Studien einen signifikanten Einfluss von bakteriellen Stoffwechselprodukten wie indole, H2S, Kurzkettige Fettsäuren (SCFA) und Trimethylamin-N-oxid, auf das Herz-Kreislauf-System Funktionen5,6,7 ,8,9. Schließlich wurde es vorgeschlagen, dass ein erhöhter Durchlässigkeit der GBB als Marker für Herz-Kreislauf-und Stoffwechselerkrankungen dienen kann, die morphologische und funktionelle Veränderungen in den Darm10zugeordnet sind. Daher möglicherweise verfolgen die Darm-Portal Blut-Leber-systemische Blut weg von bakteriellen Stoffwechselprodukten von Interesse für die Grundlagenforschung und klinische Wissenschaften.
Häufig verwendete experimentelle Methoden zur Bewertung der GBB Durchlässigkeit sind durchgeführten in-vitro- mit reseziertem Darm Segmenten, Fragmente von Schleimhaut oder künstliche Membranen11,12. Die Genauigkeit dieser Methoden ist durch die Tatsache beeinträchtigt, Funktionsfähigkeit der GBB verlangt ständige Darm Blutfluss. Erhältlich in-Vivo -Methoden basieren auf der anderen Seite auf die Bewertung des Urins oder peripherem Blutkonzentrationen von exogenen Marker13. Allerdings peripheren Blut und Urin-Konzentration von exogenen Verbindungen von Nierenfunktion, d. h. die glomeruläre Filtrationsrate und tubuläre Ausscheidung sowie von LEBERSTOFFWECHSEL beeinflusst wird, d.h., first-pass Metabolismus. Beide Parameter können zwischen Probanden unabhängig von der GBB-Funktion erheblich abweichen.
Dieses Whitepaper beschreibt ein direktes Maß für die GBB Durchlässigkeit in Ratten mit Portal Blutabnahme. Diese in-Vivo -Methode schont den Darm Blutfluss und nahezu unbeeinflusst von Leber-und Nierenfunktion. Die beschriebene Vorgehensweise ist nicht, möglicherweise aufgrund methodischen Schwierigkeiten verbreitet. Wir beschreiben ausführlich die Katheterisierung der Pfortader und der unteren Hohlvene oberhalb des Zusammenflusses Lebervene. Blutentnahme aus der Pfortader und minderwertige Vena Cava ermöglicht die Bewertung der GBB Durchlässigkeit und Leber Clearance sowie Verfolgung von Darm-Portal Blut-Leber-systemische Blut weg von Molekülen von Interesse, wie Darm bakteriellen Stoffwechselprodukte oder Medikamente. Wir präsentieren auch mehrere Anwendungen der Methode, die in unserem Labor getestet wurden. Dazu gehören die Bewertung der Doppelpunkt Durchlässigkeit für TMA, ein Darm bakterielle Stoffwechselprodukt, Beurteilung der Leber Clearance von TMA und Evaluierung eines Blut-Leber-systemische Blut Darm-Portal-Pfades der SCFA.
Um Darm-Blut-Schranke Permeabilität zu bewerten, Protokoll folgendermaßen befolgt werden in der Reihenfolge: 1 (Einfügung der Linie für intraintestinal Verwaltungen), 3 (Pfortader Katheterisierung), 4 (Pfortader Blutabnahme ), 6 (Verwaltung der Darm Durchlässigkeit Marker), 4.
Zur Bewertung von Leber-Clearance und einen Darm-Portal Blut-Leber-systemische Blut Weg Protokoll folgendermaßen befolgt werden in der Reihenfolge: 1 (Einfügung der Linie für intraintestinal Verwaltungen), 2 (minderwertige Vena Cava Katheterisierung), 3 (Pfortader Katheterisierung), 4 (Pfortader Blutabnahme), 5 (minderwertige Vena Cava Blutabnahme), 6 (Verwaltung der Darm Durchlässigkeit Marker), 4, 5, 7 ( Berechnung der Leber Clearance).

<table><tbody><tr><td>Nadel-AD: 9 mm</td><td>Becton Dickinson&nbsp; S.A.</td><td>301300</td><td></td></tr><tr><td>Polyethylen-Katheter ID: 0.025", OD: 0.040"&nbsp;</td><td>Wissenschaftliche Rohstoffe, Inc.</td><td>#BB520-40</td><td></td></tr><tr><td>Polyethylen-Katheter ID: 0,012", OD: 0,025" &nbsp;</td><td>Wissenschaftliche Rohstoffe, Inc.</td><td>#BB520-25</td><td></td></tr><tr><td>C-Flex Schlauch, undurchsichtig weiß 1/50" ID x 1/12" OD&nbsp; &nbsp;</td><td>Cole-Parmer Instrument Co.</td><td>06424-59</td><td></td></tr><tr><td>Foley-Katheter für Kinder (Größe 10F oder 8F)</td><td>Sigmed</td><td>0000 80305</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Ligaturen 3/0</td><td>Yavo Sp. z o.o.&nbsp;</td><td>P48JE</td><td></td></tr><tr><td>Resorbierbares chirurgisches Nahtmaterial - Polyglactin 910 4/0</td><td>KRUUSE Polska Sp. Zo.o.</td><td></td><td></td>152336</tr><tr><td>Gewebekleber - Loctite 454Cyanacrylat-Klebstoff</td><td>Loctite&nbsp;</td><td></td><td></td>1370127</tr><tr><td>Povidon-Jod</td><td>EGIS Pharmaceuticals PLC</td><td>4449 11</td><td></td></tr><tr><td>Heparin - Heparinium WZF&nbsp;</td><td>WZF Polfa S.A.</td><td>02BK0417</td><td>10-mal verdünnt mit physiologischer Kochsalzlösung</td></tr><tr><td>Glycerin 86%</td><td>Laboratorium Farmaceutyczne Avena</td><td>5.90999E+12</td><td>Dient als Gleitmittel bei der Dickdarmkatheterisierung</td></tr><tr><td>Xylocain 2%</td><td>AstraZenca&nbsp;</td><td></td><td></td>9941342</tr><tr><td>Urethan</td><td>Sigma-Aldrich (Merck)&nbsp;</td><td>U2500-500G</td><td></td></tr><tr><td>Trimethylaminlösung 45%</td><td>Sigma-Aldrich (Merck)&nbsp;</td><td>92262-1L</td><td></td></tr><tr><td>Spritzen 2 mL</td><td>B.Braun Melsungen AG</td><td>4606027V</td><td></td></tr><tr><td>Kochsalzlösung 250 mL</td><td>Fraesenius Kabi Polska Sp. z o.o.</td><td>15LL707WL</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Schere, gerade, Länge 115 mm, 4 1/2" stumpfe Enden</td><td>Braun</td><td>NS-010-115-PKM</td><td></td></tr><tr><td>Arterienzange Typ Micro-Adson gebogen, Länge 140 mm 5 1/2</td>" <td>Braun</td><td>KN-008-140-ZMK</td><td></td></tr><tr><td>Anatomische Pinzette, Länge 95 mm, 3 3/4" scharf 0,7x0,55</td><td>Braun</td><td>PO-001-007-ZMK</td><td></td></tr><tr><td>Mikroschere Typ Vannas,&nbsp; gerade, Länge 85 mm, 3 3/8 " die Länge der Klingen 6 mm</td><td>Braun&nbsp;</td><td>NO-010-085-PMK</td><td></td></tr><tr><td>Handtuchklemmen Typ Backhouse, Länge 130 mm, 5 1/8" &nbsp;</td><td>Braun</td><td>HO-128-130-PMK</td><td></td></tr><tr><td>Nadelhalter, Länge 150 mm, 6" t=0,4 1/2&nbsp;</td><td>Braun&nbsp;</td><td>IM-927-150-PZMK</td><td></td></tr><tr><td>Filigrane Schere, Länge 110 mm, gerade, 4 3/8" scharf&nbsp;</td><td>Braun</td><td>NO-052-110-PMK</td><td></td></tr><tr><td>Anatomische Pinzette, Länge 95 mm, 3 3/4" scharf</td><td>Braun</td><td>PO-022-001-PMK</td><td></td></tr></tbody></table>

eine in vivo -methode zur bewertung der darm-blut-schranke und leberstoffwechsel mikrobiota produkte

An In Vivo Method for Evaluating the Gut-Blood Barrier and Liver Metabolism of Microbiota Products

Die Darm-Blut-Schranke (GBB) steuert den Übergang der Nährstoffe, bakteriellen Stoffwechselprodukte und Drogen vom Darmlumen in den Blutstrom. GBB-Integrität ist bei Magen-Darm-, Herz-Kreislauf- und Stoffwechsel-Erkrankungen, gestört, was zu leichteren Zugang von biologisch aktiven Verbindungen, z. B. Darm bakteriellen Stoffwechselprodukten, in den Blutkreislauf führen kann. So kann die Durchlässigkeit der GBB ein Marker für Darm- und intestinalem Krankheiten sein. Darüber hinaus kann die erhöhte Penetration von bakteriellen Stoffwechselprodukte beeinflussen das Funktionieren des gesamten Organismus.
Häufig verwendete Methoden zur Untersuchung der GBB Durchlässigkeit sind durchgeführten ex Vivo. Die Genauigkeit dieser Methoden ist begrenzt, da die Funktionsweise der GBB Darm Durchblutung abhängt. Auf der anderen Seite häufig verwendete in-Vivo -Methoden können voreingenommen durch Leber und Niere Leistung, da diese Methoden auf der Bewertung des Urins basieren oder / und peripherem Blutkonzentrationen von exogenen Marker. Hier präsentieren wir Ihnen eine direkte Messung der GBB Durchlässigkeit bei Ratten mit einer in-Vivo -Methode basierend auf Portal Blut Probenahme, das intestinale Blutfluss bewahrt und ist praktisch nicht von der Leber und Niere Funktion betroffen.
Polyurethan-Katheter in der Pfortader eingefügt und unteren Hohlvene oberhalb der Leber Venen Zusammenfluss. Blut wird an der Basislinie und nach der Verabreichung eines ausgewählten Marker in einen gewünschten Teil des Magen-Darm-Trakt aufgenommen. Hier präsentieren wir Ihnen mehrere Anwendungen der Methode (1) Bewertung der Doppelpunkt Durchlässigkeit für TMA, ein Darm bakterielle Stoffwechselprodukt, (2) Beurteilung der Leber Clearance von TMA und (3) Bewertung der ein Darm-Portal Blut-Leber-peripheren Blut Weg, Darm Bakterien stammenden kurzkettigen Fettsäuren. Das Protokoll kann darüber hinaus auch für die Verfolgung von intestinale Resorption und LEBERSTOFFWECHSEL von Medikamenten oder für Messungen des Blutdrucks Portal verwendet werden.

Wir haben erfolgreich die GBB Durchlässigkeit und Leber Clearance von TMA bei Ratten gemessen. Wir haben gezeigt, dass Hypertensive Ratten ein erhöhtes Doppelpunkt Durchlässigkeit für TMA im Vergleich zu normotonen Ratten (Abbildung 2)4. In einer anderen Studie fanden wir, dass hohe salzeinlaß die GBB Durchlässigkeit und Leber Clearance von TMA (Abbildung 3)14nicht beeinflusst.
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Der Zugang von Nährstoffen, Mikrobiota Metaboliten und Arzneimitteln für den Verkehr wird durch die Darm-Blut-Schranke (GBB) gesteuert. Wir beschreiben eine direkte Methode zur Messung der GBB Durchlässigkeit in Vivo, die im Gegensatz zu gängigen indirekte Methoden praktisch nicht von Leber und Niere Funktionen betroffen ist.

Eine In Vivo -Methode zur Bewertung der Darm-Blut-Schranke und LEBERSTOFFWECHSEL Mikrobiota Produkte

The gut-blood barrier (GBB) controls the passage of nutrients, bacterial metabolites and drugs from intestinal lumen to the bloodstream. The GBB integrity ...

Die Darm-Blut-Barriere ist ein mehrschichtiges System, das den Durchgang von Nährstoffen, bakteriellen Metaboliten, Medikamenten und anderen exogenen Verbindungen vom Darmlumen in den Blutkreislauf steuert. Wie wir wissen, kann die Integrität der Barriere sowohl im Magen-Darm-Bereich als auch bei Herz-Kreislauf- und einigen Stoffwechselerkrankungen beeinträchtigt werden, was zu einem leichteren Zugang biologisch aktiver Verbindungen wie Darmbakterienmetaboliten in den Blutkreislauf führen und die Funktion des gesamten Organismus beeinträchtigen kann. Daher kann die Durchlässigkeit der Darm-Blut-Barriere ein Marker für Darm- und Extradarmerkrankungen sein.In diesem Video stellen wir eine direkte Messung der Darm-Blut-Barriere-Permeabilität bei Ratten mit Portal-Blutentnahme nach Verabreichung einer Testsubstanz in den Verdauungstrakt. Wir beschreiben detailliert die Kategorisierung der Portalvene und der minderwertigen Vena cava knapp über dem Lebervenenzusammenfluss. Blutentnahme aus Portalvene und minderwertige Vena cava ermöglicht nicht nur die Darm-Blut-Barriere Durchlässigkeit zu bewerten, sondern auch eine Leber-Clearance und Absorptionsweg von Molekülen von Interesse wie Darm

an-vivo-method-for-evaluating-gut-blood-barrier-liver-metabolism

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Postoperativen Ileus (POI) ist eine Komplikation der Bauchchirurgie führt zu einer erhöhten Morbidität und einen längeren Krankenhausaufenthalt. Da prophylaktische oder therapeutische Strategien fehlen verstärkte Forschung notwendig ist. Deshalb haben wir eine standardisierte und machbar Mausmodell, um die Pathophysiologie von POI zu untersuchen und mögliche therapeutische Optionen zu studieren.

Functional Assessment of Darmmotilität und Darmwand Entzündung in Nagetiere: Analysen in einem standardisierten Modell der intestinalen Manipulation

Quelle: Calatayud Arroyo, M., et al. Bewertung der Lebensfähigkeit eines synthetischen bakteriellen Konsortiums an der in-vitro-Darm-Wirt-Mikroben-Schnittstelle. J. Vis. Exp. (2018).Dieses Video demonstriert ein in-vitro-Darm-Host-Mikroben-Modell zur Untersuchung der bakteriellen Lebensfähigkeit. Eine Kokultur von Caco-2- und HT29-MTX-Zellen wird mit Bakterien inkubiert, die unter simulierten Verdauungsbedingungen vorbehandelt wurden. Die Integrität der Epithelbarriere wird mit...

In-vitro-Darmmodell zur Bewertung bakterieller Adhäsion und Internalisierung

Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung von exzidierten Darmgewebepräparaten oder "Darmsäcken" als ex vivo Modell der Darmbarrierefunktion. Dieses Modell kann verwendet werden, um die Integrität sowohl der Epithelbarriere als auch der Schleimhautgelschicht an spezifischen Darmstellen in Tiermodellen für Verdauungserkrankungen zu beurteilen.

Ex vivo-Darm-Sacs zu beurteilen Durchlässigkeit der Schleimhaut in Modelle von Magen-Darm-Krankheit

Zwei Methoden werden hier vorgestellt, um intestinale Barrierefunktion zu bestimmen. Eine epitheliale Meter (Volt/Ohm) dient zur Messung des elektrischen Widerstands berührt der kultivierten Epithelien direkt in Gewebekultur Brunnen. Bei Mäusen ist die FITC-Dextran-Magensonde-Methode zur Ermittlung der intestinalen Permeabilität in Vivo.

In Vitro und In Vivo Ansätze Darm Epithelzelle Durchlässigkeit zu bestimmen

Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll für die Kultivierung der Darm Microbiota des Dickdarms in-vitro-, mit einer Reihe von Bioreaktoren, die die physiologischen Bedingungen des Magen-Darm-Trakt zu simulieren.

In-vitro-Kultivierung von Technologie, um den menschlichen Darm Microbiota studieren fortgeschrittene Anwendung

Wir haben ein mikrophysiologisches System (MPS) mit Darm- und Leberorganoiden Acetaminophen (APAP) ausgesetzt. Dieser Artikel beschreibt die Methoden für die Organoidproduktion und APAP pharmakokinetische und toxikologische Eigenschaftenbewertungen im MPS. Es beschreibt auch die Gewebefunktionsanalysen, die notwendig sind, um die Ergebnisse zu validieren.

Ein Mikrophysiologisches System für die pharmakokinetische und toxikologische Beurteilung von Arzneimitteln/Leber

Unter Ausnutzung der intravitalen Mikroskopie ermöglicht die hier vorgestellte Methode die Echtzeit-Visualisierung des Darmepithelzellvergießens bei lebenden Tieren. Daher wird topisch gefärbte Darmschleimhaut (Acriflavine und RhodamineB-Dextran) von anästhesierten Mäusen bis zur einzelzelligen Auflösung mittels konfokaler Mikroskopie abgebildet.

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Dysregulierte intestinale epitheliale Barrierefunktion und Immunantworten sind Kennzeichen entzündlicher Darmerkrankungen, die aufgrund fehlender physiologischer Modelle noch schlecht untersucht sind. Hier beschreiben wir ein Maus-Darmschleifenmodell, das ein gut vaskularisiertes und exteriorisiertes Darmsegment verwendet, um die Schleimhautpermeabilität und die Leukozytenrekrutierung in vivo zu untersuchen.

Funktionelle Beurteilung der Intestinalpermeabilität und der neutrophilen transepithelialen Migration bei Mäusen mit einem standardisierten Darmschleifenmodell

Dieser Artikel stellt eine einzigartige Methode zur Analyse von Wirt-Mikrobiom-Interaktionen unter Verwendung eines neuartigen Darmorgankultursystems für Ex-vivo-Experimente vor.

Ein intestinales Darmorgankultursystem zur Analyse von Wirt-Mikrobiota-Interaktionen

In der vorliegenden Studie wird Fluorescein-Isothiocyanat-markiertes (FITC) Dextran Mäusen über eine orale Sonde verabreicht, um die Darmpermeabilität sowohl in vivo als auch in Plasma- und Kotproben zu bewerten. Da die Barrierefunktion des Darms bei vielen Krankheitsprozessen beeinträchtigt ist, kann dieser direkte und quantitative Assay in verschiedenen Forschungsbereichen eingesetzt werden.

Beurteilung der Integrität der Darmbarriere bei Mäusen unter Verwendung von Fluorescein-Isothiocyanat-markiertem Dextran

Erfahren Sie eine direkte Methode zur Bewertung der Darm-Blut-Schranke bei Ratten mittels Portalblutentnahme. Diese Technik ermöglicht präzise Messungen der Permeabilität und hepatischen Clearance.

Eine In Vivo -Methode zur Bewertung der Darm-Blut-Schranke und LEBERSTOFFWECHSEL Mikrobiota Produkte

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