Name: Vene subclavia Punktion als eine Alternative Methode zur Probe Blutentnahme bei Ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 42 s
Description: Erfahren Sie die subklavikuläre Venenpunktion als alternative Blutentnahmemethode bei Ratten. Diese Technik ermöglicht zuverlässige Probengewinnung mit minimalem Stress und verbessert das Tierwohl in der Forschung.

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Keiner erklärt.

Diese Studie wurde von der zentralen Ethikkommission South University für Animal Research aus dem zweiten Xiangya Krankenhaus (Changsha, China) genehmigt. Das Manuskript wurde nach Ankunft vorbereitet (Animal Research: Berichterstattung von In Vivo Experimente) Leitlinien-9.
1. Material und Tier Vorbereitung
<ol><li>Benötigte Materialien vorbereiten: Klebeband, Epilieren Agent, 75 % Ethanol, Blutsammelröhrchen, 2,5 mL Spritze mit Nadel (24 G, 0,6 x 25 mm), Haar Rasierer, elektronische Waage und Messgerät (siehe Tabelle der Materialien) verbunden.</li>
	<li>Verwenden Sie 20 Sprague-Dawley (SD) Ratten, im Alter von 8 bis 10 Wochen und einem Gewicht von 153-200 g (siehe Tabelle der Materialien). Pflegen Sie gemäß dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren10Ratten.</li>
	<li>Haus Ratten unter Standardbedingungen mit freiem Zugang zu Nahrungsmitteln und Trinkwasser. Halten sie in 530 cm2 Käfige mit Holz-Rasur-Bettwäsche (2 Ratten pro Käfig). Halten Sie Tiere in einer temperaturgesteuerten Raumtemperatur bei etwa 25 ° C.</li>
	<li>Induzieren Vollnarkose (Natrium-Pentobarbital 40 mg/kg) bei allen Tieren durch intraperitoneale Injektion vor der Vene subclavia Punktion.</li>
	<li>Legen Sie die Ratte in Rückenlage. Befestigen Sie den hinteren Gliedmaßen in einer bequemen Position und befestigen Sie der oberen Extremität parallel zur Körperachse direkt neben dem Stamm. Hinweis: Keine mechanische Lüftung benötigt für dieses Verfahren (Abbildung 1).</li>
	<li>Reinigen Sie beide Seiten des Raumes Infraclavicular Fell entfernen (mit Haar Rasierer und Epilieren Agent, siehe Tabelle of Materials) und sichtbaren Schmutz. Wischen Sie den Hals und thorakalen Haut mit 75 % Ethanol. Halten Sie den Bereich für die Punktion, sauber und trocken mit Gaze.</li>
</ol>2. Blut Inkasso
Hinweis: Beide Seiten der subclavia Ader eignen sich für Punktion und hier wählen wir die Rechte Seite für Punktion. Die Lage und Richtung des rechten Schlüsselbeins werden durch die Betreiber linken Daumen (Abbildung 2) identifiziert. Suprasternal Gruben sind sanft mit dem Zeigefinger berührt, als die Suprasternal Gruben geht in die Richtung der Nadel (Abbildung 2).
<ol><li>Spülen einer sterilen 2,5 mL Spritze mit Heparin-Lösung (10 IU/mL).</li>
	<li>Suchen Sie die Punktionsstelle 0,5 mm kaudalen zur äußeren Umgebung: 1/3 des rechten Schlüsselbeins (Abbildung 3). Verschieben Sie die Spritze sanft in die Haut an der Einstichstelle. Sobald die Nadel die Haut Infraclavicular tritt, gelten Sie Unterdruck mit Rechten des Betreibers (Abbildung 4). Hinweis: Die durchschnittliche und maximale Blutvolumen sind 1,0 mL 1,4 mL bzw.. Die Richtung der Nadel sollte befindet sich in Richtung der Suprasternal Gruben und fast parallel zum Schlüsselbein nur hintere darauf. In der Regel kann der subclavia Vene erreicht werden, durch die Nadel ca. 2 mm in diese Richtung. Sobald die Nadel die Vene gelangt, wird Blut die Spritze Unterdruck.<ol>
<li>Unterdruck bis genügend Volumen des Bluts gezeichnet wird (Abbildung 5).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Wenn die Blutentnahme subclavia Vene nicht erfolgreich ist, ziehen Sie die Nadel heraus zum subkutanen Bereich und passen Sie die Richtung der Nadel leicht innen auf dem Brustbein.<ol>
<li>Wenn drei Versuche fehlschlagen, vermeiden die subclavia Vene von der gleichen Seite und verwenden der kontralateralen Seite für die Blutabnahme.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Entfernen Sie nach der Blutentnahme die Punktionsnadel, und üben Sie Druck auf die Punktionsstelle für 1-2 Minuten, um Blutungen zu stoppen. Hinweis: Der Druck muss sehr sanft zu ersticken zu verhindern.</li>
</ol>3. Blut Probe Verarbeitung
<ol><li>Übertragen Sie die Blutprobe in ein Antikoagulans-beschichtetem Vakuumröhre (mit EDTA) und Zentrifuge für 10 min bei 1600 X g Plasma zu sammeln.</li>
	<li>Aspirieren des Überstands in ein sauberes Röhrchen und Store bei-80 ° C (Abbildung 6).</li>
</ol>

<ol><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology%2C+Pharmacotherapeutics%22%5BJournal%5D)">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).</li>
<li>Korfmacher, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utility+of+capillary+microsampling+for+rat+pharmacokinetic+studies%3A+Comparison+of+tail-vein+bleed+to+jugular+vein+cannula+sampling%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacological+and+Toxicological+Methods%22%5BJournal%5D)">Utility of capillary microsampling for rat pharmacokinetic studies: Comparison of tail-vein bleed to jugular vein cannula sampling.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 76, 7-14 (2015).</li>
<li>Feng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+the+carotid+artery+and+jugular+vein+to+perform+hemodynamic+measures%2C+infusions+and+blood+sampling+in+a+conscious+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model.</a> Journal of Visualized Experiments. (95), (2015).</li>
<li>Wickremsinhe, E. R., Renninger, M., Paulman, A., Pritt, M., Schultze, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+Repeated+Tail+Clip+and+Saphenous+Vein+Phlebotomy+on+Rats+Used+in+Toxicology+Studies%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicologic+Pathology%22%5BJournal%5D)">Impact of Repeated Tail Clip and Saphenous Vein Phlebotomy on Rats Used in Toxicology Studies.</a> Toxicologic Pathology. 44 (7), 1013-1020 (2016).</li>
<li>Takahashi, M., Makino, S., Kikkawa, T., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+rat+serum+suitable+for+mammalian+whole+embryo+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Preparation of rat serum suitable for mammalian whole embryo culture.</a> Journal of Visualized Experiments. (90), e51969(2014).</li>
<li>Cochran, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+Glucose+Metabolism+Kinetics+Using+18F-FDG+Micro-PET%2FCT%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT.</a> Journal of Visualized Experiments. (123), (2017).</li>
<li>Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drawing+blood+from+rats+through+the+saphenous+vein+and+by+cardiac+puncture%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Drawing blood from rats through the saphenous vein and by cardiac puncture.</a> Journal of Visualized Experiments. (7), 266(2007).</li>
<li>Zou, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+Blood+Collection+from+Tail+Vein+of+Non-Anesthetized+Rats+with+a+Vacuum+Blood+Collection+System%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System.</a> Journal of Visualized Experiments. (130), (2017).</li>
<li>Kilkenny, C., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+bioscience+research+reporting%3A+ARRIVE-ing+at+a+solution%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution.</a> Lab Animal. 44 (4), 377-378 (2010).</li>
<li>National Institute of Health. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , 8th, National Academies Press (US). US (Washington DC). (2011).</li>
<li>Antonelli, D., Feldman, A., Freedberg, N. A., Turgeman, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axillary+vein+puncture+without+contrast+venography+for+pacemaker+and+defibrillator+leads+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22Pacing+and+Clinical+Electrophysiology%22%5BJournal%5D)">Axillary vein puncture without contrast venography for pacemaker and defibrillator leads implantation.</a> Pacing and Clinical Electrophysiology. 36 (9), 1107-1110 (2013).</li>
<li>Luis, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+magnetic+resonance+imaging+of+the+thoracic+venous+system+in+rats+with+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Surgery+International%22%5BJournal%5D)">Microscopic magnetic resonance imaging of the thoracic venous system in rats with congenital diaphragmatic hernia.</a> Pediatric Surgery International. 27 (2), 175-180 (2011).</li>
<li>Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vital+signs+monitoring+during+injectable+and+inhalant+anesthesia+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Animals%22%5BJournal%5D)">Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice.</a> Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).</li>
</ol>

Diese Arbeit wurde durch den Zuschuss aus dem National Natural Science Foundation von China Nr. 81670269, Nr. 81500355 und Nr. 81500226 unterstützt.

Hier stellen wir eine alternative Methode für die Extraktion von Blut aus der Vene subclavia und wir zeigen, dass diese Methode möglich, sichere und anwendbar für die Blutentnahme bei Ratten. Diese Methode wird von der subclavia Vene Punktion im Herzschrittmacher Blei Implantation für Patienten11abgeleitet. Die subclavia Vene liegt nur posterior und kaudalen, das Schlüsselbein und ist eine Fortsetzung der axillären Ader. Er verläuft von der äußeren Grenze der ersten Rippe auf den medialen Rand des...

Blutentnahme ist in Tierversuchen unerlässlich. Die Ziel-Adern für die Blutentnahme gehören die Retro-Orbital-Plexus, die Halsschlagader der Stammvenen, Tail Blutgefäße und die Halsschlagader1,2,3,4. Manchmal könnte Blut der abdominalen Aorta, Vena Cava oder sogar das Herz5,6,7entnommen werden. Bei solchen Gelegenheiten die Tiere geopfert werden müssen und nicht für nachfolgende Beobachtung verwendet werden; so, mit diesen Methoden sind weniger in der täglichen experimentelle Arbeit. Blutentnahme aus der Vene Schweif von Ratten ist beliebt und weniger Stress im Vergleich zu den oben genannten Methoden8.
Blutentnahme aus der Vene Schweif ist jedoch manchmal durch eine unbefriedigende Erfolgsquote begrenzt. Gelegentlich ist es auch schwierig, genügend Blutvolumen von dieser Methode zu erhalten. Die subclavia Vene ist groß genug und befindet sich direkt unter dem Schlüsselbein-Knochen, läßt Vene subclavia Punktion sich eine alternative Methode für das um Blut zu probieren, wenn routinemäßige Blut Erhebungsmethoden nicht erfolgreich sind. Hier stellen wir eine Methode der Blutentnahme mittels Vene subclavia Punktion bei Ratten.

<table><tbody><tr><td>Ratten</td><td>Hunan SJA Laboratory Animal Co., Ltd (Changsha, Provinz Hunan, China) &nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Statische Software</td><td>SPSS Statistics 17</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Epiliermittel</td><td>Frankreich Yi Sha Cosmetics Co., Ltd (Guangzhou, Provinz Guangdong, China)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>2,5 ml Spritze</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd (Weihai, Provinz Shandong, China)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Haarrasierer</td><td>Shanghai FLYCO Electric Co., Ltd (Shanghai, China)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Klebeband</td><td>3M Deutschland GmbH (EdisonstraBe 6,59157 Kamen, Deutschland)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital-Natrium</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>75% Ethanol</td><td>Abteilung für Pharmazie, Das zweite Xiangya Krankenhaus der Central South University</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Blutentnahmetube</td><td>Hubei Jinxing Technologie & Development Co., Ltd (Wuhan Hubei Province, China) (2ml)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>elektronische Waage</td><td>Dongguan Shengheng Electronics Co., Ltd (Dongguan, Guangdng Province, China)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Canvas Handschuhe</td><td>für Anästhesie</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hepain</td><td>Nanjing Xinbai Pharmaceutical &nbsp; Co., Limited (Nanjing, Provinz Jiangsu, China) (2mL, 12500 IE)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>physikalische Kochsalzlösung</td><td>Hunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd (Yueyang, Provinz Hunan, China) (100ml)</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

vene subclavia punktion als eine alternative methode zur probe blutentnahme bei ratten

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

Blutentnahme mit genügend Blutvolumen ist unerlässlich im Tierversuch. Blutentnahme aus der Vene Schweif von Ratten ist beliebt und weniger Stress im Vergleich zu anderen aggressiveren Methoden wie Retro-Orbital Plexus Kollektion probieren. Allerdings ist dieses Blut Erfassungsmethode manchmal durch eine unbefriedigende Erfolgsquote begrenzt. Hier stellen wir eine Methode für die Blutentnahme durch die Vene subclavia Punktion. Die subclavia Vene befindet sich direkt unter das Schlüsselbein und diese Ader ist groß genug, um das Volumen der Blutentnahme zu erfüllen. Unsere Ergebnisse zeigen, dass diese Methode sicher und anwendbar für Sammlung Blutabnahme mit der benötigten Blutvolumen. Blutentnahme durch die Vene subclavia Punktion könnte als eine alternative Blut Erfassungsmethode bei fehlgeschlagenen Schweif Vene Blut Stichproben bei Ratten dienen.

Insgesamt 20 SD-Ratten (männliche n = 10, weibliche n = 10) wurden hier verwendet. Blut Collectionwas durchgeführt, indem qualifizierte Betreiber, die mehr als 20 Blut Kostproben aus der subclavia Vene an Ratten durchgeführt haben und die Anfänger-Betreiber, die keine Vene subclavia Punktion haben Erfahrung in Ratten oder andere Tiere. Vor Operationen beobachtete Anfänger mindestens 3 Verfahren durch qualifiziertes Personal durchgeführt.
<p class="jove_content" fo:keep-together.within...

Hier präsentieren wir ein Protokoll, um Blutproben von der Ratte subclavia Vene zu sammeln.

Vene subclavia Punktion als eine Alternative Methode zur Probe Blutentnahme bei Ratten

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

Subklavische Venenpunktion als alternative Methode der Blutprobenentnahme bei Ratten. Nach vollnarkose, platzieren Ratten in Supine-Position und sterilisieren infraclavicularRaum mit 75%Ethanol. Identifizieren Sie überlegene sternale Fossa vor der Punktion.Suchen Sie die Punktionsstelle, kaudal zum äußeren Ein-Drittel-Bereich des Schlüsselbeins auf der gleichen Seite. Die Richtung der Nadel wurde in Richtung der überlegenen sternalen Fossa positioniert und sollte fast parallel zum Schlüsselbein, nur nachträvoll zu ihr. Nach der Blutentnahme die Punktionsstelle ein bis zwei Minuten lang drücken, um die Blutung zu stoppen.Bei Tierversuchen wird immer eine Blutentnahme mit ausreichender Menge benötigt. Blutentnahme von RattenSchwanz Vene ist beliebt und weniger stressig als einige aggressive Methoden wie Retro-Orbital Plexus Probenentnahme. Diese Methode wird jedoch durch die Erfolgsquote begrenzt.Hier stellen wir unsere Methode zur Blutentnahme mit gewünschtem Blutvolumen aus der subklavischen Vene vor. Unsere Ergebnisse zeigen, dass diese Methode sicher und praktisch ist, und könnte in Betracht gezogen werden, falls blutprobemäßige Blutentnahme aus der Schwanzvene fehlschlägt. Zum Start, bereiten Klebeband, Epiliermittel, 75%Ethanol, Blutentnahmeröhre, zwei Punkt Fünf-Milliliter-Spritze, Haarrasierer, elektronische Skala, Heparin, und physiologische Salzlösung.Hausratten unter normalen Bedingungen, mit freiem Zugang zu Nahrung und Trinkwasser, gehalten in 530 Quadratzentimeter Käfigen mit Holzrasierbetten. Induzieren Sie Die Vollnarkose bei allen Tieren durch intraperitoneale Injektion vor der Punktion. Legen Sie die Ratte in Supine-Position, fixieren Sie die Hinterbeine in einer bequemen Position, und fixieren Sie die oberen Gliedmaßen parallel zum Körper, direkt neben dem Rumpf.Reinigen Sie beide Seiten des infraclavicularen Raumes, um das Fell und sichtbaren Schmutz zu entfernen. Den Hals und die Brusthaut mit 75% Ethanol abwischen und den Bereich mit Gaze sauber und trocken halten. Beide Seiten der subklavischen Vene sind für die Punktion geeignet, und hier wählen wir die rechte Seite für die Punktion.Identifizieren Sie die Position und die Richtung des rechten Schlüsselbeins mit dem linken Daumen des Bedieners, und lokalisieren Sie die überlegene sternale Fossa sanft mit dem Zeigefinger. Spülen Sie unsere Spritze mit 10 Einheiten pro Milliliter Heparin-Lösung. Suchen Sie die Punktionsstelle, zeigen Sie fünf Millimeter kaudal auf den äußeren Bereich von einem Drittel des rechten Schlüsselbeins.Bewegen Sie die Spritze sanft in die Haut der Punktionsstelle. Sobald die Nadel in die infraclaviculare Haut gelangt, wenden Sie einen aktiven Druck durch die rechte Hand des Bedieners an. Die Richtung der Nadel ist in Richtung der überlegenen sternalen Fossa positioniert und sollte fast parallel zum Schlüsselbein, nur nachträvoll zu ihr.Normalerweise kann die subklavische Vene erreicht werden, indem die Nadel für etwa zwei Millimeter in diese Richtung eingesetzt wird. Sobald die Nadel in die Vene gelangt, gelangt blutgemäß unter einem aktiven Druck in die Spritze. Dann muss der aktive Druck aufrechterhalten werden, bis das richtige Blutvolumen gezogen ist.Entfernen Sie nach der Blutentnahme die Punktionsnadel, und drücken Sie die Punktionsstelle für ein bis zwei Minuten, um die Blutung zu stoppen. Achten Sie darauf: Der Druck muss sehr sanft sein, um Ersticken zu verhindern. Übertragen Sie die Blutprobe in ein antikoaguliertes Vakuumröhrchen mit EDTA und Zentrifuge bei 1600G für 10 Minuten, um Plasma zu sammeln.Aspirieren Sie das Überwinden, um Rohr wieder zu reinigen und bei minus 18 Grad Celsius zu lagern. Um die Erfolgsquote zwischen den fachkundigen Bedienern und den Anfängern zu vergleichen, wurden 20 SD-Ratten nach dem Zufallsprinzip in zwei Gruppen eingeteilt. Die Ergebnisse zeigen, dass durch die richtige subklavische Ader neun Ratten in der Fachgruppe und acht Ratten in der Anfängergruppe erfolgreich waren.Dann gelang die Blutentnahme der restlichen drei Ratten durch die linke Seite. Die Erfolgsquote hatte keinen signifikanten Unterschied zwischen diesen beiden Gruppen. Der Zeitverlauf war in diesen beiden Gruppen etwas anders.Während oder nach der Operation traten keine schwerwiegenden Komplikationen wie Pneumothorax, Hämopneumothorax und Blutungen auf. Alle Tiere überlebten nach der Blutentnahme. Um die Schwierigkeiten beim Erlernen des Punktionsverfahrens zu demonstrieren, haben wir die Anzahl der Abhebungen zwischen den Fachmanns- und den Anfängergruppen weiter verglichen.Wie aus Tabelle 2 hervorgeht, ist die durchschnittliche Zahl der Abhebungen in der Fachgruppe etwas geringer als bei den Anfängern, aber es gibt keine statistische Signifikanz. Zusammenfassend zeigen unsere Ergebnisse, dass die subklavische Venenpunktionsstrategie für die Blutentnahme bei Ratten sicher und machbar ist. Diese Methode ist wertvoll, vor allem bei Gelegenheiten, wenn eine große Menge Blut benötigt wird.Diese Methode könnte eine optimale Alternative sein, wenn die herkömmliche Blutentnahme fehlschlägt.

subclavian-vein-puncture-as-an-alternative-method-blood-sample

Research

Forschung

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Medicine

Medizin

Blutabnahmen sind in einer Vielzahl von Studien, die zum Beispiel auf die Pharmakokinetik Profil einer Verbindung zu studieren. Hier zeigen wir, wie man Blut von Ratten mit zwei Techniken zurückgreifen: Blutentnahme aus der Vena saphena oder durch Herzpunktion.

Drawing Blood von Ratten durch die Vena saphena und durch Herzpunktion

Blutproben sind nützlich, um Biomarker für physiologische Zustände oder Krankheiten in vivo zu beurteilen. Hier beschreiben wir die Methode zur Entnahme von Blut aus der seitlichen Schwanzvene bei der Ratte. Diese Methode liefert schnelle Proben mit minimalen Schmerzen und Invasivität.

Blutprobenentnahme aus der laterale Schwanzvene der Ratte

Hier beschreiben wir eine einfache Rute Vene Blut Sampling-Methode in nicht betäubt Ratten mit einer Absauganlage Rohr. Diese Methode verringert das Risiko der direkten Kontakt mit Blut und vereinfacht, wobei mehrere Proben aus einem einzigen Venenpunktion.

Wiederholte Blutentnahme aus Tail Vene nicht betäubt Ratten mit einem Vakuum Blut-Sammelsystem

Hier stellen wir ein Protokoll vor, mit dem Blutproben aus der subklavischen Vene von Mäusen entnommen werden können.

Blutentnahme durch Subclavian-Vein-Punktion in Mäusen

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine einfache und effiziente Methode zur Blutentnahme aus der Vena subclavia bei Ratten. Es ermöglicht eine schnelle, zeitnahe und leicht identifizierbare Probenahme ohne Anästhesie und erhält qualitativ hochwertiges Blut durch wiederholte Probenentnahme.

Wiederholte Blutentnahme aus der Vena subclavia einer bewussten Ratte

Hier stellen wir ein Protokoll vor, das schnelle, einfache und zuverlässige Alternativen zur Blutentnahme für das Rattenmodell bietet. Je nach Kontext beschreiben wir drei verschiedene Methoden der Blutentnahme: Schwanzvenenpunktion unter Narkose oder bei bewusstem Bewusstsein und dorsale Penisvenenpunktion unter Narkose.

Modifizierte Schwanzvenen- und Penisvenenpunktion zur Blutentnahme im Rattenmodell

Hier stellen wir eine Kombination aus effektiver Rattenrestriktion und Subclaviavenenpunktionsmethoden vor, die eine schnelle, sichere und wiederholte Blutentnahme bei Ratten ohne Anästhesie ermöglichen.

Blutentnahme der Vena subclavia bei bewussten Ratten

Das Mausmodell der Blinddarm Ligatur und Punktion als ein wertvolles Instrument für das Studium der menschlichen Sepsis.

Blinddarm Ligation Punktion

Biomarker sind direkt gemessene biologische Indikatoren von Krankheit oder Gesundheit. In der Bevölkerung und Sozialwissenschaften, Biomarker müssen leicht zu bekommen, Transport zu sein, und zu analysieren. Getrocknete Blut Spot (DBS) Sammlung erfüllt dieses Bedürfnis kann im Feld mit hohen Ansprechraten gesammelt und für eine Vielzahl von Biomarkern analysiert werden.

Trockenblut Sammlung von Gesundheits-Biomarker zur Teilnahme am Bevölkerungsstudien maximieren

Die vorliegende Arbeit veranschaulicht die Zweckmäßigkeit der sublingualen Immuntherapie, um die angeborene Immunantwort in der Lunge zu verstärken und Schutz vor akuter Pneumokokken-Pneumonie bei Mäusen zu bieten.

Sublinguale Immuntherapie als Alternative zum Schutz vor akuten Atemwegsinfektionen ausgelöst werden

Erfahren Sie die subklavikuläre Venenpunktion als alternative Blutentnahmemethode bei Ratten. Diese Technik ermöglicht zuverlässige Probengewinnung mit minimalem Stress und verbessert das Tierwohl in der Forschung.

Vene subclavia Punktion als eine Alternative Methode zur Probe Blutentnahme bei Ratten

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