Name: Eine minimal-invasive, schnelle laterale Hemisektionstechnik des Rückenmarks zur Modellierung offener Rückenmarksverletzungen bei Ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-03-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 50 s
Description: Lernen Sie eine minimal-invasive laterale Hemisektionstechnik zur Modellierung offener Rückenmarksverletzungen bei Ratten. Diese Methode ist schneller und reproduzierbarer als traditionelle Laminektomie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Die Autoren danken Gergely Ángyán für das Originalkunstwerk. Diese Forschungsarbeit wurde von der Semmelweis-Universität, Budapest, Ungarn, finanziert. Diese Studie wurde auch durch das ungarische operationelle Programm zur Entwicklung der Humanressourcen (EFOP-3.6.2-16-2017-00006) unterstützt. Zusätzliche Unterstützung erhielt sie durch das Thematische Exzellenzprogramm (2020-4.1.1.-TKP2020) des ungarischen Ministeriums für Innovation und Technologie im Rahmen des thematischen Programms Therapie der Semmelweis-Universität.

Alle Tierbehandlungen wurden gemäß der EU-Richtlinie (2010/63/EU) durchgeführt und von der Tierethikkommission des ungarischen Nationalen Amtes für die Sicherheit der Lebensmittelkette genehmigt (PEI/001/2894-11/2014). Alle geltenden institutionellen und behördlichen Vorschriften bezüglich der ethischen Verwendung von Tieren wurden während dieser Studie befolgt.
1. Vorbereitung vor der Operation
<ol><li>Sterilisieren Sie alle Instrumente, die während des Eingriffs verwendet werden (siehe Materialtabelle) und desinfizieren Sie die Oberflächen, auf denen die Arbeiten durchgeführt werden sollen, vor dem Eingriff.</li>
	<li>Injizieren Sie prophylaktisch eine Einzeldosis subkutaner Antibiotika. HINWEIS: Details zur Antibiotikadosierung finden Sie in der Materialtabelle.</li>
	<li>Lassen Sie die Tiere 1 Stunde im Operationssaal, um sie zu akklimatisieren und ihren Stress vor der Operation zu verringern.</li>
	<li>Betäubung der Ratte durch intramuskuläre Injektion einer Kombination aus Ketamin und Xylazin (Ketamin 80 mg/kg Körpergewicht (KG) und Xylazin 8 mg/kg KG). HINWEIS: Zusätzlich zur Anästhesiebietet die k-Etamin-Xylazin-Kombination eine ausreichende Analgesie für dieses Verfahren. Das Analgesie-Schema kann gemäß den institutionellen Richtlinien für die Verwendung von Tieren geändert werden.</li>
	<li>Halten Sie die Ratte während des Eingriffs mit einem beheizten Tisch oder Infrarotlicht warm und halten Sie die Augen während der gesamten Anästhesie mit Augensalbe feucht (bei Bedarf erneut auftragen).</li>
	<li>Fixieren Sie das Tier auf dem Operationstisch mit chirurgischem Klebeband an den Vorder- und Hinterpfoten und am Schwanz sowie je nach Verletzungsstelle auch am Hals. Falls erforderlich, legen Sie die Ratte in einen stereotaktischen Rahmen, um sie während der Operation zu stabilisieren.</li>
	<li>Legen Sie mit sterilem chirurgischem Nahtmaterial eine Schlaufe um die oberen Frontzähne der Ratte und fixieren Sie diese an der Kante des Operationstisches.</li>
	<li>Ziehen Sie die Zunge seitlich heraus, um die Atemwege zu regulieren.</li>
	<li>Rasieren Sie das Fell auf dem Rücken, mindestens 2 cm in jede Richtung, in die der Schnitt gemacht werden soll.</li>
	<li>Desinfizieren Sie die Haut des Operationsgebiets mindestens dreimal mit einer Povidon-Jod-Lösung und steriler Gaze. Achten Sie besonders darauf, das Fell in der Umgebung einzuweichen. Sichern Sie die Operationsstelle mit einem sterilen Tuch.</li>
	<li>Beurteilen Sie die Angemessenheit der Anästhesie, bevor Sie den ersten Schnitt setzen, indem Sie die Zehen und den Schwanz des Tieres einklemmen. Überwachen Sie weiterhin die Angemessenheit der Anästhesie während des gesamten Eingriffs.</li>
</ol>2. Chirurgie
<ol><li>Platzieren Sie den Hautschnitt mit einer Skalpellklinge 20. Um das Operationsgebiet zu öffnen, setzen Sie einen 2-2,5 cm langen Schnitt entlang der Wirbelsäule, der alle Hautschichten durchschneidet. Positionieren Sie diesen Schnitt parallel zur Wirbelsäule mit dem L1-Wirbel als Mittelpunkt, so dass er sich ~1 cm sowohl in kranialer als auch kaudaler Richtung entlang der Wirbelsäule erstreckt.</li>
	<li>Mobilisieren Sie die Seiten der Wunde, indem Sie das Bindegewebe durchschneiden, das die Muskeln umgibt.</li>
	<li>Platzieren Sie zwei parallele Schnitte entlang der Wirbelsäule, die in die Knochenhaut eindringen. Platzieren Sie die Schnitte direkt neben den Wirbelsäulenfortsätzen auf beiden Seiten und überbrücken Sie den Abstand zwischen den Wirbeln Th13 und L1.</li>
	<li>Präparieren Sie die an den Wirbeln befestigten Muskeln mit Hilfe eines Raspatoriums, bis alle Wirbelsäulenbänder sichtbar sind. Setzen Sie einen Retraktor ein.</li>
	<li>Entfernen Sie die Wirbelsäulenfortsätze des 13. Brustwirbels und des 1. Lendenwirbels mit einer Zahnknochenzange, um das gesamte Operationsgebiet zu visualisieren. Kontrollieren Sie hierauf die Prozedur, indem Sie ein vergrößertes (4x-16x Vergrößerung) mikroskopisches Bild betrachten.</li>
	<li>Verwenden Sie bei Bedarf sterile Gaze, um Blutungen während des gesamten Eingriffs zu kontrollieren.</li>
	<li>Heben Sie vorsichtig den Rest der L1-Wirbelsäulenfortsätze an und heben Sie den L1-Wirbelbogen an. Durchtrennen Sie das Ligamentum flavum, um Zugang zum Rückenmark zu erhalten. Heben Sie die kaudalen Wirbelsäulenfortsätze weiter an, um den Zugang zur Dura mater spinalis zu ermöglichen, die ebenfalls durchtrennt wird. Kippen Sie die kaudalen Wirbelsäulenfortsätze in kraniale Richtung, um die Pia mater sichtbar zu machen.</li>
	<li>Suchen Sie durch die Pia mater nach der hinteren Medianvene, die die Mittellinie der Wirbelsäule zeigt.</li>
	<li>Verwenden Sie die Vene als gerichtete Winkelhalbierende, und setzen Sie einen Schnitt mit einem mikrochirurgischen Skalpell, während Sie die Vene schonen. Platzieren Sie den Schnitt unter der Vene in der Transversalebene durch den anteroposterioren Durchmesser des Rückenmarks. Durchtrennen Sie die Hälfte des Rückenmarks, indem Sie die Klinge seitlich von der Mittellinie wegbewegen. HINWEIS: Der Schnitt erfolgt einseitig, auf der rechten Seite, am 4. Lendensegment.</li>
	<li>Versuchen Sie, den Schnitt zu setzen, um zu vermeiden, dass die vordere Spinalarterie durchtrennt wird. Achten Sie darauf, dass beim Durchtrennen des Rückenmarks kein übermäßiger Druck auf den Wirbelkörper ausgeübt wird, um die vordere Rückenmarksarterie auf der ventralen Seite des Rückenmarks zu schonen.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63534/63534fig01.jpg"> Abbildung 1: Kunstwerk, das die Schritte der neuen offenen SCI-Technik bei Ratten zeigt. (A) Die freigelegten Wirbel. (B) Spinalfortsätze entfernt (Th13 und L1). (C) Der angehobene und gekippte Wirbelbogen des L1-Wirbels. (D) Hemisektion auf der rechten Seite, wobei das gehämmerte Rückenmark separat dargestellt und vergrößert wird. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63534/63534fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<ol start="11"><li>Verschließen Sie die Dura mater nicht direkt während des Wundverschlusses. Die Muskeln entlang der Wirbelsäulenfortsätze straff vernähen (Nahtgröße 4-0) und die kleine Wunde an der Dura mater indirekt verschließen.</li>
	<li>Verschließen Sie die dorsale Bindegewebsschicht mit Nähten.</li>
	<li>Zum Schluss nähen Sie die Haut um die Einschnittsstelle herum.</li>
</ol>3. Nachsorge und Nachsorge
<ol><li>Lassen Sie die Tiere in ihren Käfigen erwachen. Halten Sie das/die Tier(e) zusätzlich zum temperierten Raum mit einer Wärmelampe warm. Lassen Sie die Ratten nach dem Aufwachen nach der Operation nicht allein und setzen Sie sie nicht zusammen mit anderen Ratten in denselben Käfig.</li>
	<li>Überwachen Sie ihre Atemfrequenz mindestens alle 10 Minuten, bis sie vollständig wach sind. Wenden Sie bei Bedarf eine sanfte Stimulation an (z. B. den Kopf reiben), um das Erwachen aus der Narkose zu unterstützen.</li>
	<li>Wenn die Tiere wach und entsprechend aktiv sind, transportieren Sie sie sicher zurück ins Tierhaus.</li>
	<li>Halten Sie die Ratten in den ersten 24 Stunden nach der Operation unter strenger Beobachtung. Nach den ersten 24 Stunden nach der Operation sollten die Tiere bis zum Ende des Versuchs mindestens zweimal täglich auf Anzeichen von Stress untersucht werden.</li>
	<li>Untersuchen Sie sie einmal täglich gründlich auf Anzeichen von Stress anhand des entsprechenden institutionellen Tierschutzprotokolls und achten Sie besonders darauf, ihre Wunden auf Anzeichen von Infektionen und Entzündungen zu untersuchen. HINWEIS: Stress und Infektionen beeinträchtigen das Wohlergehen der Tiere und das Ergebnis von Versuchen.</li>
	<li>Verabreichen Sie Antibiotika täglich subkutan bis zum Ende der Experimente. Halten Sie die Tiere in sterilen Käfigen, ein Tier pro Käfig, und geben Sie Futter und Wasser nach Belieben, wie zuvor. Am Ende der Versuche (oder wenn während des Zeitraums des Versuchs eine schwerwiegende Nebenwirkung beobachtet wird) werden die Tiere auf humane Weise und in Übereinstimmung mit dem einschlägigen institutionellen Tierschutzprotokoll eingeschläfert. ANMERKUNG: Hier wurden die Tiere euthanasiert (in einem Tiefschlaf, der durch die Kombination von Ketamin und Xylazin induziert wurde), indem zuerst eine physiologische Kochsalzperfusion (1/3 ml/g Körpergewicht) verabreicht wurde, gefolgt von einer 4%igen Paraformaldehydperfusion (1 ml/g Körpergewicht).</li>
</ol>

<ol><li>Failli, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+neurological+recovery+after+spinal+cord+injury+is+impaired+in+patients+with+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">Functional neurological recovery after spinal cord injury is impaired in patients with infections.</a> Brain. 135, Pt 11 3238-3250 (2012).</li>
<li>Guan, B., Chen, R., Zhong, M., Liu, N., Chen, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effect+of+Oxymatrine+against+acute+spinal+cord+injury+in+rats+via+modulating+oxidative+stress%2C+inflammation+and+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Metabolic+Brain+Disease%22%5BJournal%5D)">Protective effect of Oxymatrine against acute spinal cord injury in rats via modulating oxidative stress, inflammation and apoptosis.</a> Metabolic Brain Disease. 35 (1), 149-157 (2020).</li>
<li>Kjell, J., Olson, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+models+of+spinal+cord+injury%3A+from+pathology+to+potential+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Disease+Models+%26+Mechanisms%22%5BJournal%5D)">Rat models of spinal cord injury: from pathology to potential therapies.</a> Disease Models & Mechanisms. 9 (10), 1125-1137 (2016).</li>
<li>Minakov, A. N., Chernov, A. S., Asutin, D. S., Konovalov, N. A., Telegin, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+models+of+spinal+cord+injury+in+laboratory+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Naturae%22%5BJournal%5D)">Experimental models of spinal cord injury in laboratory rats.</a> Acta Naturae. 10 (3), 4-10 (2018).</li>
<li>Borbély, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+rat+spinal+cord+injury+%28hemisection%29+on+the+ex+vivo+uptake+and+release+of+%5B3H%5Dnoradrenaline+from+a+slice+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Research+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Effect of rat spinal cord injury (hemisection) on the ex vivo uptake and release of [3H]noradrenaline from a slice preparation.</a> Brain Research Bulletin. 131, 150-155 (2017).</li>
<li>Brown, A. R., Martinez, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thoracic+spinal+cord+hemisection+surgery+and+open-field+locomotor+assessment+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Thoracic spinal cord hemisection surgery and open-field locomotor assessment in the rat.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (148), e59738(2019).</li>
<li>Taoka, Y., Okajima, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+injury+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Spinal cord injury in the rat.</a> Progress in Neurobiology. 56 (3), 341-358 (1998).</li>
<li>Hou, S., Saltos, T. M., Iredia, I. W., Tom, V. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+techniques+influence+local+environment+of+injured+spinal+cord+and+cause+various+grafted+cell+survival+and+integration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Surgical techniques influence local environment of injured spinal cord and cause various grafted cell survival and integration.</a> Journal of Neuroscience Methods. 293, 144-150 (2018).</li>
<li>Mattucci, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+traumatic+cervical+dislocation+spinal+cord+injury+model+with+residual+compression+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Development of a traumatic cervical dislocation spinal cord injury model with residual compression in the rat.</a> Journal of Neuroscience Methods. 322, 58-70 (2019).</li>
<li>Ahmed, R. U., Alam, M., Zheng, Y. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+spinal+cord+injury+and+behavioral+tests+in+laboratory+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Heliyon%22%5BJournal%5D)">Experimental spinal cord injury and behavioral tests in laboratory rats.</a> Heliyon. 5 (3), 01324(2019).</li>
<li>Ashammakhi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerative+therapies+for+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+B%2C+Reviews%22%5BJournal%5D)">Regenerative therapies for spinal cord injury.</a> Tissue Engineering. Part B, Reviews. 25 (6), 471-491 (2019).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass ihnen keine konkurrierenden finanziellen Interessen oder persönlichen Beziehungen bekannt sind, die den Anschein erwecken könnten, dass sie die in diesem Artikel berichtete Arbeit beeinflusst haben.

Diese minimal-invasive Technik der Rückenmarksverletzung wurde bei der Untersuchung von rückenmarksverletzten Ratten entwickelt, und das Team sah sich mit Problemen konfrontiert, die sich aus der Operation selbst ergaben (Knochensplitter aus der Laminektomie, die Kompression verursachen und das Rückenmark schädigen, zu lange Operation, langsame Heilung einer großen Knochenwunde). Durch die Eliminierung der Laminektomie wurde der Eingriff viel schneller (11 min vs. 35 min), die Struktur des Wirbelkanals blieb intakt, die ...

Rückenmarksverletzungen (SCIs) sind leider weit verbreitete Verletzungen beim Menschen. Querschnittlähmungen können auf unterschiedliche Weise kompliziert sein, z. B. durch Infektionen, und es ist klinisch wichtig, diese Verletzungen zu untersuchen1. Da es kein einziges, definitives Heilmittel für Querschnittlähmungen gibt, werden Tiermodelle immer noch benötigt, um das Verständnis der Forscher zu verbessern und mögliche Behandlungen voranzutreiben 2,3. Obwohl am häufigsten geschlossene Verletzungen modelliert werden (Kompression und Prellung), ist es klinisch wichtig, Risswunden zu verstehen, die nur bei offenen Verletzungen modelliert werden können4. Offene Wundmodelle mittels Durchtrennung oder Hemisektion können verwendet werden, um eine genauere Lokalisation einer Wunde im Vergleich zu geschlossenen Verletzungsmodellen aufgrund der Art der Verletzung (Prellung vs. chirurgischer Schnitt) zu demonstrieren. Experimente mit offenen Wunden können auf kontrollierte, zuverlässige und replizierbare Weise Aufschluss über spezifischere neuronale Verletzungen geben5. Die vollständige oder partielle Durchtrennung des Rückenmarks ist eine weit verbreitete offene Wundtechnik und kann im Artikel von Brown und Martinez6 ausführlich betrachtet werden.
Bei der Untersuchung einer offenen Rückenmarksverletzung bei Ratten zeigten mehrere Tiere Probleme, die durch die Operation entstanden waren: Knochensplitter aus der Laminektomie wurden in das Rückenmark eingebettet und verursachten Schwellungen; Die größere Knochenwunde brauchte lange, um zu heilen; Die Operation dauerte zu lange. Um diese Probleme zu beseitigen, wurde eine alternative Operationstechnik entwickelt. Ziel war es, eine schnellere Technik zu entwickeln, die für das Tier schonender ist. Diese neu entwickelte Technik ist viel schneller als herkömmliche SCI-Techniken. Der chirurgische Ansatz ist minimalinvasiv, was zu einer kleineren Knochenwunde führt und gleichzeitig Probleme beseitigt, die durch die Laminektomie entstehen.
Bei allen offenen Wundtechniken wird die Dura7 geöffnet. Mehrere neuere Studien haben verschiedene, neu entwickelte Techniken untersucht, die darauf abzielen, die bisherigen Methoden zu verbessern 8,9. Auch wenn die Öffnung der Dura mit dieser neuen Technik nicht ausgeschlossen werden kann, bewirkt sie eine kleinere Wunde an der Dura und bietet gleichzeitig eine zuverlässige, kontrollierte Verletzung des Rückenmarks. In der Literatur über Techniken zur Rückenmarksverletzung versuchten viele Autoren, die Operationszeit zu minimieren, indem sie geringfügige Änderungen an der ursprünglichen Technik vornahmen10. Die Laminektomie ist immer Teil dieser chirurgischen Eingriffe, obwohl sie zeitaufwändig ist und eine größere Knochenwundeerfordert6. Diese Operationstechnik kann für Forscher geeignet sein, die Modelle für Rückenmarksverletzungen mit offenen Wunden verwenden, insbesondere für eine vollständige Durchtrennung oder laterale Hemisektion, die in den Zwischenwirbelräumen durchgeführt wird (Abbildung 1).

<table><tbody><tr><td>Augmentin (1.000 mg/200 mg Pulver)</td><td>GlaxoSmithKline, Großbritannien</td><td></td><td>Einmalige Dosis von Antibiotika prophylaktisch (10 mg Amoxicillin und 2 mg Clavulansäure; Augmentin 1.000 mg/200 mg Pulver). Jeden Tag nach der Operation 10 mg Amoxicillin und 2 mg Clavulansäure (Augmentin 1.000 mg/200 mg Pulver) pro Tag und Tier</td></tr><tr><td>Betadine</td><td>EGIS, Ungarn</td><td></td><td>Desinfizieren Sie die Haut des Operationsbereichs mit einer Povidon-Jod-Lösung</td></tr><tr><td>Calypsol (50 mg/ml)</td><td>Richter Gedeon, Ungarn</td><td></td><td><stark>Anästhesie: Kombination aus Ketamin 80 mg/kg und Xylazin 8 mg/kg intramuskulär</stark></td></tr><tr><td>CP XYLAZIN 2% (20 mg/ml)</td><td>Produlab Pharma B.V., Niederlande</td><td></td><td><stark>Anästhesie: Kombination von Ketamin 80 mg/kg und Xylazin 8 mg/kg intramuskulär</stark></td></tr><tr><td>Zahnzange</td><td>Dentech, Ungarn</td><td>BS 0127</td><td>Entfernen Sie die Dornfortsätze des 13th Brustwirbels und des 1st Lendenwirbels mit einer Zahnknochenzange</td></tr><tr><td>zahnchirurgischer Mikromotor</td><td>W& H, Österreich</td><td>MF-TECTORQUE</td><td>Mit einem zahnchirurgischen Mikromotor wird am L1 Wirbelmikroskop</td></tr><tr><td></td><td>Zeiss, Deutschland</td><td>OPMI19-FC</td> eine Laminektomie durchgeführt Kontrolle <td>des Eingriffs durch Betrachten eines vergrößerten (16-fache Vergrößerung) mikroskopischen Bildes</td></tr><tr><td>physiologische Kochsalzlösung (0,9 % NaCl)</td><td>Fresenius Kabi, Deutschland</td><td></td><td>Halten Sie die Augen der Ratte während der gesamten Narkose mit Tropfen physiologischer Kochsalzlösung feucht (bei Bedarf erneut auftragen)</td></tr><tr><td>raspatorium</td><td>Dentech, Ungarn</td><td>FK 1164</td><td>Präparieren Sie die an den Wirbeln befestigten Muskeln mit Hilfe eines Raspatoriums, bis alle Bänder der Wirbelsäule sichtbar sind.</td></tr><tr><td>Retraktor</td><td>Dentech, Ungarn</td><td>RT 1253</td><td></td></tr><tr><td>Skalpell</td><td>Dentech, Ungarn</td><td>BB 173</td><td></td></tr><tr><td>Skalpell</td><td>Dentech, Ungarn</td><td>BB 184</td><td></td></tr><tr><td>Skalpellklinge 12</td><td>B. Braun, Deutschland</td><td>12</td><td></td></tr><tr><td>Skalpellklinge 20</td><td>B. Braun, Deutschland</td><td>20</td><td></td></tr><tr><td>steril geschnittene Gaze 10 x 10 cm</td><td>Sterilux, Hartmann, Deutschland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nähte (monofil, synthetisch; resorbierbar und nicht resorbierbar), Größe: 4-0</td><td>B. Braun, Deutschland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzette (13 cm)</td><td>Dentech, Ungarn</td><td>BD 1555</td><td></td></tr><tr><td>Pinzette (zarte Gewebezange)</td><td>Dentech, Ungarn</td><td>BD 1670</td><td></td></tr></tbody></table>

eine minimal-invasive, schnelle laterale hemisektionstechnik des rückenmarks zur modellierung offener rückenmarksverletzungen bei ratten

A Minimally Invasive, Fast Spinal Cord Lateral Hemisection Technique for Modeling Open Spinal Cord Injuries in Rats

Offene Rückenmarksverletzungstechniken, die rissartige Verletzungen modellieren, sind zeitaufwändig und invasiv, da sie eine Laminektomie beinhalten. Diese neue Technik eliminiert die Laminektomie, indem zwei Dornfortsätze entfernt und der kaudale Wirbelbogen angehoben und dann gekippt wird. Das Operationsgebiet öffnet sich, ohne dass eine Laminektomie erforderlich ist. Die laterale Hemisektion wird dann unter direkter Sichtkontrolle unter dem Mikroskop durchgeführt. Das Trauma wird minimiert, es ist nur eine kleine Knochenwunde erforderlich. 
Diese Technik hat mehrere Vorteile: Sie ist schneller und damit weniger belastend für das Tier und die Knochenwunde ist kleiner. Da die Laminektomie eliminiert wird, ist die Wahrscheinlichkeit einer unerwünschten Verletzung des Rückenmarks geringer und es gibt keine Knochensplitter, die Probleme verursachen können (Knochensplitter, die in das Rückenmark eingebettet sind, können Schwellungen und Folgeschäden verursachen). Der Wirbelkanal bleibt intakt. Die Haupteinschränkung besteht darin, dass die Hemisektion nur in den Zwischenwirbelräumen durchgeführt werden kann. 
Die Ergebnisse zeigen, dass diese Technik viel schneller durchgeführt werden kann als der traditionelle chirurgische Ansatz mit Laminektomie (11 min vs. 35 min). Diese Technik kann für Forscher nützlich sein, die mit Tiermodellen für offene Rückenmarksverletzungen arbeiten, da sie weitgehend anpassungsfähig ist und keine zusätzlichen Spezialinstrumente erfordert.

Nach der Hemisektion zeigen die Ratten eine Lähmung der ipsilateralen Hintergliedmaße (in vivo Nachweis einer erfolgreichen Hemisektion). Eine gründliche Probenuntersuchung kann erst nach der Entfernung des Rückenmarks durchgeführt werden (siehe Abbildung 2, wo das entfernte Rückenmark sowohl von der ventralen als auch von der dorsalen Seite zu sehen ist).
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63534/63...

Hier beschreiben wir eine neue, schnelle Technik, die eine offene Rückenmarksverletzung bei Ratten modelliert und die Laminektomie eliminiert. Die laterale Hemisektion wird unter dem Mikroskop durchgeführt. Die Technik ist vielseitig einsetzbar und kann auch im Hals-, Brust- und Lendenwirbelbereich des Rückenmarks anderer Tiere angewendet werden.

Eine minimal-invasive, schnelle laterale Hemisektionstechnik des Rückenmarks zur Modellierung offener Rückenmarksverletzungen bei Ratten

Open spinal cord injury techniques modeling laceration-like injuries are time-consuming and invasive because they involve laminectomy. This new technique ...

Dieses Protokoll ist von Bedeutung, da Rückenmarksverletzungen auch heute noch weit verbreitet sind und Forschung erforderlich ist, um das Verständnis dieser Verletzungen zu verbessern und mögliche Therapien zu entwickeln. Diese Technik ist genauer und reproduzierbarer als Kompressions- und Prellungsverletzungen und weniger invasiv als Verletzungen mit vollständiger Laminektomie. Es könnte also eine bessere Option für eine Simulation von Rückenmarksverletzungen sein als zuvor beschriebene Verfahren.Verwenden Sie zunächst eine Skalpellklinge 20, um das Operationsgebiet zu öffnen, indem Sie einen zwei bis 2,5 Zentimeter langen Schnitt durch alle Hautschichten entlang der Wirbelsäule setzen. Positionieren Sie diesen Schnitt parallel zur Wirbelsäule mit dem L1-Wirbel als Mittelpunkt und verlängern Sie ihn um etwa einen Zentimeter sowohl in Schädel- als auch in Kuschelrichtung entlang der Wirbelsäule. Mobilisieren Sie die Seiten der Wunde, indem Sie das Bindegewebe durchschneiden, das die Muskeln umgibt.Platzieren Sie dann zwei parallele Schnitte entlang der Wirbelsäule, die in die Knochenhaut eindringen. Platzieren Sie die Schnitte direkt neben den Wirbelsäulenfortsätzen auf beiden Seiten und überbrücken Sie den Abstand zwischen den Brustwirbeln 13 und L1. Sezieren Sie die an den Wirbeln befestigten Muskeln mit der Acht eines Beatmungsgeräts, bis alle Wirbelsäulenbänder sichtbar sind.Platzieren Sie einen Retraktor. Entfernen Sie dann die Wirbelsäulenfortsätze des 13. Brustwirbels und des ersten Lendenwirbels, um mit einer Zahnknochenzange das gesamte Operationsgebiet zu visualisieren. Verwenden Sie bei Bedarf sterile Gaze, um Blutungen während des gesamten Eingriffs zu kontrollieren.Heben Sie vorsichtig den Rest der L1-Wirbelsäulenfortsätze an und heben Sie den L1-Wirbelbogen an. Entfernen Sie das Ligamentum flavum, um Zugang zum Rückenmark zu erhalten. Heben Sie die verhätschelten Wirbelsäulenfortsätze weiter an, um den Zugang zur durchtrennten Dura mater der Wirbelsäule zu ermöglichen.Kippen Sie die verhätschelten Wirbelsäulenfortsätze in kraniale Richtung, um die Pia Mater zu visualisieren. Suchen Sie durch die Pia mater nach der hinteren Medianvene, die die Mittellinie der Wirbelsäule zeigt. Verwenden Sie die Vene als gerichtete Winkelhalbierende, und setzen Sie einen Schnitt mit einem mikrochirurgischen Skalpell, während Sie die Vene schonen.Platzieren Sie den Schnitt unter der Vene in der Transversalebene durch den vorderen hinteren Durchmesser des Rückenmarks. Führen Sie die Hemisektion durch, indem Sie die Klinge seitlich von der Mittellinie wegbewegen. Platzieren Sie den Schnitt, um eine Durchtrennung der vorderen Spinalarterie zu vermeiden.Achten Sie darauf, dass beim Durchtrennen des Rückenmarks kein übermäßiger Druck auf den Wirbelkörper ausgeübt wird, um die vordere Rückenmarksarterie auf der ventralen Seite des Rückenmarks zu schonen. Verschließen Sie die Dura mater nicht direkt während des Wundverschlusses. Vernähen Sie die Muskeln und Wirbelsäulenfortsätze fest und verschließen Sie indirekt die kleine Wunde an der Dura mater.Verschließen Sie die dorsale Bindegewebsschicht mit Nähten. Diese neue minimalinvasive Methode der Rückenmarksverletzung wird viel schneller durchgeführt als der traditionelle chirurgische Ansatz mittels Laminektomie und erfordert keine zusätzlichen Spezialinstrumente. Hämatoxylin- und Eosin-Färbung wurden verwendet, um die Verletzungsstelle sichtbar zu machen.Andere Abschnitte können entlang des Rückenmarks durchgeführt werden, um bestimmte neuronale Verletzungen nachzuahmen. Auch die Regeneration kann untersucht werden, da mit dieser Methode Elektroden oder Stammzellen platziert werden können. Die meisten Techniken, bei denen offene Wundmodelle für Rückenmarksverletzungen verwendet werden, die entweder eine Hemisektion oder eine Transaktion beinhalten, können mit dieser Technik vereinfacht und beschleunigt werden.

a-minimally-invasive-fast-spinal-cord-lateral-hemisection-technique

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Eine zuverlässige und wiederholbare Möglichkeit, eine zervikale einseitige Verletzung des Rückenmarks mit der Infinite Horizon Impaktor produzieren wird beschrieben. Die Methode nutzt die Vorteile eines maßgeschneiderten Rahmen und spannen, um die Wirbelsäule zu stabilisieren. Das standardisierte Verfahren und biomechanischen Parameter führen zu Verletzungen ausreichende und nachhaltige Verletzungen.

Ein Modell von gequetscht Einseitige Cervical Spinal Cord Injury Mit dem Infinite Horizon Impactor

Quelle: Zweckberger, K., et al. Synergetischer Einsatz von neuralen Vorläuferzellen und selbstorganisierenden Peptiden bei experimentellen zervikalen Rückenmarksverletzungen.  J. Vis. Exp. (2015).Dieses Protokoll demonstriert einen gezielten Injektionsansatz zur Reparatur von Rückenmarksverletzungen in einem Rattenmodell. Dabei werden selbstorganisierende Peptide (SAPs) in den Läsionskern eingebracht, um ein unterstützendes Gerüst zu schaffen, gefolgt von Injektionen von neuralen...

Injektion von selbstorganisierenden Peptiden und neuralen Vorläuferzellen für die Reparatur des Rückenmarks in einem Rattenmodell

Dieses Video zeigt das chirurgische Verfahren zur Durchführung einer thorakalen Rückenmarkshemisektion bei Ratten. Es werden die Schritte zur Freilegung des T8-Rückenmarkssegments, zur Durchführung der Hemisektion zur Störung der Nervenbahnen auf einer Seite und zur postoperativen Versorgung beschrieben.

Durchführung einer Hemisektion des thorakalen Rückenmarks bei Ratten

Quelle: Lakshman, N., et al. Ein Neurosphären-Assay zur Bewertung der endogenen Aktivierung neuronaler Stammzellen in einem Mausmodell mit minimaler Rückenmarksverletzung. J. Vis. exp. (2018). Dieses Video zeigt die Aktivierung und Migration von neuralen Stammzellen (NSCs) in einem Modell für Rückenmarksverletzungen der Maus. Um das Rückenmark freizulegen, wird einer anästhesierten Maus ein Wirbel aus dem Brustbereich der Wirbelsäule entnommen. In der weißen Substanz des Rückenmarks wird dann...

 Ein Modell für minimale Rückenmarksverletzungen zur Untersuchung der Aktivierung und Migration neuraler Stammzellen

Ein Modell der Quetschung schweren Verletzungen des Rückenmarks beschrieben. Detaillierte präoperative, operative und postoperative Schritte beschrieben, um ein konsistentes Modell zu erhalten.

Eine Prellung Model of Severe Spinal Cord Injury in Rats

Verletzungen des Rückenmarks ist eine traumatische Erkrankung, die schwere Morbidität und hoher Sterblichkeit führt. In dieser Arbeit beschreiben wir im Detail eine Quetschung Modell der Verletzung des Rückenmarks in Mäusen, gefolgt von einer Transplantation von neuralen Stammzellen.

Neural Stem Cell Transplantation in Experimental Gequetscht Modell von Rückenmarksverletzungen

Hier präsentieren wir Ihnen eine Kombination aus Laser-Doppler-Perfusion imaging (LDPI) und Laser Doppler Perfusion Überwachung (LDPM) Wirbelsäule Messen lokale Blut fließt und der Sauerstoffsättigung (SO2), sowie ein standardisiertes Verfahren für die Einführung von Rückenmark Schnur Trauma auf Ratte.

Mittels Laser-Doppler Imaging und Überwachung, Rückenmark Mikrozirkulation in der Ratte zu analysieren

Hier beschreiben wir chirurgische Verfahren zur Herstellung einer zuverlässigen Rückenmarks-Lateral-Hemisektion (HX) auf der9. Brustebene bei erwachsenen Ratten und neuroverhaltensbezogene Beurteilungen, die zum Nachweis asymmetrischer Defizite nach einer solchen einseitigen Verletzung entwickelt wurden.

Spinal Cord Lateral Hemisection und Asymmetrische Verhaltensbeurteilungen bei erwachsenen Ratten

Die Brustbrust-Spinal-Hemisektion ist ein wertvolles und reproduzierbares Modell der einseitigen Rückenmarksverletzung, um die neuronalen Mechanismen der bewegungsmotorischen Erholung und Behandlungswirksamkeit zu untersuchen. Dieser Artikel enthält eine detaillierte Schritt-für-Schritt-Anleitung, um das Hemisection-Verfahren durchzuführen und die Leistung des Bewegungsapparates in einer Offenen Allee zu bewerten.

Thorax Rückenmarks-Hemisektionschirurgie und Open-Field-Locomotor Assessment in der Ratte

Minimalinvasive Techniken und ein einfaches Laborgerät verbessern die Reproduzierbarkeit des Rückenmarksverletzungsmodells, indem sie operative Schäden an den Versuchstieren reduzieren und die Aufrechterhaltung der anatomischen Morphologie ermöglichen. Die Methode lohnt sich, weil die zuverlässigen Ergebnisse und das reproduzierbare Vorgehen die Untersuchung der Mechanismen der Krankheitsheilung erleichtern.

Etablierung eines Maus-Kontusionsmodells für Rückenmarksverletzungen basierend auf einer minimal-invasiven Technik

Dieses chirurgische Protokoll ist eine Schritt-für-Schritt-Anleitung zum Einführen eines intrathekalen Katheters in den spinalen Subduralraum eines Nagetiers, um eine gezielte Behandlung durchzuführen.

Zugang zum subduralen Raum des Rückenmarks von Nagetieren für die Behandlung

Lernen Sie eine minimal-invasive laterale Hemisektionstechnik zur Modellierung offener Rückenmarksverletzungen bei Ratten. Diese Methode ist schneller und reproduzierbarer als traditionelle Laminektomie.

Eine minimal-invasive, schnelle laterale Hemisektionstechnik des Rückenmarks zur Modellierung offener Rückenmarksverletzungen bei Ratten (Video) | JoVE Journal

Eine minimal-invasive, schnelle laterale Hemisektionstechnik des Rückenmarks zur Modellierung offener Rückenmarksverletzungen bei Ratten

Weitere Videos entdecken