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Modifizierte Blutentnahme aus Tail Venen nicht narkotisierten Mäuse mit einem Vakuum Blut Sammels...
Modifizierte Blutentnahme aus Tail Venen nicht narkotisierten Mäuse mit einem Vakuum Blut Sammels...
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JoVE Journal Behavior
Modified Blood Collection from Tail Veins of Non-anesthetized Mice with a Vacuum Blood Collection System and Eyeglass Magnifier

Modifizierte Blutentnahme aus Tail Venen nicht narkotisierten Mäuse mit einem Vakuum Blut Sammelsystem und Brillen Lupe

Full Text
19,981 Views
07:42 min
February 2, 2019

DOI: 10.3791/59136-v

Xiaoyan Liu*1, Huanhuan Li*1, Jie Wu1, Yijun Yu1, Mingjing Zhang1, Wusong Zou1, Ye Gu1

1Heart Center, Wuhan Fourth Hospital, Puai Hospital Affiliated to Tongji Medical College,Huazhong University of Science and Technology

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study reports a method for blood sampling from the tail vein of mice using a vacuum extraction tube system and eyeglass magnifier. The technique is designed to be easy to practice and allows for repeat blood sampling with minimal injury to the mice.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Animal Physiology
  • Blood Sampling Techniques

Background

  • The tail vein is a preferred site for blood sampling in mice.
  • Traditional methods can be challenging due to the thinness of the tail vein.
  • Minimizing injury and stress during blood collection is crucial for ethical research.
  • Improving the success rate of blood collection is important for experimental consistency.

Purpose of Study

  • To investigate a new blood sampling method using a vacuum system and magnification.
  • To compare the efficacy of this method with conventional blood sampling techniques.
  • To assess the impact of the new method on blood volume collection and sampling duration.

Methods Used

  • Mice were placed in a plastic restraining holder for stabilization.
  • The tail was cleaned with warm water and 70% ethanol to dilate the vein.
  • A butterfly needle was inserted into the tail vein to collect blood into vacuum tubes.
  • Blood collection was performed while minimizing stress and injury to the mice.

Main Results

  • The new method allowed for higher blood volumes to be collected compared to traditional methods.
  • Beginners showed improved success rates with the new technique.
  • Minimal injury was reported, aligning with ethical standards for animal research.
  • Repeated blood sampling was feasible without significant complications.

Conclusions

  • The vacuum extraction tube system combined with eyeglass magnification is effective for blood sampling in mice.
  • This method is easy to master and reduces the number of failed punctures.
  • It provides a reliable alternative to conventional blood sampling techniques.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using the vacuum extraction system?
The vacuum extraction system allows for easier blood collection and minimizes injury to the mice.
How does the eyeglass magnifier improve the procedure?
The eyeglass magnifier enhances visibility, making it easier to locate and puncture the tail vein.
Is this method suitable for repeated blood sampling?
Yes, the method is designed for repeat blood sampling with minimal stress on the animals.
What precautions should be taken during blood collection?
Ensure the tail is extended and clean, and monitor for blood flow to avoid complications.
What is the maximum blood volume that can be safely collected?
Up to 10% of the total blood volume can be safely removed at two-week intervals.
How should blood samples be stored after collection?
Samples can be stored at under -80 degrees Celsius for up to one year.

Diese Studie berichtet Blutentnahme aus Rute Vene bei Mäusen mit einer Absauganlage Rohr mit Brillen Lupe. Unsere Methode ist einfach und für wiederholte Blutentnahme bei Mäusen genutzt werden.

Diese Studie berichtet Blutentnahme aus Schwanzvene bei Mäusen mit einem Vakuum-Extraktionsrohr-System mit Brillenlupe. Unsere Methode ist einfach zu praktizieren und könnte für wiederholte Blutproben bei Mäusen verwendet werden. Eine Maus wird zunächst in den Kunststoffhalter gelegt.

Der Schwanz wird gereinigt und mit 70% Ethanol abgewischt. Dann trägt der Bediener die Brillenlupe, um die Betrachtung des Mausschwanzes zu verbessern. Eine Schmetterlingsnadelspitze wird dann in eine der erweiterten seitlichen Schwanzvenen eingeführt und das Blut wird durch das Gummiende der Schmetterlingsnadel in das Vakuumsammelrohr entnommen.

Schließlich wird die Nadel entfernt und der Blutentnahmeprozess abgeschlossen. Schwanzvene ist ein bevorzugter Ort für die Blutentnahme. Diese Blutentnahmemethode ist mit minimalen Verletzungen von Mäusen verbunden, aber schwanzvene der Mäuse ist sehr dünn, so dass manchmal schwer zu punktieren ist, hier beschreiben wir eine einfache Schwanz Venen Blutprobenahme Methode in im Labor Test Mäuse mit einem Vakuum-Extraktionsrohr-System.

Diese Methode ist einfach und effizient und kann verwendet werden, um das erforderliche Blut wiederholt bei Mäusen zu erhalten. Das Verfahren wird von zwei Mitgliedern unseres Labors, Xiaoyan Liu und Wusong Zou, demonstriert. Als nächstes legen Sie eine Maus in den Kunststoffhalter.

Vorder- und Hinterpfoten der Maus sollten in einer komfortablen Position sein. Um eine Blutprobe zu erhalten, waschen Sie den Schwanz mit warmem Wasser 20 bis 30 Grad Celsius, wischen Sie den Schwanz mit 70% Ethanol gesättigten Baumwollkugeln, um die Vene zu erweitern. Wählen Sie die rechte oder linke Schwanzvene für die Blutentnahme aus.

Greifen Sie den unteren Teil des Schwanzes sanft und halten Sie den Schwanz gerade während der Blutprobenentnahme. Tragen Sie die Brillenlupe, um die Sicht zu verbessern, um die Punktion der Schwanzvene zu erleichtern. Setzen Sie die 22 Gauge Schmetterlingsnadelspitze in eine der seitlichen Schwanzvenen etwa eine Hälfte distal von der Spitze des Schwanzes in einem Winkel von etwa 10 Grad, in Richtung der Basis des Schwanzes für mehrere Proben bewegen.

Sammeln Sie Blut in das Vakuum-Sammelrohr, indem Sie das Gummiende der Schmetterlingsnadel in das Vakuum-Blutentnahmeröhrchen einlegen. Der Schwanz von Mäusen kann für mehrere Blutsammlungen verwendet werden, so oft wie nötig, nach dem genehmigten Protokoll. Es ist nicht immer einfach, mit der traditionellen Methode genügend Blutvolumen aus der dünnen und niedrigen Durchblutungs-Schwanzvene von Mäusen zu erhalten.

Unsere Methode ist einfach und effizient und kann verwendet werden, um ein ausreichendes Blutvolumen wiederholt bei Mäusen zu erhalten. Es wird berichtet, dass bis zu 10% des gesamten Blutvolumens von einem gesunden Tier in zwei Wochen in Abständen sicher entfernt werden können, so dass etwa 175 Mikroliter Blutprobe von Mäusen jedes Mal in Übereinstimmung mit Ethik-Prinzipien gesammelt wurde. Zweitens ist es wichtig, den Schwanz zu verlängern, um seine Bewegung im Prozess der Blutentnahme zu vermeiden.

Um eine Blutgerinnung in der Nadel zu vermeiden, sollte eine weitere Punktionsposition ausgewählt werden, wenn das Blut über 15 Sekunden nicht mehr abfließt. Erfolgreiche Blutentnahme wurde definiert als die Beschaffung von 175 Mikroliter Blut jedes Mal. Die maximalen Punktionszeiten wurden auf drei Versuche festgelegt.

Wenn das Gesamtblutvolumen nach der dritten Punktion um 175 Mikroliter niedriger war, wurde es als fehlgeschlagene Blutentnahme definiert. Wenn ein ausreichendes Probenvolumen gesammelt wurde, ziehen Sie die Nadel aus der Vene und nehmen Sie kurz Druck auf die Einsteckstelle, um die Blutung zu stoppen. Um Plasma zu sammeln, verwenden Sie Röhren, die EDTA, ein Antikoagulans enthalten, die Röhre mehrmals sanft umkehren, um Gerinnungsmittel mit dem Blut zu mischen und die Proben vertikal auf Eis zu legen.

Drehen Sie Vollblutproben-Entnahmeröhrchen in der gekühlten Zentrifuge für 10 Minuten. Extrahieren Sie das Plasma, wobei Darauf zu achten ist, die roten und weißen Blutkörperchen nicht zu stören. Um Serin zu sammeln, verwenden Sie Tuben ohne Gerinnungsmittel.

Beide Arten von Proben können sofort verwendet oder bei unter 80 Grad Celsius für bis zu einem Jahr gelagert werden. Diese Studie zielte darauf ab, die Überlegenheit der wiederholten Blutprobenentnahme von Mäusen durch Vakuum-Blutentnahmesystem und Brillenlupe zu untersuchen. Experimentelle Gruppe im Vergleich zur herkömmlichen Blutentnahmemethode.

Die konventionelle Gruppe, von Anfängern bzw. Experten, das gesammelte Blutvolumen und die Probendauer waren zwischen zwei Gruppen für Experten ähnlich, jedoch wurden erhöhte blutgesammelte Blutmengen und kürzere Probendauer in der experimentellen Gruppe im Vergleich zur konventionellen Gruppe für Anfänger beobachtet. Eine höhere Erfolgsquote zeigte sich auch in der Versuchsgruppe im Vergleich zur konventionellen Gruppe für Anfänger. Diese Blutentnahmemethode ist einfach zu meistern und hat eine hohe Erfolgsrate.

Die Anzahl der fehlgeschlagenen Punktion konnte auf einen Vergleich mit der traditionellen Methode reduziert werden. Darüber hinaus verursacht dieses Verfahren nur minimale Verletzungen an Mäusen, es ist nur das Schwanzband der Mäuse ohne die Notwendigkeit von Anästhetika, dass der Einfluss der Stressreaktion bei Anästhetika auf die Blutprobe vermieden werden könnte.

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Verhalten Ausgabe 144 Mäuse Tail Ader nicht betäubt Blut Probenentnahme Vakuum Blut Sammelsystem Brillen Lupe

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