Name: Ein In-vivo-Mausmodell der intravenösen Vollnarkose während der Krebsresektion (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-06-08T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: Erfahren Sie ein Protokoll zur totalen intravenösen Anästhesie mit Propofol bei Mäusen während der Tumorresektion. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung anästhesiebedingter Effekte auf Krebsrezidive.

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Die Autoren danken Mitgliedern des Cancer Neural-Immune Laboratory und Dr. Cameron Nowell vom Monash Institute of Pharmaceutical Sciences, Monash University, Parkville. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse des National Health and Medical Research Council 1147498, der National Breast Cancer Foundation IIRS-20-025, des Australian and New Zealand College of Anaesthetists (ANZCA), Perpetual und CTC for Cancer Therapeutics unterstützt.

Alle Tierversuche wurden mit Genehmigung des Institutional Animal Care and Use Committee an der Monash University durchgeführt. In dieser Studie wurden weibliche Balb/c-Mäuse im Alter von 6-8 Wochen verwendet.
1. Krebszellen vorbereiten
<ol><li>Tumorzellen im Medium kultivieren. Kultur 66cl4 muriner Brustkrebszellen in alpha-MEM, die 10% FBS und 200 mM Glutamin enthalten. Zellen sollten negativ für Mykoplasmen texten. OPTIONAL: Verwenden Sie Zellen, die stabil transduziert werden, um Glühwürmchen-Luciferase für die Biolumineszenz-Bildgebung zu exprimieren, um die Überwachung des Wiederauftretens von Krebs nach der Resektionsoperationzu ermöglichen 11 (siehe Schritt 4). HINWEIS: Die Zelllinie und das oben erwähnte Medium wurden in dieser Studie verwendet.</li>
	<li>Zellen bei 37 °C mit 5% CO2 züchten. Passage Zellen aseptisch in einer Haube bei <80% Konfluenz. Verwenden Sie Zellen mit geringer Passage in der logarithmischen Wachstumsphase, um optimale In-vivo-Ergebnisse zu erzielen.</li>
	<li>Heben Sie die adhärenten Zellen mit 0,5 mg / ml Trypsin in PBS mit 10 mM EDTA an; 2 mL für einen T75-Kolben. Wenn es angehoben wird, fügen Sie Medium hinzu, um Trypsin zu inaktivieren, und waschen Sie die Zellen in PBS.</li>
	<li>Zählen Sie die Zellen mit einem Hämozytometer. Verdünnen Sie die Zellen in PBS für die Injektion. Für 66cl4 Brustkrebszellen injizieren Sie 1 x 105 Zellen in 20 μL PBS pro Maus.</li>
	<li>Legen Sie die Zellen vor der Injektion auf Eis.</li>
</ol>2. Erstellen Sie ein Mausmodell für Brustkrebs
<ol><li>Verwenden Sie 4% Isofluran, um die Maus in einer Induktionskammer zu betäuben. Dann halten Sie die Anästhesie mit 2% -3% Isofluran mit einem Nasenkegel aufrecht. Bestätigen Sie die richtige Anästhesie durch mangelnde Reaktion auf das Zehenklemmen.</li>
	<li>Bereiten Sie die Injektionsstelle vor, indem Sie den vierten linken Brustfettpolsterbereich mit einem Einweg-Alkoholtupfer abwischen.</li>
	<li>Tumorzellen (siehe Schritt 1.4) in eine 25-μL-Hamilton-Spritze aufziehen, die an einer sterilen 27-G-Injektionsnadel befestigt ist.</li>
	<li>Injizieren Sie die Zellen in das vierte linke Brustfettpolster. Verwenden Sie eine Pinzette, um die Haut zu sichern und anzuheben. Injizieren Sie ca. 1 mm aus der Brustwarze.</li>
	<li>OPTIONAL: Wenn Zellen mit Luciferase markiert sind, bestätigen Sie die erfolgreiche Injektion von Tumorzellen durch Biolumineszenz-Bildgebung. Injizieren Sie 100 μL 150 mg/kg D-Luciferin in die laterale Schwanzvene der anästhesierten Mäuse mit einer 0,5 ml Insulinspritze mit einer 30 G Injektionsnadel.</li>
	<li>OPTIONAL: Legen Sie die Maus mit dem Brustfettpolster nach oben in ein Biolumineszenz-Bildgebungssystem. Warten Sie 2 Minuten nach der Luciferin-Injektion für eine optimale Gewebeaufnahme von Luciferin, dann Bild für 10 s.</li>
	<li>Legen Sie die Maus in einen sauberen Käfig und lassen Sie sie sich von der Narkose erholen.</li>
	<li>Überwachen Sie weiterhin den Tierschutz gemäß den institutionellen Tierethikrichtlinien.</li>
</ol>3. Induktion einer stabilen Anästhesie mit intravenöser Verabreichung von Propofol
<ol><li>Überwachen Sie das Wachstum des Primärtumors mit Hilfe der Messschiebermessung und berechnen Sie das Tumorvolumen mit der Gleichung: Volumen (mm3) = (Länge x (Breite)2 ÷ 2 ).</li>
	<li>Führen Sie eine Tumorresektion an Mäusen durch, wenn der Primärtumor das erforderliche Volumen erreicht hat (hier 80-90 mm3).</li>
	<li>Richten Sie eine automatisierte Spritzenpumpe mit einer 30 G 1 ml Insulinspritze ein, die Propofol-Formulierung (2% Lipuro-Propofol) enthält (Abbildung 1A).</li>
	<li>Induktion der Anästhesie der Maus in einer Induktionskammer mit 3% Sevofluran oder Isofluran. HINWEIS: Hier wurde Sevofluran verwendet, da dies das vorherrschende flüchtige Gewebe ist, das klinisch verwendet wird.</li>
	<li>Setzen Sie die Maus für die Dauer der Operation auf ein 37 °C heißes Heizkissen um. Halten Sie die Anästhesie mit 2% -3% Sevofluran mit einem Nasenkegel kurz aufrecht.</li>
	<li>Tragen Sie wässriges Gleitmittel auf die Augen auf, um ein Austrocknen zu verhindern.</li>
	<li>Injizieren Sie 0,05 mg/kg Buprenorphin subkutan zur Analgesie.</li>
	<li>Um sich auf die Operation vorzubereiten, rasieren Sie den Bauch und bereiten Sie die Haut mit einer Jod-Povidon-Lösung für die Operation vor. Wischen Sie die Haut mit einem Alkohol oder einem sterilen Tuch ab.</li>
	<li>Um TIVA auf Propofol-Basis zu verabreichen, kanülieren Sie die laterale Schwanzvene mit einer sterilen 30 G Injektionsnadel, die an einem sterilen Polyurethankatheter befestigt ist. Bestätigen Sie die korrekte Platzierung durch Blutrückblende in den Katheter (Abbildung 1B). Passen Sie die Abgabe von Sevofluran während der intravenösen Kanülierung nach Bedarf an, um eine stabile Anästhesietiefe aufrechtzuerhalten, die durch den Verlust des Hornhaut- und Pedalreflexes und die Atemfrequenz < 100 Atemzüge pro Minute nachgewiesen wird.</li>
	<li>Beginnen Sie mit Propofol-TIVA durch Verabreichung von 2% Propofol als initialen Bolus von 27 mg/kg für mehr als 1 Minute. Beenden Sie die Verabreichung von Sevofluran.</li>
	<li>Setzen Sie die Infusion von Propofol mit einer Erhaltungsrate von 2,2-4,0 mg/kg/min fort, um eine stabile Anästhesietiefe für die Dauer der Operation aufrechtzuerhalten (Abbildung 1C).</li>
</ol>4. Resektieren Sie den Primärtumor
<ol><li>Machen Sie einen geraden 1 cm langen Einschnitt unterhalb des Tumors im Bereich des linken vierten Brustfettpolsters. Sorgfältig den Tumor und den linken Leistenlymphknoten durch Dissektion mit stumpfer Pinzette resezieren.</li>
	<li>OPTIONAL: Wenn Sie Luciferase-markierte Tumorzellen verwenden, verwenden Sie Biolumineszenz-Bildgebung, um klare chirurgische Ränder zu bestätigen. Injizieren Sie 150 mg/kg D-Luciferin in die laterale Schwanzvene, warten Sie 2 min und nehmen Sie dann 60 s mit einem Biolumineszenz-Bildgebungssystem ab. Wenn ein Resttumor identifiziert wird, resezieren Sie zusätzliches Gewebe aus dem Brustfettpolster und machen Sie ein neues Bild, um klare Ränder zu erzielen.</li>
	<li>Stellen Sie die Blutstillung an der Operationsstelle sicher und schließen Sie die Haut mit 5-0-Nylonnähten. Stellen Sie sicher, dass das Fell nicht in die Operationsstelle gelangt.</li>
	<li>Nach Abschluss der Resektionsoperation die Anästhesie beenden. Legen Sie die Maus in einen sauberen Käfig auf einem 37 °C heißen Heizkissen und lassen Sie sie sich von der Narkose erholen.</li>
	<li>Überwachen Sie alle 15 Minuten nach der Anästhesie, bis die Maus wieder normal wach ist. Überwachen Sie die Maus dann alle 12 Stunden für 48 Stunden nach der Operation.</li>
	<li>0,05 mg/kg Buprenorphin subkutan alle 12 h für 48 h nach der Operation verabreichen.</li>
	<li>Nach 7-10 Tagen entfernen Sie die Nähte mit sterilen gebogenen Stichschneidern unter kurzer Sevofluran- oder Isofluran-Anästhesie.</li>
</ol>5. Verfolgen Sie das Wiederauftreten von Krebs mit In-vivo-Bildgebung
<ol><li>Verwenden Sie Biolumineszenz-Bildgebung, um das Wiederauftreten von Krebs nach einer Resektionsoperation nicht-invasiv zu verfolgen. Verwenden Sie ein Biolumineszenz-Bildgebungssystem, um die Mäuse einmal pro Woche auf Hinweise auf ein Wiederauftreten des Primärtumors oder ein Fernrezidiv zu überwachen, beginnend in der Woche nach der Operation.</li>
	<li>Induktion der Anästhesie der Maus in einer Induktionskammer mit 4% Isofluran. Dann übertragen Sie die Maus für die Dauer der Anästhesie auf ein 37 ° C Heizkissen und halten Sie die Anästhesie mit 2% -4% Isofluran mit einem Nasenkegel aufrecht.</li>
	<li>Tragen Sie wässriges Gleitmittel auf die Augen auf, um ein Austrocknen zu verhindern.</li>
	<li>Injizieren Sie D-Luciferin 150 mg/kg in die laterale Schwanzvene. Warten Sie 2 Minuten und messen Sie dann die Biolumineszenz über eine Exposition von 60 s, um ein Wiederauftreten des Primärtumors oder eine Fernmetastasierung zu erkennen.</li>
	<li>Wenn der Primärtumor erneut auftritt und tastbar wird, beginnen Sie mit der Überwachung des Tumorwachstums mit Messschiebermessungen.</li>
	<li>Am Ende des Experiments töten Sie die Mäuse gemäß dem genehmigten Protokoll human. Hier wurde CO2 verwendet, gefolgt von zervikaler Dislokation.</li>
</ol>

<ol><li>Sullivan, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+cancer+surgery%3A+delivering+safe%2C+affordable%2C+and+timely+cancer+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet+Oncology%22%5BJournal%5D)">Global cancer surgery: delivering safe, affordable, and timely cancer surgery.</a> Lancet Oncology. 16 (11), 1193-1224 (2015).</li>
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<li>Hiller, J. G., Perry, N. J., Poulogiannis, G., Riedel, B., Sloan, E. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perioperative+events+influence+cancer+recurrence+risk+after+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Clinical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Perioperative events influence cancer recurrence risk after surgery.</a> Nature Reviews Clinical Oncology. 15 (4), 205-218 (2018).</li>
</ol>

Die Autoren erklären keine konkurrierenden finanziellen Interessen.

Diese Studie berichtet über ein Protokoll zur Verabreichung einer intravenösen Vollanästhesie (TIVA) mit Propofol in einem Mausmodell für Brustkrebs, das wichtige Aspekte der klinischen Praxis für TIVA bei Patientinnen repliziert, die eine Krebsoperation benötigen. Das Protokoll ermöglicht die Untersuchung sowohl kurzfristiger als auch langfristiger klinisch relevanter Ergebnisse nach Krebsoperationen in einem Mausmodell der Krebsprogression, einschließlich der Messung der Zytokinspiegel und des Wiederauftretens von Kreb...

Mehr als 60% der Krebspatienten erhalten eine Anästhesie für die chirurgische Resektion1. Derzeit gibt es keine spezifischen klinischen Richtlinien, die die Wahl der Anästhesie bei Krebspatienten bestimmen. Umfragen unter Anästhesisten zeigen eine Präferenz für flüchtige Anästhesie, auch während Krebsoperationen 2,3. Es gibt jedoch immer mehr Hinweise darauf, dass die Anwendung einer Propofol-basierten intravenösen Vollanästhesie (TIVA) während einer Krebsoperation im Vergleich zur flüchtigen Anästhesie mit verbesserten postoperativen Ergebnissen (progressionsfreies Überleben, Gesamtüberleben) einhergehen kann4. Nachfolgende klinische Studien berichten weiterhin widersprüchliche Ergebnisse 5,6,7,8. Diese Ergebnisse unterstützen die Notwendigkeit präklinischer Studien, um die mechanistischen Auswirkungen verschiedener Anästhetika auf krebsbedingte Ergebnisse besser zu verstehen.
In In-vivo-Studien , die Krebsoperationen modellieren, ist die Anästhesie jedoch häufig ein zufälliger Teil des Verfahrens. Die Begründung für die Wahl der Anästhesie steht oft nicht im Mittelpunkt des experimentellen Designs, und ihre Auswirkungen auf krebsbedingte Endpunkte werden möglicherweise nicht bewertet. Zum Beispiel verwenden In-vivo-Studien , die eine Aufrechterhaltung der Anästhesie für Krebsoperationen erfordern, am häufigsten inhalative flüchtige Anästhesie9. Wenn Propofol in In-vivo-Studien verwendet wurde, wurde es durch einmalige Bolusdosierung mit intraperitonealer Verabreichung verabreicht, die klinische Onko-Anästhesie-Protokolle nicht repliziert10. Dieser Ansatz der Propofol-Verabreichung induziert eine leichte Anästhesie, die für schnelle Verfahren geeignet ist. Es erlaubt jedoch keine Aufrechterhaltung der Anästhesie, die für eine Krebsresektionsoperation erforderlich ist, die langwierig sein kann. Darüber hinaus unterscheidet sich die Absorptionskinetik der intraperitonealen Verabreichung von klinischen Verabreichungsmethoden.
Ein Modell von Propofol-basiertem TIVA für die Krebsresektionschirurgie wurde entwickelt, um diesem Bedarf gerecht zu werden. Ein Protokoll für die anhaltende Aufrechterhaltung der Anästhesie mit Titration des Anästhetikums, um eine Reaktion auf den chirurgischen Reiz zu ermöglichen, wurde entwickelt, um Schlüsselaspekte der Anästhesieabgabe bei Patienten mit Krebsoperationen zu replizieren. Das resultierende Protokoll wird mit einem Mausmodell von Krebs verwendet, um TIVA während der Krebsresektion zu liefern. Die Auswirkungen auf kurz- und langfristige krebsbedingte Ergebnisse werden bewertet.

<table><tbody><tr><td>0,9 % Kochsalzlösung</td><td>Fresnius Kabi</td><td>AUST R 197198</td><td></td></tr><tr><td>Arterienzange</td><td></td><td>Proscitech TS1322-140</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphin</td><td>Temgesic</td><td>TEMG I</td><td></td></tr><tr><td>Beheizte Operationsmatte</td> <td>Custom-Injektionsnadel</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>(30 G, 1 mL Insulinspritze)</td><td>Terumo</td><td>NN3013R</td><td></td></tr><tr><td>IVIS Lumina</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td></td>126274</tr><tr><td>Luciferin</td><td>Promega</td><td>P1041/2/3</td><td></td></tr><tr><td>Polyurethan-Katheter</td><td>Intramedic</td><td>427401</td><td></td></tr><tr><td>Povidon Jod</td><td>Betadine</td><td>AUST R 29562</td><td></td></tr><tr><td>Propofol Lipuro, 2%</td><td>Braun</td><td>3521490</td><td></td></tr><tr><td>Sevofluran</td><td>Baxter</td><td>ANZ2L9117</td><td></td></tr><tr><td>Sevofluran Verdampfer</td><td>Vetquip</td><td>VQ1334</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Gaze</td><td>Multigate Medizinische Produkte</td><td>11-600A</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Schere</td><td>Proscitech</td><td>TS1044</td><td></td></tr><tr><td>Nähte, 5-0 Nylon</td><td>Dynek</td><td>V504</td><td></td></tr><tr><td>Spritzenpumpe</td><td>Harvard Apparatur</td><td>70-4500</td><td></td></tr><tr><td>Spritzen (1 mL)</td><td>Terumo</td><td>SS+01T</td><td></td></tr></tbody></table>

ein in-vivo-mausmodell der intravenösen vollnarkose während der krebsresektion

An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery

Anästhesie ist ein routinemäßiger Bestandteil der Krebsbehandlung, der für diagnostische und therapeutische Verfahren verwendet wird. Die Anästhesietechnik wurde kürzlich mit der Beeinflussung langfristiger Krebsergebnisse in Verbindung gebracht, möglicherweise durch Modulation von adrenerg-entzündlichen Reaktionen, die das Verhalten von Krebszellen und die Funktion von Immunzellen beeinflussen. Neue Erkenntnisse deuten darauf hin, dass Propofol-basierte intravenöse Vollanästhesie (TIVA) im Vergleich zu inhalativer flüchtiger Anästhesie für langfristige Krebsergebnisse von Vorteil sein kann. Die verfügbaren klinischen Befunde sind jedoch widersprüchlich. Präklinische Studien, die die zugrunde liegenden Mechanismen identifizieren, sind von entscheidender Bedeutung, um das Design klinischer Studien zu leiten, die die Erkenntnisse beschleunigen. Die meisten präklinischen Modelle der Anästhesie wurden aus der Verwendung von Anästhesie in der In-vivo-Forschung extrapoliert und sind nicht optimal darauf ausgelegt, die Auswirkungen der Anästhesie selbst als primären Endpunkt zu untersuchen. Dieses Papier beschreibt eine Methode zur Verabreichung von Propofol-TIVA-Anästhesie in einem Mausmodell der Brustkrebsresektion, das wichtige Aspekte der klinischen Verabreichung bei Krebspatientinnen repliziert. Das Modell kann verwendet werden, um Wirkungsmechanismen der Anästhesie auf Krebsergebnisse bei verschiedenen Krebsarten zu untersuchen und kann auf andere Nicht-Krebsbereiche der präklinischen Anästhesieforschung extrapoliert werden.

Diese Methode beschreibt ein Modell der totalen intravenösen Anästhesie (TIVA) mit Propofol während der Krebsresektionsoperation bei Mäusen. Propofol wird in diesem Mausmodell über einen intravenösen Katheter unter Verwendung einer Spritzenpumpe (Abbildung 1A,B) verabreicht, um die Verabreichung von TIVA im klinischen Umfeld der Anästhesie für Krebsoperationen zu replizieren. Die Verwendung der Spritzenpumpe minimiert die Exposition gegenüber flüchtiger Anästhesie, indem sie...

Dieser Artikel beschreibt eine Methode zur Modellierung der intravenösen Totalanästhesie (TIVA) während der Krebsresektion bei Mäusen. Ziel ist es, Schlüsselmerkmale der Anästhesieabgabe an Krebspatienten zu replizieren. Die Methode ermöglicht es zu untersuchen, wie sich die Anästhesietechnik auf das Wiederauftreten von Krebs nach einer Resektionsoperation auswirkt.

Ein In-vivo-Mausmodell der intravenösen Vollnarkose während der Krebsresektion

Anesthesia is a routine component of cancer care that is used for diagnostic and therapeutic procedures. The anesthetic technique has recently been ...

Dieses neuartige Protokoll beschreibt die chirurgische Anästhesie bei Mäusen unter Propofol-Anästhesie. Die Methode ermöglicht die Erforschung der Propofol-Anästhesie in Mausmodellen von Krankheiten. Das Protokoll ermöglicht die Beurteilung der totalen intravenösen Anästhesie und vermeidet die Verwendung von flüchtiger Anästhesie.Das Protokoll kann verwendet werden, um zu untersuchen, wie sich die Propofol-Anästhesie auf krankheitsbezogene Ergebnisse auswirkt. Zum Beispiel bewerten wir hier kurz- und langfristige Krebsergebnisse nach der Operation, um den Tumor zu entfernen. Zu Beginn kultivieren Sie 66 CL4 Mirai-Mammakrebszellen, die stabil transduziert werden, um Glühwürmchen-Luciferase in alpha-MEM-Medium zu exprimieren, das 10% FBS und 200 Millimolares Glutamin enthält.Inkubieren Sie die Zellen bei 37 Grad Celsius, aber 5% Kohlendioxid. Subkultur der Zellen, wenn die Zellen etwa 80% Konfluenz erreichen. Wenn sich die Zellen in einer logarithmischen Wachstumsphase mit zwei Milliliter Tropfen in EDTA-Lösung befinden, heben Sie die adhärenten Zellen an und zählen Sie die Zellen mit einem Hämozytometer.Dann verdünnen Sie die Zellen in PBS und halten Sie die verdünnte Zellsuspension

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Die Maus komplette Stase Modell der unteren Hohlvene Thrombose liefert quantifizierbare Mengen Venenwand Gewebe und Thrombus. Es hat sich bewährt für die Bewertung Wechselwirkungen zwischen der Venenwand und der okklusiven Thrombus und bei der Beurteilung der Progression von akuten zu chronischen Entzündungen sinnvoll.

Maus Komplette Stasis Model of Inferior Vena Cava Thrombose

Quelle: Shannonhouse, J., et al. In vivo Kalzium-Bildgebung von neuronalen Ensembles in Netzwerken primärer sensorischer Neuronen in intakten Spinalganglien. J. Vis. Exp. (2023). Das Video zeigt eine in vivo Calcium-Bildgebungstechnik zur Überwachung der neuronalen Aktivität in den Spinalganglien (DRG) einer transgenen Maus. DRG-Neuronen exprimieren einen Kalziumindikator, der die Fluoreszenzintensität bei Bindung an Kalzium erhöht. Mechanische oder thermische Reize, die auf eine Hinterpfote...

In vivo Calcium-Bildgebung von neuronalen Ensembles in den intakten Spinalwurzelganglien einer Maus

Quelle: Alomari, S., et al. Implementierung der minimal-invasiven Hirntumorresektion bei Nagetieren für eine hohe Lebensfähigkeit der Gewebeentnahme. J. Vis. Exp. (2022)Dieses Video zeigt die Verwendung eines minimal-invasiven Resektionssystems (MIRS) zur Entfernung von Tumorgewebe aus einer anästhesierten Maus, der ein Tumor implantiert wurde. Das Verfahren besteht darin, die Maus auf einem stereotaktischen Rahmen zu befestigen, die vorherige Operationsstelle wieder zu öffnen, um Zugang zum...

Hirntumorresektion bei einer Maus mit einem minimalinvasiven Resektionssystem

Wir beschreiben ein Verfahren zur Abbildung als Reaktion auf...

Live-Imaging of Drug Responses in der Tumor-Mikroumgebung in Mausmodellen von Brustkrebs

Dargestellt ist hier die einfache Methode zur Isolierung und Durchflusszytometrieanalyse Gliom-infiltrierenden mononukleären peripheren Blutzellen, die zeitabhängige quantitative Daten über die Anzahl und Aktivierungsstatus von Immunzellen in das Gehirn frühen Tumorumgebung ergibt.

Isolierung und Analyse über Durchflusszytometrie von Gliom-Infiltration peripheren mononukleären Blutzellen

Dieses Manuskript beschreibt die Entwicklung eines Tiermodells, das es ermöglicht, die Auswirkungen von Tumorhypoxie auf die Metastasierung direkt zu testen und die Mechanismen ihrer Wirkung zu entschlüsseln. Obwohl sich die hier beschriebenen Experimente auf das Ewing-Sarkom konzentrieren, kann ein ähnlicher Ansatz auf andere Tumorarten angewendet werden.

In - vivo - Modell für die Prüfung von Wirkung von Hypoxie auf die Tumormetastasierung

Dieses Protokoll beschreibt die Implantation eines Glasfensters auf das Rückenmark einer Maus, um die Visualisierung durch intravitale Mikroskopie zu erleichtern.

Laminektomie und Rückenmarksfenster-Implantation in der Maus

Wir beschreiben detailliert ein klinisch relevantes Tumormodell der Darmkrebslebermetastasen (CRLM) und den Einfluss der Leberischämie-Reperfusion (I/R) auf Tumorwachstum und Metastasierung. Dieses Modell kann helfen, die Mechanismen, die der chirurgieinduzierten Förderung des metastasierenden Wachstums der Leber zugrunde liegen, besser zu verstehen.

Murine Modell der metastasierenden Lebertumoren in der Einstellung der Ischämie Reperfusionsverletzung

In diesem Protokoll beschreiben wir ein Mausmodell der unvollständigen chirurgischen Resektion von Weichteilsarkom zum Testen (neo)adjuvante Therapien.

Ein Mausmodell von unvollständig resected Soft Tissue Sarcoma for Testing (Neo)adjuvante Therapien

Wir präsentieren ein Protokoll, um das Hirnstamm der erwachsenen Maus von der ventralen Seite zu entlarven. Durch die Verwendung einer Gradienten-Refraktiven Indexlinse mit einem Miniaturmikroskop kann die Kalzium-Bildgebung verwendet werden, um die Aktivität von minderwertigen oliv-neuralen Somata nin vivo zu untersuchen.

In vivo Calcium Imaging in Maus Inferior Olive

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine standardisierte Resektion von Hirntumoren bei Nagetieren durch einen minimalinvasiven Ansatz mit einem integrierten Gewebekonservierungssystem. Diese Technik hat Auswirkungen auf die genaue Widerspiegelung des Pflegestandards in Nagetier- und anderen Tiermodellen.

Implementierung einer minimalinvasiven Hirntumorresektion bei Nagetieren zur hochrentablen Gewebeentnahme

Erfahren Sie ein Protokoll zur totalen intravenösen Anästhesie mit Propofol bei Mäusen während der Tumorresektion. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung anästhesiebedingter Effekte auf Krebsrezidive.

Ein In-vivo-Mausmodell der intravenösen Vollnarkose während der Krebsresektion

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