Name: Kombinierte Verwendung von Tail Vein Metastasis Assays und Real-Time In Vivo Imaging zur Quantifizierung der metastasierenden Kolonisation und Belastung von Brustkrebs in der Lunge (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-12-19T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Erfahren Sie, wie Sie Schwanzvenen-Metastase-Assays mit In-vivo-Bildgebung kombinieren, um Brustkrebs-Metastasen in der Lunge quantitativ zu erfassen. Diese nicht-invasive Methode ermöglicht Echtzeit-Monitoring von Kolonisation und Wachstum.

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Wir danken Emily Norton für die Unterstützung bei Virusinfektionen und die kritische Lektüre des Manuskripts. Wir danken auch Ryan Kanai für die Hilfe beim Erfassen von Bildern der Lunge und Kate E. Tubbesing für Hilfe bei der Bildanalyse der grünen Metastasen in der Lunge. Wir danken den Mitarbeitern der Tierforschungseinrichtung für die Unterstützung und unterstützung bei der Erstellung dieses Videos. Diese Arbeit wurde von einem Susan G. Komen Career Catalyst Grant unterstützt, der J.M.L. (#CCR17477184) verliehen wurde.

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Kritische Schritte der Methode Es ist wichtig, die Anzahl der injizierten Zellen (Schritt 3) für eine bestimmte Zelllinie und Mausdehnung zu optimieren, da dies die Anzahl der Metastasen, die sich bilden, und die Länge des Experiments stark beeinflussen kann. Wenn zu viele Zellen injiziert werden oder die Metastasen zu lange wachsen, können die Metastasen schwer zu zählen sein, was die Auswirkungen der genetischen Manipulation schwer einschätzen kann. Wenn jedoch zu wenige Zellen injiziert werden, kön...

Krebs bleibt die zweithäufigste Todesursache weltweit1 und Metastasen sind für die Mehrheit dieser Todesfälle verantwortlich2,3. Ein begrenztes Verständnis der molekularen Mechanismen, die die metastasierende Kolonisation und das anschließende Wachstum steuern, hat jedoch die Entwicklung wirksamer Behandlungen für metastasierende Krankheiten behindert. Die Identifizierung neuartiger therapeutischer Ziele erfordert einen Test, um zu testen, wie gestörte Expression oder Funktion eines Kandidatengens die Metastasenbildung und das Wachstum beeinflusst. Autochthone Mausmodelle haben zwar ihre Vorteile, sind aber zeitaufwändig und teuer zu generieren, wodurch sie besser für die Zielvalidierung als für die Zielermittlung geeignet sind. Transplantationsmodellsysteme, bei denen das Kandidatengen in vitro in Krebszellen gestört wird und dann Die Auswirkungen auf das metastasierende Potenzial in vivo bewertet werden, sind kostengünstiger und höherer Durchsatz als autochthone Modelle. Darüber hinaus sind virale Vektoren für die stabile Lieferung von RNAi, CRISPR/CAS9 und Transgenen weit verbreitet, was es relativ einfach macht, praktisch jedes Gen oder Gene zu stören, die an einer Krebszelllinie interessiert sind. Dieser Ansatz kann auch verwendet werden, um die Rolle von Kandidatengenen bei der metastasierenden Besiedlung und dem Wachstum menschlicher Krebszelllinien zu untersuchen, indem die Zellen in immungeschwächte oder humanisierte Mäuse transplantiert werden.
Die beiden Arten von Assays, die verwendet werden, um die Metastasenbildung durch transplantierte Krebszellen in vivo zu testen, sind spontane Metastasen-Assays und experimentelle Metastasen-Assays. In spontanen Metastasen-Assays4,5werden Krebszellen in Mäuse injiziert, erlaubt, einen Primärtumor zu bilden, und dann werden spontane Metastasenbildung und anschließendes Wachstum untersucht. Die Stärke dieses Modells besteht darin, dass die Zellen alle Schritte des metastasierenden Prozesses ausführen müssen, um metastasierende Tumoren zu bilden. Jedoch, viele Krebszelllinien nicht effizient in spontanen Metastasen-Modelle metastasieren, und jede Manipulation der Zellen, die primäre Tumorwachstum beeinflusst, kann die Ergebnisse der Metastasierung Assay verwirren. Experimentelle Metastasen-Assays, bei denen Krebszellen direkt in den Kreislauf injiziert werden, werden verwendet, um diese Fallstricke zu vermeiden. Häufige experimentelle Metastasen-Assays sind die Schwanzveneninjektion6,7,8 (und hier gezeigt), intrakardiale Injektion9und Portalveneninjektion10.
Der Zweck des hier vorgestellten Protokolls ist es, einen in vivo experimentellen Metastasen-Assay bereitzustellen, der es einem Forscher ermöglicht, die Metastasenbildung und das Wachstum in Echtzeit zu überwachen, sowie die Anzahl und Größe von Endpunktmetastasen in der Lunge derselben Maus zu quantifizieren. Um dies zu erreichen, werden traditionelle experimentelle Schwanzvenenmetastasen6,7,8 mit Live-Tierbildgebung kombiniert, mit einem in vivo Bildgebungsgerät9,11,12,13,14. Tumorzellen, die sowohl Luziferase als auch ein fluoreszierendes Protein stabil exezieren, werden über die laterale Schwanzvene in Mäuse injiziert und dann wird das in vivo Bildgebungsgerät verwendet, um Veränderungen der metastasierenden Belastung in der Lunge im Laufe der Zeit zu messen (Abbildung 1). Das in vivo Live-Tierbildbildgerät kann jedoch die Größe einzelner Metastasen nicht unterscheiden oder messen. So wird am Ende des Experiments ein fluoreszierendes Stereomikroskop verwendet, um die Anzahl zu zählen und die Größe der fluoreszierenden Metastasen in der Lunge zu messen, ohne dass Schnittund und Histologie oder Immunhistochemie erforderlich sind (Abbildung 1). Dieses Protokoll kann verwendet werden, um zu testen, wie die Veränderung der Expression oder Funktion eines Kandidatengens die Metastasenbildung und das Wachstum beeinflusst. Mögliche therapeutische Verbindungen wie kleine Moleküle oder funktionsblockierende Antikörper können ebenfalls getestet werden.
Um diesen Ansatz zu demonstrieren, führten wir zunächst ein Proof-of-Concept-Experiment durch, bei dem der wesentliche Replikationsfaktor, das Replikationsprotein A3 (RPA3), in metastasierenden Maus-Brustkrebszellen niedergeschlagen wird. Wir zeigen, dass Mäuse, die mit RPA3-Knockdown-Zellen injiziert werden, zu jedem Zeitpunkt eine signifikant geringere metastasierende Belastung aufweisen als Mäuse, die mit Kontrollzellen injiziert werden. Die Analyse der metastasierenden Lunge zeigt, dass diese reduzierte metastasierende Belastung das Ergebnis einer signifikant reduzierten metastasierenden Kolonisation und eines beeinträchtigten Wachstums der metastasierenden Metastasen ist. Um diese Technik weiter zu demonstrieren, haben wir getestet, ob der gleichzeitige Abschlag von Yes-assoziiertem Protein (YAP) und Transkriptions-Co-Aktivator mit einem PDZ-bindenden Motiv (TAZ) die metastasierende Kolonisation oder das nachfolgende Wachstum beeinträchtigt. YAP und TAZ sind zwei verwandte Transkriptions-Coaktivatoren, die die kritischen downstream-Effektoren des Hippo-Pfads sind. Wir15,16 und andere haben YAP und TAZ in Metastasen verwickelt (rezensiert in17,18,19), was darauf hindeutet, dass diese Proteine gute therapeutische Ziele sind. Konsequenterweise fanden wir heraus, dass Mäuse, die mit YAP/TAZ-Knockdown-Zellen injiziert wurden, die metastasierende Belastung signifikant reduziert hatten. Die Analyse der Lunge zeigte, dass die YAP/TAZ-Knockdown-Zellen viel weniger Metastasen bildeten und dass die Metastasen, die sich bildeten, kleiner waren. Diese Experimente zeigen, wie experimentelle Metastasen-Assays es einem Forscher ermöglichen, schnell und kostengünstig die Rolle eines Kandidatengens bei der Metastasenbildung und dem Wachstum zu testen. Sie zeigen ferner, wie der kombinierte Einsatz von Live-Tierbildgebung und fluoreszierender Quantifizierung von Metastasen in ganzen Lungen es dem Forscher ermöglicht, die Schritte während der metastasierenden Besiedlung besser zu verstehen.

<table><tbody><tr><td>10 % SDS-PAGE Gel</td><td></td><td></td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>2,5 % Trypsin</td><td>Gibco</td><td>15090-046</td><td>Trypsin für Gewebekulturen</td></tr><tr><td>96 Well flache weiße Testplatte mit flachem Boden</td><td>Corning</td><td>3922</td><td>Zur Messung des Luciferase- und Renilla-Signals in kultivierten Zellen</td></tr><tr><td>Alkohol-Tücher</td><td></td><td></td><td>Zur Sterolisierung der Injektionsstelle vor Schwanzveneneinstichen</td></tr><tr><td>BALB/C-Mäuse ( weiblich, 6 Wochen)</td><td>Taconic</td><td>BALB-F</td><td>Für die metastasierende Besiedlung und Belastung von Schwanzvenen</td></tr><tr><td>Assays BSA regulär</td><td>VWR Ameresco</td><td>97061-416</td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>Zelllysepuffer</td><td>Zellsignalisierung</td><td></td><td>Zum Sammeln von Protienproben</td></tr><tr><td>Celltreat Spritzenfilter, PES 30mm, 0,45 &mu; m</td><td>Celltreat</td><td>40-229749-CS</td><td>Zur Filterung von Virusüberständen</td></tr><tr><td>CO2 und Euthanasiekammer</td><td>Zur Einschläferung</td><td></td><td></td> von Mäusen</tr><tr><td>Dual-Luciferase Reporter Assay Kit</td><td>Promega</td><td>E1960</td><td>Zur Messung des Luziferase- und Renilla-Signals in kultivierten Zellen</td></tr><tr><td>Dulbecco& 39; s phosphatgepufferte Kochsalzlösung</td><td>Himedia</td><td>TS1006</td><td>Für PBS</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>VWR</td><td>97061-406</td><td>Wird verwendet, um Trypsin für Gewebekulturen zu verdünnen</td></tr><tr><td>FBS 100% US-Herkunft</td><td>VWR</td><td>97068-085</td><td>Bestandteil des kompletten Wachstumsmediums</td></tr><tr><td>Fujifilm LAS-3000 Gel-Imager</td><td>Fujifilm</td><td></td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>GAPDH (14C10) Rabibit mAb</td><td>Cell Signaling</td><td>2118</td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>Ziege Anti-Kaninchen IgG (H+L) Sekundärer Antikörper, HRP-Konjugat</td><td>Thermo Scientific</td><td>31460</td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>Menschliche embryonale Nierenzellen, HEK-293FT</td><td>Invitrogen</td><td>R70007</td><td>Zelllinie zum Verpacken von Viren</td></tr><tr><td>HyClone DMEM/High Clucose</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>SH30243.01</td><td>Bestandteil des kompletten Wachstumsmediums</td></tr><tr><td>Hygromycin B, Ultra Pure Grade</td><td>VWR Ameresco</td><td>97064-810</td><td>Für die Antibiotika-Selektion infizierter Zellen</td></tr><tr><td>I3-P/i3 Multi-Mode Microplate/EA</td><td>Molekulare Geräte</td><td></td><td>Zur Messung des Luciferase- und Renilla-Signals in kultivierten Zellen</td></tr><tr><td>Imagej</td><td></td><td></td><td>Wird für die Bildanalyse von Lungenmetastasen verwendet: Schwellenwert auf 25 & 100 gesetzt</td></tr><tr><td>Immuno-Blot PVDF-Membran</td><td>Biorad</td><td>1620177</td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>Isofluran</td><td></td><td></td><td>Für die Anästhesie von Mäusen</td></tr><tr><td>IVIS Lumina XRMS In Vivo Imaging System (In-vivo-Bildgebungsgerät für lebende Tiere)</td><td>PerkinElmer</td><td>CLS136340</td><td>Für die In-vivo-Bildgebung von Metastasen</td></tr><tr><td>Leica M205 FA & Lecia DCF3000 G (GFP und Hellfeldfilter)</td><td>Leica Microsystems</td><td></td><td>Mikroskop und Kamera zur Visualisierung, Zählung und Entnahme von Metastasen in der Lunge; 10-fache Vergrößerung, 3,5 Sekunden Belichtung, 1,4 Verstärkung</td></tr><tr><td>L-Glutamin</td><td>Gibco</td><td>25030-081</td><td>Bestandteil des kompletten Wachstumsmediums</td></tr><tr><td>Lipofectamine 3000</td><td>Life Technologies</td><td>L3000008</td><td>Für die YAP/TAZ-TEAD-Reportertransfektion</td></tr><tr><td>Living Image 3.2 (Bildsoftwareprogramm)</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>Software for IVIS</td></tr><tr><td>Mouse breast cancer cells, 4T1</td><td>Karmanos Cancer Institute</td><td>Aslakson, CJ et al.,1992</td><td>Mouse metastatic breast cance cell</td></tr><tr><td>line Multi-Gauge version 3.0</td><td>Fujifilm</td><td></td><td>Software zur Quantifizierung der Intensität der Western-Blot-Bande</td></tr><tr><td>Opti-MEM (Transfektionspuffer)</td><td>Gibco</td><td>31985-062</td><td>Zum Verpacken von Viren und Transfektion</td></tr><tr><td>Penicillin Streptomycin</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>Bestandteil eines kompletten Wachstumsmediums</td></tr><tr><td>Pierce BCA Protein Assay Kit</td><td>Thermo Scientific</td><td>23225</td><td>Zur Quantifizierung der Proteinkonzentration</td></tr><tr><td>Pierce Phosphatase Inhibitor Mini Tabletten</td><td>Thermo Scientific</td><td>A32957</td><td>Dem Zelllysepuffer zugesetzt</td></tr><tr><td>Pierce Protease Inhibitor Mini Tabletten</td><td>Thermo Scientific</td><td>A32953</td><td>Dem Zelllysepuffer zugesetzt</td></tr><tr><td>Polybren (Hexadimethrinbromid)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>45-H9268</td><td>Zur Infektion</td></tr><tr><td>Puromycin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>45-P7255</td><td>Zur Antibiotika-Selektion infizierter Zellen</td></tr><tr><td>Nagetier-Fixer</td><td></td><td></td><td>Zur Fixierung von Mäusen während der Schwanzvenenentzündung</td></tr><tr><td>SDS-PAGE Laufpuffer</td><td></td><td></td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>TAZ (V3886) Antikörper</td><td>Zellsignalisierung</td><td>4883</td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>TBST-Puffer</td><td></td><td></td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>TC20 automatisierter Zellzähler</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td>Zum Zählen</td></tr><tr><td>von Zellen Vektoren</td><td>Siehe Tabelle 1 für eine vollständige Liste der Vektoren</td><td></td><td></td></tr><tr><td>VWR Inverses Fluoreszenzmikroskop</td><td>VWR</td><td>89404-464</td><td>Zur Visualisierung von Fluoreszenz in ZSGreen-markierte Zellen</td></tr><tr><td>Western-Transferpuffer</td><td></td><td></td><td>Für Western Blot</td></tr><tr><td>XenoLight D-Luciferin K+ Salz</td><td>PerkinElmer</td><td>122799</td> Substrat, das <td>Mäusen für in vivo biolumineszente IVIS-Bilder injiziert wird</td></tr><tr><td>X-tremeGENE 9 DNA-Transfektionsreagenz (Lipidlösung für die Transfektion)</td><td>Roche</td><td>6365787001</td><td>Zum Verpacken von Viren</td></tr><tr><td>YAP (D8H1X) XP Kaninchen mAb</td><td>Zellsignalisierung</td><td>14074</td><td>Für Western Blot</td></tr></tbody></table>

kombinierte verwendung von tail vein metastasis assays und real-time in vivo imaging zur quantifizierung der metastasierenden kolonisation und belastung von brustkrebs in der lunge

Combined Use of Tail Vein Metastasis Assays and Real-Time In Vivo Imaging to Quantify Breast Cancer Metastatic Colonization and Burden in the Lungs

Metastasen sind die Hauptursache für krebsbedingte Todesfälle und es gibt nur begrenzte therapeutische Möglichkeiten für Patienten mit metastasierenden Erkrankungen. Die Identifizierung und Erprobung neuartiger therapeutischer Ziele, die die Entwicklung besserer Behandlungen für metastasierende Erkrankungen erleichtern, erfordert präklinische In-vivo-Modelle. Gezeigt wird hier ein syngenes Mausmodell zur Assaying-Metatonisierung von Brustkrebs und anschließendem Wachstum. Metastasierende Krebszellen werden stabil mit viralen Vektoren transduziert, die Glögfeuer-Luziferase und ZsGreen-Proteine kodieren. Kandidatengene werden dann in luziferase/ZsGrün-exezierenden Krebszellen stabil manipuliert und dann werden die Zellen über die laterale Schwanzvene in Mäuse injiziert, um metastasierende Besiedlung und Wachstum zu assay. Ein In-vivo-Bildgebungsgerät wird dann verwendet, um die Biolumineszenz oder Fluoreszenz der Tumorzellen bei den lebenden Tieren zu messen, um Veränderungen der metastasierenden Belastung im Laufe der Zeit zu quantifizieren. Die Expression des fluoreszierenden Proteins ermöglicht es, die Anzahl und Größe der Metastasen in der Lunge am Ende des Experiments zu quantifizieren, ohne dass eine Schnitt- oder histologische Färbung erforderlich ist. Dieser Ansatz bietet eine relativ schnelle und einfache Möglichkeit, die Rolle von Kandidatengenen bei der metastasierenden Kolonisation und dem Wachstum zu testen, und bietet viel mehr Informationen als herkömmliche Schwanzvenenmetastasasasen. Mit diesem Ansatz zeigen wir, dass der gleichzeitige Knockdown von Yes assoziiertem Protein (YAP) und Transkriptions-Co-Aktivator mit einem PDZ-bindenden Motiv (TAZ) in Brustkrebszellen zu einer reduzierten metastasierenden Belastung in der Lunge führt und dass diese reduzierte Belastung das Ergebnis einer signifikant beeinträchtigten metastasierenden Kolonisation und eines reduzierten Wachstums von Metastasen ist.

Um den obigen Ansatz zu demonstrieren, führten wir ein Proof-of-Concept-Experiment durch, bei dem ein kritischer Replikationsfaktor, RPA3, in einer metastasierenden Maus-Mammakarzinom-Zelllinie niedergeschlagen wurde (4T122). Während das Protokoll beschreibt, dass die Zellen vor der genetischen Manipulation sowohl mit Luziferase als auch mit fluoreszierenden Proteinen gekennzeichnet werden, haben wir einen modifizierten Ansatz verwendet, da DIE RNAi-Vektoren auch ZsGreen liefern (<strong class="xf...

Der beschriebene Ansatz kombiniert experimentelle Schwanzvenenmetastasierungs-Assays mit in vivo Live-Tier-Imaging, um neben der Quantifizierung der Metastasenzahl und -größe in der Lunge auch die Echtzeit-Überwachung der Bildung und des Wachstums von Brustkrebsmetastasen zu ermöglichen.

Kombinierte Verwendung von Tail Vein Metastasis Assays und Real-Time In Vivo Imaging zur Quantifizierung der metastasierenden Kolonisation und Belastung von Brustkrebs in der Lunge

Metastasis is the main cause of cancer-related deaths and there are limited therapeutic options for patients with metastatic disease. The identification ...

Unser Protokoll kann verwendet werden, um schnell und einfach die Rolle eines beliebigen Kandidatengens bei der metastasierenden Kolonisation und dem Wachstum zu testen. Das Protokoll ermöglicht auch echtzeit-Überwachung von Metastasen, Bildung und Wachstum, sowie Quantifizierung der MetastasenZahl und Größe bei den gleichen Tieren ohne die Notwendigkeit einer Resektion oder histologische Färbung. Platte vier T1-Zellen bei 150.000 Zellen pro Brunnen in einer 12-Well-Platte in kompletten Wachstumsmedien.Inkubieren bei 37 Grad Celsius 5% Kohlendioxid über Nacht. Am nächsten Tag die Wachstumsmedien aus den Zellen ansaugen. Fügen Sie 500 Mikroliter luziferase viralen Überstand und 500 Mikroliter fluoreszierendes Protein viralen Überstand, um gleichzeitig die Zellen mit der Luziferase und fluoreszierenden Protein viralen Überwasserungsmitteln zu infizieren.Dann fügen Sie einen Mikroliter von acht Milligramm pro Milliliter Hexadimethrinbromid hinzu und brüten bei 37 Grad Celsius und 5% Kohlendioxid für 24 bis 48 Stunden. Trypsinisieren Sie die vier T1-Zellen mit 500 Mikroliter Trypsin. Nach zwei bis fünf Minuten alle Zellen in vier Milliliter Selektionsmedien auf eine sechs Zentimeter gr

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Research

Forschung

JoVE Journal

Cancer Research

Krebsforschung

Das erfindungsgemäße Protokoll in der vorliegenden Studie berichtet ermöglicht selektiven Nachweis von Lungenmetastasen in einzelne Zelle Auflösung in Mäusen durch...

Verbesserte Visualisierung von Lungenmetastasen bei Single Cell Auflösung in Mäusen durch kombinierte<em&gt; In-situ</em&gt; Perfusion des Lungengewebes und X-Gal Färbung von<em&gt; LacZ</em&gt;-Tagged Tumor Cells

In der Pathogenese von Knochenmetastasen ist die Angiogenese ein entscheidender Prozess und stellt somit ein Ziel für die Bildgebung und Therapie. Hier präsentieren wir ein Rattenmodell der ortsspezifischen Brustkrebs und Knochenmetastasen beschreiben Strategien, um nicht-invasiv Bild...

Multimodale Bildgebung von Angiogenese in einem Nude Rattenmodell der Brustkrebs Knochenmetastasen mittels Magnetresonanztomographie, volumetrische Computertomographie und Ultraschall

Dieses Video beschreibt eine Technik zur Injektion markierter Krebszellen mittels Schwanzveneninjektion in ein Mausmodell. Darüber hinaus überwachen wir die Metastasierung und das Wachstum von Brustkrebs mit Hilfe von Echtzeit-In-vivo-Bildgebung von lebenden Tieren.

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Dieses Manuskript beschreibt eine Methode zur Quantifizierung der Tumor Zelle Ansammlung in der Lunge in einem Tiermodell der Tumor Metastasen.

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Dieses Protokoll beschreibt die quantitative Echtzeit-PCR (QRT-PCR) verwenden, um Tumorzellen spezifische mRNA, die Metastasen in der Maus Lungengewebe zu erkennen.

Beurteilung von Lungenmetastasen in Maus-Mammatumormodelle durch quantitative Echtzeit-PCR

Wir beschreiben ein relativ einfaches Verfahren zur ex vivo Echtzeit-Bildgebung der Tumorzell Stroma Wechselwirkungen innerhalb Lungenmetastasen unter Verwendung fluoreszierenden Reportern in Mäusen. Verwendung von Spinnplatten konfokale Mikroskopie, ermöglicht diese Technik Visualisierung von lebenden Zellen für mindestens 4 h und angepasst werden könnten andere entzündliche Lungenerkrankungen zu untersuchen.

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Diese Arbeit setzt ein fortschrittliches Protokoll vor, um die Tumorbelastung durch den Nachweis von grünen Fluoreszenzprotein- und Biolumineszenzsignalen sowie die Integration quantitativer molekularer Detektionstechniken genau zu bewerten.

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Die intravenöse Injektion von Krebszellen wird häufig in der Metastasenforschung eingesetzt, aber die metastasierende Tumorbelastung kann schwer zu analysieren sein. Hierin demonstrieren wir ein Schwanzvenen-Injektionsmodell der Metastasierung und beinhalten einen neuartigen Ansatz zur Analyse der resultierenden metastasierenden Lungentumorbelastung.

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Ein permanentes Fenster zur Untersuchung von Krebsmetastasen in der Lunge

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Im lebenden Organismus Bildgebung zur Messung der spontanen Lungenmetastasierung von orthotopisch injizierten Brusttumorzellen

Erfahren Sie, wie Sie Schwanzvenen-Metastase-Assays mit In-vivo-Bildgebung kombinieren, um Brustkrebs-Metastasen in der Lunge quantitativ zu erfassen. Diese nicht-invasive Methode ermöglicht Echtzeit-Monitoring von Kolonisation und Wachstum.

Kombinierte Verwendung von Tail Vein Metastasis Assays und Real-Time In Vivo Imaging zur Quantifizierung der metastasierenden Kolonisation und Belastung von Brustkrebs in der Lunge (Video) | JoVE Journal

Kombinierte Verwendung von Tail Vein Metastasis Assays und Real-Time In Vivo Imaging zur Quantifizierung der metastasierenden Kolonisation und Belastung von Brustkrebs in der Lunge

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