Name: Im lebenden Organismus Positronen-Emissions-Tomographie zur Aufdeckung von Aktivitätsmustern, die durch tiefe Hirnstimulation bei Ratten induziert werden (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-03-23T12:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: Erfahren Sie die Anwendung von FDG-PET-Bildgebung bei Ratten zur Untersuchung metabolischer Veränderungen durch tiefe Hirnstimulation. Diese Methode ermöglicht die Visualisierung neuronaler Netzwerkdynamik in vivo.

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Wir danken Prof. Christine Winter, Julia Klein, Alexandra de Francisco und Yolanda Sierra für ihre unschätzbare Unterstützung bei der Optimierung der hier beschriebenen Methodik. MLS wurde vom Ministerio de Ciencia e Innovación, Instituto de Salud Carlos III (Projektnummer PI17/01766 und Fördernummer BA21/0030) unterstützt, kofinanziert vom Europäischen Fonds für regionale Entwicklung (EFRE), "A way to make Europe"; CIBERSAM (Projektnummer CB07/09/0031); Delegación del Gobierno para el Plan Nacional sobre Drogas (Projektnummer 2017/085); Fundación Mapfre; und Fundación Alicia Koplowitz.  MCV wurde von der Fundación Tatiana Pérez de Guzmán el Bueno als Stipendiatin dieser Einrichtung und dem EU Joint Programme - Neurodegenerative Disease Research (JPND) unterstützt. DRM wurde unterstützt von Consejería de Educación e Investigación, Comunidad de Madrid, kofinanziert durch den Europäischen Sozialfonds "Investing in your future" (Förderkennzeichen PEJD-2018-PRE/BMD-7899). NLR wurde unterstützt vom Instituto de Investigación Sanitaria Gregorio Marañón, "Programa Intramural de Impulso a la I+D+I 2019". Die MD-Arbeit wurde vom Ministerio de Ciencia e Innovación (MCIN) und dem Instituto de Salud Carlos III (ISCIII) unterstützt (PT20/00044). Das CNIC wird vom Instituto de Salud Carlos III (ISCIII), dem Ministerio de Ciencia e Innovación (MCIN) und der Stiftung Pro CNIC unterstützt und ist ein Severo Ochoa Center of Excellence (SEV-2015-0505).

<ol><li>Gildenberg, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuromodulation%3A+A+historical+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromodulation%22%5BJournal%5D)">Neuromodulation: A historical perspective.</a> Neuromodulation. 1, 9-20 (2009).</li>
<li>Lee, D. J., Lozano, C. S., Dallapiazza, R. F., Lozano, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+and+future+directions+of+deep+brain+stimulation+for+neurological+and+psychiatric+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Current and future directions of deep brain stimulation for neurological and psychiatric disorders.</a> Journal of Neurosurgery. 131 (2), 333-342 (2019).</li>
<li>Casquero-Veiga, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+molecular+neuroimaging+in+deep+brain+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Complutense+University+of+Madrid%22%5BJournal%5D)">Preclinical molecular neuroimaging in deep brain stimulation.</a> Complutense University of Madrid. , Faculty of Medicine, Department of Pharmacology (2021).</li>
<li>Blaha, C. D. Theories of deep brain stimulation mechanisms. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBlaha%2C+CD+%22Deep+Brain+Stimulation%3A+Indictions+and+Applications%22">Deep Brain Stimulation: Indictions and Applications</a>. , Jenny Stanford Publishing. New York. 314-338 (2016).</li>
<li>Fins, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deep+brain+stimulation%3A+Ethical+issues+in+clinical+practice+and+neurosurgical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromodulation%22%5BJournal%5D)">Deep brain stimulation: Ethical issues in clinical practice and neurosurgical research.</a> Neuromodulation. 1, 81-91 (2009).</li>
<li>Desmoulin-Canselier, S., Moutaud, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+and+animal+experimentation+in+the+development+of+deep+brain+stimulation%3A+From+a+specific+controversy+to+a+multidimensional+debate%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Neuroanatomy%22%5BJournal%5D)">Animal models and animal experimentation in the development of deep brain stimulation: From a specific controversy to a multidimensional debate.</a> Frontiers in Neuroanatomy. 13, 51(2019).</li>
<li>Casquero-Veiga, M., Hadar, R., Pascau, J., Winter, C., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+to+deep+brain+stimulation+in+three+brain+targets+with+implications+in+mental+disorders%3A+A+PET+study+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+One%22%5BJournal%5D)">Response to deep brain stimulation in three brain targets with implications in mental disorders: A PET study in rats.</a> PLOS One. 11 (12), 0168689(2016).</li>
<li>Casquero-Veiga, M., García-García, D., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+deep+brain+stimulation%3A+In+vivo+metabolic+consequences+of+the+electrode+insertional+effect%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">Understanding deep brain stimulation: In vivo metabolic consequences of the electrode insertional effect.</a> BioMed Research International. 2018, 1-6 (2018).</li>
<li>Casquero-Veiga, M., García-García, D., Pascau, J., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulating+the+nucleus+accumbens+in+obesity%3A+A+positron+emission+tomography+study+after+deep+brain+stimulation+in+a+rodent+model%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+One%22%5BJournal%5D)">Stimulating the nucleus accumbens in obesity: A positron emission tomography study after deep brain stimulation in a rodent model.</a> PLOS One. 13 (9), 0204740(2018).</li>
<li>Pascau, J., Vaquero, J. J., Abella, M., Cacho, R., Lage, E., Desco, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multimodality+workstation+for+small+animal+image+visualization+and+analysis.+Scientific+Papers%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Imaging+and+Biology%22%5BJournal%5D)">Multimodality workstation for small animal image visualization and analysis. Scientific Papers.</a> Molecular Imaging and Biology. 8, 97-98 (2006).</li>
<li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22The+Rat+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press. Sydney. (1998).</li>
<li>Roy, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+dual+tracer+PET-MRI+protocol+for+the+quantitative+measure+of+regional+brain+energy+substrates+uptake+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A dual tracer PET-MRI protocol for the quantitative measure of regional brain energy substrates uptake in the rat.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (82), e50761(2013).</li>
<li>Klein, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+approach+to+investigate+neuronal+network+activity+patterns+affected+by+deep+brain+stimulation+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Psychiatric+Research%22%5BJournal%5D)">A novel approach to investigate neuronal network activity patterns affected by deep brain stimulation in rats.</a> Journal of Psychiatric Research. 45 (7), 927-930 (2011).</li>
<li>Soto-Montenegro, M. L., Pascau, J., Desco, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+to+deep+brain+stimulation+in+the+lateral+hypothalamic+area+in+a+rat+model+of+obesity%3A+In+vivo+assessment+of+brain+glucose+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Imaging+and+Biology%22%5BJournal%5D)">Response to deep brain stimulation in the lateral hypothalamic area in a rat model of obesity: In vivo assessment of brain glucose metabolism.</a> Molecular Imaging and Biology. , 830-837 (2014).</li>
<li>Pascau, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+method+for+small-animal+PET+image+registration+with+intrinsic+validation%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Imaging+and+Biology%22%5BJournal%5D)">Automated method for small-animal PET image registration with intrinsic validation.</a> Molecular Imaging and Biology. 11 (2), 107-113 (2009).</li>
<li>Andersson, J. L. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+to+estimate+global+activity+independent+of+changes+in+local+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroimage%22%5BJournal%5D)">How to estimate global activity independent of changes in local activity.</a> Neuroimage. 244 (60), 237-244 (1997).</li>
<li>Wellcome Trust Centre for Neuroimaging SPM12-Statitstical Parametric Mapping. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.fil.ion.ucl.ac.uk/spm/software/spm12/">https://www.fil.ion.ucl.ac.uk/spm/software/spm12/</a> (2022).</li>
<li>Lozano, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deep+brain+stimulation%3A+current+challenges+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Neurology%22%5BJournal%5D)">Deep brain stimulation: current challenges and future directions.</a> Nature Reviews Neurology. 15 (3), (2019).</li>
<li>Boecker, H., Drzezga, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+perspective+on+the+future+role+of+brain+pet+imaging+in+exercise+science%5BTitle%5D)+AND+%22NeuroImage%22%5BJournal%5D)">A perspective on the future role of brain pet imaging in exercise science.</a> NeuroImage. 131, (2016).</li>
<li>Sprengers, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deep+brain+stimulation+reduces+evoked+potentials+with+a+dual+time+course+in+freely+moving+rats%3A+Potential+neurophysiological+basis+for+intermittent+as+an+alternative+to+continuous+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Epilepsia%22%5BJournal%5D)">Deep brain stimulation reduces evoked potentials with a dual time course in freely moving rats: Potential neurophysiological basis for intermittent as an alternative to continuous stimulation.</a> Epilepsia. 61 (5), 903-913 (2020).</li>
<li>Middlebrooks, E. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+brain+activation+patterns+of+high-+versus+low-frequency+stimulation+of+the+anterior+nucleus+of+the+thalamus+during+deep+brain+stimulation+for+epilepsy%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Acute brain activation patterns of high- versus low-frequency stimulation of the anterior nucleus of the thalamus during deep brain stimulation for epilepsy.</a> Neurosurgery. 89 (5), 901-908 (2021).</li>
<li>Ashkan, K., Rogers, P., Bergman, H., Ughratdar, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+into+the+mechanisms+of+deep+brain+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Neurology%22%5BJournal%5D)">Insights into the mechanisms of deep brain stimulation.</a> Nature Reviews Neurology. 13 (9), 548-554 (2017).</li>
<li>Williams, N. R., Taylor, J. J., Lamb, K., Hanlon, C. A., Short, E. B., George, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+functional+imaging+in+the+development+and+refinement+of+invasive+neuromodulation+for+psychiatric+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22World+Journal+of+Radiology%22%5BJournal%5D)">Role of functional imaging in the development and refinement of invasive neuromodulation for psychiatric disorders.</a> World Journal of Radiology. 6 (10), 756-778 (2014).</li>
<li>Rodman, A. M., Dougherty, D. D. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRodman%2C+AM+%22Nuclear+medicine+in+neuromodulation.+Neuromodulation+in+Psychiatry%22">Nuclear medicine in neuromodulation. Neuromodulation in Psychiatry</a>. , John Wiley & Sons. West Sussex, UK. 81-99 (2016).</li>
<li>Albaugh, D. L., Shih, Y. -Y. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+circuit+modulation+during+deep+brain+stimulation+at+the+subthalamic+nucleus+for+Parkinson%27s+disease%3A+what+have+we+learned+from+neuroimaging+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Connectivity%22%5BJournal%5D)">Neural circuit modulation during deep brain stimulation at the subthalamic nucleus for Parkinson's disease: what have we learned from neuroimaging studies.</a> Brain Connectivity. 4 (1), 1-14 (2014).</li>
<li>Mayberg, H. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reciprocal+limbic-cortical+function+and+negative+mood%3A+Converging+PET+findings+in+depression+and+normal+sadness%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%2C+and+Radiology%22%5BJournal%5D)">Reciprocal limbic-cortical function and negative mood: Converging PET findings in depression and normal sadness.</a> Neurology, and Radiology. 156 (5), 675-682 (1999).</li>
<li>Kennedy, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+in+brain+glucose+metabolism+between+responders+to+CBT+and+Venlafaxine+in+a+16-week+randomized+controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Differences in brain glucose metabolism between responders to CBT and Venlafaxine in a 16-week randomized controlled trial.</a> American Journal of Psychiatry. 164 (5), 778-788 (2007).</li>
<li>Kennedy, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+regional+brain+glucose+metabolism+measured+with+positron+emission+tomography+after+paroxetine+treatment+of+major+depression%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Changes in regional brain glucose metabolism measured with positron emission tomography after paroxetine treatment of major depression.</a> American Journal of Psychiatry. 158 (6), 899-905 (2001).</li>
<li>Brown, E. C., Clark, D. L., Forkert, N. D., Molnar, C. P., Kiss, Z. H. T., Ramasubbu, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+activity+in+subcallosal+cingulate+predicts+response+to+deep+brain+stimulation+for+depression%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropsychopharmacology%22%5BJournal%5D)">Metabolic activity in subcallosal cingulate predicts response to deep brain stimulation for depression.</a> Neuropsychopharmacology. 45, 1681-1688 (2020).</li>
<li>Klooster, D. C. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technical+aspects+of+neurostimulation%3A+Focus+on+equipment%2C+electric+field+modeling%2C+and+stimulation+protocols%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience+%26+Biobehavioral+Reviews%22%5BJournal%5D)">Technical aspects of neurostimulation: Focus on equipment, electric field modeling, and stimulation protocols.</a> Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 65, 113-141 (2016).</li>
<li>Kasoff, W., Gross, R. E. Deep brain stimulation: Introduction and Technical Aspects. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKasoff%2C+W+%22Neuromodulation+in+Psychiatry%22">Neuromodulation in Psychiatry</a>. , John Wiley & Sons. West Sussex, UK. 245-275 (2016).</li>
<li>Perez-Caballero, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+responses+to+deep+brain+stimulation+in+depression+are+modulated+by+anti-inflammatory+drugs%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Early responses to deep brain stimulation in depression are modulated by anti-inflammatory drugs.</a> Molecular Psychiatry. 19, 607-614 (2014).</li>
<li>Solera Ruiz, I., UñaOrejón, R., Valero, I., Laroche, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Craniotomy+in+the+conscious+patient.+Considerations+in+special+situations%5BTitle%5D)+AND+%22Spanish+Journal+of+Anesthesiology+and+Resuscitation%22%5BJournal%5D)">Craniotomy in the conscious patient. Considerations in special situations.</a> Spanish Journal of Anesthesiology and Resuscitation. 60 (7), 392-398 (2013).</li>
<li>Casali, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((State+of+the+art+of+18F-FDG+PET%2FCT+application+in+inflammation+and+infection%3A+a+guide+for+image+acquisition+and+interpretation%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+and+Translational+Imaging%22%5BJournal%5D)">State of the art of 18F-FDG PET/CT application in inflammation and infection: a guide for image acquisition and interpretation.</a> Clinical and Translational Imaging. 9 (4), 299-339 (2021).</li>
<li>Gonzalez-Escamilla, G., Muthuraman, M., Ciolac, D., Coenen, V. A., Schnitzler, A., Groppa, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroimaging+and+electrophysiology+meet+invasive+neurostimulation+for+causal+interrogations+and+modulations+of+brain+states%5BTitle%5D)+AND+%22NeuroImage%22%5BJournal%5D)">Neuroimaging and electrophysiology meet invasive neurostimulation for causal interrogations and modulations of brain states.</a> NeuroImage. 220, 117144(2020).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass im Zusammenhang mit diesem Artikel keine Interessenkonflikte bestehen.

Angesichts der Fortschritte im Verständnis der Gehirnfunktion und der neuronalen Netzwerke, die an der Pathophysiologie neuropsychiatrischer Erkrankungen beteiligt sind, erkennen immer mehr Forschungen das Potenzial von THS in einer Vielzahl von neurologisch basierten Pathologien2. Der Wirkmechanismus dieser Therapie bleibt jedoch unklar. Mehrere Theorien haben versucht, die unter spezifischen pathologischen und stimulierenden Umständen erzielten Wirkungen zu erklären, aber die Heterogenität der v...

Der Begriff Neurostimulation umfasst eine Reihe verschiedener Techniken, die darauf abzielen, das Nervensystem mit einem therapeutischen Ziel1 zu stimulieren. Unter ihnen sticht die Tiefe Hirnstimulation (THS) als eine der am weitesten verbreiteten Neurostimulationsstrategien in der klinischen Praxis hervor. THS besteht aus der Stimulation tiefer Hirnkerne mit elektrischen Impulsen, die von einem Neurostimulator abgegeben werden, der direkt in den Körper des Patienten implantiert wird, durch Elektroden, die in das Gehirnziel platziert werden, um durch stereotaktische Chirurgie moduliert zu werden. Die Anzahl der Artikel, die die Durchführbarkeit der DBS-Anwendung bei verschiedenen neurologischen und psychiatrischen Erkrankungen bewerten, wächst kontinuierlich2, obwohl nur einige von ihnen von der Food and Drug Association (FDA) zugelassen wurden (d. h. essentieller Tremor, Parkinson-Krankheit, Dystonie, Zwangsstörung und medizinisch refraktäre Epilepsie)3 . Darüber hinaus wird eine große Anzahl von Gehirnzielen und Stimulationsprotokollen für die THS-Behandlung von viel mehr Pathologien als offiziell genehmigt erforscht, aber keiner von ihnen gilt als endgültig. Diese Inkonsistenzen in der THS-Forschung und den klinischen Verfahren können zum Teil auf ein mangelndes vollständiges Verständnis ihres Wirkmechanismus zurückzuführensein 4. Daher werden große Anstrengungen unternommen, um die In-vivo-Effekte von THS auf die Gehirndynamik zu entschlüsseln, da jeder Fortschritt, wie klein er auch sein mag, dazu beitragen wird, DBS-Protokolle für einen größeren therapeutischen Erfolg zu verfeinern.
In diesem Zusammenhang öffnen molekulare bildgebende Verfahren ein direktes Fenster, um in vivo neuromodulatorische Effekte von THS zu beobachten. Diese Ansätze bieten die Möglichkeit, nicht nur die Auswirkungen der THS während der Anwendung zu bestimmen, sondern auch die Art ihrer Folgen zu entschlüsseln, unerwünschte Nebenwirkungen und klinische Verbesserungen zu verhindern und sogar die Stimulationsparameter an die Bedürfnisse des Patienten anzupassen5. Unter diesen Methoden ist die Positronen-Emissions-Tomographie (PET) mit 2-Desoxy-2-[18F]fluor-D-Glucose (FDG) von besonderem Interesse, da sie spezifische Echtzeitinformationen über den Aktivierungszustand verschiedener Hirnregionen liefert6. Insbesondere bietet die FDG-PET-Bildgebung eine indirekte Bewertung der neuronalen Aktivierung basierend auf dem physiologischen Prinzip der metabolischen Kopplung zwischen Neuronen und Gliazellen6. In diesem Sinne haben mehrere klinische Studien DBS-modulierte Gehirnaktivitätsmuster unter Verwendung von FDG-PET berichtet (siehe3 für die Übersicht). Dennoch haben klinische Studien leicht einige Nachteile, wenn sie sich auf Patienten konzentrieren, wie Heterogenität oder Rekrutierungsschwierigkeiten, die ihr Forschungspotenzial stark einschränken6. Dieser Kontext führt dazu, dass Forscher Tiermodelle menschlicher Erkrankungen verwenden, um biomedizinische Ansätze vor ihrer klinischen Translation zu bewerten oder, wenn sie bereits in der klinischen Praxis angewendet werden, den physiologischen Ursprung therapeutischer Vorteile oder Nebenwirkungen zu erklären. Trotz der großen Distanzen zwischen der menschlichen Pathologie und dem modellierten Zustand bei Labortieren sind diese präklinischen Ansätze für einen sicheren und effektiven Übergang in die klinische Praxis unerlässlich.
Dieses Manuskript beschreibt ein experimentelles DBS-Protokoll für murine Modelle, kombiniert mit einer longitudinalen FDG-PET-Studie, um die akuten Folgen von THS auf den Gehirnstoffwechsel abzuschätzen. Die mit diesem Protokoll erzielten Ergebnisse können dazu beitragen, die komplizierten modulatorischen Muster zu entschlüsseln, die durch THS auf die Gehirnaktivität induziert werden. Daher wird eine geeignete experimentelle Strategie zur Untersuchung der Konsequenzen der Stimulation in vivo bereitgestellt, die es Klinikern ermöglicht, therapeutische Effekte unter bestimmten Umständen zu antizipieren und dann die Stimulationsparameter an die Bedürfnisse des Patienten anzupassen.

<table><tbody><tr><td>7-Tesla Biospec 70/20 Scanner</td><td>Bruker, Deutschland</td><td>SN0021</td><td>MRT-Scanner für die Bildgebung von Kleintieren</td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Meda Pharma S.L., Spanien</td><td>644625.6</td><td>Jodlösung (Jodopovidon)</td></tr><tr><td>Beurer IL 11</td><td>Beurer</td><td>SN87318</td><td>Infrarotlicht Bipolares</td></tr><tr><td>Kabel 50 cm mit 50 cm Maschenweite bis zu 100 cm</td><td>Plastics One, USA</td><td>305-305 (CM)</td><td></td></tr><tr><td>Bipolares Kabel TT2&nbsp; 50 cm bis 100 cm</td><td>Plastics One, USA</td><td>305-340/2</td><td>Bipolares Kabel TT2&nbsp; 50 cm bis 100 cm</td></tr><tr><td>Buprex</td><td>Schering-Plough, S.A</td><td>961425</td><td>Buprenorphin (schmerzlindernd)</td></tr><tr><td>Ceftriaxona Reig Jofr&eacute; 1g IM</td><td>Laboratorio Reig Jofr&eacute; S.A., Spanien</td><td>624239.1</td><td>Ceftriaxon (Antibiotikum)</td></tr><tr><td>Kommutator</td><td>Plastics One, USA</td><td>SL2+2C</td><td>4-Kanal-Kommutator für DBS</td></tr><tr><td>Konzentrische bipolare Platin-Iridium-Elektroden</td><td>Plastics One, USA</td><td>MS303/8-AIU/SPC</td><td>Elektroden für DBS</td></tr><tr><td>Driller</td><td>Bosh</td><td>T58704</td><td>Driller</td></tr><tr><td>FDG</td><td>Curium Pharma Spain S.A., Spanien</td><td>-----</td><td>2-[18F]Fluor-2-desoxy-D-glucose (PET-Radiotracer)</td></tr><tr><td>Heizkissen</td><td>DAGA, Spanien</td><td>23115</td><td>Heizkissen</td></tr><tr><td>Ketolar</td><td>Pfizer S.L., Spanien</td><td>776211.9</td><td>Ketamin (Anästhetikum)</td></tr><tr><td>Lipolasic 2 mg/g</td><td>Bausch & Lomb S.A., Spanien</td><td>65277</td><td>Ophthalmisches Gleitgel</td></tr><tr><td>MatLab R2021a</td><td>The MathWorks, Inc</td><td></td><td>Support-Software für SPM12</td></tr><tr><td>MRIcro</td><td>McCausland Center for Brain Imaging,&nbsp; University of South Carolina, USA</td><td>v2.1.58-0</td><td>Software für die Vorverarbeitung und Analyse von Bildern</td></tr><tr><td>Multimodality Workstation (MMWKS)</td><td>BiiG, Spanien</td><td></td><td>Software für die Verarbeitung und Analyse von Bildern</td></tr><tr><td>Omicrom VISION VET</td><td>RGB Medical Devices, Spanien</td><td>731100 ReV B</td><td>Herz-Kreislauf-Monitor für kleine</td></tr><tr><td>Bildgebung Prevex Wattestäbchen</td><td>Prevex, Finnland</td><td>-----</td><td>Wattestäbchen</td></tr><tr><td>Sevorane</td><td>AbbVie Spain, S.L.U, Spain</td><td>673186.4</td><td>Sevofluran (Inhalationsanästhesie)</td></tr><tr><td>Kleine Schrauben</td><td>Max Witte GmbH</td><td>1,2 x 2 DIN 84 A2</td><td>Kleine Schrauben</td></tr><tr><td>Standard U-Frame Stereotaxic Instrument für Ratte, 18&deg; Ohrstange</td><td>Harvard Apparatus, USA</td><td>75-1801</td><td>Zweiarmiger stereotaktischer Rahmen für</td></tr><tr><td>Ratten Statistical Parametric Mapping (SPM12)</td><td>The Wellcome Center for Human Neuroimaging, UCL Queen Square Institute of Neurology, UK</td><td>SPM12</td><td>Software für voxelweise Bildgebungsanalyse</td></tr><tr><td>STG1004</td><td>Multi Channel Systems GmbH, Deutschland</td><td>STG1004</td><td>Isolierter Stimulator</td></tr><tr><td>SuperArgus PET/CT-Scanner</td><td>Sedecal, Spanien</td> S0026403 <td>NanoPET/CT-Scanner für die Bildgebung von Kleintieren</td><td></td></tr><tr><td>Nahtfaden mit Nadel, 1/&ordm;</td><td>Lorca Mar&iacute; n S.A., Spanien</td><td>55325</td><td>Geflochtene Naturseide nicht resorbierbare Naht 1/0, mit Dreiecksnadel</td></tr><tr><td>Technovit 4004 (Pulver und Flüssigkeit)</td><td>Kulzer Technique, Deutschland</td><td>64708471; 64708474</td><td>Zahnzement aus Acryl für Kraniotomie-Hahn</td></tr><tr><td>Wistar Ratten (Rattus norvergicus)</td><td>Charles River, Spanien</td><td>Tiereinrichtung</td><td>Tiermodell verwendet</td></tr><tr><td>Xylagesic</td><td>Laboratorios Karizoo, A.A, Spanien</td><td>572599-4</td><td>Xylazin (Anästhetikum)</td></tr><tr><td></td><td>Normon S.A., Spanien</td><td>602910</td><td>Mepivacain in Gel zur topischen Anwendung</td></tr></tbody></table>

im lebenden organismus positronen-emissions-tomographie zur aufdeckung von aktivitätsmustern, die durch tiefe hirnstimulation bei ratten induziert werden

In vivo Positron Emission Tomography to Reveal Activity Patterns Induced by Deep Brain Stimulation in Rats

Die Tiefenhirnstimulation (THS) ist eine invasive neurochirurgische Technik, die auf der Anwendung elektrischer Impulse auf Gehirnstrukturen basiert, die an der Pathophysiologie des Patienten beteiligt sind. Trotz der langen Geschichte der THS bleiben ihr Wirkmechanismus und die entsprechenden Protokolle unklar, was die Notwendigkeit von Forschung unterstreicht, um diese Rätsel zu lösen. In diesem Sinne stellt die Bewertung der In-vivo-Effekte von THS mit funktionellen Bildgebungsverfahren eine leistungsfähige Strategie dar, um den Einfluss der Stimulation auf die Gehirndynamik zu bestimmen. Hier wird ein experimentelles Protokoll für präklinische Modelle (Wistar-Ratten) in Kombination mit einer Längsschnittstudie [18F]-Fluordesoxyclucose-Positronen-Emissions-Tomographie (FDG-PET) beschrieben, um die akuten Folgen von THS auf den Hirnstoffwechsel zu beurteilen. Zunächst wurden die Tiere stereotaktisch operiert, um Elektroden bilateral in den präfrontalen Kortex zu implantieren. Ein postoperativer Computertomograph (CT) jedes Tieres wurde erstellt, um die Elektrodenplatzierung zu überprüfen. Nach einer Woche der Erholung wurde von jedem operierten Tier ein erstes statisches FDG-PET ohne Stimulation (D1) und zwei Tage später (D2) ein zweites FDG-PET erworben, während die Tiere stimuliert wurden. Dazu wurden die Elektroden nach der Verabreichung von FDG an die Tiere mit einem isolierten Stimulator verbunden. So wurden die Tiere während der FDG-Aufnahmephase (45 min) stimuliert und die akuten Auswirkungen von THS auf den Gehirnstoffwechsel aufgezeichnet. Angesichts des explorativen Charakters dieser Studie wurden FDG-PET-Bilder durch einen voxelweisen Ansatz analysiert, der auf einem gepaarten T-Test zwischen D1- und D2-Studien basiert. Insgesamt ermöglicht die Kombination von THS- und Bildgebungsstudien die Beschreibung der Neuromodulationsfolgen auf neuronale Netze, was letztendlich dazu beiträgt, die Rätsel rund um THS zu lösen.

Die Tiere wurden am Ende der Studie oder wenn das Wohlergehen des Tieres beeinträchtigt war, mit CO2 geopfert. Ein Beispiel für eine vollständige PET/CT-Studie an einem operierten Tier ist in Abbildung 3 dargestellt. So kann die in das Rattengehirn eingeführte Elektrode in dem in Abbildung 3A gezeigten CT-Bild deutlich beobachtet werden. Diese Bildgebungsmodalität liefert gute anatomische Informationen und erleichtert die Registrierung von FDG-PET-Bil...

Wir beschreiben eine präklinische experimentelle Methode zur Bewertung der metabolischen Neuromodulation, die durch akute Tiefe Hirnstimulation mit in vivo FDG-PET induziert wird. Dieses Manuskript umfasst alle experimentellen Schritte, von der stereotaktischen Chirurgie über die Anwendung der Stimulationsbehandlung bis hin zur Aufnahme, Verarbeitung und Analyse von PET-Bildern.

Im lebenden Organismus Positronen-Emissions-Tomographie zur Aufdeckung von Aktivitätsmustern, die durch tiefe Hirnstimulation bei Ratten induziert werden

Deep brain stimulation (DBS) is an invasive neurosurgical technique based on the application of electrical pulses to brain structures involved in the ...

Dieses Protokoll ermöglicht es, die Stimulationsfolgen auf neuronale Netze zu untersuchen und dabei zu helfen, das Rätsel um DBS zu enträtseln. Und um den Einfluss einer Stimulation auf die Gehirndynamik zu bestimmen. Der Hauptvorteil der FD-Reparatur während einer Stimulation besteht darin, dass wir die In-vivo-Konsequenzen der akuten Stimulation auf die Gehirndynamik visualisieren und dann in vivo die Stimulationsprotokolle verfeinern können.Diese Methode ist von besonderer Relevanz in den Bereichen Neurologie und Psychiatrie. Wie in diesen medizinischen Fachgebieten, in denen DBS als anthroponotische Strategie seinen größten Einfluss hat. Um zu beginnen, legen Sie das betäubte Tier Rückenlage auf das CT-Bett.Für die CT-Bildgebung befestigen Sie die Gesichtsmaske oder den Nasenkegel an der Ratte. Suchen Sie den Kopf in der Mitte des Sichtfeldes des CT-Scanners. Fahren Sie mit der Erfassung des CT-Bildes mit den Aufnahmeparametern gemäß den Spezifikationen des Scanners fort.Für die MR-Bildgebung legen Sie das Tier in Rückenlage auf das MRT-Bett. Um Bewegungen während der MRT-Erfassung zu vermeiden, befestigen Sie den Kopf an einem stereotaktischen Rahmen, der auf dem Scannerbett platziert ist. Sichern Sie auch den Rest des Rattenkörpers mit Seidenband.Sobald die Position korrekt ist, nehmen Sie das MRT-Bild auf. Verwenden Sie eine Bildverarbeitungssoftware, um CT und MRT räumlich zu normalisieren, indem Sie einen automatischen starren Registrierungsalgorithmus verwenden, der auf gegenseitigen Informationen basiert. Lokalisieren Sie die Bregma-Linie im gemeinsam registrierten Bild.Und messen Sie die Entfernung im AP-, ML- und DV-Zugang von Bregma zum medialen präfrontalen Kortex gemäß dem Paxinos und Watson Rat Brain Atlas. Rasieren Sie den Bereich zwischen den Ohren und den Augen. Platzieren Sie das Tier in Bauchlage auf dem stereotaktischen Rahmen.Stellen Sie die Unbeweglichkeit des Kopfes sicher, indem Sie die Rattenohrstangen verwenden. Achten Sie darauf, die Ohrbügel nicht zu tief einzuführen, da dies das Trommelfell beschädigen kann. Verwenden Sie den Kopfhalteadapter für Ratten, um das Tier während der Operation in der richtigen Position zu halten.Tragen Sie Athymischschmiergel auf die Rattenaugen auf, um Trockenheit während der Operation zu verhindern, und bedecken Sie sie mit steriler Gaze. Machen Sie einen Längsschnitt in der Haut über dem Schädel zwischen den Ohren. Erstreckt sich 1,5 bis zwei Zentimeter von Lambda bis Bregma.Belichten Sie den Schädel mit Hilfe von zwei oder drei Klemmen. Entfernen Sie das Periost mit einer Schere und reinigen Sie das Blut mit Kochsalzlösung, um Bregma und die sagittalen Nähte freizulegen. Entfernen Sie die überschüssige Kochsalzlösung mit Gaze.Bevor Sie die Elektroden positionieren, richten Sie sie mit einer Kunststoffpinzette aus, um die korrekte Platzierung während der Operation sicherzustellen. Legen Sie eine Elektrode auf die Halterung des rechten Arms des stereotaktischen Rahmens. Bewegen Sie den rechten Arm, der die Elektrode hält, durch den stereotaktischen Rahmen.Und legen Sie die Spitze der Elektrode genau über Bregma. Versuchen Sie, die Elektrodenspitze so nah wie möglich an den Schädel zu bringen, ohne sie zu berühren, um eine Elektrodenverformung zu vermeiden. Beachten Sie die resultierenden Koordinaten für Bregma, die vom stereotaktischen Rahmen bereitgestellt werden.Machen Sie mit einem chirurgischen Stift eine Markierung auf dem Schädel, die die Ausgangsposition der Elektrode anzeigt. Bewegen Sie den Halter zu den zuvor erhaltenen AP- und ML-Koordinaten. Und markieren Sie den Schädel mit einem chirurgischen Stift, der die Position des Elektrodenziels anzeigt.Entfernen Sie den rechten Arm des stereotaktischen Rahmens, der die Elektrode hält. Achten Sie darauf, nichts mit der Elektrode zu berühren. Machen Sie mit einer kleinen elektrischen Bohrmaschine ein Loch durch den Schädel in der Zielposition, bis die Dura sichtbar ist.Verwenden Sie ein Wattestäbchen, um die Blutung zu stoppen. Bohren Sie vier Löcher entlang des Schädels, um vier Schrauben zu platzieren. Um die Oberfläche des Zahnzements zu vergrößern und den Boden zu lokalisieren.Dann befestigen Sie die Schrauben. Lokalisieren Sie den rechten Arm des stereotaktischen Rahmens mit der rechten Elektrode. Bewegen Sie den Arm in die berechnete Position, die mit dem Loch übereinstimmen soll.Dann senken Sie die Elektrode, bis sie die Dura mater berührt. Diese Position dient als Nullpegel in DV-Richtung. Führen Sie die Spitze der Elektrode unter Verwendung der zuvor erhaltenen DV-Koordinaten in DV-Richtung ein.Befestigen Sie den Boden an einer der Schrauben, die der Elektrode am nächsten sind, und tragen Sie Zahnzement um die Elektrode und die Schrauben auf. Wiederholen Sie den gleichen Elektrodenplatzierungsvorgang für die andere Hemisphäre des Gehirns. Tragen Sie mehr Zahnzement auf, um eine Kappe zu bilden, ohne die Elektrode zu bedecken, und warten Sie, bis sie aushärtet.Verwenden Sie Jodopovidonlösung, um den chirurgischen Bereich zu desinfizieren. Entfernen Sie die Ratte aus dem stereotaktischen Rahmen und fahren Sie mit der CT-Bildgebung fort, wie zuvor gezeigt, um die korrekte Platzierung der Elektroden zu bewerten. Beschleunigen Sie die Ratte acht bis 12 Stunden vor jedem PET-Scan.Füllen Sie eine 27-Gauge-Spritze mit ca. 37 Megabecquerel der FDG-Lösung in dem geringstmöglichen Volumen, gemessen in einem Aktivimeter. Legen Sie ein Heizkissen unter den Schwanz des Tieres oder verwenden Sie Infrarotlicht, um die Schwanzvenen zu erweitern. Injizieren Sie die FDG-Lösung durch eine der seitlichen Schwanzvenen.Setzen Sie das Tier zurück in den Käfig und lassen Sie 45 Minuten für die Radiotraceraufnahme einplanen, bevor Sie die Bildaufnahmesitzung starten. Für die D2-Studie lieferte DBS während der FDG-Aufnahmephase. Bereiten Sie den isolierten Stimulator und die erforderlichen Drähte in einem großen und ruhigen Raum mit genügend Platz für die Tierkäfige und minimalem Einfluss potenziell störender Reize vor.Verbinden Sie die Stimulationsdrähte mit den Drehgelenken, damit sich die Tiere innerhalb der Käfige und mit dem Stimulator frei bewegen können. Stellen Sie die Stimulationsparameter wie im Textmanuskript beschrieben ein. Verwenden Sie ein Oszilloskop, um den aktuellen Modus, die Frequenz und die Pulsbreite zu überprüfen.Bestätigen Sie die biphasische Wellenform mit einer rechteckigen Pulsform. Das CT-Bild visualisierte deutlich die Elektrode, die in das Rattengehirn eingeführt wurde. Die in dieser Studie verwendete Bildgebungsmodalität lieferte auch gute anatomische Informationen und erleichterte die Registrierung von FDG-PET-Bildern.Ein fusioniertes PET-CT-Bild desselben Tieres, das räumlich im selben stereotaktischen Raum registriert ist. Die metabolischen Unterschiede im Gehirn wurden zwischen PET-Sitzungen beobachtet, als T-Maps auf sequentielle Gehirnschnitte von einem Millimeter aus einem MRT überlagert wurden, das im Referenz-CT-Bild registriert wurde. Diese Unterschiede bestanden aus Zu- und Abnahmen der FDG-Aufnahme, die als warme bzw. kalte Farben dargestellt wurden.Eine detaillierte Zusammenfassung der statistischen Ergebnisse der Analyse ergab die modulierte Hirnregion und die Gehirnhemisphäre, in der die Modulation beobachtet wurde. Die T-Statistik, die Clustergröße, die Modulationsrichtung und die P-Werte, die auf Spitzen- und Clusterebene erhalten werden. Es ist wichtig, ein angemessenes ästhetisches Niveau und des Kopfes während der Operation aufrechtzuerhalten.Darüber hinaus sind Koordinatenberechnung und eine Geradheit der Elektroden unerlässlich. Neuen Betreibern wird empfohlen, sorgfältig zu sein und alle Schritte zu befolgen. Nach Abschluss des gesamten Verfahrens können die Tiere einem Verhaltenstest unterzogen werden, um die Auswirkungen der Stimulation auf verschiedene kognitive Bereiche zu bewerten.Darüber hinaus können eine Reihe von Bildstudien durchgeführt werden, um die THS-Folgen auf zellulärer Ebene zu beurteilen.

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Research

Forschung

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Neuroscience

Neurowissenschaften

Tiefe Hirnstimulation Chirurgie bietet eine einzigartige Gelegenheit, um Informationen Kodierung in der wach menschliche Gehirn zu untersuchen. Dieser Artikel beschreibt intra-operative Methoden zur kognitiven und verhaltensbezogenen Aufgaben gleichzeitig zu erwerben physiologische Daten wie EMG, single-unit neuronaler Aktivität und / oder lokale Feldpotentiale.

Intra-Operative Behavioral Aufgaben in Awake Humans Undergoing Deep Brain Stimulation Chirurgie

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Beurteilung der metabolischen Neuromodulation, die durch akute tiefe Hirnstimulation bei Ratten mit in vivo FDG-PET induziert wird

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Tiefe Hirnstimulation als Behandlung von Drogenabhängigkeit im Rattenmodell

Quelle: Selvakumar, T., et al., Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus after deep brain stimulation of the anterior thalamus nucleus. J. vis. exp. (2015)Dieses Video zeigt das Verfahren zur Implantation von Elektroden in das Rattengehirn zur Anwendung der tiefen Hirnstimulation (THS), die die neuronale Aktivität moduliert und die Kommunikation mit dem Hippocampus verbessert, wodurch das neuronale Überleben und die Neurogenese unterstützt werden.

Auswirkungen der tiefen Hirnstimulation auf die neuronale Aktivität des Hippocampus in einem Rattenmodell

Dieses Video zeigt das detaillierte Verfahren zur Vorbereitung einer anästhesierten Ratte für elektrophysiologische Aufzeichnungen der Gehirnaktivität von mehreren Stellen. Die Kopfhaut wird präpariert, um Zugang zum Schädel zu erhalten, und es werden Löcher an präzisen Stellen gebohrt, um Elektroden zu installieren und zu sichern. Wolfram-Mikrodrahtelektroden werden dann an der Zielstelle eingesetzt, um die Daten aufzuzeichnen.

In vivo Elektrophysiologische Aufzeichnungen von Gehirnaktivitäten von mehreren Stellen bei Ratten

Dieses Protokoll beschreibt eine Standardmethode für den Nagetieren gleichzeitigen funktionellen Magnetresonanztomographie und der tiefen Hirnstimulation. Die kombinierte Verwendung dieser experimentellen Werkzeuge ermöglicht die Erforschung des globalen abwärts Aktivität in Reaktion auf eine elektrische Stimulation an praktisch jeder Gehirnziel.

Deep Brain Stimulation mit gleichzeitiger fMRT in Nagetiere

Der Mechanismus, der den therapeutischen Effekten der Tiefen Hirnstimulation (DBS) zugrunde liegt, muss untersucht werden. Die in diesem Manuskript vorgestellten Methoden beschreiben einen experimentellen Ansatz zur Untersuchung der zellulären Ereignisse, die durch die THS ausgelöst werden, indem das Genexpressionsprofil von Kandidatengenen analysiert wird, die die Neurogenese nach einer THS-Operation erleichtern können.

Die Analyse der Genexpression Veränderungen im Hippocampus Ratte nach Tiefenhirnstimulation des Anterior Thalamuskern

Ein Verfahren zur Implantation von Elektroden in den subthalamischen Kern (STN) von Ratten wird beschrieben. Eine bessere Lokalisierung des STN wurde durch den Einsatz eines Mikroaufzeichnungssystems erreicht. Des Weiteren wird ein Stimulationsaufbau vorgestellt, der sich durch lang anhaltende Verbindungen zwischen dem Kopf des Tieres und dem Stimulator auszeichnet.

Mikroelektroden-geführte Implantation von Elektroden in den Nucleus subthalamicus des Rats für die Langzeit-Tiefe Hirnstimulation

Wir haben die repetitive transkranielle Magnetstimulation (rTMS) auf die einseitige Hemisphäre des Rattengehirns angewendet, indem wir eine 25-mm-Spirale 8 1 cm lateral zum Scheitel auf der biaurikulären Linie platziert und die Spule um 45° gewinkelt haben. Für rTMS wurde für mehr als 20 min eine hauseigene Wasserkühlung eingesetzt.

Repetitive transkranielle Magnetstimulation auf die Einseitige Hemisphäre von Rattenhirn

In dieser Studie wird die Methodik vorgestellt, wie man mehrfache in vivo elektrophysiologische Aufnahmen aus dem hyperdirekten Weg unter Urethananästhesie durchführt.

Akut<em&gt; In vivo</em&gt; Elektrophysiologische Aufzeichnungen von lokalen Feldpotentialen und Multi-Unit-Aktivitäten von der Hyperdirect-Pathway in anästhesierten Ratten

Erfahren Sie die Anwendung von FDG-PET-Bildgebung bei Ratten zur Untersuchung metabolischer Veränderungen durch tiefe Hirnstimulation. Diese Methode ermöglicht die Visualisierung neuronaler Netzwerkdynamik in vivo.

Im lebenden Organismus Positronen-Emissions-Tomographie zur Aufdeckung von Aktivitätsmustern, die durch tiefe Hirnstimulation bei Ratten induziert werden (Video) | JoVE Journal

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