Name: Visualisierung von Östrogenrezeptoren bei Mäusen mit TNBS-induzierter Morbus Crohn mit Immunfluoreszenz (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-03-12T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 2 s
Description: Erfahren Sie die Immunfluoreszenz-Methode zur Visualisierung von Östrogenrezeptoren im Kolon von Mäusen mit TNBS-induzierter Morbus Crohn. Dieses validierte Protokoll ermöglicht präzise histologische Analysen.

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Die Arbeit wurde dank der finanziellen Unterstützung der Behörden der Universität Lodz veröffentlicht: Vizerektor für wissenschaftliche Forschung, Vizerektor für nationale und internationale Zusammenarbeit und Dekan der Fakultät für Biologie und Umweltschutz. Damian Jacenik wurde durch Stipendien (2017/24/T/NZ5/00045 und 2015/17/N/NZ5/00336) vom National Science Centre, Polen, unterstützt.

Tierexperimentelle Studien wurden mit Zustimmung des Lokalen Ethikausschusses (28/B29/2016) gemäß der Richtlinie 2010/63/EU des Europäischen Parlaments und des Rates vom 22. September 2010 und institutionellen Empfehlungen durchgeführt.
1. TNBS-induziertes murines Modell der Morbus Crohn
HINWEIS: Dieses Protokoll verwendet männliche BALB/C-Mäuse mit einem Gewicht von 25-28 g. Tiere werden bei einer konstanten Temperatur (22-24 °C) und, relative Luftfeuchtigkeit 55 x 5 %, untergebracht und in einem 12 h Licht/Dunkel-Zyklus mit freiem Zugang zu Standard-Chow-Pellets und Leitungswasser ad libitumgehalten.
<ol><li>Legen Sie die Maus in die Induktionskammer und schließen Sie den Deckel fest. Die Maus kurz mit Isofluran ansien (25%O2 mitO2-Durchfluss rate bei 1,5-2 L/min). HINWEIS: Die Atemfrequenz sollte rhythmisch und langsamer als normal bleiben und sich nicht als Reaktion auf einen schädlichen Reiz ändern.</li>
	<li>Instill4 mg TNBS in 0,1 ml 30% Ethanol in 0,9% NaCl oder 0,1 ml 30% Ethanol in 0,9% NaCl als Fahrzeugkontrolle in den distalen Dickdarm durch einen Katheter. HINWEIS: Der Katheter sollte sorgfältig ca. 3 cm in den Anus eingeführt werden.</li>
	<li>Überwachen Sie die Maus täglich vom zweiten bis achten Tag auf klinische Parameter wie Körpergewicht, rektale Blutungen, Stuhlkonsistenz und Mortalität.</li>
	<li>Am achten Tag die Maus durch Zervixverrenz einschläfern.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60813/60813fig1.jpg"> Abbildung 1: Zeitleiste für TNBS-induziertes murines Modell der Morbus Crohn. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60813/60813fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
2. Trennung und makroskopische Beurteilung des Dickdarms
HINWEIS: Einen Tag vor der Dickdarmtrennung 100 l Antibiotikum in 1 ml Phosphatpuffer-Saline (PBS) verdünnen und bei 4 °C über Nacht verlassen.
<ol><li>Reinigen Sie die Haut über dem Bauch mit 75% Ethanol und steriler Gaze.</li>
	<li>Schneiden Sie die Bauchwand vom Brustbein zum Anus mit steriler Schere und Pinzette.</li>
	<li>Schneiden Sie den Doppelpunkt so nah wie möglich an den Anus und Cecum ab.</li>
	<li>Legen Sie den Doppelpunkt auf die Petrischale. Schneiden Sie den Doppelpunkt vom Anus in das Cecum-Ende. Reinigen und waschen Sie den Dickdarm 2-4 Mal in kalter Antibiotika-PBS-Lösung.</li>
	<li>Makroskopische Auswertung mit einem Bremssattel gemäß Tabelle 1. HINWEIS: Gewebehaftung* und Erythem/Hämorrblutung,Fäkalienblut# und Durchfallunterliegen einer visuellen Beurteilung. * Gewebehaftung mit einer Drei-Punkte-Skala (0: Dickdarm ohne Gewebehaftung, 1: Dickdarm mit mäßiger Gewebehaftung, 2: Dickdarm mit ausgedehnter Gewebehaftung); •basierend auf Abwesenheit (0) oder Vorhandensein (1) von Erythem/Hämorrblutung, Fäkalienblut und Durchfall.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Haftung*</td>
			<td>Erythem/Blutungen#</td>
			<td>Fäkalblut#</td>
			<td>Durchfall#</td>
			<td>Länge des Geschwürs</td>
			<td>Kolondicke</td>
			<td>Colon-Länge</td>
		</tr>
<tr>
<td>Punkte (0 – 2)</td>
			<td>Punkte (0 – 1)</td>
			<td>Punkte (0 – 1)</td>
			<td>Punkte (0 – 1)</td>
			<td>cm/Punkte</td>
			<td>mm/Punkte</td>
			<td>cm/Punkte</td>
		</tr>
<tr>
<td>0 – abwesend</td>
			<td>0 – abwesend</td>
			<td>0 – abwesend</td>
			<td>0 – abwesend</td>
			<td rowspan="3">0,5 cm = 0,5 Punkt</td>
			<td rowspan="3">
n mm = n Punkte</td>
			<td>0 – &lt;10% kürzer als die Steuerung</td>
		</tr>
<tr>
<td>1 – mäßig</td>
			<td>1 – vorhanden</td>
			<td>1 – vorhanden</td>
			<td>0.5 – leichter/lockerer Hocker</td>
			<td>1 – von 10 bis 20% kürzer als die Steuerung</td>
		</tr>
<tr>
<td>2 – vorhanden</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1 – vorhanden</td>
			<td>2 – über 20% kürzer als die Steuerung</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabelle 1: Makroskopische Bewertung des Darms von Mäusen mit TNBS-induziertem Modell der Morbus Crohn.
<ol start="6"><li>Konvertieren Sie die Länge des Geschwürs in Zentimeterin in eine Punktskala, d.h. jeder 0,5 cm Geschwür wird als 0,5 Punkt gezählt. Konvertieren Sie die Dicke des Doppelpunkts in Millimetern in eine Punktskala, d.h. jeder n mm entspricht n Punkten.</li>
	<li>Konvertieren Sie die Länge des Doppelpunkts in Zentimetern auf einer Drei-Punkte-Skala. Die Von jeder Maus mit TNBS-induzierter Morbus erhaltene Dickdarmlänge wird im Verhältnis zur durchschnittlichen Dickdarmlänge für die Kontrollgruppe (0: &lt;10% kürzer als die Kontrolle, 1: 10 bis 20% kürzer als die Kontrolle, 2: über 20% kürzer als die Kontrolle).</li>
	<li>Berechnen Sie die makroskopische Gesamtpunktzahl nach der Gleichung: Gesamtmakroskopische Punktzahl = Haftung (Punkte) + Erythem/Hämorragodes (Punkte) + Fäkalienblut (Punkte) + Durchfall (Punkte) + Länge des Geschwürs (Punkte) + Doppelpunktdicke (Punkte) + Doppelpunktlänge (Punkte).</li>
</ol>3. Colon-Probenvorbereitung
<ol><li>Schneiden Sie den Doppelpunkt in 1-2 cm Fragmente und legen Sie jedes auf Schwamm in einer entsprechend beschrifteten histologischen Kassette. HINWEIS: Schwämme für histologische Kassetten verhindern die Dickdarmfaltung während der Dehydrierung und Inkubation in flüssigem Paraffin.</li>
	<li>Das Dickdarmfragment in 4% Formaldehyd geben und mindestens 24 h bei 4 °C brüten.</li>
	<li>Bereiten und programmieren Sie den Gewebeprozessor für 1 h Inkubation in 50%, 70%, 90%, 95%, 100% Ethanol, Xylol/100% Ethanol (1:1; v/v) und nur Xylol sowie für mindestens 3 h Inkubation in flüssigem Paraffin. HINWEIS: Die Dehydrierung muss bei steigenden Konzentrationen von Ethanol und Xylol erfolgen, aber die Ethanolkonzentration kann modifiziert werden. Das Xylol/Ethanol-Gemisch wird empfohlen, ist aber nicht erforderlich.</li>
	<li>Übertragen Sie das Doppelpunktfragment in eine histologische Box und legen Sie es in den vorprogrammierten Gewebeprozessor.</li>
	<li>Führen Sie den Gewebeprozessor aus.</li>
	<li>Nach inkubationsschritten das Doppelpunktfragment in eine Metallform geben, so dass sich die beiden Enden des Dickdarms in einer aufrechten Position befinden und ein Drittel der Form mit flüssigem Paraffin füllen.</li>
	<li>Legen Sie die Form für einige Sekunden in den Kühlbereich (-5 °C) und bewegen Sie die Form dann in den Wärmebereich (70 °C). Legen Sie im unteren Teil der histologischen Box und decken Sie das gesamte Doppelpunktfragment mit flüssigem Paraffin ab.</li>
	<li>Lassen Sie die Metallform mit dem Doppelpunktfragment in Paraffin für ein paar Minuten im Kühlbereich. Die Metallform aus dem Paraffinblock nehmen und mindestens 24 h bei 4 °C brüten.</li>
	<li>Entfernen Sie überschüssiges Paraffin aus dem Block und legen Sie es in ein vollautomatisches Drehmikrotom ein. HINWEIS: Der Paraffinblock kann vor diesem Schritt einige Minuten bei -20 °C gelagert werden.</li>
	<li>Schneiden Sie das Doppelpunktfragment in 5 m Abschnitte.</li>
	<li>Den Dickdarmabschnitt in ein auf 40 °C vorgeheiztes Wasserbad übertragen.</li>
	<li>Verwenden Sie die beschriftete Glasrutsche, um den Doppelpunktabschnitt aus dem Wasserbad zu entfernen. HINWEIS: Die Doppelpunktabschnitte schweben auf dem Wasser. Legen Sie die beschriftete Glasrutsche unter dem Doppelpunktabschnitt ins Wasser und ziehen Sie die Glasrutsche vorsichtig zurück.</li>
	<li>Lassen Sie die Glasrutsche für 24 h bei Raumtemperatur. Für eine langfristige Lagerung halten Sie die Glasrutsche bei 4 °C nach 24 h Inkubation bei Raumtemperatur.</li>
</ol>4. Immunhistochemie mit Immunfluoreszenzfärbung
HINWEIS: Lassen Sie den Doppelpunktabschnitt während des Eingriffs nicht in schrittzueinem Schritt trocknen.
<ol><li>Entfernen Sie Paraffin, indem Sie die Glasrutsche in Xylol für 5 min inkubieren. Wiederholen Sie diesen Schritt dreimal.</li>
	<li>Legen Sie die Glasrutsche 5 min in Xylol/100% Ethanol (1:1; v/v). Wiederholen Sie diesen Schritt dreimal.</li>
	<li>Rehydrieren Sie den Dickdarmabschnitt in einer Reihe von abnehmenden Ethanolkonzentrationen, d.h. 70%, 50%, 30% und 10% Ethanol für 5 min. Wiederholen Sie jeden Schritt dreimal.</li>
	<li>Spülen Sie die Glasrutsche unter fließendem Wasser für 5 min.</li>
	<li>Antigen-Rückgewinnungspuffer (10 mM Natriumcitrat; 0,05% Tween 20, pH 6,0) auf 95-98 °C vorheizen und den Glasschlitten in siedender Antigen-Retrievallösung für 10 min erhitzen. HINWEIS: Der Antigen-Abrufschritt ist optional, wird jedoch empfohlen. Die Entlarvungslösung sollte in Abhängigkeit von dem im Experiment verwendeten Antikörper optimiert werden.</li>
	<li>Zeichnen Sie einen Kreis um den Doppelpunktabschnitt mit einem hydrophoben Stift. HINWEIS: Dieser Schritt ist optional, wird jedoch empfohlen. Der hydrophobe Stift verhindert die Verschwendung von Reagenzien, indem die Flüssigkeit in einem kleinen Volumen im Inneren gepoolt gehalten wird, das den Kreis markiert.</li>
	<li>Inkubieren Sie den Abschnitt in 3% Wasserlösung von Wasserstoffperoxidase für 10 min.</li>
	<li>Waschlösung waschen (50 mM Tris-HCl, pH 7,4; 150 mM NaCl; 0,05% Tween 20) für 5 min.</li>
	<li>Inkubationslösung inkubieren (5% normales Ziegenserum; 50 mM Tris-HCl, pH 7,4; 150 mM NaCl; 0,05% Triton X-100) für 1 h bei Raumtemperatur. HINWEIS: In der Blockierlösung muss das normale Serum von derselben Spezies wie der sekundäre Antikörper stammen. In Phasen, in denen eine Inkubation erforderlich ist, legen Sie die Glasrutsche in eine Feuchtigkeitskammer, um eine übermäßige Verdunstung zu verhindern.</li>
	<li>Entfernen Sie die Blockierlösung und fügen Sie 20-50 L Primärantikörper gegen ER, ER oder GPER in 1% Rinderserumalbumin mit 50 mM Tris-HCl, pH 7,4, 150 mM NaCl, 0,05% Triton X-100, hinzu. HINWEIS: Empfohlene Verdünnungen primärer Antikörper sind in Tabelle 2dargestellt.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Antikörpertyp</td>
			<td>Antikörper gegen</td>
			<td>Clonalität</td>
			<td>Wirtsarten</td>
			<td>Artenreaktivität</td>
			<td>Verdünnung</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="13">Primäre</td>
			<td rowspan="4">ER</td>
			<td rowspan="4">Polyclonal</td>
			<td rowspan="4">Kaninchen</td>
			<td>Menschlichen</td>
			<td rowspan="13">1:100</td>
		</tr>
<tr>
<td>Maus</td>
		</tr>
<tr>
<td>Schildkröte</td>
		</tr>
<tr>
<td>Capybara</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="6">ER</td>
			<td rowspan="6">Polyclonal</td>
			<td rowspan="6">Kaninchen</td>
			<td>Menschlichen</td>
		</tr>
<tr>
<td>Affe</td>
		</tr>
<tr>
<td>Ratte</td>
		</tr>
<tr>
<td>Maus</td>
		</tr>
<tr>
<td>Schafe</td>
		</tr>
<tr>
<td>Schwein</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">GPER</td>
			<td rowspan="3">Polyclonal</td>
			<td rowspan="3">Kaninchen</td>
			<td>Menschlichen</td>
		</tr>
<tr>
<td>Ratte</td>
		</tr>
<tr>
<td>Maus</td>
		</tr>
<tr>
<td>Sekundären</td>
			<td>DyLight 650</td>
			<td>Polyclonal</td>
			<td>Ziege</td>
			<td>Kaninchen</td>
			<td>1:250</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabelle 2: Merkmale von Antikörpern.
<ol start="11"><li>Inkubieren Sie mit primärem Antikörper über Nacht bei 4 °C in der Dunkelheit.</li>
	<li>Die Antikörperlösung entfernen und in der Waschlösung (50 mM Tris-HCl, pH 7,4; 150 mM NaCl; 0,05% Tween 20) 5 min waschen. Wiederholen Sie diesen Schritt dreimal.</li>
	<li>Fügen Sie 20-50 l DyLight 650 sekundären Antikörper in 1% Rinderserumalbumin verdünnt (enthält 50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 150 mM NaCl, 0.05% Triton X-100). Inkubieren Sie mit sekundärem Antikörper, der bei Dunkelheit 1 h bei Raumtemperatur mit Farbstoff konjugiert wird. ANMERKUNG: Die empfohlene Verdünnung des sekundären Antikörpers ist in Tabelle 2dargestellt.</li>
	<li>Die Antikörperlösung entfernen und in der Waschlösung (50 mM Tris-HCl, pH 7,4, 150 mM NaCl, 0,05% Tween 20) 5 min waschen. Wiederholen Sie diesen Schritt dreimal.</li>
	<li>Fügen Sie 2% DiOC6(3) in 50 mM Tris-HCl, pH 7,4, 150 mM NaCl verdünnt und 10 min bei Raumtemperatur bei Dunkelheit inkubieren.</li>
	<li>Entfernen Sie die Lösung und waschen Sie in Waschlösung (50 mM Tris-HCl, pH 7,4, 150 mM NaCl, 0,05% Tween 20) für 5 min. Wiederholen Sie diesen Schritt dreimal.</li>
	<li>Fügen Sie ein paar Tropfen Glyzerin-basierte Flüssigkeit mit DAPI direkt auf dem Doppelpunkt-Abschnitt und decken Sie sorgfältig mit einem Abdeckungsschlitten. Inkubieren Sie den Doppelpunktabschnitt für mindestens 24 h bei 4 °C. HINWEIS: Vermeiden Sie Luftblasen, wenn Sie das Gewebe mit dem Deckelschlitten bedecken.</li>
	<li>Analysieren Sie den Dickdarmbereich unter konfokaler Mikroskop mit 20x oder 63x Objektiven und Öleintauchen mit spezieller Software. ANMERKUNG: Tabelle 3 listet die Merkmale der in dieser Studie verwendeten Fluorchrome auf.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td rowspan="2">Fluorochome-Typ</td>
			<td colspan="2">Wellenlänge (nm)</td>
			<td rowspan="2">Farbstoff</td>
		</tr>
<tr>
<td>Anregung</td>
			<td>Emission</td>
		</tr>
<tr>
<td>Dapi</td>
			<td>405</td>
			<td>460 – 480</td>
			<td>Blau</td>
		</tr>
<tr>
<td>DiOC6 (3)</td>
			<td>485</td>
			<td>538 – 595</td>
			<td>Grün</td>
		</tr>
<tr>
<td>DyLight 650</td>
			<td>654</td>
			<td>660 – 680</td>
			<td>Rot</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabelle 3: Merkmale von Fluorchromen.

<ol><li>Zhang, Y. Z., Li, Y. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+bowel+disease%3A+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22World+Journal+of+Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Inflammatory bowel disease: pathogenesis.</a> World Journal of Gastroenterology. 20 (1), 91-99 (2014).</li>
<li>Morris, G. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hapten-induced+model+of+chronic+inflammation+and+ulceration+in+the+rat+colon%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Hapten-induced model of chronic inflammation and ulceration in the rat colon.</a> Gastroenterology. 96 (3), 795-803 (1989).</li>
<li>Okayasu, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+in+the+induction+of+reliable+experimental+acute+and+chronic+ulcerative+colitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">A novel method in the induction of reliable experimental acute and chronic ulcerative colitis in mice.</a> Gastroenterology. 98 (3), 694-702 (1990).</li>
<li>Boirivant, M., Fuss, I. J., Chu, A., Strober, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxazolone+colitis%3A+a+murine+model+of+T+helper+cell+type+2+colitis+treatable+with+antibodies+to+interleukin+4%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Oxazolone colitis: a murine model of T helper cell type 2 colitis treatable with antibodies to interleukin 4.</a> Journal of Experimental Medicine. 188 (10), 1929-1939 (1998).</li>
<li>Morrissey, P. J., Charrier, K., Braddy, S., Liggitt, D., Watson, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD4%2B+T+cells+that+express+high+levels+of+CD45RB+induce+wasting+disease+when+transferred+into+congenic+severe+combined+immunodeficient+mice.+Disease+development+is+prevented+by+cotransfer+of+purified+CD4%2B+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">CD4+ T cells that express high levels of CD45RB induce wasting disease when transferred into congenic severe combined immunodeficient mice. Disease development is prevented by cotransfer of purified CD4+ T cells.</a> Journal of Experimental Medicine. 178 (1), 237-244 (1993).</li>
<li>Kühn, R., Löhler, J., Rennick, D., Rajewsky, K., Müller, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interleukin-10-deficient+mice+develop+chronic+enterocolitis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Interleukin-10-deficient mice develop chronic enterocolitis.</a> Cell. 75 (2), 263-274 (1993).</li>
<li>Sundberg, J. P., Elson, C. O., Bedigian, H., Birkenmeier, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous%2C+heritable+colitis+in+a+new+substrain+of+C3H%2FHeJ+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Spontaneous, heritable colitis in a new substrain of C3H/HeJ mice.</a> Gastroenterology. 107 (6), 1726-1735 (1994).</li>
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<li>Włodarczyk, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((G+protein-coupled+receptor+30+%28GPR30%29+expression+pattern+in+inflammatory+bowel+disease+patients+suggests+its+key+role+in+the+inflammatory+process.+A+preliminary+study%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Gastrointestinal+and+Liver+Diseases%22%5BJournal%5D)">G protein-coupled receptor 30 (GPR30) expression pattern in inflammatory bowel disease patients suggests its key role in the inflammatory process. A preliminary study.</a> Journal of Gastrointestinal and Liver Diseases. 26 (1), 29-35 (2017).</li>
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<li>Pizarro, T. T., Arseneau, K. O., Bamias, G., Cominelli, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+for+the+study+of+Crohn%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">Mouse models for the study of Crohn's disease.</a> Trends in Molecular Medicine. 9 (5), 218-222 (2003).</li>
<li>Neurath, M. F., Fuss, I., Kelsall, B. L., Stüber, E., Strober, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibodies+to+interleukin+12+abrogate+established+experimental+colitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Antibodies to interleukin 12 abrogate established experimental colitis in mice.</a> Journal of Experimental Medicine. 182 (5), 1281-1290 (1995).</li>
<li>Ikeda, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simvastatin+attenuates+trinitrobenzene+sulfonic+acid-induced+colitis%2C+but+not+oxazalone-induced+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22Digestive+Diseases+and+Sciences%22%5BJournal%5D)">Simvastatin attenuates trinitrobenzene sulfonic acid-induced colitis, but not oxazalone-induced colitis.</a> Digestive Diseases and Sciences. 53 (7), 1869-1875 (2007).</li>
<li>Thavarajah, R., Mudimbaimannar, V. K., Elizabeth, J., Rao, U. K., Ranganathan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+and+physical+basics+of+routine+formaldehyde+fixation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Oral+Maxillofacial+Pathology%22%5BJournal%5D)">Chemical and physical basics of routine formaldehyde fixation.</a> Journal of Oral Maxillofacial Pathology. 16 (3), 400-405 (2012).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Es gibt zahlreiche Tiermodelle für die IBD-Pathophysiologie-Untersuchung, einschließlich genetischer, immunologischer oder spontaner Modelle, sowie chemisch induzierte Modelle15. Unter den verschiedenen Arten von Tiermodellen von Colitis sind chemisch induzierte Modelle wie das in diesem Protokoll beschriebene TNBS-induzierte Modell relativ kostengünstig und leicht zu erhalten. Das TNBS-induzierte murine Modell der Kolitis hat mehrere klinische Symptome im Zusammenhang mit der pathologischen Basis...

Morbus Crohn (CD) ist eine entzündliche Darmerkrankung (IBD), die sich als chronische Darmentzündung manifestiert. Die Ätiologie von CD ist schlecht verstanden, aber es gibt ein paar wichtige Faktoren, die für die CD-Entwicklung verantwortlich zu sein scheinen, einschließlich Darmmikrobiota, und genetische und Umweltfaktoren, wie Ernährung oder Stress1. Für ein besseres Verständnis der Pathogenese der Morbus Crohn wurden mehrere Modelle der Darmentzündung verwendet2,3,4,5,6,7. In diesem Artikel stellen wir Ergebnisse aus einem 2,4,6-Trinitrobenzol-Sulfonsäure (TNBS)-induzierten murinen Modell von CD.
Es wurde dokumentiert, dass Östrogene in der Lage sind, chronischeDarmentzündungen 8,9,10,11,12zu modulieren. Die biologische Aktivität von Östrogenen wird durch Cogat-Rezeptoren vermittelt, darunter kernnukleare Östrogenrezeptoren (ERs), d.h. ER (Gen ESR1) und ER (Gen ESR2), sowie G-Protein-gekoppelte Östrogenrezeptor, d.h. GPER (Gen GPER1), genannt als membrangebundener ER13,14. Es gibt mehrere Methoden zur Bestimmung des Niveaus der Östrogen-Rezeptoren, aber nur wenige können verwendet werden, um sie im Darm zu visualisieren.
Immunhistochemie (IHC) ist eine weit verbreitete Methode in klinischen und grundlegenden Studien zum Nachweis bestimmter Antigene in Zellen oder Geweben mit fluorchromkonjugierten Antikörpern. IHC scheint eine wichtige Methode in der Gewebestrukturvisualisierung zu sein, sowie bei der Identifizierung und Lokalisierung spezifischer Proteine, die für das Verständnis der Entwicklung von Kolitis entscheidend sein können. Hier stellen wir ein vollständiges und validiertes Protokoll zur immunhistochemischen Visualisierung von Östrogenrezeptoren im Darm unter Verwendung von Immunfluoreszenz vor.

<table><tbody><tr><td>Animals</td>BALB/<td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>C Mäuse</td><td>Universität Lodz</td><td>NA</td><td></td></tr><<tr><td>strong>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Caliper</td><td>VWR</td><td>62379-531</td><td></td></tr><tr><td>Pappblock</td><td>NA</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Konfokales Mikroskop - TCS SP8</td><td>Leica Biosystems</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Vollautomatisches Rotationsmikrotom - RM2255</td><td>Leica Biosystems</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Objektträger</td><td>Thermo Scientific</td><td>J1800BMNT</td><td></td></tr><tr><td>beheiztes Paraffin-Einbettungsmodul - EG1150 H</td><td>Leica Biosystems</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Histologische Box</td><td>Marfour</td><td>LN.138747</td><td></td></tr><tr><td>Hydrophober Stift</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z377821</td><td></td></tr><tr><td>Laborwaage</td><td>Radwag</td><td>WL-104-0048</td><td></td></tr><tr><td>LAS X Software</td><td>Leica Biosystems</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Metallform</td><td>Marfour</td><td>CP.5105</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Gaze</td><td>NA</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Schere</td><td>NA</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Pinzette</td><td>NA</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Taschentuchprozessor - TP1020</td><td>Leica Biosystems</td><td>NA</td><td></td></tr><<tr><td>strong>Reagenzien</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2, 4, 6-Trinitrobenzolsulfonsäure</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>92822</td><td></td></tr><tr><td>Rinderserumalbumin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3294</td><td></td></tr><tr><td>DiOC6 (3)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>318426</td><td></td></tr><tr><td>DyLight 650 Sekundärantikörper</td><td>Abcam</td><td>ab96886</td><td></td></tr><tr><td>ER&alpha; Primärantikörper</td><td>Abcam</td><td>ab75635</td><td></td></tr><tr><td>ER&beta; Primärantikörper</td><td>Abcam</td><td>ab3576</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Avantor Performance Materials Polen</td><td>396480111</td><td></td></tr><tr><td>Formaldehyd</td><td>Avantor Performance Materials Polen</td><td>432173111</td><td></td></tr><tr><td>GPER Primärantikörper</td><td>Abcam</td><td>ab39742</td><td></td></tr><tr><td>Salzsäure</td><td>Avantor Performance Materials Polen</td><td>575283421</td><td></td></tr><tr><td>Wasserstoffperoxidase</td><td>Avantor Performance Materials Polen</td><td>885193111</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran (Foran)</td><td>Baxter</td><td>1001936040</td><td></td></tr><tr><td>Normales Ziegenserum</td><td>Gibco</td><td>16210064</td><td></td></tr><tr><td>Paraffin</td><td>Leica Biosystems</td><td>39602012</td><td></td></tr><tr><td>Petrischale</td><td>Nest Scientific</td><td>705001</td><td></td></tr><tr><td>Phosphatpuffer Kochsalzlösung</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3813</td><td></td></tr><tr><td>Physiologische Kochsalzlösung</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7982</td><td></td></tr><tr><td>Primocin (Antibiotikum)</td><td>Invitrogen</td><td>ant-pm-1</td><td></td></tr><tr><td>ProLong Diamond Antifage Eindeckmittel mit DAPI (Flüssigkeit auf Glycerinbasis mit DAPI)</td><td>Invitrogen</td><td>P36971</td><td></td></tr><tr><td>Natriumchlorid</td><td>Chempur</td><td>WE/231-598-3</td><td></td></tr><tr><td>Natriumcitrat</td><td>Avantor Performance Materials Polen</td><td>795780429</td><td></td></tr><tr><td>Tris</td><td>Avantor Performance Materials Polen</td><td>853470115</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9416</td><td></td></tr><tr><td>Xylol</td><td>Avantor Performance Materialien Polen</td><td>BA0860119</td><td></td></tr></tbody></table>

visualisierung von Östrogenrezeptoren bei mäusen mit tnbs-induzierter morbus crohn mit immunfluoreszenz

Visualization of Estrogen Receptors in Colons of Mice with TNBS-Induced Crohn's Disease using Immunofluorescence

Morbus Crohn ist die am häufigsten diagnostizierte Art von entzündlicher Darmerkrankung. Chronische Entzündungen, die sich im Darm entwickeln, führen zu Peristalsienstörungen und Schäden an Darmschleimhaut und scheinen mit einem erhöhten Risiko einer neoplastischen Umwandlung des Dickdarms verbunden zu sein. Akkumulierende Beweise deuten darauf hin, dass Östrogene und Östrogen-Rezeptoren nicht nur hormonempfindliche Gewebe beeinflussen, sondern auch andere Gewebe, die nicht direkt mit Östrogenen verwandt sind, wie die Lunge oder dickdarm. Hier beschreiben wir das Protokoll für die erfolgreiche Immunfluoreszenzfärbung von Östrogenrezeptoren im Dickdarm, das aus einem murinen Modell der TNBS-induzierten Morbus Crohn gewonnen wurde. Ein detailliertes Protokoll zur Induktion der Morbus Crohn bei Mäusen und Darmpräparation ist sowie ein schrittweises immunhistochemisches Verfahren mit formalinfixierten Paraffin-eingebetteten Darmabschnitten vorgesehen. Die beschriebenen Methoden sind nicht nur nützlich für Östrogen-Rezeptor-Detektion und Östrogen-Signalisierung Untersuchung in vivo, sondern kann auch auf andere Proteine angewendet werden, die an der Entwicklung von Colitis beteiligt sein können.

Makroskopische Merkmale von Dickdarmerkrankungen bei Mäusen mit TNBS-induzierter Morbus Crohn Repräsentative Bilder von Dickdarmen, die von der Kontrolle genommen wurden, und TNBS-behandelten Mäusen sind in Abbildung 2dargestellt. Bei Mäusen mit einem TNBS-induzierten Modell der Morbus Crohn wird die Länge des Dickdarms reduziert, während die Breite des Dickdarms erhöht wird.
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Das Protokoll stellt ein vollständig validiertes TNBS-induziertes murines Modell der Morbus Crohn und Methoden zur Visualisierung von Östrogenrezeptoren durch Immunhistochemie unter Verwendung der Immunfluoreszenz formalinfixierter Dickdarmabschnitte dar, die in Paraffin eingebettet sind.

Visualisierung von Östrogenrezeptoren bei Mäusen mit TNBS-induzierter Morbus Crohn mit Immunfluoreszenz

Crohn&#39;s disease is the most diagnosed type of inflammatory bowel disease. Chronic inflammation developing in the intestine leads to peristalsis ...

Zunehmende Beweise deuten darauf hin, dass die Auswirkungen der Östrogen-Signalisierung auf den kolonischen Teil der Physiologie, Immunhistochemie ist eine vielversprechende Technik zur Identifizierung von Östrogen-Rezeptoren im Dickdarm und sie entwickeln sich zu Kolitis. Wir präsentieren ein vollständiges und validiertes Protokoll zur immunhistochemischen Visualisierung von Östrogenrezeptoren im Dickdarm unter Verwendung von Immunfluoreszenz. Gemeinsam mit Dr.Sylwia Michlewska vom Labor für Mikroskopische Bildgebung der Universität Lodz werden wir das Verfahren demonstrieren.Legen Sie den Doppelpunkt in eine Petrischale. Schneiden Sie den Doppelpunkt in ein bis zwei Zentimeter Fragmente. Legen Sie jedes Fragment auf einen Schwamm in einer entsprechend beschrifteten histologischen Kassette.Legen Sie eine Kassette mit einem Dickdarmfragment in 4%Paraformaldehyd. Mindestens 24 Stunden bei vier Grad Celsius inkubieren. Bereiten Und programmieren Sie den Gewebeprozessor nur für eine Stunde Inkubation in 50%70%90%95% und 100%ethanol, Xylol 100% Ethanol und Xylol sowie für mindestens drei Stunden Inkubation in flüssigem Paraffin.Übertragen Sie das Doppelpunktfragment in eine histologische Box. Legen Sie die Box in den vorprogrammierten Tissueprozessor und führen Sie den Prozessor aus. Nach der Inkubation im Gewebeprozessor entfernen Sie den Dickdarm aus der histologischen Box und legen Sie das Doppelpunktfragment in eine Metallform, so dass sich die beiden Enden des Dickdarms in einer aufrechten Position befinden.Füllen Sie ein Drittel der Form mit flüssigem Paraffin. Legen Sie die Form im Kühlbereich bei minus fünf Grad Celsius für ein paar Sekunden und bewegen Sie die Form dann in den Wärmebereich bei 70 Grad Celsius. Legen Sie dann die Form in den unteren Teil der histologischen Box und bedecken Sie das gesamte Dickdarmfragment mit flüssigem Paraffin.Legen Sie die Metallform mit dem Dickdarmfragment und Paraffin für ein paar Minuten in den Kühlbereich. Dann entfernen Sie die Metallform aus dem Doppelpunkt und Paraffinblock. Inkubieren Sie den Dickdarm- und Paraffinblock für mindestens 24 Stunden bei vier Grad Celsius.Entfernen Sie nach der Inkubation überschüssiges Paraffin aus dem Block. Setzen Sie den Dickdarm- und Paraffinblock in ein vollautomatisches Rotationsmikrotom ein. Schneiden Sie das Doppelpunktfragment in fünf Mikrometerabschnitte.Übertragen Sie einen Dickdarmabschnitt in ein Wasserbad, vorgewärmt auf 40 Grad Celsius. Verwenden Sie die beschriftete Glasrutsche, um den Doppelpunktabschnitt aus dem Wasserbad zu entfernen und die Glasrutsche 24 Stunden lang bei Raumtemperatur zu bebrüten. Entfernen Sie zunächst das Paraffin, indem Sie die Glasrutsche fünf Minuten lang in Xylol brüten.Wiederholen Sie diesen Schritt dreimal. Dann die Glasrutsche fünf Minuten lang in eine Eins-zu-Eins-Mischung aus Xylol und 100%Ethanol geben. Wiederholen Sie diesen Schritt dreimal.Verwenden Sie eine Reihe von abnehmenden Ethanolkonzentrationen, um den Dickdarmabschnitt zu rehydrieren. Tauchen Sie die Rutsche für fünf Minuten in das Ethanol ein. Wiederholen Sie dies dreimal bei jeder Konzentration, bevor Sie zur nächsten Konzentration übergehen.Spülen Sie die Glasrutsche fünf Minuten lang unter fließendem Wasser. Den Antigen-Abrufpuffer auf 95 bis 98 Grad Celsius aufheizen. Dann erhitzen Sie die Glasrutsche in kochender Antigen-Retrieval-Lösung für 10 Minuten.Um die Verschwendung von Reagenzien zu vermeiden, verwenden Sie einen hydrophoben Stift, um einen Kreis um den Dickdarmabschnitt zu ziehen. Dann inkubieren Sie die Rutsche für 10 Minuten in einer 3%-Lösung von Wasserstoffperoxidase und Wasser. Waschen Sie die Rutsche in Waschlösung für fünf Minuten.Dann inkubieren Sie die Rutsche in Blockierlösung für eine Stunde bei Raumtemperatur. Entfernen Sie die Blockierlösung und fügen Sie 20 bis 50 Mikroliter Primärantikörper gegen E-R alpha, E-R beta oder G-P-E-R verdünnt hinzu. Inkubieren Sie den primären Antikörper über Nacht bei vier Grad Celsius in der Dunkelheit.Entfernen Sie die Antikörperlösung. Waschen Sie die Rutsche dreimal in Waschlösung für jeweils fünf Minuten. Als Nächstes fügen Sie verdünnten sekundären Antikörper hinzu.Inkubieren Sie die Rutsche mit sekundärem Antikörper, der bei Raumtemperatur bei Dunkelheit eine Stunde lang mit Farbstoff konjugiert ist. Entfernen Sie die sekundäre Antikörperlösung aus der Folie. Waschen Sie die Rutsche dreimal in Waschlösung für jeweils fünf Minuten.Fügen Sie verdünntes Fluorchrom zur Membranvisualisierung hinzu und brüten Sie 10 Minuten bei Raumtemperatur bei Dunkelheit. Entfernen Sie die Lösung und waschen Sie die Rutsche dreimal in Waschlösung für jeweils fünf Minuten. Fügen Sie ein paar Tropfen Glyzerin-basierte flüssige DAPI, ein Fluorchrom für die Visualisierung von Zellkernen, direkt auf dem Doppelpunktabschnitt hinzu.Bedecken Sie es sorgfältig mit einem Deckelschlitten. Inkubieren Sie den Dickdarmabschnitt für mindestens 24 Stunden bei vier Grad Celsius. Analysieren Sie den Dickdarmbereich unter einem konfokalen Mikroskop mit 20x oder 63x Objektiven und Öleintauchen.Die Spezifität der in der Studie verwendeten Antikörper wurde mit MCF-7-Zellen validiert. Die Östrogen-Rezeptor-Antikörper ermöglichten den Nachweis von kernnuklearen Östrogen-Rezeptoren E-R alpha und E-R Beta sowie der membrangebundene Östrogen-Rezeptor G-P-E-R. Eine negative Kontrolle wurde auch durchgeführt, bei der MCF-7-Zellen nur mit sekundären Antikörpern, die mit Fluorchrom konjugiert waren, und einer Flüssigflüssigkeit auf Glycerinbasis mit DAPI gefärbt wurden.Ein starkes zytoplasmatisches Signal von E-R alpha wurde in den Dickdarmabschnitten gefunden, die von Kontrollmäusen und von Mäusen mit TNBS-induzierter Morbus Crohn gewonnen wurden. Allerdings hatten nur die Doppelpunkte, die von Kontrollmäusen erhalten wurden, E-R alpha lokalisiert im Kelchenzellzytoplasma. Die konfokale Mikroskopie zeigte auch die zytoplasmatische Lokalisation von E-R Beta in den Dickdarmabschnitten sowohl der Kontrolle als auch der MittBS behandelten Mäuse.In ähnlicher Weise wurde die zytoplasmatische Lokalisation von G-P-E-R in den Dickdarmabschnitten dokumentiert, die von Kontrollmäusen und den mit TNBS behandelten Mäusen gewonnen wurden. Die korrekte Positionierung des Doppelpunkts in der Form ist wichtig, um den richtigen Querschnitt zu erzeugen. Fluorchrom sollte durch sein eigenes Anregungs- und Emissionsspektrum ausgewählt werden.Diese Methode kann auch auf andere Proteine angewendet werden, die an der Entwicklung von Kolitis beteiligt sein können. Der Immunhistochemie-Nachweis durch Immunfluoreszenz kann erweitert werden, um andere Proteine im Protein-Protein-Richtungsstatus zu färben.

visualization-estrogen-receptors-colons-mice-with-tnbs-induced-crohn

Research

Forschung

JoVE Journal

Biochemistry

Biochemie

Dieses Video zeigt die Beurteilung von chemisch induzierter Kolitis durch immunhistochemische Färbung von Dickdarmgewebe von Mäusen. In einem gefärbten Gewebeschnitt stellt das Vorhandensein einer großen Anzahl von immunresponsiven Zellen im geschädigten Gewebe die Infiltration von Immunzellen während einer Colitis dar.

Beurteilung der chemisch induzierten Kolitis durch immunhistochemische Analyse von Dickdarmgewebeschnitten

Dieses Video demonstriert eine Technik zur Beurteilung der intestinalen Makrophageninfiltration in einem Mausmodell der Kolitis mittels Fluoreszenz-vermittelter Tomographie (FMT). Bei der Induktion einer Kolitis bei einer Maus über Dextran-Natriumsulfat (DSS) werden dem Tier Antikörper injiziert, die den F4/80-Glykoproteinmarker auf infiltrierten Makrophagen im Dickdarm erkennen. Die Maus wird dann in einem FMT-Gerät abgebildet, wo die Fluoreszenz- und Reflexionssignale in ein dreidimensionales...

Verwendung der Fluoreszenz-vermittelten Tomographie zur Beurteilung von Darmentzündungen bei Mäusen

Kleintierbildgebung Techniken ermöglichen Serien diagnostische Untersuchungen und therapeutische Interventionen in vivo. Vor kurzem hat der Umfang der Anwendungen erheblich erweitert und umfasst gegenwärtig Beurteilung Colontumorentwicklung, Wundheilung und Kontrolle von Entzündungen. Dieses Protokoll zeigt diese verschiedenen Anwendungsmöglichkeiten der murinen Endoskopie.

Murine Endoskopie für In Vivo Multimodale Bildgebung der Krebsentstehung und Bewertung der Darm Wundheilung und Entzündung

Die genaue Identifizierung und Lokalisierung von Epithelzellen entlang der Darmschleimhaut sind wesentlich unterschiedlichen Zelllinien zu definieren. Die richtige Darstellung von Darmgewebe ist von entscheidender Bedeutung für die Identifizierung von Proteinexpressionsmuster mit maximaler Auflösung. Diese Studie hat zum Ziel, die optimalen Verfahren und Bedingungen für die Verarbeitung der Maus Darmgewebe zu beschreiben.

Verbesserte Schweizer Walztechnik für Darmgewebepräparation zur immunhistochemischen und Immunofluoreszenz-Analysen

In diesem Antigen-getriebenen Colitis-Modell wurden OT-II CD4+ T-Zellen, die ein rot fluoreszierendes Protein exprimieren, adoptiv in RAG-/- Mäuse übertragen, die ein grün fluoreszierendes Protein in mononukleären Phagozyten (MPs) exprimieren. Die Wirte wurden mit Escherichia coli (E.coli) konfrontiert, die das Ovalbuminprotein (OVA) exprimierten, das mit einem cyanfluoreszierenden Protein (CFP) fusioniert war.

Entwicklung einer Präsentation von Antigenen zu studieren Antigen-driven ulcerosa Modell durch Antigen-präsentierende Zellen zu T-Zellen präsentieren

Wir beschreiben hier ein transgenes Reporter-Mausmodell, um die IL-22-produzierenden Zellen in verschiedenen Mausgeweben sichtbar zu machen. Mit dieser Methode kann die Position anderer Zytokine oder Sekretärsproteine in der Maus verfolgt werden.

Visualisierung von IL-22-exprimierenden Lymphozyten unter Verwendung Reporter Mäuse

Target-spezifische Sonden stellen ein innovatives Tool für die Analyse der molekularer Mechanismen, wie z. B. Protein-Expression in verschiedenen Arten von Krankheiten (z. B. Entzündungen, Infektionen und Tumorgenese). In dieser Studie beschreiben wir eine quantitative dreidimensionale tomographische Bewertung der intestinalen Makrophagen Infiltration in einem Mausmodell der Kolitis mit F4/80-spezifische Fluoreszenz-vermittelten Tomographie.

Fluoreszenz-vermittelten Tomographie für die Erkennung und Quantifizierung von murinen Makrophagen bedingte Darmentzündung

In dieser Studie beschreiben wir ein detailliertes Verfahren der TNBS-vermittelten Darmfibrose, die eine vergleichbare Pathophysiologie wie Morbus Crohns Fibrose aufweist. Wir diskutieren diesen Ansatz auch im Lichte von Rapamycin erleichterthemmende Auswirkungen auf Darmfibrose.

Mechanistische Einblicke in die Entwicklung von TNBS-vermittelter Darmfibrose und Bewertung der hemmenden Wirkungen von Rapamycin

Das vorliegende Protokoll beschreibt die Entwicklung eines Morbus Crohn-ähnlichen Colitis-Modells bei Nagetieren. Eine transmurale Entzündung führt zu einer Stenose an der TNBS-Instillationsstelle, und eine mechanische Vergrößerung wird im Segment proximal zur Stenose beobachtet. Diese Änderungen ermöglichen die Untersuchung der mechanischen Belastung bei Colitis.

Ein TNBS-induziertes Nagetiermodell zur Untersuchung der pathogenen Rolle von mechanischem Stress bei Morbus Crohn

Wir beschreiben ein Protokoll, das die Isolierung von murinen Kolonkrypten für die Entwicklung von 3-dimensionalen Kolonoiden beschreibt. Die etablierten Kolonoide können dann terminalisiert werden, um die zelluläre Zusammensetzung des Wirtsepithels widerzuspiegeln, bevor sie eine entzündliche Herausforderung erhalten oder angewiesen werden, eine epitheliale Monoschicht zu bilden.

Untersuchung der epithelialen Effekte von intestinalen Entzündungen in vitro auf etablierte murine Kolonoide

Erfahren Sie die Immunfluoreszenz-Methode zur Visualisierung von Östrogenrezeptoren im Kolon von Mäusen mit TNBS-induzierter Morbus Crohn. Dieses validierte Protokoll ermöglicht präzise histologische Analysen.

Visualisierung von Östrogenrezeptoren bei Mäusen mit TNBS-induzierter Morbus Crohn mit Immunfluoreszenz

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