Modellierung des Größenspektrums für Makrowirbellose und Fische in Stream-Ökosystemen

Das Größenspektrum sagt Überfluss als Funktion der individuellen Größe voraus. Die Größenspektrenforschung deutet auf eine starke Ähnlichkeit in den Mengen relativ kleiner und großer Organismen aus verschiedenen Ökosystemen hin. Im Gegensatz zu herkömmlichen Größen-Abundance-Skalierungsbeziehungen, die durchschnittliche Größen auf Artenebene verwenden, sind Größenspektrummodelle ataxic und können die Größe jedes Einzelnen innerhalb der Stichprobe berücksichtigen.

Die Einsatzleiter brandon Gravett, Sarah Headley und Giancarlo Racanelli. Nachdem Sie die vor- und nachgelagerten Enden der Studienreichweite identifiziert haben, markieren Sie die Enden mit abnehmbarem Flagging-Band. Messen Sie die Breite des benetzten Strömungskanals bei fünf bis zehn Transekte, die gleichmäßig entlang der Länge der Studienreichweite verteilt sind, und schätzen Sie die Gesamtfläche der Studienreichweite als durchschnittliche benetzte Kanalbreite multipliziert mit der Gesamtlänge der Reichweite.

Machen Sie einen lockeren Bogenknoten an jedem Ende eines Stücks Polypropylenseil und wickeln Sie das Seil um einen Baum, eine Wurzel, ein großes Gestein oder ein anderes festes Objekt an den auf- und nachgelagerten Enden der Studie als Anker. Führen Sie eine Schleife durch die andere, um einen Ankerpunkt zu erstellen, und verkürzen oder verlängern Sie den Seilanker, indem Sie bei Bedarf Wraps um das Ankerobjekt hinzufügen oder entfernen. Richten Sie einen zweiten Ankerpunkt auf der gegenüberliegenden Seite des Stroms ein, wie soeben gezeigt, und verwenden Sie einen Bogenknoten, um eine Schleife in den Linien an jeder der vier Ecken eines mittleren bis groben Netzblocknetzes zu erstellen.

Verbinden Sie mit Cam Action-Krawattengurten beide Seiten der oberen Linie im Blocknetz mit den Ankerpunkten und legen Sie die Haken an beiden Enden des Bindegurts in die Schlaufen an den Ecken des Blocknetzes und an den Ankerpunkten ein. Ziehen Sie den freien Tether des Krawattengurts durch die Nockenschnalle, um jeden Kontaktpunkt festzuziehen, und fixieren Sie die untere Linie des Blocknetzes mit Zelteinsätzen an die Bachbank. Legen Sie große Felsen auf der Seite des Netzes nach oben, um das Blocknetz nach unten zu heften, um eine Dichtung mit dem Boden des Stroms zu etablieren, wobei darauf zu achten ist, dass die Spitze des Netzes über dem Wasserstand bleibt.

Legen Sie dann ein zweites Blocknetz am nachgelagerten Ende der Studie auf die gleiche Weise fest. Um einen Fischprobenahmepass durchzuführen, beginnend am nachgelagerten Ende der geschlossenen Studienreichweite, schalten Sie den Rucksack-Elektrofischer ein und bewegen Sie sich durch den Bach in vorgelagerter Richtung. Fortschritte langsam, bewegen sich Seite an Seite während der gesamten Studie erreichen, um sicherzustellen, dass alle in-Stream-Lebensräume beprobt werden, und haben unterstützende Besatzungsmitglieder folgen, um betäubte Fische mit Tauchnetzen zu sammeln, wie sie gesichtet werden.

Den Fisch in provisorische Eimer geben, dann in belüftete Haltewannen. Verwenden Sie kleine batteriebetriebene Köder-Eimerpumpen mit Belüftungssteinen, um sicherzustellen, dass die gefangenen Fische gesund bleiben. Achten Sie besonders auf verschiedene kleine, jung-of-year Fische, da sie schwer zu erkennen und zu fangen sind.

Der erste Erschöpfungspass ist abgeschlossen, wenn das vorgelagerte Netz erreicht ist. Für die Verarbeitung des ersten Erschöpfungspasses Fisch verwenden Sie kleine Tauchnetze, um die beprobten Fische einzeln oder in kleinen Chargen zur Identifizierung aus dem Haltebecken zu holen, und legen Sie die Proben in weiße Schalen. Mit Zangen und einer Lupe jeden Fisch identifizieren, dann seine Gesamtlänge von der Spitze der Schnarbe bis zum Ende der Caudalflosse auf einem Messbrett messen und auf einer Feldwaage mit einer Genauigkeit von 0,1 oder 0,01 Gramm wiegen.

Zeichnen Sie dann die Identität der Art und die Gesamtlänge und das Gewicht für jedes Exemplar auf wasserdichten Datenblättern auf. Nach der Verarbeitung die Fische in einen separaten belüfteten Bergungsbehälter zurückgeben, bevor Sie alle Fische flussabwärts des nachgelagerten Blocknetzes freisetzen. Wählen Sie benthische Makroinvertebrate-Probenstandorte innerhalb der Grenzen der Fischprobenahme reichweiten, die repräsentativ für die wichtigsten Arten von physischen Lebensräumen sind, die in der Studie beobachtet wurden.

Legen Sie eine geeignete Festflächen-Probenahmevorrichtung fest gegen den Bachboden mit dem probenentnahmenetz nachgelagert ausgerichtet und bewegen Sie bei Bedarf große Pflastersteine, um eine feste Abdichtung mit dem Substrat herzustellen. Verwenden Sie eine Bürste, um das Substrat innerhalb des Probenahmebereichs für zwei Minuten kräftig zu schrubben, so dass ausgelassene benthische Makroinvertebraten in das Probennetz driften können. Den Probeninhalt aus dem Netz in ein Kunststoffglas geben und die Proben in 70% Isopropylalkohol aufbewahren.

Beschriften Sie dann das Glas und bewahren Sie es an einem sicheren Ort auf, um es später in s. Lab zu übertragen. Wenn alle benthischen Makroinvertebraten und Fischdaten richtig formatiert und geplottet wurden, ist oft eine klare negative Beziehung zwischen individueller Körpermasse und normalisierter Dichte erkennbar. Dieses Größenspektrum spiegelt einen vorhersehbaren Übergang von den kleinsten und am häufigsten vorkommenden Wirbellosen wie Midges und kleinen Mayflies zu größeren Caddisflies und Steinfliegen zu Fischen wider, wie hier für Proben von Slaunch Fork, West Virginia gezeigt.

Ähnliche Größenspektren-Beziehungen wurden für benthische Makroinvertebraten in Fischen in Camp Creek und Cabin Creek, zwei weiteren West Virginia-Strömen, und lineare Regression wurde verwendet, um die Beziehung zu modellieren. Die Größenspektren lagen alle zwischen 1,7 und 1,8 mit überlappenden 95%-Konfidenzintervallen. Diese Ähnlichkeit deutet darauf hin, dass die Fülle abnimmt, wenn die Körpergröße in allen drei Strömen ungefähr gleich ansteigt.

Die unterschiedlichen Größenspektren zeigen jedoch, dass die Unterschiede in der Gesamtdichte zwischen den Strömen variabel sind, aber die höchsten Dichten, die in Camp Creek beobachtet wurden, und viel niedrigere Dichten, die in Cabin Creek gemessen wurden. Mit der Zahl der Größenspektrenwerden werden kritische Tests der Auswirkungen verschiedener Umwelteinflüsse auf das Größenspektrum möglich. Es ist wichtig, sich daran zu erinnern, dass jede Feldarbeit ein gewisses Risiko mit sich bringt und dass insbesondere die Elektrofischerei gefährlich sein kann.

Daher ist es wichtig, dass alle Besatzungsmitglieder angemessen ausgebildet werden.