Name: Murine Modell der kontrollierten kortikalen Auswirkungen für die Induktion von traumatischen Hirnverletzungen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-08-16T14:45:00.000+00:00
Duration: 5 min 1 s
Description: Lernen Sie das kontrollierte kortikale Schlagverfahren zur Induktion von traumatischen Hirnverletzungen bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht standardisierte Verletzungen für Verhaltens- und Bildgebungsanalysen.

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Diese Arbeit wurde von den National Institutes of Health Grant GM117341 und dem American College of Surgeons C. James Carrico Research Fellowship an S.J.S. unterstützt.

Alle Verfahren wurden vom Northwestern University Institutional Animal Care and Use Committee genehmigt. C57BL/6 Mäuse wurden vom Jackson Laboratory gekauft und in einer Barriereanlage am Center for Comparative Medicine der Northwestern University (Chicago, IL) untergebracht. Alle Tiere wurden in 12/12 h Licht/Dunkel-Zyklus mit freiem Zugang zu Nahrung und Wasser untergebracht.
1. Anästhesie induzieren
<ol><li>Anästhesisieren Sie die Maus mit Ketamin (125 mg/kg) und Xylazin (10 mg/kg) intraperitoneal injiziert.</li>
</ol>2. Vitalzeichen Überwachung alle 15 min
<ol><li>Überwachen Sie Temperatur, Atemfrequenz und Hautfarbe. Die Maus sollte sich warm anfühlen. Die Haut sollte rosa und gut durchlässig erscheinen. Die Atemfrequenz sollte 50–70 Atemzüge pro Minute reichen.</li>
</ol>3. Prächirurgische Eingriffe
<ol><li>Wiegen Sie alle Mäuse am Tag vor der Verletzungsinduktion.</li>
	<li>Sterilisieren Sie einen Satz chirurgischer Instrumente durch Autoklavieren für jedes Versuchsfach. Sterilisieren Sie das Aufprallgerät vor Gebrauch.</li>
	<li>Bereiten Sie einen Erholungskäfig vor, indem Sie einen sauberen Käfig über einem elektrischen Heizkissen platzieren, das auf "niedrig" eingestellt und so positioniert ist, dass sich die Mäuse nach dem Ambulanten von der Hitze entfernen können.</li>
	<li>Richten Sie den Operationssaal in einer sterilisierten laminaren Durchflusshaube ein.<ol>
<li>Positionieren Sie den stereotaxic-Betriebsrahmen.</li>
		<li>Befestigen Sie das Aufprallgerät am stereotaxic-Rahmen.</li>
		<li>Stellen Sie die Betätigungseinrichtung mit den gewünschten biomechanischen Parametern für Geschwindigkeit und Verweilzeit ein. HINWEIS: In diesem Protokoll wird eine schwere Hirnverletzung beschrieben, bei der eine Aufprallspitze mit einem Durchmesser von 3 mm über eine Kraniektomie mit einem Durchmesser von 5 mm mit einer Geschwindigkeit von 2,5 m/s und einer Verweilzeit von 0,1 s verwendet wird. Eine breite Palette von biomechanischen Parametern kann verwendet werden, um das gesamte Spektrum von TBI zu induzieren.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Verpassen Sie neue persönliche Schutzausrüstung und sterile Handschuhe.</li>
	<li>Rasieren Sie das Fell von der operativen Website mit elektrischen Clippers.</li>
	<li>Tragen Sie eine schützende opthalmische Salbe auf die Augen der Maus auf, um Hornhautverletzungen und Trocknung zu verhindern.</li>
	<li>Legen Sie die Maus in den Operationssaal.</li>
	<li>Bereiten Sie die Haut mit einem Jod-basierten chirurgischen Peeling abwechselnd mit Alkohol dreimal.</li>
</ol>4. Anwendung kontrollierter kortikaler Auswirkungen
<ol><li>Incise die Kopfhaut 1 cm in der Mittellinie mit einem Skalpell, das den Schädel freilegt.</li>
	<li>Positionieren Sie die Maus innerhalb eines stereotaxic-Betriebsrahmens, indem Sie die bilateralen zeitlichen Knochen zwischen Miniatur-Ohrstangen sichern und die Schneidezähne innerhalb einer Schneidezähne verriegeln, wodurch ein stabiler Dreipunktgriff am Mauskopf entsteht.</li>
	<li>Ziehen Sie die Kopfhaut mit einem Hämostat oder Verriegelungszange von der Operationsstelle weg, um sicherzustellen, dass die Kopfhaut während der Kraniektomie nicht mit dem Bohrer in Kontakt kommt.</li>
	<li>Identifizieren Sie die sagittalen und koronalen Nähte auf dem exponierten Schädel. HINWEIS: Dieses Protokoll zentriert die Kraniektomie 2 mm links der sagittalen Naht und 2 mm rostral zur koronalen Naht.</li>
	<li>Führen Sie eine Kraniektomie mit einem Bohrer mit einem Trephin-Bohrer durch.<ol>
<li>Um die Kraniektomie durchzuführen, aktivieren Sie zuerst den Bohrer mit maximaler Geschwindigkeit und wenden Sie dann den Trephin-Bohrer senkrecht zum Schädel an der Stelle der Kraniektomie an.</li>
		<li>Tragen Sie sanften, gleichmäßigen Druck auf den Bohrer auf, sobald der Kontakt mit dem Schädel hergestellt wird. Ein leichtes "Geben" wird zu spüren sein, sobald der Bohrer durch den Schädel dringt. Nicht in die darunter liegende Dura eindringen. HINWEIS: Dieses Protokoll verwendet einen 5 mm Trephin-Bohrer, um die Kraniektomie durchzuführen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Verwenden Sie Zangen und eine kleine Spur hypodermische Nadel, um die Knochenklappe zu entfernen, vollständig die zugrunde liegende Dura mater aussetzen.</li>
	<li>Drehen Sie die Stoßdämpferspitze in das Operationsfeld und senken Sie sie, bis sie mit der freiliegenden Dura mater in Kontakt tritt. Sobald der Kontakt hergestellt ist, wird der Kontaktsensor des Instruments einen hörbaren Ton machen, um den Chirurgen zu warnen, dass Kontakt hergestellt wurde. Dadurch wird der Nullpunkt markiert, von dem aus die Verformungstiefe festgelegt wird. HINWEIS: Dieses Protokoll verwendet eine 3 mm Schlagspitze, um eine schwere Verletzung zu verursachen. Tipps von bis zu 1 mm können verwendet werden, um mehr lokalisierte Verletzungen anzuwenden.</li>
	<li>Ziehen Sie die Aufprallspitze zurück und stellen Sie die gewünschte Aufpralltiefe ein, indem Sie die Stoßkraftposition auf dem stereotaxic-Rahmen senken. HINWEIS: In diesem Protokoll beschreiben wir eine schwere Verletzung, indem wir die Verformungstiefe auf 2 mm einstellen.</li>
	<li>Tragen Sie die Verletzung durch Aktivieren des Stoßeffekts auf das Betätigungsgerät auf.</li>
	<li>Drehen Sie die Schlagvorrichtung aus dem Feld und entfernen Sie das Tier aus dem stereotaxic Rahmen.</li>
</ol>5. Schließung der Chirurgischen Stelle
<ol><li>Kontrollieren Sie Blutungen aus dem Schädel und verletzte kortikale Oberfläche mit direktem Druck von einem sterilen Baumwolle gekippt Applikator.</li>
	<li>Trocknen Sie den Schädel mit einem sterilen Baumwolle gekippt Applikator.</li>
	<li>Schließen Sie die Kopfhaut über der Kraniektomie mit einem handelsüblichen chirurgischen Klebstoff oder Monofilament-Nähte. HINWEIS: In diesem Protokoll wird ein veterinärchirurgischer Klebstoff verwendet, um die Kopfhaut zu schließen. Die Knochenklappe wird nicht ersetzt und verworfen.</li>
</ol>6. Postoperative Pflege und Überwachung
<ol><li>Verabreichen Sie postoperative Analgesie (z. B. anhaltende FreisetzungBuprenorphin 0,1–0,5 mg/kg subkutan verabreicht, die 72 h anhaltende Analgesie zur Verfügung stellt).</li>
	<li>Legen Sie das Tier in der seitlichen Dekubitus-Regenerationsposition in einen sauberen vorgewärmten Käfig.</li>
	<li>Beobachten Sie die Tiere, bis sie wach und mobil sind, und bringen Sie dann jede Maus in ihren Heimischenkäfig zurück.</li>
	<li>Sorgen Sie für freien Zugang zu Nahrungsmitteln und Wasser. Normale Nahrungs- und Wasseraufnahme werden in der Regel innerhalb von ein bis zwei Stunden nach der Verletzung wieder aufgenommen.</li>
	<li>Messen Sie das Körpergewicht alle drei Tage während des Experiments.</li>
</ol>

<ol><li>Faul, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFaul%2C+M+%22Traumatic+Brain+Injury+in+the+United+States%3A+Emergency+Department+Visits%2C+Hospitalizations+and+Deaths+2002-2006%22">Traumatic Brain Injury in the United States: Emergency Department Visits, Hospitalizations and Deaths 2002-2006</a>. , Centers for Disease Control and Prevention, National Center for Injury Prevention and Control. Atlanta (GA). (2010).</li>
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<li>Trahanas, D. M., Cuda, C. M., Perlman, H., Schwulst, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+Activation+of+Infiltrating+Monocyte-Derived+Cells+After+Mild+and+Severe+Traumatic+Brain+Injury%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Differential Activation of Infiltrating Monocyte-Derived Cells After Mild and Severe Traumatic Brain Injury.</a> Shock. 43 (3), 255-260 (2015).</li>
<li>Makinde, H. M., Cuda, C. M., Just, T. B., Perlman, H. R., Schwulst, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonclassical+Monocytes+Mediate+Secondary+Injury%2C+Neurocognitive+Outcome%2C+and+Neutrophil+Infiltration+after+Traumatic+Brain+Injury%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Nonclassical Monocytes Mediate Secondary Injury, Neurocognitive Outcome, and Neutrophil Infiltration after Traumatic Brain Injury.</a> Journal of Immunology. 199 (10), 3583-3591 (2017).</li>
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<li>Marmarou, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+model+of+diffuse+brain+injury+in+rats.+Part+I%3A+Pathophysiology+and+biomechanics%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">A new model of diffuse brain injury in rats. Part I: Pathophysiology and biomechanics.</a> Journal of Neurosurgery. 80 (2), 291-300 (1994).</li>
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<li>Makinde, H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monocyte+depletion+attenuates+the+development+of+posttraumatic+hydrocephalus+and+preserves+white+matter+integrity+after+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Monocyte depletion attenuates the development of posttraumatic hydrocephalus and preserves white matter integrity after traumatic brain injury.</a> PLoS One. 13 (11), e0202722(2018).</li>
<li>Osier, N. D., Dixon, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Controlled+Cortical+Impact+Model%3A+Applications%2C+Considerations+for+Researchers%2C+and+Future+Directions%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Neurology%22%5BJournal%5D)">The Controlled Cortical Impact Model: Applications, Considerations for Researchers, and Future Directions.</a> Frontiers in Neurology. 7, 134(2016).</li>
<li>Iaccarino, C., Carretta, A., Nicolosi, F., Morselli, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology+of+severe+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurosurgical+Sciences%22%5BJournal%5D)">Epidemiology of severe traumatic brain injury.</a> Journal of Neurosurgical Sciences. 62 (5), 535-541 (2018).</li>
</ol>

Die Autoren haben keine finanziellen Interessenkonflikte.

Es gibt mehrere Schritte, die für die Anwendung einer zuverlässigen und konsistenten Verletzung entscheidend sind. Zuerst muss die Maus eine tiefe Ebene der chirurgischen Anästhesie erreichen, die keine Bewegung während der Durchführung der Kraniektomie gewährleistet. Während zahlreiche Anästhesie-Therapien verwendet werden können, um Vollnarkose bei Nagetieren zu induzieren, Anästhetika, die Atemdepression enden, wie inhalative Anästhetika, kann zu Atemstillstand führen, wenn sie mit einem schweren TBI kombiniert. Diese...

Die Centers for Disease Control and Injury Prevention schätzen, dass etwa 2 Millionen Amerikaner jedes Jahr eine traumatische Hirnverletzung (TBI) erleiden1,2. Tatsächlich trägt TBI zu über 30 % aller verletzungsbedingten Todesfälle in den Vereinigten Staaten bei, wobei die Gesundheitskosten sich auf fast 80 Milliarden DOLLAR jährlich und fast 4 Millionen Dollar pro Person und Jahr belaufen und ein schweres TBI3,4,5überleben. Die Auswirkungen von TBI werden durch die signifikanten langfristigen neurokognitiven und neuropsychiatrischen Komplikationen hervorgehoben, die seine Überlebenden mit dem heimtückischen Beginn von Verhaltens-, kognitiven und motorischen Beeinträchtigungen erlitten haben, die als chronische traumatische Enzephalopathie (CTE) bezeichnet werden. 6 , 7 , 8 , 9 , 10. Selbst subklinische Gehirnerschütterungen – die Auswirkungen, die nicht zu klinischen Symptomen führen – können zu einer langfristigen neurologischen Dysfunktion führen11,12.
Tiermodelle für die Studie von TBI werden seit den späten 1800erJahren 13verwendet. In den 1980er Jahren wurde ein pneumatischer Schlagkraft zum Zweck der Modellierung von TBI entwickelt. Diese Methode wird jetzt als kontrollierte kortikale Auswirkung (KI)14bezeichnet. Die Kontrolle und Reproduzierbarkeit der CCI veranlasste die Forscher, das Modell für den Einsatz bei Nagetieren anzupassen15. Unser Labor verwendet dieses Modell, um TBI über einen handelsüblichen Schlagkraftunden und elektronisches Betätigungsgerät16,17zu induzieren. Dieses Modell ist in der Lage, eine breite Palette von klinisch anwendbaren TBI-Zuständen in Abhängigkeit von den verwendeten biomechanischen Parametern zu produzieren. Die histologische Bewertung von TBI-Gehirnen nach einer schweren Verletzung, die in unserem Labor induziert wurde, zeigt einen signifikanten ipsilateralen kortikalen und hippocampalen Verlust sowie kontralaterale Ödeme und Verzerrungen. Darüber hinaus erzeugt CCI eine konsistente Beeinträchtigung der motorischen und kognitiven Funktion, gemessen an Verhaltenstests18. Zu den Einschränkungen der CCI gehören die Notwendigkeit der Kraniotomie und die Kosten für den Erwerb des Schlag- und Betätigungsgeräts.
Mehrere weitere Modelle von TBI existieren und sind in der Literatur gut etabliert, einschließlich der seitlichen Fluid Percussion Modell, Gewicht Drop Modell, und Blast Verletzung Modell19,20,21. Während jedes dieser Modelle seine eigenen Vorteile hat, sind ihre Hauptnachteile gemischte Verletzungen, hohe Sterblichkeit und fehlende Standardisierung, bzw.22. Darüber hinaus bietet keines dieser Modelle die Genauigkeit, Präzision und Reproduzierbarkeit von CCI. Durch die Anpassung der biomechanischen Parameter, die in das Betätigungsgerät eingegeben werden, ermöglicht das CCI-Modell dem Prüfer eine präzise Kontrolle über die Größe der Verletzung, die Tiefe der Verletzung und die kinetische Energie, die auf das Gehirn angewendet wird. Dies gibt den Forschern die Möglichkeit, das gesamte Spektrum von TBI auf bestimmte Bereiche des Gehirns anzuwenden. Es ermöglicht auch die größte Reproduzierbarkeit von Experiment zu Experiment.

<table><tbody><tr><td>AnaSed Injektion Xylazin Sterile Lösung</td><td>LLOYD, Inc.</td><td></td><td></td>5939911020</tr><tr><td>Buprenorphin SR Lab 0,5 mg/ml</td><td>Zoopharm-Wildlife Pharmaceuticals USA</td><td>BSRLAB0.5-182012</td><td></td></tr><tr><td>Hochgeschwindigkeits-Rotationsmikromotor KiT0</td><td>Foredom Electric Company</td><td>K.1070</td><td></td></tr><tr><td>Imapact one für Stereotaxix CCI</td><td>Leica Biosystems Nussloch GmbH</td><td>39463920</td><td></td></tr><tr><td>Ketathesia Ketamin HCl Injektion USP</td><td>Henry Schein, Inc</td><td>56344</td><td></td></tr><tr><td>Mausspezifische stereotaktische Basis</td><td>Leica Biosystems Nussloch GmbH</td><td>39462980</td><td></td></tr><tr><td>Trephines für Micro Drill</td><td>Fine Science Tools, Inc</td><td>18004-50</td><td></td></tr></tbody></table>

murine modell der kontrollierten kortikalen auswirkungen für die induktion von traumatischen hirnverletzungen

Murine Model of Controlled Cortical Impact for the Induction of Traumatic Brain Injury

Die Centers for Disease Control and Injury Prevention schätzen, dass in den Vereinigten Staaten jedes Jahr fast 2 Millionen Menschen eine traumatische Hirnverletzung (TBI) erleiden. Tatsächlich trägt TBI zu mehr als einem Drittel der verletzungsbedingten Sterblichkeit bei. Nichtsdestotrotz sind die zellulären und molekularen Mechanismen, die der Pathophysiologie von TBI zugrunde liegen, schlecht verstanden. Daher sind präklinische Modelle von TBI, die in der Lage sind, die für TBI relevanten Verletzungsmechanismen bei menschlichen Patienten zu replizieren, ein dringender Forschungsbedarf. Das Modell der kontrollierten kortikalen Schlagwirkung (CCI) von TBI nutzt ein mechanisches Gerät, um den exponierten Kortex direkt zu beeinflussen. Während kein Modell die unterschiedlichen Verletzungsmuster und die Heterogenität von TBI bei menschlichen Patienten vollständig rekapitulieren kann, ist CCI in der Lage, eine breite Palette klinisch anwendbarer TBI zu induzieren. Darüber hinaus ist die CCI leicht standardisiert, sodass die Forscher die Ergebnisse über Experimente hinweg und über Ermittlungsgruppen hinweg vergleichen können. Das folgende Protokoll ist eine detaillierte Beschreibung der Anwendung einer schweren CCI mit einem kommerziell erhältlichen Aufprallgerät in einem murinen Modell von TBI.

Der Stoßsoper wird direkt am stereotaxic-Rahmen montiert und ermöglicht eine Auflösung von bis zu 10 m für die Steuerung des Aufprallpunkts, der Tiefe und des Eindringens. Die eingesetzten elektromagnetischen Kräfte können Aufprallgeschwindigkeiten von 1,5 bis 6 m/s vermitteln. Dies ermöglicht eine unvergleichliche Präzision und Reproduzierbarkeit über die gesamte Bandbreite des klinisch relevanten TBI. Die Forscher können Pilotexperimente durchführen, die die Verletzungsparameter wie Aufprallspitzengröße, Aufprallgeschw...

Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Induktion von murinen traumatischen Hirnverletzungen über einen offenkopfgesteuerten kortikalen Aufprall.

Murine Modell der kontrollierten kortikalen Auswirkungen für die Induktion von traumatischen Hirnverletzungen

The Centers for Disease Control and Injury Prevention estimate that almost 2 million people sustain a traumatic brain injury (TBI) every year in the ...

Kontrollierte kortikale Auswirkungen sind leicht zwischen Probanden und Experimenten zu standardisieren und ermöglichen die Anwendung des gesamten Spektrums traumatischer Hirnverletzungen auf genau definierte Regionen des Gehirns. Dieses Verfahren zu demonstrieren, ist Mekka Islam, ein Forschungstechniker in meinem Labor. Diese Technik bleibt die konsequenteste und reproduzierbare Form der Induzieren traumatische Hirnverletzungen bei Nagetieren.Bevor Sie mit dem Verfahren beginnen, befestigen Sie das Aufprallgerät am stereotaxic-Betriebsrahmen. Se die Betätigungsvorrichtung mit den gewünschten biomechanischen Parametern für die entsprechende experimentelle Geschwindigkeit und Wellzeit. Geben Sie neue persönliche Schutzausrüstung und sterile Handschuhe und bestätigen Sie einen Mangel an Reaktion auf Zehenkneifung in der anästhesierten experimentellen Maus.Verwenden Sie Clippers, um das Fell für die chirurgische Stelle zu rasieren und Salbe auf die Augen des Tieres aufzutragen. Legen Sie dann die Maus in den Operationssaal und bereiten Sie die rasierte Haut mit drei sequenziellen Jod-basierten und Alkohol chirurgische Peelings. Um eine kontrollierte kortikale traumatische Hirnverletz

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Dieses Video zeigt das Verfahren zur Auslösung einer traumatischen Hirnverletzung mit offenem Schädel bei einer Maus, indem man einen Schädelschnitt in der Mittellinie macht, den Schädel durchbohrt und den Knochenlappen entfernt, um die Hirnrinde freizulegen, und hohen Druck ausübt, um ein Trauma auszulösen. Die Wunde wird dann vernäht, um das Mausmodell für nachfolgende Experimente vorzubereiten.

Generierung eines Mausmodells für traumatische Hirnverletzungen mit einer Impaktorsonde

Dieses Video zeigt das Verfahren zur Induktion eines Schädel-Hirn-Traumas (TBI) in einem Mausmodell. Eine anästhesierte Maus mit freiliegendem Schädel wird entnommen, um eine Öffnung im Schädel zu schaffen, und dann wird mit einem Aufprallgerät eine kontrollierte kortikale Verletzung induziert. Die Verletzung schädigt das Hirngewebe, was zu einer Beeinträchtigung der kognitiven Funktion und der motorischen Koordination führt.

Generierung eines Mausmodells für ein Schädel-Hirn-Trauma mit einem Impaktorgerät

Quelle: Macheda, T., et. al. Elektromagnetisch gesteuertes Modell mit geschlossenem Kopf für leichte traumatische Hirnverletzungen bei Mäusen. J. Vis. Exp. (2022)Dieses Video zeigt das Verfahren zur Induktion einer geschlossenen Kopfverletzung in einem Mausmodell unter Verwendung eines stereotaktischen Rahmens. Der kontrollierte Aufprall repliziert eine leichte traumatische Hirnverletzung und ermöglicht es den Forschern, neurologische Auswirkungen und die Genesung zu untersuchen, indem sie die...

Induktion eines leichten Schädel-Hirn-Traumas in einem Mausmodell

Traumatische Hirnverletzungen (TBIs) sind nach wie vor ein ernstes Gesundheitsproblem. Mit Hilfe des Modells der kontrollierten kortikalen Aufprallchirurgie können die Auswirkungen des SHT und mögliche Behandlungsmethoden erforscht werden.

Controlled Cortical Impact-Modell für traumatische Hirnverletzung

Athleten absorbieren mehrere hundert milde traumatische Hirnverletzungen (mTBI) / Gehirnerschütterungen jedes Jahr; Die Konsequenz dieser auf das Gehirn ist jedoch schlecht verstanden. Daher bietet ein Tiermodell von Einzel- und Wiederholungs-MTBI, das konsequent repliziert klinisch relevante Symptome bietet die Mittel, um die Studie von MTBI und Gehirnerschütterung voranzutreiben.

Ein Mausmodell der einzelnen und repetitiven milden traumatischen Gehirnverletzung

Dieses Protokoll zeigt Methoden für ein Mausmodell der traumatischen Hirnverletzung mit offenem Schädel und die Transplantation kultivierter, humaninduzierter pluripotenter Stammzellen-abgeleiteter Zellen in die Verletzungsstelle. Verhaltens- und histologische Tests der Ergebnisse dieser Verfahren werden ebenfalls kurz beschrieben.

Kontrolliertes kortikales Wirkungsmodell der Maushirnverletzung mit therapeutischer Transplantation von humaninduzierten Pluripotenten Stammzell-abgeleiteten Neuralzellen

Intraparenchymale Blutungen und Neuroinflammation, begleitet von einer zerebralen Kontusion, können schwere sekundäre Hirnverletzungen auslösen. Dieses Protokoll beschreibt ein Modell der kontrollierten kortikalen Wirkung (CCI) der Maus, das es Forschern ermöglicht, Blutungen, Prellungen und posttraumatische Immunreaktionen zu untersuchen und potenzielle Therapeutika zu erforschen.

Ein präklinisches Modell für kontrollierte kortikale Auswirkungen bei traumatischen Blutungen, Prellungen und Neuroinflammation

Das Protokoll beschreibt ein leichtes Schädel-Hirn-Trauma in einem Mausmodell. Insbesondere wird ein Schritt-für-Schritt-Protokoll zur Induktion einer leichten Mittellinien-geschlossenen Kopfverletzung und die Charakterisierung des Tiermodells vollständig erläutert.

Elektromagnetisch gesteuertes Closed-Head-Modell für leichtes Schädel-Hirn-Trauma bei Mäusen

Hier stellen wir ein Protokoll vor, um ein Tiermodell mit geschlossener Kopfverletzung zu etablieren, das das Neurobildergebnis einer unkomplizierten leichten traumatischen Hirnverletzung mit der erhaltenen Hirnstruktur in der akuten Phase und der langfristigen Hirnatrophie repliziert. Die longitudinale Magnetresonanztomographie ist die primäre Methode zur Beweisführung.

Entwicklung eines unkomplizierten Modells für ein leichtes Schädel-Hirn-Trauma, modifiziert durch Weight-Drop-Methode und nachgewiesen durch Magnetresonanztomographie

Lateral Flüssigkeit Schlagzeug (LFP), einem etablierten Modell der Hirn-Trauma, bei Mäusen nachgewiesen ist. LFP erfüllt drei wesentliche Kriterien für die Tiermodelle: Validität, Zuverlässigkeit und klinische Relevanz. Das Verfahren, bestehend aus chirurgischen Kraniotomie, gefolgt Fixierung der Nabe durch die Induktion von Verletzungen, die sich in fokale und diffuse Verletzungen, beschrieben wird.

Lateral Fluid-Percussion: Modell Schädel-Hirn-Verletzungen in Mäuse

Lernen Sie das kontrollierte kortikale Schlagverfahren zur Induktion von traumatischen Hirnverletzungen bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht standardisierte Verletzungen für Verhaltens- und Bildgebungsanalysen.

Murine Modell der kontrollierten kortikalen Auswirkungen für die Induktion von traumatischen Hirnverletzungen

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