Name: Verbesserte Ölgewinnung mit einer Kombination von Biotensiden (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-06-03T12:30:00.000+00:00
Duration: 13 min 19 s
Description: Erfahren Sie Methoden zur Screening- und Charakterisierung von Biotensiden aus Rhodococcus, Lysinibacillus und Paenibacillus zur Verbesserung der Ölgewinnung. Diese nachhaltige Technik reduziert Kosten und schont die Umwelt.

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Die Autoren danken dem Department of Biotechnology, Government of India, für die finanzielle Unterstützung.

Die Autoren erklären keine Interessenkonflikte.

Biotenside sind eine der vielseitigsten Gruppen biologisch aktiver Komponenten, die zu attraktiven Alternativen zu chemischen Tensiden werden. Sie haben eine breite Palette von Anwendungen in zahlreichen Branchen wie Waschmittel, Farben, Kosmetika, Lebensmittel, Pharmazeutika, Landwirtschaft, Erdöl und Wasseraufbereitung aufgrund ihrer besseren Benetzbarkeit, niedrigeren CMC, diversifizierte Struktur und Umweltfreundlichkeit18. Dies hat zu einem erhöhten Interesse an der Entdeckung von mehr mikrob...

Biotenside sind die amphipathischen oberflächenaktiven Moleküle, die von Mikroorganismen produziert werden und die Fähigkeit haben, die Oberfläche und die Grenzflächenspannung zwischen zwei Phasen1 zu reduzieren. Ein typisches Biotensid enthält einen hydrophilen Teil, der normalerweise aus einem Zuckeranteil oder einer Peptidkette oder einer hydrophilen Aminosäure besteht, und einen hydrophoben Teil, der aus einer gesättigten oder ungesättigten Fettsäurekettebesteht 2. Aufgrund ihrer amphipathischen Natur sammeln sich Biotenside an der Grenzfläche zwischen den beiden Phasen und reduzieren die Grenzflächenspannung an der Grenze, was die Dispersion einer Phase in die andere erleichtert 1,3. Verschiedene Arten von Biotensiden, die bisher berichtet wurden, umfassen Glykolipide, in denen Kohlenhydrate über Esterbindungen (z. B. Rhamnolipide, Trehalolipide und Sophorolipide) an langkettige aliphatische oder hydroxy-aliphatische Säuren gebunden sind, Lipopeptide, bei denen Lipide an Polypeptidketten gebunden sind (z. B. Surfactin und Lichenysin), und polymere Biotenside, die normalerweise aus Polysaccharid-Proteinkomplexen bestehen (z. Emulsan, Liposan, Alasan und Lipomannan)4. Andere Arten von Biotensiden, die von den Mikroorganismen produziert werden, umfassen Fettsäuren, Phospholipide, neutrale Lipide und partikuläre Biotenside5. Die am meisten untersuchte Klasse von Biotensiden sind Glykolipide und unter ihnen wurden die meisten Studien über Rhamnolipideberichtet 6. Rhamnolipide enthalten ein oder zwei Moleküle Rhamnose (die den hydrophilen Teil bilden), die mit einem oder zwei Molekülen langkettiger Fettsäure (normalerweise Hydroxy-Decansäure) verbunden sind. Rhamnolipide sind primäre Glykolipide, die zuerst aus Pseudomonas aeruginosa7 berichtet wurden.
Biotenside haben im Vergleich zu ihren chemischen Gegenstücken aufgrund verschiedener einzigartiger und unverwechselbarer Eigenschaften, die sie bieten, zunehmend an Bedeutung gewonnen8. Dazu gehören eine höhere Spezifität, geringere Toxizität, größere Vielfalt, einfache Zubereitung, höhere biologische Abbaubarkeit, bessere Schaumbildung, Umweltverträglichkeit und Aktivität unter extremen Bedingungen9. Die strukturelle Vielfalt der Biotenside (Abbildung S1) ist ein weiterer Vorteil, der ihnen einen Vorteil gegenüber den chemischen Gegenstückenverschafft 10. Sie sind im Allgemeinen wirksamer und effizienter bei niedrigeren Konzentrationen, da ihre kritische Mizellenkonzentration (CMC) in der Regel um ein Vielfaches niedriger ist als bei chemischen Tensiden11. Es wurde berichtet, dass sie sehr thermostabil (bis zu 100 °C) sind und einen höheren pH-Wert (bis zu 9) und hohe Salzkonzentrationen (bis zu 50 g/l)12 tolerieren können, was mehrere Vorteile in industriellen Prozessen bietet, die eine Exposition gegenüber extremen Bedingungen erfordern13. Biologische Abbaubarkeit und geringere Toxizität machen sie für Umweltanwendungen wie die Bioremediation geeignet. Aufgrund der Vorteile, die sie bieten, haben sie in verschiedenen Branchen wie der Lebensmittel-, Landwirtschafts-, Waschmittel-, Kosmetik- und Erdölindustrie mehr Aufmerksamkeit erhalten11. Biotenside haben auch in der Ölsanierung viel Aufmerksamkeit erregt, um Erdölverunreinigungen und toxische Schadstoffe zu entfernen14.
Hier berichten wir über die Herstellung, Charakterisierung und Anwendung von Biotensiden, die von Rhodococcus sp. IITD102, Lysinibacillus sp. IITD104 und Paenibacillus sp. IITD108 hergestellt werden. Die Schritte beim Screening, der Charakterisierung und der Anwendung einer Kombination von Biotensiden für eine verbesserte Ölgewinnung sind in Abbildung 1 dargestellt.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63207/63207fig01.jpg"> Abbildung 1: Eine Methode zur verbesserten Ölgewinnung unter Verwendung einer Kombination von Biotensiden. Der schrittweise Arbeitsablauf wird angezeigt. Die Arbeiten wurden in vier Schritten durchgeführt. Zuerst wurden die mikrobiellen Stämme kultiviert und für die Produktion von Biotensid durch verschiedene Assays untersucht, darunter Tropfenkollaps-Assay, Ölausbreitungsassay, Emulsionsindex-Assay und Oberflächenspannungsmessung. Dann wurden die Biotenside aus der zellfreien Brühe extrahiert und ihre Natur mittels Dünnschichtchromatographie identifiziert und sie wurden weiter mit LCMS, NMR und FT-IR identifiziert. Im nächsten Schritt wurden die extrahierten Biotenside miteinander vermischt und das Potenzial der resultierenden Mischung für eine verbesserte Ölgewinnung mittels der Sandpacksäulentechnik bestimmt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63207/63207fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.</a>
Das Screening dieser mikrobiellen Stämme zur Herstellung von Biotensiden erfolgte durch Tropfenkollaps, Ölausbreitung, Emulsionsindexmessung und Bestimmung der Verringerung der Oberflächenspannung des zellfreien Mediums aufgrund des Wachstums der Mikroben. Die Biotenside wurden durch LCMS, 1H NMR und FT-IR extrahiert, charakterisiert und chemisch identifiziert. Schließlich wurde eine Mischung aus Biotensiden hergestellt, die von diesen Mikroben produziert wurde und zur Rückgewinnung des Restöls in einer simulierten Sandpackungssäule verwendet wurde.
Die vorliegende Studie veranschaulicht nur die Methoden, die mit dem Screening, der Identifizierung, der strukturellen Charakterisierung und der Anwendung der Biotensidkombination zur Verbesserung der Restölgewinnung verbunden sind. Es bietet keine detaillierte funktionelle Charakterisierung der Biotenside, die von den mikrobiellen Stämmen15,16 produziert werden. Verschiedene Experimente wie die Bestimmung kritischer Mizellen, die thermogravimetrische Analyse, die Oberflächenbenetzbarkeit und die biologische Abbaubarkeit werden zur detaillierten funktionellen Charakterisierung jedes Biotensids durchgeführt. Da es sich bei diesem Papier jedoch um ein Methodenpapier handelt, liegt der Schwerpunkt auf dem Screening, der Identifizierung, der strukturellen Charakterisierung und der Anwendung der Biotensidkombination zur Verbesserung der Restölgewinnung. Diese Experimente wurden nicht in diese Studie einbezogen.

<table><tbody><tr><td>1 ml Pipette</td><td>Eppendorf, Deutschland</td><td>G54412G</td><td></td></tr><tr><td>1H NMR</td><td>Bruker Avance AV-III Typ Spektrometer, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>20 ul pipette</td><td>Thermo scientific, USA</td><td>H69820</td><td></td></tr><tr><td>Autoklav</td><td>JAISBO, Indien</td><td>Ser no 5923</td><td>Jain Scientific</td></tr><tr><td>Blue Flammenbrenner</td><td>Rocker scientific, Taiwan</td><td>dragon 200</td><td></td></tr><tr><td>Butanol</td><td>GLR inovations, Indien</td><td>GLR09.022930</td><td></td></tr><tr><td>C18 Säule</td><td>Agilent Technologies, USA</td><td>770995-902</td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>Eppendorf, Deutschland</td><td>5810R</td><td></td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Merck, Indien</td><td>1.94506.2521</td><td></td></tr><tr><td>Chloroform-d</td><td>SRL, Indien</td><td>57034</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Rohre</td><td>Tarsons, Indien</td><td>546041</td><td>Strahlensterilisiertes Polypropylen</td></tr><tr><td>FT-IR</td><td>Thermo Fisher Scientific, USA&</td><td>nbsp; Nicolet iS50</td><td></td></tr><tr><td>Abzug</td><td>Khera, Indien</td><td>47408</td><td>Kundenspezifischer</td></tr><tr><td>Eisessig</td><td>Merck, Indien</td><td>1.93002</td><td></td></tr><tr><td>Glasperlen</td><td>Merck, Indien</td><td>104014</td><td></td></tr><tr><td>Glasdias</td><td>Polar Industrial Corporation, USA</td><td>Blue Star</td><td>75 mm * 25 mm</td></tr><tr><td>Glaswolle</td><td>Merk, Indien</td><td>104086</td><td></td></tr><tr><td>Salzsäure</td><td>Merck, Indien</td><td>1003170510</td><td></td></tr><tr><td>Inkubator</td><td>Thermo Scientific, USA</td><td>MaxQ600</td><td>Schüttelinkubator</td></tr><tr><td>Inkubator</td><td>Khera, Indien</td><td>Sunbim</td><td></td></tr><tr><td>Jod resublimiert</td><td>Merck, Indien</td><td>231-442-4</td><td>&nbsp; resublimiertes Granulat</td></tr><tr><td>K12 &ndash; Kruss Tensiometer</td><td>Kruss Scientific, Deutschland</td><td>K100</td><td></td></tr><tr><td>Laminar air flow cabnet</td><td>Thermo Scientific, China</td><td>1300 Series A2</td><td></td></tr><tr><td>LCMS</td><td>Agilent Technologies, USA</td><td>1260 Infinity II</td><td></td></tr><tr><td>Luria Broth</td><td>HIMEDIA, Indien</td><td>M575-500G</td><td>Pulver</td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Merck, Indien</td><td>107018</td><td></td></tr><tr><td>Ninhydrin</td><td>Titan Biotech Limited, Indien</td><td>1608</td><td></td></tr><tr><td>p-Anisaldehyd</td><td>Sigma, USA</td><td>204-602-6</td><td></td></tr><tr><td>Petriplatte</td><td>Tarsons, Indien</td><td>460090-90 MM</td><td>Strahlensterilisiertes Polypropylen</td></tr><tr><td>Saponin</td><td>Merck, Indien</td><td>232-462-6</td><td></td></tr><tr><td>Natriumchlorid</td><td>Merck, Indien</td><td>231-598-3</td><td></td></tr><tr><td>Reagenzgläser</td><td>Borosil, Indien</td><td>9800U06</td><td>Glasröhren</td></tr><tr><td>TLC Platten</td><td>Merck, Indien</td><td>1055540007</td><td></td></tr><tr><td>Vortex</td><td>GeNei, Indien</td><td>2006114318</td><td></td></tr><tr><td>Wasserbad</td><td>Julabo, Indien</td><td>SW21C</td><td></td></tr></tbody></table>

verbesserte Ölgewinnung mit einer kombination von biotensiden

Enhanced Oil Recovery using a Combination of Biosurfactants

Biotenside sind oberflächenaktive Verbindungen, die in der Lage sind, die Oberflächenspannung zwischen zwei Phasen unterschiedlicher Polaritäten zu reduzieren. Biotenside haben sich aufgrund der geringeren Toxizität, der hohen biologischen Abbaubarkeit, der Umweltverträglichkeit und der Toleranz gegenüber extremen Umweltbedingungen zu vielversprechenden Alternativen zu chemischen Tensiden entwickelt. Hier veranschaulichen wir die Methoden zum Screening von Mikroben, die Biotenside produzieren können. Die biotensidproduzierenden Mikroben wurden mittels Tropfenkollaps, Ölausbreitung und Emulsionsindex-Assays identifiziert. Die Produktion von Biotensiden wurde validiert, indem die Verringerung der Oberflächenspannung der Medien aufgrund des Wachstums der mikrobiellen Mitglieder bestimmt wurde. Wir beschreiben auch die Methoden zur Charakterisierung und Identifizierung von Biotensiden. Eine Dünnschichtchromatographie des extrahierten Biotensids mit anschließender differentieller Färbung der Platten wurde durchgeführt, um die Art des Biotensids zu bestimmen. LCMS, 1H NMR und FT-IR wurden verwendet, um das Biotensid chemisch zu identifizieren. Wir veranschaulichen ferner die Methoden zur Bewertung der Anwendung der Kombination von produzierten Biotensiden zur Verbesserung der Restölgewinnung in einer simulierten Sandpackungssäule.

Drei Bakterienstämme (Rhodococcus sp. IITD102, Lysinibacillus sp. IITD104 und Paenibacillus sp. IITD108) wurden für die Produktion von Biotensiden durch verschiedene Assays untersucht, darunter Tropfenkollaps-Assay, Ölverdrängungsassay, Emulsionsindex-Assay und Oberflächenspannungsreduktion. Zellfreie Überstände aller drei Bakterienstämme und eine Lösung aus chemischem Tensid führten zu einem Tropfenkollaps und wurden daher positiv auf das Vorhandensein der Biotenside bewertet (<strong class="...

Wir veranschaulichen die Methoden des Screenings und der Identifizierung der biotensidproduzierenden Mikroben. Methoden zur chromatographischen Charakterisierung und chemischen Identifizierung der Biotenside, zur Bestimmung der industriellen Anwendbarkeit des Biotensids zur Verbesserung der Restölgewinnung werden ebenfalls vorgestellt.

Verbesserte Ölgewinnung mit einer Kombination von Biotensiden

Biosurfactants are surface-active compounds capable of reducing the surface tension between two phases of different polarities. Biosurfactants have been ...

Biotenside sind die empathischen oberflächenaktiven Moleküle, die von Mikroorganismen produziert werden, die die Fähigkeit haben, die Oberflächenspannung der Flüssigkeit und die interfizielle Spannung zwischen zwei verschiedenen Phasen zu reduzieren. Die empathische Natur dieser Moleküle ermöglicht es ihnen, sich an der Grenzfläche zwischen zwei verschiedenen Phasen auszurichten und die Solubilisierung einer Phase in eine andere zu verbessern. Biotenside haben im Vergleich zu ihren chemischen Gegenstücken aufgrund verschiedener Vorteile, die sie bieten, viel Aufmerksamkeit erregt.Dazu gehören eine höhere Spezifität, eine geringere Toxizität, eine größere strukturelle Vielfalt, eine einfache Zubereitung, eine höhere biologische Abbaubarkeit, ihre höhere Umweltverträglichkeit und ihre Aktivität unter extremen Umweltbedingungen. In diesem Video demonstrieren wir die Methoden des Screenings, der Charakterisierung und der Anwendung von Biotensiden, die von verschiedenen Stämmen von Rodococcus, Lysinibacillus und Paenibacillus produziert werden. Wir veranschaulichen ferner die Methoden zur Bewertung der Anwendung der Kombination von Biotensiden, die von diesen drei mikrobiellen Stämmen bei der Rückgewinnung von Restöl durch eine Sandpacksäulentechnik erzeugt werden.Die Arbeiten wurden unter der Leitung von Dr. Preeti Srivastava und Dr. Manoj Kumar durchgeführt. Für das Wachstum von Mikroben impfen Sie die Kolben mit hundert Millilitern autoklavierter Luria-Brühe, indem Sie einen Milliliter über Nacht gewachsene Samenkultur in den Kolben im laminaren Luftstromschrank geben. Inkubieren Sie die Kolben in einem Drehbrutschrank bei 30 Grad Celsius und 180 U / min für sieben Tage.Nach Abschluss der Inkubationszeit die Kolben ernten und die Kulturbrühe in die Zentrifugenröhrchen geben. Zentrifugieren Sie die Kultur bei 4.500 G für 20 Minuten in einer gekühlten Zentrifuge bei vier Grad Celsius. Gießen Sie den zellfreien Überstand vorsichtig in ein frisches Becherglas und verwenden Sie ihn in Screening-Assays für die Biotensidproduktion.Für das Screening der Biotensidproduktion durch einen Tropfenkollaps-Assay nehmen Sie einen sauberen Glasobjektträger und beschichten Sie die Oberfläche des Objektträgers mit 200 Mikrolitern Öl. Geben Sie nun 20 Mikroliter zellfreien Überstand in die Mitte des Öls und lassen Sie es zwei bis drei Minuten ungestört. Wenn der Tropfen kollabiert, bewerten Sie den Überstand positiv auf das Vorhandensein von Biotensid.Nehmen Sie beim Ölausbringungsassay 20 Milliliter doppelt destilliertes Wasser in eine Petriplatte und fügen Sie 200 Mikroliter Rohöl auf die Wasseroberfläche hinzu. Fügen Sie nun 20 Mikroliter zellfreien Überstand in die Mitte des Öls hinzu und lassen Sie es eine Minute lang ungestört. Wenn eine Clearingzone als Folge von Ölverdrängung gebildet wird, bewerten Sie den Überstand positiv für das Vorhandensein von Biotensid.Im Emulsionsindex-Assay fügen Sie jeweils vier Milliliter Benzin und zellfreien Überstand in ein sauberes Glasröhrchen hinzu. Dann was die Mischung kräftig für drei Minuten und lassen Sie es ungestört für die nächsten 24 Stunden. Zur Messung der Oberflächenspannung des zellfreien Überstandes reinigen Sie das Glasgefäß mit der Flüssigkeit, deren Oberflächenspannung zu bestimmen ist.Fügen Sie die Flüssigkeit in das Gefäß hinzu und montieren Sie das Gefäß auf dem Gefäßhalter. Entsperren Sie den Sondenhalter und montieren Sie die Sonde darauf. Stellen Sie mit dem manuellen Controller die Höhe der Plattform so ein, dass die Sonde zwei bis drei Millimeter von der Oberfläche der Flüssigkeit entfernt ist.Gehen Sie dann zu Software und folgen Sie den im Papier genannten Schritten, um die Oberflächenspannung zu messen. Senken Sie nach Abschluss der Messung die Höhe der Plattform ab und entriegeln und demontieren Sie die Sonde und das Gefäß vom Instrument. Für die Extraktion von Biotensid stellen Sie den pH-Wert des zellfreien Überstands auf zwei ein, wobei Sie zwei normale Salzsäure verwenden.Lagern Sie die Mischung über Nacht bei vier Grad Celsius. Am nächsten Tag fügen Sie das gleiche Volumen der Chloroform-Methanolmischung hinzu und mischen Sie kräftig für 20 Minuten. Lassen Sie die Mischung ungestört, damit eine freie Trennung stattfinden kann.Entfernen Sie die obere Oberfläche, die Wasser und Methanol enthält, und lassen Sie die untere Oberfläche, die Biotensid enthält, in einem Abzug verdampfen. Nach der Verdampfung der organischen Phase das honigfarbene Biotensid in drei Milliliter Chloroform wieder auflösen und dieses Gemisch zur Charakterisierung und Identifizierung des Biotensids verwenden. Zur chromatographischen Charakterisierung des extrahierten Biotensids finden Sie 20 Mikroliter Biotensid auf TLC-Platten.Nachdem Sie die Platten getrocknet haben, legen Sie die TLC-Platte in die mit Chloroform-Methanolmischung gesättigte Kammer und lassen Sie die TLC laufen. Für den Lipidnachweis fügen Sie einige Jodgranulate in die frische Kammer hinzu und sättigen Sie die Kammer für fünf bis 10 Minuten. Platzieren Sie den TLC in der Kammer und beobachten Sie die Entwicklung gelber Flecken.Für den Protein- und Kohlenhydratnachweis besprühen Sie die TLC-Platte mit Nicht-Wasserstoff oder Anisaldehyd und erhitzen Sie sie auf 110 Grad Celsius und beobachten Sie die Farbentwicklung. Für die NMR-Analyse stecken Sie das Rohr in den Schraubenschlüssel. Stellen Sie die Höhe des Rohrs mit einem angepassten Rohr ein.Legen Sie die NMR-Röhre zusammen mit dem Schraubenschlüssel in ein MR-Gerät und befolgen Sie die im Papier genannten Schritte, um ein NMR-Spektrum zu erhalten. Für ein verbessertes Ölgewinnungsexperiment nehmen Sie eine Glassäule und versiegeln Sie den unteren Auslass mit Glaswolle und Glasperlen. Stützen Sie die Säule mit sandigem Boden so, dass etwas Flüssigkeit an der Oberseite des Bodens hinzugefügt werden kann.Montieren Sie die Säule auf dem Halter und fügen Sie einige Glasperlen auf dem Boden hinzu. Überfluten Sie die Säule mit 50 Millilitern Solelösung und sammeln Sie den Durchfluss, um das schlechte Volumen zu bestimmen. Entfernen Sie die Sole von der Säule, indem Sie Rohöl zwingen, sie zu passieren.Sammeln Sie das Volumen von Sole und Öl, das aus der Säule kommt, um das anfängliche Ölsättigungsvolumen zu bestimmen. Nach 24 Stunden überfluten Sie die Kolonne mit 10 schlechten Solevolumina und sammeln das Öl, das aus der Säule kommt, um die sekundäre Ölgewinnung zu schätzen. Das Öl, das nach der Sekundärölgewinnung in der Säule verbleibt, entspricht dem Restöl.Bereiten Sie nun eine Mischung von Biotensiden vor, indem Sie das extrahierte Biotensid in ein Glasbecherglas geben. Geben Sie das Biotensid und die Mischung in die Säule und lassen Sie sie für die nächsten 24 Stunden ungestört. Messen Sie nach 24 Stunden die Menge an Öl und Wasser, die aus der Säule herausgespielt wurde, um eine zusätzliche oder verbesserte Ölgewinnung zu bestimmen.Zellfreie Überstände der drei mikrobiellen Stämme wurden positiv auf das Vorhandensein von Biotensid bewertet, da sie zu Tropfenkollaps, Ölausbreitung und Emulsionsbildung führten. Die Bestätigung der Biotensidproduktion erfolgte durch Messung der Oberflächenspannung der zellfreien Brühe. Durch das Wachstum von Rhodococcus und Lysinibacillus reduzierte sich die Oberflächenspannung des Mediums von 59 auf 45 mN pro Meter.Durch das Wachstum von Paenibacillus reduzierte sich die Oberflächenspannung des Mediums von 59 auf 28,4 mN pro Meter. Emulsionsstabilitätstests zeigten, dass die von den drei mikrobiellen Stämmen produzierten Biotenside unter verschiedenen Umweltbedingungen eine große Stabilität aufwiesen. Die Emulsionsindizes zeigten keine signifikante Veränderung, wenn die Inkubationstemperatur, der pH-Wert und die Salzkonzentration der zellfreien Brühe verändert wurden.Die DLC-Charakterisierung des extrahierten Biotensids zeigte, dass Biotenside, die von allen drei Stämmen produziert wurden, Glykolip waren. Die chemische Identifizierung von Biotensiden zeigte, dass Rodococcus und Lysinbacillus das gleiche Biotensid produzierten, das als Rhamnolipid mit einer Masse von etwa vier 80 Dalton identifiziert wurde. Paenibaccilus hingegen produziert ein Rhamnolipid, das drei Lipidketten mit einer Masse von etwa 802 Dalton enthält.Die Kombination von Biotensiden war in der Lage, 56,5% des Restöls aus der Sandsäule zurückzugewinnen. Die Biotensidproduktion aus den Stämmen von Rodococcus, Lsyinibaccilus und Paenibacillus wurde untersucht, und die Stämme wurden positiv für die Produktion von Biotensid bewertet. Die produzierten Biotenside wurden charakterisiert und als Rhamnolipide identifiziert.Da die Biotensidkombination 56% des Restöls in einer Sandpackungstechnik zurückgewinnen konnte, kann die Biotensidkombination in Feldanwendungen verwendet werden, um das in den Ölreservoirs eingeschlossene Restöl zurückzugewinnen.

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Umwelt

Quelle: Villela, H. D. M. et al. Prospektion mikrobieller Stämme für Bioremediation und Probiotikaentwicklung für die Forschung und Erhaltung von Metaorganismen. J. Vis. Exp. (2019)Dieses Video demonstriert die selektive Isolierung ölabbauender Meeresbakterien durch Anreicherung von Meerwasserproben auf ölbasierten Medien, was die Rückgewinnung reiner Stämme mit potenziellen Anwendungen in der Rohölbioremediation und Umweltreinigung ermöglicht.

Selektive Anreicherung und Isolierung ölabbauender Meeresbakterien aus Meerwasserproben

Dargestellt ist das Protokoll für die Co-immobilisierenden Ganzzellbiokatalysatoren für Cofactorregenerierung und eine verbesserte Wiederverwertbarkeit, mit der Produktion von L-Xylulose als Beispiel. Die Cofactorregenerierung wird durch Kopplung von zwei Escherichia coli - Stämme exprimieren funktionell komplementären Enzymen erreicht; die Ganzzellbiokatalysator Immobilisierung durch Zellverkapselung in Calciumalginatperlen erreicht.

Immobilisierung von Multi-Biokatalysatoren in Alginatbeads für Kofaktorregenerierung und verbesserte Reusability

Das Ziel dieses Verfahrens ist es, einfach und schnell eine mikrofluidischen Gerät mit anpassbare Geometrie und Widerstand gegen Schwellungen von organischen Flüssigkeiten für Erholung Ölstudien produzieren. Ein Polydimethylsiloxan Schimmel ist zuerst erzeugt und dann verwendet, um das Epoxy-basierte Gerät gegossen. Eine repräsentative Verschiebung-Studie wird berichtet.

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Die Verschmutzung betrifft alle Biome. Besonders betroffen sind die Meeresumwelten, insbesondere Korallenriffe, eines der empfindlichsten Ökosysteme der Erde. Bio-Remediation ist die Fähigkeit von Organismen, Verunreinigungen zu abbauen. Hier beschreiben wir Methoden zur Isolierung und Erprobung von Mikroben, die Biosanierungsfähigkeit und potenzielle probiotische Eigenschaften für Korallen darstellen.

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Untersuchung der Tensideffekte auf die Hydratkristallisation an Öl-Wasser-Schnittstellen mit einem kostengünstigen integrierten modularen Peltier-Gerät

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