Name: Perfusion und Inflation der Mauslunge für Tumorhistologie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-08-06T15:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 24 s
Description: Lernen Sie die Perfusion, Inflation und Fixierung von Mäuselungen für die Tumorhistologie. Diese Methode ermöglicht präzise pathologische Untersuchungen von Lungenmetastasen und verbessert die histologische Analyse signifikant.

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Die in dieser Publikation berichtete Forschung wurde vom National Center for Advancing Translational Sciences unter der AuszeichnungUL1TR003096 (MDE), National Heart, Lung, and Blood Institute Predoctoral Fellowship in Lung Diseases Training Program 5T32HL134640 (MLD) unterstützt.

Alle hier beschriebenen Methoden wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der University of Alabama in Birmingham genehmigt.
1. Experimentelles Protokoll
<ol><li>Opfern Sie die Maus mit einer zugelassenen IACUC-Methode. Hier verwendeten wir zervikale Dislokation einer Maus mit 5% Isofluran anästhetisiert. Verwenden Sie eine geeignete Maus für die Studie; hier verwenden wir eine 8 Wochen alte FVB-Maus</li>
	<li>Mit chirurgischer Schere, machen Sie einen 3,5-5 mm horizontalen Schnitt in der Mitte des Unterbauchs. Als nächstes legen Sie chirurgische Schere in das kleine Loch aus Schnitt erstellt und schneiden vertikal die mittlere Mittellinie bis knapp unter dem Hals der Maus.</li>
	<li>Ziehen Sie die Haut mit den Fingern zurück und inspizieren Sie die axillären Lymphknoten.</li>
	<li>Mit chirurgischer Schere, machen Sie einen 3,5 mm seitlichen Schnitt, um die Bauchhöhle zu öffnen, und schneiden Sie dann in vorderer Richtung bis zum Boden des Thorax. Inspizieren Sie die Organe in der Bauchhöhle: Leber, Milz, Nieren, etc.</li>
	<li>Mit der Flachen der chirurgischen Schere, oder mit Zangen, bewegen Sie die Leber, um das Zwerchfell freizulegen. Prüfen Sie das Zwerchfell auf Tumorwachstum oder Metastasen. Schnipsen Sie dann vorsichtig die Membran auf der rechten Seite des Bedieners, so dass es sich ausdehnen kann. Schneiden Sie das Zwerchfell vorsichtig von rechts nach links, um die Brusthöhle und die Lunge freizulegen. Achten Sie darauf, die Lunge nicht zu schneiden.</li>
	<li>Schneiden Sie durch das seitliche Extrem des linken Rippenkäfigs (rechts) des Bedieners, um den linken Lappen der Lunge zu inspizieren.</li>
	<li>Bewegen Sie die rechten Lungenlappen vorsichtig aus dem Weg und schneiden Sie das seitliche Extrem des rechten Rippenkäfigs auf und entfernen Sie den Rippenkäfig. HINWEIS: Die Entfernung des Rippenkäfigs ist optional, obwohl die Entfernung eine klarere Sicht auf die spätere Lungeninflation ermöglicht.<ol>
<li>Wenn frisches oder gefrorenes Lungengewebe erforderlich ist, verwenden Sie Hämostatzangen, um den Bronchus des linken Lappens zu klemmen und die linke Lunge mit einer chirurgischen Schere vor der Perfusion zu resektieren.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Mit der Zange, um das Gewebe zu heben, das die Luftröhre bedeckt, schneiden Sie überschüssiges Gewebe weg. Dann schneiden Sie vorsichtig das dünne Gewebe Auskleidung der Luftröhre, um die Atemwege auszusetzen.</li>
	<li>Schneiden Sie die Nierenarterie mit chirurgischer Schere durch.</li>
	<li>Um die Lunge zu durchdringen, verwenden Sie eine 3 ml Spritze mit einer 22 G Nadel, um 1x PBS mit 10 U/ml Heparin in die rechte Herzkammer zu injizieren. Durchdringen Sie die Lunge mit PBS/Heparin langsam bei ca. 300 l/s. Die Lunge wird häufig weiß. In diesem Schritt werden in der Regel 2,5 ml PBS verwendet.</li>
	<li>Für die Lungeninflation verwenden Sie eine 3 ml Spritze mit einer 22 G Nadel, diesmal parallel zur Luftröhre gehalten. Setzen Sie die Nadel in die Luftröhre ein und injizieren Sie 10% Formalin mit einer Durchflussrate von nicht mehr als 200 l/s, bis die Lunge vollständig aufgeblasen ist. Sobald die Lunge aufgeblasen ist, wird Formalin aus der Luftröhre zurückfließen. Halten Sie die Nadel noch ein paar Sekunden an Ort und Stelle und ziehen Sie sich dann zurück.<ol>
<li>(Optional) Vor dem Zurückziehen der Nadel- und Lungeninflation verwenden Sie Nahtgewinde, um die Luftröhre abzubinden. Um dies zu erreichen, verwenden Sie 4 Zoll Nahtgewinde halten den Punkt des Gewindes mit einem kleinen Paar Zangen. Legen Sie den Faden auf die Dorsalseite der Luftröhre und ziehen Sie durch, um eine Schleife um die Nadel zu machen. Als nächstes machen Sie einen Überhandknoten um die Nadel. Knoten fest ziehen, Nadel aus Luftröhre entfernen, Knoten schließen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Verwenden Sie Zangen, um das Herz zu heben, setzen Sie chirurgische Schere direkt hinter der Lunge, und schneiden Sie Bindegewebe, während das Herz angehoben, um die Lunge zu resektieren.</li>
	<li>Schneiden Sie das Herz, um es aus der Lunge zu entfernen.</li>
	<li>Legen Sie die Lunge eine Kassette mit der Maus-ID oder Studien-ID beschriftet. Legen Sie die Kassette in 10% gepuffertes Formalin und fixieren Sie für 24-48 h. Lungen können auf Wunsch über ein Jahr fixativ belassen werden.</li>
	<li>Übertragen Sie die Kassette mit der Lunge auf 70% Ethanol und gehen Sie mit der Verarbeitung für die Histologie.</li>
</ol>

<ol><li>Hsia, C. C., Hyde, D. M., Ochs, M., Weibel, E. R., Structure, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+official+research+policy+statement+of+the+American+Thoracic+Society%2FEuropean+Respiratory+Society%3A+standards+for+quantitative+assessment+of+lung+structure%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Respiratory+and+Critical+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">An official research policy statement of the American Thoracic Society/European Respiratory Society: standards for quantitative assessment of lung structure.</a> American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 181 (4), 394-418 (2010).</li>
<li>Vasilescu, D. M., Knudsen, L., Ochs, M., Weibel, E. R., Hoffman, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimized+murine+lung+preparation+for+detailed+structural+evaluation+via+micro-computed+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Optimized murine lung preparation for detailed structural evaluation via micro-computed tomography.</a> Journal of Applied Physiology. 112 (1), 159-166 (2012).</li>
<li>Blumler, P., Acosta, R. H., Thomas-Semm, A., Reuss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lung+fixation+for+the+preservation+of+air+spaces%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Lung+Research%22%5BJournal%5D)">Lung fixation for the preservation of air spaces.</a> Experimental Lung Research. 30 (1), 73-82 (2004).</li>
<li>Oldmixon, E. H., Suzuki, S., Butler, J. P., Hoppin, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perfusion+dehydration+fixes+elastin+and+preserves+lung+air-space+dimensions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Perfusion dehydration fixes elastin and preserves lung air-space dimensions.</a> Journal of Applied Physiology. 58 (1), 105-113 (1985).</li>
<li>Braber, S., Verheijden, K. A., Henricks, P. A., Kraneveld, A. D., Folkerts, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+fixation+methods+on+lung+morphology+in+a+murine+model+of+emphysema%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Lung+Cellular+and+Molecular+Physiology%22%5BJournal%5D)">A comparison of fixation methods on lung morphology in a murine model of emphysema.</a> American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 299 (6), 843-851 (2010).</li>
<li>Renne, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendation+of+optimal+method+for+formalin+fixation+of+rodent+lungs+in+routine+toxicology+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicologic+Pathology%22%5BJournal%5D)">Recommendation of optimal method for formalin fixation of rodent lungs in routine toxicology studies.</a> Toxicologic Pathology. 29 (5), 587-589 (2001).</li>
<li>Limjunyawong, N., Mock, J., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Instillation+and+Fixation+Methods+Useful+in+Mouse+Lung+Cancer+Research%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Instillation and Fixation Methods Useful in Mouse Lung Cancer Research.</a> Journal of Visualized Experiments. (102), e52964(2015).</li>
<li>Lum, H., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+10%25+formalin+fixation+on+fixed+lung+volume+and+lung+tissue+shrinkage.+A+comparison+of+eleven+laboratory+species%5BTitle%5D)+AND+%22American+Review+of+Respiratory+Disease%22%5BJournal%5D)">Effects of 10% formalin fixation on fixed lung volume and lung tissue shrinkage. A comparison of eleven laboratory species.</a> American Review of Respiratory Disease. 132 (5), 1078-1083 (1985).</li>
<li>Edmonds, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA-31+initiates+lung+tumorigenesis+and+promotes+mutant+KRAS-driven+lung+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">MicroRNA-31 initiates lung tumorigenesis and promotes mutant KRAS-driven lung cancer.</a> Journal of Clinical Investigation. 126 (1), 349-364 (2016).</li>
<li>Zhao, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wogonin+suppresses+melanoma+cell+B16-F10+invasion+and+migration+by+inhibiting+Ras-medicated+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Wogonin suppresses melanoma cell B16-F10 invasion and migration by inhibiting Ras-medicated pathways.</a> PLoS One. 9 (9), 106458(2014).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Das oben beschriebene Verfahren zur Perfusion, Inflation und Fixierung der Mauslungen ist ideal für die schnelle und effiziente Vorbereitung der Mauslungen für die Lungentumorhistologie und Pathologieanalyse. Das Verfahren erfordert keine spezielle Ausrüstung und kann in weniger als 6 Minuten pro Maus durchgeführt werden. Das Verfahren erfordert weder ein festes Volumen für die Inflation noch einen konstanten Flüssigkeitsdruck. Da dieses Verfahren nicht standardisiert ist, wird es nicht für diejenigen empfohlen, die ster...

Eine Vielzahl von Mausmodellen der Lungenonkogenese und Krebsmetastasen in die Lunge gibt es von komplexen GEMMs über krebserregende Modelle bis hin zu syngenischen und Xenograft-Modellen, bei denen Krebszellen über intrakardiale, intrathorakale, die Schwanzvene oder andere Methoden zur Etablierung von Tumoren in der Lunge injiziert werden. Alle diese Modelle teilen die gemeinsame Notwendigkeit der histologischen Bewertung der Lungenhistologie und Pathologie. Daher ist es notwendig, eine robuste, aber schnelle Methode zu haben, um Nekropsien von Mäusen durchzuführen, während die Lunge durchsetzt wird, um überschüssiges Blut zu entfernen, und die Lunge aufzublasen und zu fixieren, um die Lungenarchitektur klar zu visualisieren. Geschwindigkeit ist ein kritischer Bestandteil dieses Verfahrens, da es notwendig sein kann, die Lunge von Dutzenden von Mäusen zu einem einzigen Zeitpunkt zu sammeln. Dieses Verfahren kann in weniger als 6 Minuten pro Maus durchgeführt werden.
Während dieses Verfahren mehr als ausreichend für die Bewertung der Tumorhistologie ist, wird es nicht für diejenigen empfohlen, die stereologische oder morphometrische Messungen der Lunge durchführen möchten. Solche Messungen erfordern eine Standardinflation der Lunge, ebenso wie die Berechnung der absoluten Oberfläche der Lunge, des absoluten Volumens und der Alveolargröße und der Zahl1. Diese Methode ist auch nicht optimal für einige bildgebende Ansätze. Zum Beispiel erfordert die Bildgebung der Lunge über die "CT" für die ex vivo morphometrische Analyse, dass die Lunge mit Luft gefüllt bleibt2. Wenn die Erhaltung von Lufträumen und Abmessungen das Hauptanliegen ist, wird empfohlen, die Lunge durch Perfusionsdehydrierungstechniken3,4zu fixieren. Eines der größten Anliegen dieses Modells ist das Potenzial für das Brechen der Alveolarwände, die seine Verwendung in Studien von Emphysem enden; Das empfohlene Verfahren zur Fixierung der Lunge zur Untersuchung von Emphysem ist jedoch noch recht ähnlich, da es empfohlen wird, die Lunge entweder durch intratracheale Instillation von 10% Formalin (ähnlich dem hier beschriebenen Protokoll) unter konstantem Flüssigkeitsdruck oder durch In-situ-Fixierung5zu fixieren.
Der Vorteil des beschriebenen Verfahrens besteht hier darin, dass es keinen konstanten Flüssigkeitsdruck erfordert, sondern die Lunge aufbläht, bis sie sich vollständig erweitert hat, wodurch die für das Verfahren benötigte Zeit verringert wird. Das hier beschriebene Verfahren ähnelt den Methoden, die von einem Rüstungsarium der Gesellschaft für Toxikologische Pathologie empfohlen werden, wo ein Unterausschuss gebildet wurde, um die besten Methoden der Lungenfixierung für toxikologische Studien zu empfehlen. Die Mehrheit der Wissenschaftler in diesem Unterausschuss empfahl, die Lunge durch intratracheale Instillation mit einer Spritze zu fixieren, obwohl es unterschiedliche Empfehlungen für die Zeit gab, zu der die Lunge imfixativen 6belassen wurde. Während es also eine Vielzahl von Methoden der Lungeninflation und -fixierung gibt, wird die hier beschriebene Methode als optimale Methode vorgeschlagen, um die Lunge schnell aufzublasen und für die nachgeschaltete tumorhistologische Bewertung zu fixieren.

<table><tbody><tr><td>10% gepuffertes Formalin</td><td>Fisher</td><td>23-245685</td><td></td></tr><tr><td>22 G Nadel</td><td>BD</td><td>305155</td><td></td></tr><tr><td>3 mL Spritze</td><td>BD</td><td>309656</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td>Decon</td><td>2405</td><td></td></tr><tr><td>Pinzette</td><td>Harvard Apparatus</td><td>72-8595</td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Fisher</td><td>H19</td><td></td></tr><tr><td>Phosphat gepufferte Kochsalzlösung ( PBS)</td><td>Corning</td><td>21-030-CV</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Schere</td><td>Harvard Apparat</td><td>72-8428</td><td></td></tr></tbody></table>

perfusion und inflation der mauslunge für tumorhistologie

Perfusion and Inflation of the Mouse Lung for Tumor Histology

Die Fähigkeit, die Lungenhistologie zu bewerten, ist entscheidend für die Bereiche Lungenkrebsforschung und Krebsmetastasierung. Ebenso wichtig ist es, Nekropsien schnell und effizient aus Studien durchzuführen, ohne die Qualität des beschafften Gewebes zu beeinträchtigen. Das Ziel dieses Protokolls ist es, eine Methode zur schnellen Durchlässigkeit, Aufblasung und Fixierung von Mauslungen für die nachgelagerte histologische Analyse zu präsentieren. Diese Methode standardisiert die Lungeninflation nicht; daher erfordert es keine speziellen Verfahren oder Ausrüstung und stattdessen nur fixierend direkt durch die Luftröhre nach Perfusion durch das Herz. Dies ermöglicht eine ausreichende Schätzung der Tumorgröße, Histologie und Bewertung. Dies ermöglicht auch die Sammlung von gefrorenem Gewebe vor der Lungengewebefixierung. Diese Methode ist insofern eingeschränkt, als sie eine spätere morphometrische Quantifizierung der Lunge nicht zulässt; Es reicht jedoch mehr als aus für Lungentumoranalysen aus gentechnisch veränderten Mausmodellen (GEMMs), syngene Modelle sowie Xenograft-Tumor- und Metastasenstudien.

Das obige Protokoll ermöglicht eine schnelle Perfusion, Inflation und Fixierung der Mauslungen. Die nachstehenden Abbildungen stellen die Bedeutung jedes Schritts dar. Abbildung 1 zeigt H&amp;E-gefärbte Lungen, die mit PBS und Lunge durchdrungen wurden, bei denen der Perfusionsschritt übersprungen wurde oder die Lunge nicht richtig durchdrang. Wie gezeigt, erzeugt überschüssiges Blut in der schlecht durchbluteten Lunge weniger als ideale Histologie und kann es schwierig machen, die Lungenarc...

Der Zweck dieser Methode ist es, eine einfache und effiziente Methode für die Perfusion, Inflation und Fixierung von Mauslungen für die Untersuchung der Lungentumorpathologie und die Bewertung von Metastasen an der Lunge zu präsentieren.

Perfusion und Inflation der Mauslunge für Tumorhistologie

The ability to evaluate lung histology is critical for the fields of lung cancer research and cancer metastasis. It is equally important to perform ...

Das Verfahren wird von Mackenzie Davenport, einem Doktoranden des Edmonds Laboratory, vorgeführt. Nachdem Sie die Maus eingeschläfert haben, machen Sie mit einer chirurgischen Schere einen 3,5 bis fünf Millimeter großen horizontalen Schnitt in der Mitte des Unterbauchs. Führen Sie dann eine chirurgische Schere in den Schnitt ein und schneiden Sie vertikal die mittlere Mittellinie bis knapp unter den Hals der Maus.Ziehen Sie die Haut mit den Fingern zurück und untersuchen Sie die axillären Lymphknoten. Verwenden Sie eine chirurgische Schere, um einen 3,5 Millimeter langen seitlichen Schnitt zu machen, um die Bauchhöhle zu öffnen. Schneiden Sie dann in Innenrichtung bis zur Unterseite des Brustkorbs.Untersuche die Organe in der Bauchhöhle wie Leber, Milz und Nieren. Mit der flachen OP-Schere wird die Leber bewegt, um das Zwerchfell freizulegen. Untersuchen Sie das Zwerchfell auf Tumorwachstum oder Metastasen und schneiden Sie dann das Zwerchfell vorsichtig auf der rechten Seite des Bedieners ab, damit es sich ausdehnen kann.Schneiden Sie das Zwerchfell von rechts nach links, um die Brusthöhle und die Lunge freizulegen, und achten Sie darauf, die Lunge nicht zu schneiden. Schneiden Si

perfusion-and-inflation-of-the-mouse-lung-for-tumor-histology

Research

Forschung

JoVE Journal

Cancer Research

Krebsforschung

Das erfindungsgemäße Protokoll in der vorliegenden Studie berichtet ermöglicht selektiven Nachweis von Lungenmetastasen in einzelne Zelle Auflösung in Mäusen durch...

Verbesserte Visualisierung von Lungenmetastasen bei Single Cell Auflösung in Mäusen durch kombinierte<em&gt; In-situ</em&gt; Perfusion des Lungengewebes und X-Gal Färbung von<em&gt; LacZ</em&gt;-Tagged Tumor Cells

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