Name: Blinde Endotrachealintubation bei neonatalen Kaninchen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-02-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 4 s
Description: Lernen Sie eine blinde endotracheale Intubationstechnik bei neugeborenen Kaninchen durch Ösophagusokklusion. Diese Methode ermöglicht erfolgreiche Atemwegszugänge ohne direkte Sichtbarkeit und unterstützt experimentelle Forschung.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Diese Arbeit wurde durch Stipendien des Instituto de Salud Carlos III [PFIS2017-0224], "Beca Ruza" von der Sociedad Espaéola de Cuidados Intensivos Pediétricos und des Vanderbilt Medical Scholars Program unterstützt.
Die Sponsoren waren nicht an der Erhebung, Analyse oder Interpretation der Daten beteiligt.
Wir danken Isabel Salas für die Hilfe im Tierlabor und den Herren Carles Fébrega und Frau Gemma Fernandez-Asensio vom Audio-Visual Techincal Team vom Krankenhaus Sant Joan de Déu für die technische Unterstützung bei der Videoaufzeichnung und -produktion.

Das nachstehend beschriebene Intubationsverfahren wurde vom Ausschuss für institutionelle Tierpflege und -nutzung der Universität Barcelona genehmigt (CEEA 180/19).
1. Experimentelle Zubereitung
<ol><li>Erhalten Sie folgende Materialien: 2 mm Durchmesser Polyvinylchlorid (PVC) Endotrachealrohr, 6 Französisch (Fr) Polyurethan-Fütterungsrohr, flache und breite Spitze Sezierzange und steriles Schmiermittel (Abbildung 1).</li>
	<li>Während der Intubation und Operation Prozesse, sterile Bedingungen zu erhalten.</li>
</ol>2. Anästhesie
<ol><li>Anästhesisieren Sie das Tier mit 5 mg/kg Xylazin und 25 mg/kg Ketamin, die intramuskulär in der Vastus lateralis der femoralen Quadrizeps aufgetragen werden. Alpha-2-Agonisten wie Dexmedetomidin können auch anstelle von Xylazin verwendet werden.</li>
	<li>Lassen Sie 3-5 Minuten für das Medikament wirksam werden.</li>
	<li>Lesen Sie die gleiche Dosis, bis eine tiefe Anästhesie erreicht ist (negative Pedal-, Palpebrale- und Hornhautreflexe). Im Idealfall wird das Kaninchen spontan bis zur Intubation atmen.</li>
</ol>3. Endotracheale Intubation
<ol><li>Das Kaninchen auf eine Wärmedecke bei 37 °C legen. Legen Sie das Tier in dorsale Recumbency mit dem Kopf in Hyperextension. Richten Sie den Kopf so gerade und Mittellinie wie möglich aus. Eine vier Zentimeter lange Rolle aus steriler Gaze, die in der Dorsalregion des Halses platziert wird, kann hilfreich sein, um mindestens 45° Verlängerung zu erreichen (Abbildung 2).</li>
	<li>Verwenden Sie flache und breite Spitzensemitschnitte, um die Mundhöhle etwa einen Zentimeter breit zu öffnen. Verwenden Sie Zangen mit einem stumpfen und breiten Ende, um Mundtrauma zu vermeiden.</li>
	<li>Messen Sie den Abstand zwischen Mund und Magenbereich (erste Rippe). Führen Sie eine geschmierte 6 französische (Fr) Polyurethan-Gasröhre in die vorgemessene Markierung ein (Abbildung 3-4).</li>
	<li>Bewegen Sie das Zuführrohr nach links und fixieren Sie es mit Klebeband auf das Operationsfeld.</li>
	<li>Führen Sie das mit sterilem Schmiermittel bedeckte PVC-Endotrachealrohr mit einem Durchmesser von 2 mm Durchmesser in die 3-cm-Marke ein.<ol>
<li>Wenn es irgendwelche Schwierigkeiten beim Vorrücken der Röhre gibt, bewegen Sie es vollständig und versuchen Sie es erneut, bis ein glatter Gleiten erreicht ist. Das Risiko eines Traumas für Den Kehlkopf und Epiglottis ist bei mehreren Intubationsversuchen signifikant. Befestigen Sie das Rohr mit Klebeband am Operationsfeld (Abbildung 5-6).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Schließen Sie das Endotrachealrohr mit folgenden Einstellungen an das Beatmungsgerät an: Gezeitenvolumen - 10 ml/kg; Atemfrequenz: 40 Atemzüge/min; FiO2 100%, PEEP 6.</li>
	<li>Bestätigen Sie die korrekte Position des Rohres durch den Nachweis vonCO2 in ausgeatmeter Luft (ETCO2), direkter Visualisierung der Brustausdehnung und Beschlag der Röhre. Die Überwachung des Tieres durch Pulsoximetrie und Lungenauskultivierung kann ebenfalls hilfreich sein (Abbildung 7).</li>
	<li>Verwenden Sie am Ende des Experiments ein standardisiertes Euthanasie-Protokoll, das aus der intravenösen Verabreichung von Pentobarbital 120-240 mg/kg besteht. Wiederholen Sie Dosen, bis Atempause, Reflexabwesenheit und Asystole erreicht werden. HINWEIS: In den chirurgischen Experimenten ist das Tier während des Beatmungsprozesses am Leben und wird schließlich eingeschläfert.</li>
</ol>

<ol><li>Gilroy, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+of+rabbits+and+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Veterinary+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation of rabbits and rodents.</a> Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).</li>
<li>Graham, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+procedures+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Common procedures in rabbits.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).</li>
<li>Fick, T. E., Schalm, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+technique+for+endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">A simple technique for endotracheal intubation in rabbits.</a> Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).</li>
<li>Conlon, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atraumatic+endotracheal+intubation+in+small+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits.</a> Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).</li>
<li>Johnson, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoscopic+intubation+of+exotic+companion+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Endoscopic intubation of exotic companion mammals.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).</li>
<li>Falcão, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+of+blind+tracheal+intubation+in+rabbits+%28Oryctolagus+cuniculi%29+supported+by+previous+maneuver+of+esophageal+cannulization%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cirurgica+Brasileira%22%5BJournal%5D)">Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization.</a> Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).</li>
<li>Miura, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Japanese+Journal+of+Veterinary+Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation in rabbits.</a> The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).</li>
<li>Thompson, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+Intubation+of+Rabbits+Using+a+Polypropylene+Guide+Catheter%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter.</a> Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).</li>
<li>Comolli, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+endoscopic+endotracheal+intubation+and+the+v-gel+supraglottic+airway+device+for+spontaneously+ventilating+New+Zealand+white+rabbits+undergoing+ovariohysterectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Record%22%5BJournal%5D)">Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy.</a> Veterinary Record. , 1-8 (2020).</li>
<li>Hua, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+different+ventilation+strategies+on+lung+injury+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Pulmonology%22%5BJournal%5D)">Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits.</a> Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).</li>
<li>Kitchen, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+lung+inflation+and+sodium+transport+in+airway+liquid+clearance+during+lung+aeration+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Research%22%5BJournal%5D)">The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits.</a> Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).</li>
<li>Boon, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tubeless+tracheotomy+for+survival+airway+surgery+in+the+leporine+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model.</a> The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).</li>
<li>Dion, G. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morbidity+and+mortality+associated+with+preclinical+tracheostomy+models%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models.</a> The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).</li>
<li>Phaneuf, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+injury+after+endotracheal+intubation+and+anesthesia+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Kaninchen sind in Tierversuchen aufgrund ihrer Verfügbarkeit, hoher Reproduktionsrate mit kurzen Generationenzeiten und einfacher Handhabungweit verbreitet. In unserem Zentrum verwenden wir 5-7 Tage alte neuseeländische Kaninchen (Oryctolagus cuniculus) als neonatales Modell, um die neurologischen Auswirkungen der extrakorporalen Chirurgie auf das sich entwickelnde Gehirn zu untersuchen. Als Ergebnis verwenden wir Verfahren, die eine tiefe Anästhesie erfordern und endotracheale Intubation...

Die eigentümliche Anatomie des Atmungssystems des Kaninchens erschwert die endotracheale Intubation. Die Mundhöhle ist tief und schmal mit einem begrenzten Bereich der Mundöffnung und einer relativ großen Zunge, was die direkte Visualisierung des Kehlkopfes auch bei Verwendung eines Laryngoskops1,2erschwert. Darüber hinaus ist die Intubation des neugeborenen Kaninchens, das 10-20 Mal kleiner ist als der Erwachsene, noch schwieriger. Zusätzlich zu diesen anatomischen Eigenschaften sind Kaninchen anfällig für Laryngospasmus sekundär zur Manipulation der Atemwege.
Mehrere Intubationstechniken wurden in der Literatur beschrieben, wie Laryngoskop Trachealintubation, blinde Intubation, Echooskopintubation, retrograde Intubation, Endoskopintubation, Tracheostomie und supraglottische Gerätebelüftung3,4,5,6,7,8,9. Alle diese Techniken wurden erfolgreich bei erwachsenen Kaninchen durchgeführt; es gibt jedoch nur wenige Veröffentlichungen über das fortgeschrittene Atemwegsmanagement beim neugeborenen Kaninchen10. Eine Studie beschreibt die Durchführung von Tracheostomien bei Tieren dieses Alters, um Atemmechanik und Lungenvolumen zu bewerten, obwohl dies eine aggressive und irreversible Technik ist11. Diese Methode zur endotrachealen Intubation hat sich als effektive und kostengünstige Methode des Atemwegsmanagements bei neugeborenen Kaninchen erwiesen.

<table><tbody><tr><td>Endotrachealtubus aus Polyvinylchlorid (PVC) mit 2 mm Durchmesser</td><td>Vygon</td><td>520.20</td><td></td></tr><tr><td>6 Französische Ernährungssonde aus Polyurethan</td><td>Vygon</td><td>310.06</td><td></td></tr><tr><td>Anästhesie (Ketamin und Xylazin)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Multiparameter-Monitor Intellivue MP5</td><td>Phillips</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dissektionszange mit einfacher und breiter Spitze</td><td>LensforVision</td><td>AK005</td><td></td></tr><tr><td>Steriles Schmiermittel (Silkospray)</td><td>Rush</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ventilator Servo 900c</td><td>Maquet</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

blinde endotrachealintubation bei neonatalen kaninchen

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

Das neugeborene Kaninchen ist ein nützliches Tiermodell für verschiedene Pathologien und Verfahren. Das Atemwegsmanagement des Kaninchens ist aufgrund seiner anatomischen Eigenschaften komplex, was bei Neugeborenen noch komplizierter ist. Von den verschiedenen Methoden des fortgeschrittenen Atemwegsmanagements ist die endotracheale Intubation weniger aggressiv als die Tracheostomie und ist angesichts des Mangels an supraglottischen Geräten von so geringer Größe machbarer als supraglottisches Management. Da die direkte Glottis-Visualisierung bei Tieren dieser Größe sehr schwierig ist, wird dieses blinde Intubationsmodell als wirksame Alternative vorgestellt, insbesondere für Experimente, die eine längere Anästhesie erfordern. Mit dieser Methode führten wir blinde Intubationen mit einer Erfolgsrate von 90% durch.

Im Labor wird diese Technik von medizinischem Personal mit Erfahrung im Experimentieren mit neuseeländischen Kaninchen und Expertise im pädiatrischen Atemwegsmanagement durchgeführt. Das Verfahren wurde von einem Forscher von 10 Tieren mit einer weltweiten Erfolgsquote von 90% durchgeführt. Zuvor hatte ein anderer Forscher geübt, sowohl die Position des Tieres als auch die richtige Rohrfixierungslänge zu optimieren. Keines der Tiere war in der Speiseröhre intubiert. Nur ein Versuch (10%) ...

Wir beschreiben eine Technik der endotrachealen Intubation bei neugeborenen Kaninchen nach Ösophaderkatheterisierung mit einem Magenrohr.

Blinde Endotrachealintubation bei neonatalen Kaninchen

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

Einleitung.Neugeborenes Kaninchen ist nützlich als Tiermodell von verschiedenen Pathologien und Verfahren. Einige dieser Verfahren erfordern ein fortgeschrittenes Atemwegsmanagement, und es kann aufgrund der komplexen Atemwegseigenschaften und der geringen Größe des Tieres eine Herausforderung sein. Wir präsentieren eine neuartige Technik zur endotrachealen Intubation, die durch die Okklusion der Speiseröhre und die Einführung der Röhre in die Atemwege ohne direkte Visualisierung durchgeführt wird. Materialien.Wir benötigen ein PVC-Endotrachealrohr mit zwei Millimetern Durchmesser, ein sechs französisches Polyurethan-Zuführrohr sowie schlichte und breitgeschnittene Sezierzangen. Außerdem können wir ein steriles Schmiermittel verwenden. Anästhesie. Besen Sie das Tier mit Xylazin fünf Milligramm pro Kilo und Ketamin 25 Milligramm pro Kilo.Intramuskulär in der Vastus lateralis der femoralen Quadrizeps auftragen. Lassen Sie drei bis fünf Minuten, damit das Medikament wirksam wird. Wiederholen Sie diese, bis ein negativer Pedalreflex erreicht ist.Bewerten Sie das Kaninchen wird eine spontane Atmung bis zur Intubation aufrecht erhalten. Endotracheale Intubation. Legen Sie das Tier in dorsale Recumbency mit dem Kopf in Hyperextension.Eine Rolle aus einer sterilen Gaze und in der Dorsalregion des Halses platziert kann hilfreich sein. Verwenden Sie einfache und breitspitzende Sezierzangen, um die Mundhöhle etwa einen Zentimeter breit zu öffnen. Einführung einer sechs französischen Polyurethan-Magenschlauch bis zum Ende seiner Fortschritte.Das Fütterungsrohr wird bewegt und fixiert. Führen Sie das mit dem sterilen Schmiermittel imprägnierte PVC-Endotrachealrohr mit zwei Millimeterdurchmessern ein, bis es die Drei-Zentimeter-Marke erreicht. Wenn es irgendwelche Schwierigkeiten beim Vorrücken der Röhre gibt, sollte es vollständig entfernt werden und erneut versuchen, bis ein glatter Gleiten erreicht ist.Das Rohr ist ebenfalls fixiert. Ergebnisse. Das Verfahren wurde bei 10 Tieren durchgeführt. Ihr Gewichtsbereich lag zwischen 110 und 210 Gramm je nach Lebenstag und Ernährungszustand.Die weltweite Erfolgsquote betrug 90%Der einzige Ausfall trat beim kleinsten Kaninchen aufgrund seiner schmalen Atemwege auf. Schlussfolgerung. Das Modell der Intubation von neugeborenen Kaninchen, das wir hier beschreiben, erfordert nicht die Verwendung von spezialierter Ausrüstung, es ist einfach zu meistern und kann von einer einzelnen Person durchgeführt werden, ohne dass ein Assistent benötigt wird. Alle blinden Zugang techniken für den Zugang zu den Atemwegen stellen ein gewisses Risiko dar, aber wir glauben, dass diese Technik eine Option ist, wenn eine geführte Visualisierung schwierig ist, wie bei sehr kleinen Tieren.

blind-endotracheal-intubation-in-neonatal-rabbits

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Video zeigt die chirurgische Schaffung einer Öffnung in der Kaninchenluftröhre, um eine Trachealkanüle zur künstlichen Beatmung der Lunge einzuführen.

Trachealkanülierung im Kaninchenmodell: Ein Verfahren zum Einführen einer Trachealkanüle in die Kaninchenluftröhre

In diesem Video demonstrieren wir die Trachealintubation — ein invasives Verfahren zum Einführen eines Endotrachealtubus durch den Mund in einem Kaninchenmodell. Dieses Verfahren ermöglicht eine mechanische Beatmung der Lunge.

Trachealintubation zur mechanischen Beatmung: ein Verfahren zum Einführen eines Endotrachealtubus in die Luftröhre eines Kaninchenmodells

Endotracheale Intubation bei Kaninchen ist schwierig wegen ihrer ungewöhnlichen Anatomie. Hier präsentieren wir eine Technik für direkte Intubation der Trachea mit einem Polypropylen Katheter als Leitfaden. Diese Methode nutzt relativ kostengünstige Versorgung erfordert eine minimale Ausbildung und kann einfach in jedem klinischen Umfeld durchgeführt werden.

Endotracheale Intubation von Kaninchen mit einem Polypropylen Führungskatheter

Diese Methode beschreibt die Platzierung der Zwischenschaltung Vene Transplantationen bei Kaninchen, die Transduktion der Grafts und die Erreichung des dauerhaften Transgene Ausdruck. Dies ermöglicht die Untersuchung der physiologischen und pathologischen Rollen von transgenen und deren Proteinprodukte in veredelten Adern und Prüfung der Gentherapien für Venenleiden Transplantat.

Ein Kaninchen-Modell der dauerhafte Transgene Ausdruck in Halsschlagader, gemeinsame Halsschlagader Interposition Grafts

Die Entwicklung und Erprobung endovaskulärer Geräte zur intrakraniellen Aneurysmabehandlung ist nach wie vor von großer Bedeutung. Die meisten Aneurysmamodelle, die heute verwendet werden, übersehen entweder die wichtigen Eigenschaften einer arteriellen degenerierten Wand oder die Hämodynamik einer echten Bifurkation. Daher wollten wir ein neuartiges Modell zur Verzweigung des arteriellen Beutels bei Kaninchen entwerfen.

Arterieller Beutel Mikrochirurgisches Bifurkationsaneurysma-Modell im Kaninchen

Das isolierte Kaninchenlungenpräparat ist ein Goldstandardwerkzeug in der Lungenforschung. Diese Publikation zielt darauf ab, die Technik zu beschreiben, die für die Untersuchung physiologischer und pathologischer Mechanismen entwickelt wurde, die an der Reaktivität der Atemwege, der Lungenerhaltung und der präklinischen Forschung bei Lungentransplantationen und Lungenödemen beteiligt sind.

Isoliertes Lungenperfusionssystem im Kaninchenmodell

Die vorliegende Studie zeigt ein hochgradig reproduzierbares Tiermodell der akuten regionalen myokardialen Ischämie und Reperfusionsschädigung bei Kaninchen unter Verwendung einer linken Mini-Thorakotomie für Überlebensfälle oder einer Mittellinien-Sternotomie für Nicht-Überlebensfälle.

Modell der Ischämie und Reperfusionsschädigung bei Kaninchen

Hier stellen wir ein standardisiertes Verfahren für die endotracheale Intubation mittels Tracheotomie gefolgt von einer Thorakotomie bei Ratten vor, das darauf abzielt, die Präzision und Reproduzierbarkeit von Nicht-Überlebensanwendungen zu verbessern, die eine invasive Beatmung und Exposition von Thoraxorganen in in vivo Rattenmodellen erfordern.

Endotracheale Intubation mittels Tracheotomie und anschließender Thorakotomie bei Ratten für Anwendungen ohne Überleben

Die Mechanismen des plötzlichen unerwarteten Todes bei Epilepsie (SUDEP) sind nur unzureichend verstanden und lassen sich nur schwer aus aktuellen Modellen übertragen. Transgene Kaninchen könnten Einblicke in diese Mechanismen geben. Wir beschreiben ein Verfahren für langfristige, kontinuierliche Elektroenzephalographie- und Elektrokardiographie-Aufzeichnungen in transgenen Kaninchen-Kits zur Bewertung schwerwiegender Ereignisse, die zum Tod führen können.

Implantation von Elektroenzephalogramm- und Elektrokardiogramm-Telemetriegeräten in Kaninchen-Kits für Neugeborene

Wir haben eine einfache, zuverlässige und relativ kostengünstiges Verfahren zur Intubation bei Mäusen durch direkte Laryngoskopie mit einem Otoskop mit einem 2,0-mm-Spekulum entwickelt. Diese Technik ist atraumatisch und für wiederholte Messungen bei chronischen Experimente eingesetzt werden. Wir finden es besser als zuvor berichtet, Tracheostoma oder chirurgischen Techniken.

Intubation bei Mäusen<em&gt; Über</em&gt; Direkte Laryngoskopie Mit einem Otoskop

Lernen Sie eine blinde endotracheale Intubationstechnik bei neugeborenen Kaninchen durch Ösophagusokklusion. Diese Methode ermöglicht erfolgreiche Atemwegszugänge ohne direkte Sichtbarkeit und unterstützt experimentelle Forschung.

Blinde Endotrachealintubation bei neonatalen Kaninchen

Weitere Videos entdecken