Name: Schnelle Genesung der Lunge in Kombination mit abdominaler normothermer regionaler Perfusion bei kontrollierter Spende nach Kreislauftod (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-08-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 54 s
Description: Erfahren Sie eine Lungenkühlungsmethode mit abdomineller normothermer regionaler Perfusion zur Organentnahme bei kontrolliertem Kreislauftod. Diese Technik erweitert den Spenderpool sicher und minimiert ischämische Schäden.

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Die Autoren danken allen Mitgliedern, die am Lungentransplantationsprogramm des Universitätskrankenhauses Marqués de Valdecilla beteiligt sind.

Diese Eingriffe werden am Krankenbett auf der Intensivstation durchgeführt. Dieses Protokoll folgt den Richtlinien der Ethikkommission des Universitätskrankenhauses Marqués de Valdecilla und steht im Einklang mit dem spanischen Rechtsrahmen für Spendenverfahren. Für die Videoaufzeichnung der Forschungsvorgänge wurde eine Einverständniserklärung der nächsten Angehörigen eingeholt. cDCD wird bei Patienten mit katastrophalen Hirnschäden oder einem unheilbaren Herzen oder einer neurodegenerativen Erkrankung in Betracht gezogen, bei denen die Entscheidung getroffen wurde, die lebenserhaltende Therapie (WSLT) abzubrechen. Die Ausschlusskriterien und die Beurteilung der Lunge sind die gleichen wie bei Hirntodspendern (Tabelle 1).
1. Prämortale Eingriffe beim Spender
<ol><li>Heparinisierung: Verabreichung eines Bolus von 300-500 UI/kg Heparin intravenös an den Spender.</li>
	<li>Kanülierung HINWEIS: Die Kanülierung wird vom Herz-Kreislauf-Chirurgen durchgeführt und ist ein steriles Verfahren.<ol><li>Bereiten Sie einen sterilen Instrumententisch mit allen erforderlichen Geräten (ECMO-Kit und chirurgische Instrumente) sowie dem Elektrokauterisations- und Absaugsystem vor.</li>
		<li>Bereiten Sie ein Operationsfeld auf der ausgewählten Leiste mit Desinfektionslösung und sterilen Abdecktüchern vor.</li>
		<li>Machen Sie einen 8-10 cm langen Längsschnitt mit einer Klinge Nr. 23 und kontrollieren Sie die Blutung mit Elektrokauter und Liga-Clips. Trennen Sie die Wundränder mit einem Retraktor und fahren Sie mit der Dissektion fort, um die Oberschenkelarterie und -vene freizulegen. Umschließen Sie beide Gefäße mit Gefäßschlaufen zur Blutungskontrolle.</li>
		<li>Wählen Sie die geeigneten Kanülendurchmesser entsprechend den Gefäßgrößen, die groß genug sind, um einen ausreichenden Durchfluss für die Organperfusion zu gewährleisten und Probleme mit niedrigem Durchfluss zu vermeiden (normalerweise 21 French).</li>
		<li>Kanülieren Sie die Femurvene, indem Sie zuerst einen Metalldraht als Führung einführen, gefolgt von progressiven Dilatatoren, um schließlich die Kanüle einzuführen. Wenn Blutungen beobachtet werden, führen Sie zur Kontrolle eine Perikanüle 4-0 Polypropylen-Beutelschnurnaht durch.</li>
		<li>Gehen Sie mit der Oberschenkelarterie auf die gleiche Weise vor, in diesem Fall mit einer doppellumigen Kanüle.</li>
		<li>Schneiden Sie ein 10 cm langes Stück der ECMO-Eingangsleitung ab. Führen Sie einen geraden Konnektor mit einem Luer-Lock mit einem Dreiwegehahn ein, der an einem Ende des Stücks montiert ist, und verbinden Sie das andere Ende des Stücks mit der arteriellen Kanüle (Abbildung 1).</li>
		<li>Spülen Sie die ECMO-Leitungen. Verwenden Sie eine Spülbirne mit Kochsalzlösung, um die Leitungen zu füllen, während Sie sie mit Kanülen verbinden. Verbinden Sie die ECMO-Ausgangsleitung mit der Venenkanüle und die ECMO-Eingangsleitung mit dem zuvor an der arteriellen Kanüle montierten Dreiwegehahn mit dem geraden Anschluss. Der Dreiwegehahn kann zum Spülen des Systems verwendet werden (Bild 2).</li>
		<li>Halten Sie die ECMO-Leitungen geklemmt. Befestigen Sie beide Kanülen mit Seidennähten der Größe 1 an der Leistengegend, um eine Verschiebung während des Transfers zu vermeiden.</li>
		<li>Legen Sie eine überwachte Druckleitung in die Kanüle der Arteria femoralis und in die linke Arteria radialis des Spenders.</li>
	</ol></li>
	<li>Platzierung des Aortenverschlussballons<ol><li>Nehmen Sie als Referenz den Abstand zwischen dem Processus xiphoideus des Spenders und dem distalen Ende der arteriellen Kanüle und bestimmen Sie die Länge des Katheters, der eingeführt werden muss, um die thorakale absteigende Aorta zu erreichen. Setzen Sie eine Referenzmarke in den Ballon mit einer Seidennaht oder einem Marker.</li>
		<li>Führen Sie eine Metalldrahtführung durch das freie Lumen der Kanüle der Oberschenkelarterie ein. Fahren Sie mit dem Katheter auf die gleiche Weise fort, geführt durch den Metalldraht, und führen Sie ihn bis zur angegebenen Markierung ein.</li>
		<li>Bestätigen Sie die korrekte Position des Okklusionsballons mit einer tragbaren Röntgenaufnahme des Brustkorbs oder einer Durchleuchtung (überprüfen Sie die röntgendichten Markierungen des Katheters über dem Zwerchfell).</li>
		<li>Überprüfen Sie die korrekte Funktion des Okklusionsballons, indem Sie ihn mit einer 50-cm³-Kegelspritze mit Kochsalzlösung für nur 4-5 s füllen, um sicherzustellen, dass der arterielle Druck aus der Oberschenkelkanüle verschwindet, während der Druck aus der linken Radialarterie aufrechterhalten wird (Abbildung 3).</li>
		<li>Wenn der Femurpuls verschwindet, notieren Sie das Füllvolumen als Mindestvolumen, das verwendet werden soll, um die thorakale Aorta während der ARNP zu blockieren. Wenn ein Fluss in der Oberschenkelkanüle festgestellt wird, überprüfen Sie erneut die korrekte Positionierung oder Füllung.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Absetzen der lebenserhaltenden Therapie (WLST) und Todeserklärung
<ol><li>Übergeben Sie den an das ECMO-System angeschlossenen Spender in den Operationssaal. Bereiten Sie den Spender vor und drapieren Sie ihn steril.</li>
	<li>Halten Sie die Lungen- und Bauchkonservierungslösungen und -leitungen fest und bereit. Halten Sie das OP-Team im angrenzenden Operationssaal geschrubbt und steril bereit.</li>
	<li>Verwenden Sie einen Chronometer, um warme ischämische Zeiten zu registrieren. HINWEIS: Die funktionelle warme ischämische Zeit (FWIT), definiert als die Zeit vom systolischen Blutdruck <60 mmHg bis zum ANRP, wird für Bauchtransplantate und die Verabreichung einer Lungenkonservierungslösung durch die Lungenarterie für die Lunge begonnen (5 Minuten berührungslose Periode ist enthalten). Es werden Obergrenzen von 30 min für Leber und Bauchspeicheldrüse und 60 min für Nieren und Lunge berücksichtigt.</li>
	<li>Erlauben Sie den Angehörigen, während der WLST bis zur Todeserklärung bei ihrem Angehörigen zu sein.</li>
	<li>Initiieren Sie WLST. Die Extubation ist je nach Wunsch des Angehörigen optional. Führen Sie nach der Todeserklärung die Angehörigen aus dem Operationsbereich heraus.</li>
	<li>Füllen Sie den Aortenverschlussballon nach der 5-minütigen berührungslosen Phase mit dem zuvor festgelegten Mindestvolumen, das einen absteigenden thorakalen Aortenblock gewährleistet.</li>
	<li>Wenn der Druck aus der linken Arteria radialis verschwindet, wird eine ANRP eingeleitet. Der Druck von der Oberschenkelkanüle verwandelt sich in einen kontinuierlichen, nicht pulsatilen Fluss, der von der ECMO bereitgestellt wird.</li>
	<li>Wenn der Fluss in der Radiallinie parallel zum Femurdruck ansteigt, stoppen Sie die ANRP und überprüfen Sie die korrekte Position und Füllung oder klemmen Sie die thorakale Aorta nach weiteren 5 Minuten ohne Berührung ab, bevor Sie die ANRP wiederherstellen. Die ANRP wird erst gestartet, wenn der Aortenverschluss vollständig bestätigt ist. HINWEIS: WLST kann im Operationssaal oder auf der Intensivstation nach Wunsch von Angehörigen und Angehörigen durchgeführt werden. Wenn es auf der Intensivstation durchgeführt wird, wird nach der 5-minütigen No-Touch-Phase der Ballon gefüllt und die Funktion überprüft, der ARNP wird eingeleitet und der Spender wird in den Operationssaal gebracht, wo das Operationsteam bereit ist, zu beginnen. Wenn eine Fehlfunktion des Okklusionsballons festgestellt wird, wird der ARNP gestoppt, bis die thorakale Aorta im Operationssaal eingeklemmt ist.</li>
</ol>3. Lungenbergungs- und Beschaffungstechnik
HINWEIS: Die Techniken zur Lungenbergung und -beschaffung werden vom Thoraxchirurgen und dem Transplantationskoordinator durchgeführt (Abbildung 4).
<ol><li>Führen Sie eine mittlere Sternotomie durch: Fahren Sie mit einem mittleren vertikalen Hautschnitt von der suprasternalen Kerbe bis zur Spitze des Processus xiphoideus fort. Erweitern Sie den Schnitt mit Hilfe der Elektrokauterisation auf die Brustfaszie und das Brustbeinperiost.</li>
	<li>Durchtrennen Sie das Ligamentum interclavicularis und erzeugen Sie eine Ebene durch Fingerdissektion hinter dem Brustbein, sowohl auf Höhe der suprasternalen Kerbe als auch auf Höhe des Processus xiphoideus. Teilen Sie das Brustbein mit einer elektrischen Säge. Platzieren Sie einen Brustbein-Retraktor und öffnen Sie ihn vorsichtig, um den Perikard von der hinteren Oberfläche des Brustbeins zu lösen. Kontrollieren Sie jeden Blutungspunkt mit Elektrokauterisation.</li>
	<li>Gleichzeitig wird der Spender mit 100 % Sauerstoff und einem positiven endexspiratorischen Druck von 5 cmH2Oretubiert und beatmet.</li>
	<li>Wenn die Bronchoskopie während des Aufenthalts des Spenders auf der Intensivstation nicht als kritisches Patientenmanagementmanöver durchgeführt wurde, kann sie zu diesem Zeitpunkt vom zweiten Chirurgen des Thoraxteams durchgeführt werden. Führen Sie für die Bronchoskopie ein flexibles Bronchoskop durch den Endotrachealtubus ein und beurteilen Sie die Anatomie, das Erscheinungsbild der Schleimhäute und die klaren Sekrete.</li>
	<li>Öffnen Sie beide Pleurahöhlen durch Längsschnitte in der Pleura mediastinalis.</li>
	<li>Bei Zweifeln oder Problemen an einer adäquaten Blockade der supraaortalen Gefäße mit dem Okklusionsballon wird die linke Lunge medial zurückgezogen, um die thorakale Aorta freizulegen und unter direkter Sicht so tief wie möglich einzuklemmen.</li>
	<li>Untersuchen Sie die Lunge und führen Sie eine visuelle und palpatorische Beurteilung durch. Untersuchen Sie auf Bullae, Prellungen, Atelektase, Lungenentzündung und okkulte Tumore. Geben Sie 1 l 4 °C Kochsalzlösung in beide Pleurahöhlen.</li>
	<li>Reduzieren Sie den eingeatmeten Anteil an Sauerstoff auf 50%. Öffnen Sie den Herzbeutel mit einem umgekehrten T-Schnitt. Ziehen Sie die Ränder des Perikards seitlich mit 2-0 Seidennähten zurück, die mit einer Mückenzange auf der Haut befestigt sind, um die Herzstrukturen freizulegen.</li>
	<li>Platzieren Sie eine 4-0 Polypropylen-Taschenschnurnaht auf der Hauptpulmonalarterie unterhalb der Bifurkation. Führen Sie eine Arteriotomie mit einer Klinge Nr. 11 durch und erweitern Sie sie mit einer gebogenen Mückenzange.</li>
	<li>Kanülieren Sie die Pulmonalarterie (PA) mit einer rechtwinkligen geraden Kanüle, die am Ende geklemmt wird. Schließen Sie die Kanüle der Pulmonalarterie an die Leitung des Spülsystems an, indem Sie einen geraden Konnektor mit einem Luer-Verschluss und einem Dreiwegehahn montieren. Schließen Sie das Spülsystem an die Lungenkonservierungslösung an. Reinigen Sie die Leitungen.</li>
	<li>Beginnen Sie mit dem Spülen von 50-60 ml/kg kalter Konservierungslösung. Spülen Sie 500 μg Prostaglandin, verdünnt in 100 ml Kochsalzlösung, gleichzeitig durch den Dreiwegehahn.</li>
	<li>Öffnen Sie das linke Vorhofohr oder den linken Vorhof direkt, um eine freie Drainage zu ermöglichen. Wenn Areale mit Atelektase gefunden werden, rekrutieren Sie diese mit kurzen inspiratorischen Holds bei einem Druck von 25-30 cm H2O.</li>
	<li>Sobald die Konservierung abgeschlossen ist, entfernen Sie die PA-Kanüle. Kündigen Sie dem Rest des Teams die Absicht an, die Cava-Vene zu klemmen und mit der Herzentfernung zu beginnen.</li>
	<li>Verabreichen Sie dem Spender 1-1,2 l Kochsalzlösung, bevor Sie die Cava-Venen abklemmen, um eine Abnahme des Pumpflusses aufgrund des Verlusts des venösen Blutrückflusses aus dem Thorax zu vermeiden.</li>
	<li>Platzieren Sie eine Kreuzklemme in der unteren Cava-Vene und stellen Sie sicher, dass genügend Stumpf für die Leber vorhanden ist. Ligate und teilen Sie die untere Cava-Vene mit dem Seidenstrang Nr. 3.</li>
	<li>Binden und teilen Sie die obere Cava-Vene kaudal bis azygot mit dem Seidenstrang Nr. 3. Befestigen Sie den distalen Stumpf mit einer Klemme.</li>
	<li>Lassen Sie die Klemmen im Operationsfeld und achten Sie darauf, sie nicht versehentlich zu entfernen, da sonst die ANRP beeinträchtigt wird. Schneiden Sie den Rest des Herzens auf eine übliche Weise heraus.</li>
	<li>Nach der Entfernung des Herzens wird die Lunge nach dem gleichen Verfahren wie bei Hirntodspendern entfernt, wie unten beschrieben.<ol><li>Durchtrennen Sie die unteren Pulmonalbänder, öffnen Sie den hinteren Perikard und legen Sie die Speiseröhre frei. Befreien Sie die hinteren mediastinalen Ansätze der Lunge mit einer stumpfen Dissektion, um eine vorsichtige Hämostase zu gewährleisten.</li>
		<li>Präparieren Sie die Lungenarterien von der Aorta weg. Isolieren Sie die Luftröhre oberhalb der Carina und führen Sie ein TA-Klammergerät herum.</li>
		<li>Blasen Sie die Lunge auf 50%-60% des Atemzugvolumens auf, bevor Sie den Endotrachealtubus herausziehen und die Luftröhre teilen. Entfernen Sie alle verbleibenden Attachments und extrahieren Sie den Lungenblock aus dem Spender.</li>
	</ol></li>
	<li>Untersuchen Sie die Brusthöhle sorgfältig, um Blutungspunkte zu erkennen, insbesondere eine Ligatur der Azygovene und eine Kauterisation der Gefäße oder Kapillaren aus dem hinteren Mediastinum, den paratrachealen Strukturen und dem umgebenden Gewebe. Kontinuierlicher Blutverlust kann den Pumpenfluss verringern.</li>
	<li>Bringen Sie den Lungenblock auf den hinteren Tisch und fahren Sie mit der Laboroperation fort. Trennen Sie die linke und rechte Lunge.</li>
	<li>Führen Sie mit einem Foley-Katheter mit einem aufgeblasenen Kolben an der Spitze nacheinander durch jede Lungenvene eine retrograde Spülung mit 0,2-0,25 l Kältekonservierungslösung durch.</li>
	<li>Verpacken Sie jede Lunge in einen ersten sterilen Beutel, der nur eine kalte Konservierungslösung enthält, umgeben von zwei weiteren Plastikbeuteln, und bewahren Sie sie in einem tragbaren Kühlschrank mit eiskalter Kochsalzlösung bei 4 °C auf.</li>
	<li>Wenn ein Ex-vivo-Lungenperfusionssystem indiziert ist, befolgen Sie die folgenden Schritte für Geräteverbindungen zur Pulmonalarterie und Luftröhre während der Lungenbeschaffung.<ol><li>Bewahren Sie den Hauptstamm der Lungenarterie und nicht nur dessen Gabelung bei der Beschaffung.</li>
		<li>Wenn dies nicht möglich ist, nehmen Sie ein 3-4 cm langes Stück der Aorta, um es nach hinten an die Pulmonalarteriegabelung zu nähen, um den Pulmonalarterienstamm zu ersetzen.</li>
		<li>Teilen Sie die Luftröhre vier bis fünf Ringe über der Carina, um genügend Länge für die Intubation zu haben.</li>
		<li>Halten und lagern Sie die Lunge in Block.</li>
	</ol></li>
</ol>4. Abdominale normotherme regionale Perfusion
<ol><li>Leiten Sie die ANRP ein, nachdem Sie den Aortenverschlussballon gefüllt und die korrekte Funktion überprüft haben.</li>
	<li>Legen Sie folgende Überwachungsziele fest: Pumpenfluss = 2-2,5 l/min, Dauerdruck von 60-65 mmHg in der Kanüle der Oberschenkelarterie, Temperatur = 37 °C, pH = 7,35-7,45, Hämatokrit >25%.</li>
	<li>Blutproben aus der Kanüle der Oberschenkelarterie werden mit einer 10-ml-Spritze nach Beginn der ANRP und alle 30 Minuten für die biochemische Analyse der Leber und der Nieren, des Serumlaktatspiegels, des arteriellen Blutgases und der Hämatokritwerte entnommen. Halten Sie den ARNP mindestens 90-120 Minuten lang aufrecht.</li>
	<li>Die Leber ist zu verwerfen, wenn die Werte für Alanin-Transaminase (ALT) oder Aspartat-Transaminase (AST) während der ANRP mehr als das Vierfache des oberen Normalgrenzwerts betragen.</li>
</ol>5. Erholung von Leber und Nieren
HINWEIS: Die Leber- und Nierenerholung wird vom Leberchirurgen bzw. Nierenchirurgen durchgeführt.
<ol><li>Führen Sie eine mittlere Laparotomie durch: Fahren Sie mit einem mittleren vertikalen Hautschnitt entlang der Linea alba fort, vom Processus xiphoideus (Verbindung zur vorherigen Sternotomie) bis zum Schambein, wobei der Schnitt um den Nabel gekrümmt wird. Mit Elektrokauter werden das Unterhautfett und die oberflächlichen Faszienschichten bis zur Rektusscheide präpariert.</li>
	<li>Präparieren Sie die vorderen und hinteren Komponenten der Rektusscheide und öffnen Sie das Peritoneum, um Zugang zur Peritonealhöhle zu erhalten. Erweitern Sie den Schnitt, indem Sie die Finger in das entstandene Loch stecken, und achten Sie darauf, die darunter liegenden Strukturen nicht zu verletzen. Platzieren Sie die Retraktoren, um eine ausreichende Exposition des Bauches zu gewährleisten.</li>
	<li>Beurteilen Sie die makroskopische Qualität der Bauchorgane durch visuelle und palpatorische Beurteilungen. Eine Leberbiopsie kann entnommen werden, wenn Bedenken bestehen, wie bei Hirntodspendern.</li>
	<li>Wenn die chemischen Werte korrekt sind und das makroskopische Erscheinungsbild normal ist, validieren Sie die Organe.</li>
	<li>Stoppen Sie das ECMO-Gerät. Spülen Sie die Konservierungslösung für die Bauchorgane über die Femurarterienkanüle und verwenden Sie die Femurvenenkanüle zur Ausblutung.</li>
	<li>Beschaffen Sie sich die für eine Transplantation geeigneten Bauchorgane in einer Standardweise wie in DBD27,28.</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass keine Interessenkonflikte bestehen.

Obwohl die Verwendung der simultanen Lungenkälteperfusion mit ARNP bei cDCD erstmals im Jahr 2014 veröffentlicht wurde, wurden nur sehr wenige Erfahrungen dafür beschrieben25,26,29. Darüber hinaus ist die Verwendung von cDCD-Lungen, unabhängig von der verwendeten Technik, in den meisten Ländern nach wie vor gering.
Die entscheidenden Schritte innerhalb dieses Protokolls sind die Verwendung von prämort...

Die Spende nach Kreislauftod (DCD) begann in Spanien mit unkontrollierten Spendern. Im Jahr 1996 wurde das erste nationale Konsensdokument zur DCD als Leitfaden für die Praxis der unkontrollierten Spende nach Kreislauftod1 (uDCD) veröffentlicht, in dem auch ein Moratorium für die kontrollierte Spende nach Kreislauftod (cDCD) festgelegt wurde. Im Jahr 2012 entstand ein neuer Konsens, der die Grundlage und den rechtlichen Rahmen für die Praxis sowohl der uDCD als auch der cDCD2 festlegte. Derzeit ist Spanien eines der aktivsten Länder in Bezug auf DCD und erreicht die weltweit höchste Rate an Spendern nach Kreislauftod3. Diese Art von Spendern machte im Jahr 2021 fast 35 % der gesamten Spender im Land aus, wobei ein deutlicher Rückgang der uDCD zu verzeichnen war und die Spender ausschließlich cDCD4 waren.
Die Organentnahme bei cDCD wird in der Regel mit der Technik der superschnellen Genesung durchgeführt5. Nach der Todeserklärung und nach Ablauf der berührungslosen Zeit wird eine schnelle Sternotomie und Laparotomie durchgeführt. Die abdominale Aorta und die Pulmonalarterie werden kanüliert und mit kalten Perfusionslösungen gespült, um die Bauch- und Brustorgane zu erhalten, und vor der Entnahme wird eine topische Kühlung durchgeführt6. In dieser Situation ist die cDCD durch die unvorhersehbaren Folgen einer warmen Ischämie nach Absetzen der lebenserhaltenden Therapie gekennzeichnet. Die ischämische Schädigung während dieser Phase der agonischen Hypotonie und der progressiven Hypoxie, gefolgt von der Nichtberührungsphase nach dem Herzstillstand, wird durch die spätere Periode der kalten Ischämie weiter verschlimmert7. Diese Kombination aus warmer und kalter Ischämie scheint nachteilig zu sein, insbesondere bei abdominalen Transplantaten 8,9,10, was bei Fachleuten zu mehr Zurückhaltung bei der Verwendung dieser Organe von cDCD-Spendern führt.
Um diese Risiken zu minimieren, wurde ein In-situ-Konservierungsmodell entwickelt, das auf früheren Erfahrungen spanischer Teams, die in uCDC11 arbeiten, basiert. Die Verwendung von extrakorporalen Membranoxygenierungssystemen (ECMO) zur Wiederherstellung des Blutflusses nach dem Tod und vor der Wiederherstellung des Transplantats kann die aus der Ischämie resultierenden metabolischen Abweichungen rückgängig machen und die zelluläre Physiologie wiederherstellen12. Eine abdominale normotherme regionale Perfusion (ANRP) kann die Qualität ischämisch geschädigter Organe bei cDCDverbessern 13. Die Organfunktion kann beurteilt und verbessert werden, was eine bessere Auswahl von Bauchtransplantaten für die Transplantation ermöglicht.
Jüngste internationale multizentrische Erfahrungen belegen, dass ANRP im Vergleich zur Rapid Recovery (RR)-Technik dazu beiträgt, die traditionellen Einschränkungen bei cDCD zu überwinden, die Rate der Gallenkomplikationen nach der Transplantation zu reduzieren, die erfolgreiche Transplantation älterer Lebern zu erleichtern und das Überleben des Lebertransplantats zu verbessern14,15. In den Nieren scheint es die kurzfristigen Ergebnisse mit einer geringeren verzögerten Transplantatfunktion und höheren 1-Jahres-Transplantatüberlebensraten zu verbessern16. Mit dieser Evidenz hat ANRP bei cDCD Vorteile gegenüber der Rapid-Recovery-Technik für die Beschaffung von Bauchtransplantaten erlangt und wird nun in mehreren europäischen Ländern und anderen Teilen der Welt angewendet17,18.
Die Verwendung von Lungen von cDCD-Spendern wurde jedoch prompt weltweit übernommen. Eine lungenfunktionelle warme ischämische Zeit von bis zu 60 min scheint das Überleben nicht zu beeinflussen19. In den letzten zehn Jahren haben mehrere Zentren und multiinstitutionelle Erfahrungen über Ergebnisse nach Lungentransplantation bei cDCD berichtet, die mit denen von DBD vergleichbarsind 20,21. Die RR-Technik ist die Routinemethode zur Lungengewinnung: Die Lunge wird topisch gekühlt und nach dem Spülen mit Kältekonservierungslösung22 entfernt.
Die ersten Erfahrungen mit der Kombination von ANRP und RR der Lunge bei cDCD wurden von zwei Gruppen aus dem Vereinigten Königreich berichtet23,24. Jahre später wurde eine Variation dieser Technik, die prämortale Eingriffe hinzufügt, veröffentlicht25. Die Ergebnisse zeigen, dass diese duale Beschaffungstechnik sowohl für Bauch- als auch für Thoraxtransplantate sicher und wirksam ist26. Natürlich wird das Spendenverfahren komplexer. Es erfordert technologische und personelle Ressourcen, ausreichende organisatorische Fähigkeiten und hat höhere wirtschaftliche Kosten. All dies kann Fachleute davon abhalten, ein Programm zu starten. Das Ziel dieser Studie ist es, ein Protokoll vorzustellen, das sich speziell auf prämortale Eingriffe, Kanülierung und Platzierung von Aortenverschlussballons konzentriert, mit Tipps und Tricks, die aus der Erfahrung gelernt wurden, und die verschiedenen technischen Details zu kommentieren, die bei der Lungenentnahme bei der Verwendung von ARNP zu berücksichtigen sind. Gegenwärtig sind cDCD-Spender im Zentrum zur Hauptquelle für Transplantate für Thorax- und Abdominaltransplantationen geworden.

<table><tbody><tr><td>Fläschchen 5 mL Heparin 1000 UI/mL</td><td>ROVI</td><td></td><td>Für die Heparinisierung von Spendern</td></tr><tr><td>ECMO KIT (MATERIALIEN FÜR DIE KANÜLIERUNG)</td>Arterien-Druckleitungen BEXEN MEDICAL 137.15 Arterien-Druckleitung por radiale Arterien- und Femurkanüle Verbandschere SURGIMEDIC BC-881R Schere zum Durchtrennen von ECMO-Leitungen <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bio-medicus Venenkanüle 21 Fr (7,0 mm) x 27,5 Zoll (69,9 cm)</td><td>MEDTRONIC</td><td>96670-121</td><td>Venenkanüle</td></tr><tr><td>Clhorhexidin-Lösung 2%</td><td></td><td></td><td>Desinfektionslösung</td></tr><tr><td>ECMO-Gerät Maquet Rotaflow Maquet</td>, <td>Rasttat, Deutschland</td><td></td><td>ECMO-System</td></tr><tr><td>Elektrokauter-Griff</td><td>DEXTRO</td><td>SW12200</td><td></td></tr><tr><td>EndoReturn Arterielle Kanülen-Kit&nbsp; 21-23F</td><td>Edwards Lifesciences</td><td>ER21B, ER23B</td><td>Arterielle Kanüle mit Doble-Lumen-zu-ECMO-Verbindung und zur Einführung eines Aorten-Oclussionsballons</td></tr><tr><td>Ethicon LigaClip med/short 20 titanium medium</td><td>ETHICON</td><td>MCS30</td><td>Ligaclips zur Kontrolle von Blutungen bei der Leistendissektion</td></tr><tr><td>Ethicon LigaClip med/short 20 titanium small</td><td>ETHICON</td><td>MCS20</td><td>Ligaclips zur Kontrolle von Blutungen während der Leistendissektion</td></tr><tr><td>Einführset Bio-medicus 180cm</td><td>MEDTRONIC</td><td>96551</td><td>Einführset für ECMO-Kanülen, mit Katheter, Metalldrahtführung und Dilatatoren</td></tr><tr><td>Spülbirne</td><td>MEDLINE</td><td>DYNDE 20125</td><td>Birne zum Befüllen mit Kochsalzlösung und zum Spülen von ECMO-Leitungen an der Verbindungsstelle mit Kanülen</td></tr><tr><td>Luer-Konus-Spritze 50cc</td><td>CARDIONATUR</td><td>60ML</td><td>Mit Kochsalzlösung gefüllte Spritze zum Befüllen des Okklusionsballons</td></tr><tr><td>Mersilk Nr. 1, LR-60 CONV , 75 cm</td><td>ETHICON</td><td>W562H</td><td>Gebogenes Seidennaht für die Fixierung von ECMO-Kanülen</td></tr><tr><td>Prolene 4/0</td><td>ETHICON</td><td>W8355</td><td>Polypropylen-Naht für die Handschnur in Oberschenkelgefäßen oder Gefäßnaht</td></tr><tr><td>Prolene 5/0 , 60 cm</td><td>ETHICON</td><td>8325</td><td>Polypropylen-Naht für Gefäßnähte</td></tr><tr><td>Prolene 5/0, 90 cm</td><td>ETHICON</td><td>8720</td><td>Polypropylen-Naht für Gefäßnähte</td></tr><tr><td>Reliant Stent Graft Ballonkatheter&nbsp; 12F</td><td>Medtronic, Irland</td><td>AB46</td><td>Aortenverschlussballon, der durch die Oberschenkelarterie eingeführt wird. Es wird als Endoclamp</td></tr><tr><td>verwendet Skalpellklinge Nr. 11</td><td>INTRAVEN</td><td>150011</td><td></td></tr><tr><td>Scapel-Klinge Nr. 23</td><td>INTRAVEN</td><td>150023</td><td></td></tr><tr><td>Silikonschlauch</td><td>IBERHOSPITEX</td><td>0027224-P</td><td>Silikonschlauch zum Anschluss des Saugsystems</td></tr><tr><td>Sofsilk geflochtene Seide Nr. 1 Stränge COVIDIEN</td><td></td><td>L-12</td><td>Seidenstrang zur Ligatur oder Blutungskontrolle</td></tr><tr><td>Sofsilk geflochtene Seide Nr. 3 Stränge</td><td>COVIDIEN</td><td>L-115</td><td>Seidenstrang für Ligatur oder Blutungskontrolle</td></tr><tr><td>gerader Konnektor 3/8"x3/8" mit Luer-Lock</td><td>ANDOCOR</td><td>04CS0022</td><td>Stück zum Verbinden der arteriellen Kanüle mit der ECMO-Leitung und dem Drei-Wege-Absperrhahn für Druckleitung und Blutentnahme</td></tr><tr><td>OP-Pad-Packung</td><td>TEXPOL</td><td>146500</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgisches Klammergerät</td><td>COVIDIEN</td><td>8886803712</td><td>Tacker zum Verschließen der Operationswunde</td></tr><tr><td>Drei-Wege-Absperrhahn</td><td>BD CONNECTA</td><td>394501</td><td>Drei-Wege-Absperrhahn zum Verbinden der Farterialkanüle mit der Druckleitung</td></tr><tr><td>Gefäßschlaufe groß</td><td>MEDLINE</td><td>VLMAXR</td><td>Gefäßschlaufe zur Umarmung der Oberschenkelarterie und der Vene zur Blutungskontrolle.</td></tr><tr><td>Gefäßschlinge klein</td><td>MEDLINE</td><td>VLMINR</td><td>Gefäßschlinge zur Umarmung der Oberschenkelarterie und -vene zur Blutungskontrolle.</td></tr><tr><td>Yankauer Absauganschluss 50 V</td><td>DEXTROMEDICA</td><td>349701</td><td>Absauganschluss zum Absaugen während der chirurgischen Dissektion</td></tr><tr><td><stark>CHIRURGISCHE WERKZEUGE FÜR DIE KANÜLE</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adson Retraktor 20 cm und 33 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aortenklemme</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Boyd Schere 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Präparierzange ohne Backen 21 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Farabeuf Retraktor kleine</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mayo Schere gerade 14 cm und 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metzembaum Schere 18 cm, 20 cm und 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Moskitopinzette gerade und gebogen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nadelhalter 18 cm und 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Russ Präparierzange 15 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Skalpellgriff Nr. 23 und Nr. 21, 21 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chirurgischer Dissektor 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><stark>MATERIALIEN FÜR DIE LUNGENBESCHAFFUNG </stark></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 cc Spritze</td><td>BD DISCARDIT</td><td>309110</td><td></td></tr><tr><td>Alprostadil 500 mcgs injizierbare Lösung</td><td>PFIZER</td><td></td><td>Prostaglandin injiziert mit Lungenkonservierungslösung</td></tr><tr><td>Einweg-GIA-Kartusche Steril 6/Ca</td><td>MEDTRONIC</td><td>1141634</td><td></td></tr><tr><td>Einweg-GIA-Klammergerät 60/3,8 3/Ca</td><td>MEDTRONIC</td> 2802122 <td>Stapler für die Luftröhre und die Bronchialteilung</td><td></td></tr><tr><td>Foley-Katheter 18 Ch Folysil</td><td>Folysil, Coloplast</td><td>AA6118</td><td>Harnkatheter zur Kanulation von Lungenvenen für die retrograde Perfusion</td></tr><tr><td>Lungenkonservierungslösung Perfadex 1000</td><td>mL Medisan, Uppsala, Schweden</td><td>19811 ( Schachtel mit 10 Einheiten)</td><td>Lungenkonservierungslösung</td></tr><tr><td>Mersilk Nr. 1, LR-60 CONV , 75 cm</td><td>ETHICON</td><td>W562H</td><td>Gebogenes Seidennaht für Perikardnähte</td></tr><tr><td>Kindervenenkanüle</td><td>SORIN GROUP</td><td>V132-12</td><td>Kanüle für die Kanülierung der Lungenarterie</td></tr><tr><td>Prolene 4/0</td><td>ETHICON</td><td>W8355</td><td>Polypropylen-Naht für den Geldbeutel in der Lungenarterie</td></tr><tr><td>Skalpellklinge Nr. 11</td><td>INTRAVEN</td><td>150011</td><td></td></tr><tr><td>Sofsilk geflochtene Seide Nr. 1 Stränge COVIDIEN</td><td></td><td>L-12</td><td>Seidenstrang zur Fixierung der Arterienkanüle mit dem Tourniquet</td></tr><tr><td>Sofsilk geflochtene Seide Nr. 3 Stränge</td><td>COVIDIEN</td><td>L-115</td><td>Seidenstrang für die Gefäßligatur</td></tr><tr><td>Sterile Beutel</td><td></td><td></td><td>Zur Aufbewahrung und Aufbewahrung der Lunge.</td></tr><tr><td>Gerader Konnektor 1,4"/1,4" mit Luer-Lock</td><td>ANDOCOR</td><td>04CS0032</td><td>Stück zum Verbinden der Pulmonalarterien-Arterienkanüle mit Konservierungsleitung und dem Dreiwege-Absperrhahn für Prostaglandin</td></tr><tr><td>Dreiwege-Absperrhahn</td><td>BD CONNECTA</td><td>394501</td><td>Dreiwege-Absperrhahn zum Verbinden der Zartkanüle mit Druckleitung</td></tr><tr><td>Uromatic-Set für Spül-Doppelblei</td><td>MEDISAVE</td><td>TRC4007N</td><td>Spülsystem für Lungenkonservierungslösung</td></tr><tr><td>Uromatic-Set für die Spülung mit einer Leitung</td><td>MEDISAVE</td><td>TRC4002</td><td>Spülsystem für die Lungenerhaltungslösung</td></tr><tr><td><stark>CHIRURGISCHE WERKZEUGE FÜR DIE LUNGENENTNAHME</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aortenkreuzklemme</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Batteriebetriebene chirurgische Säge</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cooley vaskulär </td><td></td><td></td><td></td>Klemme</tr><tr><td>Präparierzange 18 cm und 27,9 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Finochietto Brustbein-Retraktor</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metzembaum Schere 20 cm und 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mückenzange gebogen 12,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gefäßklemmen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><stark>CHIRURGISCHE WERKZEUGE FÜR BAUCHORGANE BESCHAFFUNG</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adson Gelenkhaken</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Allis Pinzette 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aortenkreuzklemmen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Boyd Schere 17 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Castroviejo Nadelhalter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cooley Gefäßklemmen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Crile Zange gebogen 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Davis Retraktor 24,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DeBakey Präparierzange 19,7 cm und 24,1 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DeBakey Gefäßklemmen Präparierzange</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>18 cm und 27,9 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Duval Zange 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Farabeuf Retraktoren</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nierenschalen 300 cc und 500 cc</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kocher-Zange gerade 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Langenbeck-Retraktoren 21 cm und 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mayo-Schere gerade und gebogen, 17 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Moskito-Pinzette gerade und gebogen, 12,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nadelhalter 15 cm, 18 cm, 23 cm und 23 cm.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pean Pinzette 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Potts Schere 19cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rochester Pinzette gebogen 24 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rochester Pinzette gerade 24 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Russ Präparierzange 15 cm und 20 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Skalpellgriffe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Senn-Müller Retraktor 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

schnelle genesung der lunge in kombination mit abdominaler normothermer regionaler perfusion bei kontrollierter spende nach kreislauftod

Lung Rapid Recovery Procurement Combined with Abdominal Normothermic Regional Perfusion in Controlled Donation after Circulatory Death

Die kontrollierte Spende nach Kreislauftod (cDCD) hat dazu beigetragen, dass die Zahl der Spender auf der ganzen Welt gestiegen ist. Die in den letzten Jahren veröffentlichten Erfahrungen bestätigen, dass die Ergebnisse nach einer Lungentransplantation bei cDCD ähnlich sind wie bei Hirntodspendern. Die Verwertung von Lungen von Asystolie-Spendern ist jedoch nach wie vor gering. Mehrere Gründe können eine Rolle spielen: unterschiedliche rechtliche Rahmenbedingungen zwischen Ländern und Zentren mit unterschiedlichen prämortalen Eingriffen, unzureichende Versorgung der Lungenspender vor der Beschaffung oder sogar schlechte Erfahrungen mit cDCD-Verfahren und -Protokollen.
Ursprünglich wurde die Technik der schnellen Genesung häufig für die Gewinnung von Brust- und Bauchorganen bei cDCD eingesetzt, aber in den letzten zehn Jahren hat sich die abdominale normotherme regionale Perfusion (ANRP) mit extrakorporalen Membranoxygenierungsgeräten zu einer nützlichen Methode entwickelt, um die Durchblutung der Bauchorgane wiederherzustellen und ihre Qualitätsverbesserung und ihre Funktionsbeurteilung vor der Transplantation zu ermöglichen. Dies macht das Spendeverfahren komplexer und weckt Zweifel an einer Verletzung der Transplantate aufgrund der doppelten Temperatur.
Das Ziel dieses Artikels ist es, ein Protokoll zu beschreiben, das auf einer einzigen Zentrumserfahrung mit Maastricht-III-Spendern basiert, die Lungenkühlung, schnelle Erholung im Thorax und abdominale normotherme regionale Perfusion kombiniert. Es werden Tipps und Tricks erklärt, die sich auf prämortale Eingriffe und Techniken der Lungenentnahme konzentrieren. Dies kann dazu beitragen, die Zurückhaltung von Fachleuten bei der Anwendung dieser kombinierten Technik zu minimieren und andere Spenderzentren zu ermutigen, sie trotz der erhöhten Komplexität des Verfahrens anzuwenden.

Wir haben eine deskriptive Analyse von 30 Lungentransplantationen durchgeführt, die in den letzten 2 Jahren, 2020 und 2021, am Universitätskrankenhaus Marqués de Valdecilla mit Lungen von cDCD-Spendern durchgeführt wurden. Demografische Merkmale von Spendern und Empfängern, technische Daten, postoperative Ergebnisse und kurzfristige Ergebnisse werden hier vorgestellt. Diese Ergebnisse werden als absolute Zahlen und Prozentsätze für kategoriale Variablen und als Maß für die zentrale Tendenz und Streuung für stetige Variab...

Das Protokoll kombiniert eine Technik zur schnellen Erholung der Lungenkühlung mit einer normothermen regionalen Perfusion des Abdomens zur Gewinnung von Bauchtransplantaten bei kontrollierten Asystolie-Spendern, was eine sichere und nützliche Methode zur Erweiterung des Spenderpools darstellt.

Schnelle Genesung der Lunge in Kombination mit abdominaler normothermer regionaler Perfusion bei kontrollierter Spende nach Kreislauftod

Controlled donation after circulatory death (cDCD) has contributed to increasing donor numbers all over the world. Experiences published in the last years ...

Die Multiorgangewinnung für die kontrollierte Spende nach Herztodspendern ist eine Herausforderung. Diese Methode erhöht die Komplexität des gesamten Verfahrens, bietet aber bessere Ergebnisse für die Empfänger. Diese Methode minimiert die ischämischen Schäden, die durch Hypotonie und Herzstillstand nach Absetzen der lebenserhaltenden Therapie bei den Spendern entstehen.Verabreichen Sie dem Spender zunächst intravenös einen Heparin-Bolus. Bereiten Sie dann einen sterilen Instrumententisch mit allen erforderlichen Geräten, der Elektrokauterisation und dem Absaugsystem vor. Bereiten Sie ein Operationsfeld auf der ausgewählten Leiste mit Desinfektionslösung und sterilen Abdecktüchern vor.Machen Sie mit einer Klinge Nr. 23 einen acht bis 10 Zentimeter langen Längsschnitt und kontrollieren Sie die Blutung mit Elektrokauter und Libaclips. Trennen Sie die Wundränder mit einem Retraktor und fahren Sie mit der Dissektion fort, um die Oberschenkelarterie und -vene freizulegen. Umarme die Oberschenkelgefäße mit einem Seidenstrang, um die Blutung zu kontrollieren.Wählen Sie die passenden Kanülendurchmesser entsprechend den Gefäßgrößen, wie im Textmanuskript beschrieben. Kanülieren Sie die Femurvene, indem Sie zuerst einen Metalldraht als Führung einführen, gefolgt von progressiven Dilatatoren, um schließlich die Kanüle einzuführen. Ähnlich verhält es sich mit der Oberschenkelarterie mit einer doppellumigen Kanüle.Schneiden Sie ein 10 Zentimeter langes Stück der ECMO-Eingangsleitung ab. Führen Sie einen geraden Verbinder mit einem Köderverschluss mit einem Dreiwegehahn ein, der an einem Ende des Stücks montiert ist, und verbinden Sie das andere Ende mit der arteriellen Kanüle. Spülen Sie die ECMO-Leitungen.Verwenden Sie eine Spülung gepaart mit Kochsalzlösung, um die Leitungen zu füllen, während Sie sie mit Kanülen verbinden. Verbinden Sie die ECMO-Ausgangsleitung mit der Venenkanüle und die ECMO-Eingangsleitung mit dem zuvor an der arteriellen Kanüle montierten Dreiwegehahn mit dem geraden Anschluss. Der Dreiwegehahn kann zum Spülen des Systems verwendet werden.Halten Sie die ECMO-Leitungen geklemmt. Befestigen Sie beide Kanülen mit Seidennähten der Größe eins an der Leiste, um eine Verschiebung während des Transfers zu vermeiden. Platzieren Sie eine überwachte Druckleitung in der Kanüle der Arteria femoralis und der linken Arteria radialis des Spenders.Als nächstes leiten Sie die Platzierung des Aortenverschlussballons ein, indem Sie den Abstand zwischen dem Xipoidfortsatz des Spenders und dem distalen Ende der arteriellen Kanüle als Referenz nehmen, um die Länge des Katheters zu bestimmen, der eingeführt werden soll, um die thorakale absteigende Aorta zu erreichen. Setzen Sie eine Referenzmarke in den Ballon mit einer Seidennaht oder einem Marker. Führen Sie eine Metalldrahtführung durch das freie Lumen der Kanüle der Oberschenkelarterie ein.Fahren Sie mit dem Katheter fort, der durch den Metalldraht geführt wird, und führen Sie ihn bis zur angegebenen Markierung ein. Bestätigen Sie die korrekte Position des Okklusionsballons. Überprüfen Sie die korrekte Funktion des Okklusionsballons, indem Sie ihn mit einer 50 Kubikzentimeter großen Kegelspritze vier bis fünf Sekunden lang mit Kochsalzlösung füllen.Bestätigung, dass der arterielle Druck aus der Oberschenkelkanüle verschwindet, während der Druck aus der linken Arteria radialis erhalten bleibt. Um eine mediane Sternotomie durchzuführen, fahren Sie mit einem medianen vertikalen Hautschnitt von der suprasternalen Kerbe bis zur Spitze des Processus xiphoideus fort. Erweitern Sie den Schnitt mit Hilfe der Elektrokauterisation auf die Brustfaszie und das Brustbeinperiost.Durchtrennen Sie das Ligamentum interclavicularis und erzeugen Sie eine Ebene durch Fingerdissektion hinter dem Brustbein, sowohl auf Höhe der suprasternalen Kerbe als auch auf Höhe des Processus xiphoideus. Teilen Sie das Brustbein mit einer elektrischen Säge. Platzieren Sie einen Brustbeinretraktor und öffnen Sie ihn vorsichtig, um den Perikard von der hinteren Oberfläche des Brustbeins zu lösen.Kontrollieren Sie jeden Blutungspunkt mit Elektrokauterisation. Belüften Sie den Spender gleichzeitig mit 100 % Sauerstoff und einem positiven und exspiratorischen Druck von fünf Zentimetern Wasser. Für die Bronchoskopie wird ein flexibles Bronchoskop durch den Endotrachealtubus eingeführt.Öffnen Sie beide Pleurahöhlen durch Längsschnitte in der Pleura mediastinalis. Wenn bei der Untersuchung der supraaortalen Gefäße mit dem Verschlussballon Fehler auftreten, ziehen Sie die linke Lunge medial zurück, um die thorakale Aorta freizulegen und unter direkter Sicht so tief wie möglich einzuklemmen. Untersuchen Sie die Lunge, indem Sie visuelle und palpatorische Beurteilungen durchführen und auf Bullae, Prellungen, Atelektase, Lungenentzündung und okkulte Tumore untersuchen.Geben Sie einen Liter Kochsalzlösung mit vier Grad Celsius in beide Pleurahöhlen. Reduzieren Sie den eingeatmeten Sauerstoffanteil auf 50%Öffnen Sie den Perikard mit einem umgekehrten T-Schnitt. Ziehen Sie die Ränder des Perikards seitlich mit 2-0 Seidennähten zurück, die mit einer Mückenzange auf der Haut befestigt sind, um die Herzstrukturen freizulegen.Platzieren Sie eine 4-0 Polypropylen-Taschenschnurnaht an der Hauptpulmonalarterie unterhalb der Bifurkation. Führen Sie eine Arteriotomie mit einer Klinge mit der Nummer 11 durch und erweitern Sie sie mit einer gebogenen Mückenzange. Kanülieren Sie die Lungenarterie mit einer rechtwinkligen, geraden Kanüle, die am Ende geklemmt wird.Schließen Sie die Kanüle der Pulmonalarterie an die Leitung des Spülsystems an, indem Sie einen geraden Anschluss mit einem Köderverschluss und einem Dreiwegehahn montieren. Schließen Sie das Spülsystem an die Lungenkonservierungslösung an und spülen Sie die Leitungen. Beginnen Sie mit dem Spülen von 50 bis 60 Millilitern Kältekonservierungslösung pro Kilogramm.Spülen Sie 500 Mikrogramm Prostaglandin, verdünnt in 100 Milliliter Kochsalzlösung, gleichzeitig durch den Dreiwegehahn. Öffnen Sie das linke Atrium direkt, um eine freie Entwässerung zu ermöglichen. Wenn Bereiche mit Atelektase gefunden werden, rekrutieren Sie sie mit kurzen inspiratorischen Griffen bei 25 bis 30 Zentimeter Wasserdruck.Sobald die Konservierung abgeschlossen ist, entfernen Sie die Kanüle der Pulmonalarterie und verkünden Sie dem Rest des Teams die Absicht, die Cava-Vene zu klemmen und mit der Herzentfernung zu beginnen. Platzieren Sie eine Kreuzklemme in der unteren Cava-Vene und stellen Sie sicher, dass genügend Stumpf für die Leber vorhanden ist. Ligieren und teilen Sie die untere Cava-Vene mit einem Seidenstrang Nummer drei.Binden und teilen Sie die obere Cava-Vene des Oberschenkels von kaudal bis azygot mit einem Seidenstrang Nummer drei. Befestigen Sie den distalen Stumpf mit einer Klemme. Lassen Sie die Klemmen im Operationsfeld und achten Sie darauf, sie nicht versehentlich zu entfernen, da sonst das ECMO-Gerät und der ARNP beeinträchtigt werden.Schneiden Sie den Rest des Herzens in einer Standardfunktion heraus. Nach der Entfernung des Herzens wird die Lunge nach dem gleichen Verfahren wie bei Hirntodspendern entfernt. Durchtrennen Sie die unteren Pulmonalbänder, öffnen Sie den hinteren Perikard und legen Sie die Speiseröhre frei.Befreien Sie die hinteren mediastinalen Ansätze der Lunge mit einer stumpfen Dissektion, um eine vorsichtige Hämostase zu gewährleisten. Präparieren Sie die Lungenarterien von der Aorta weg. Isolieren Sie die Luftröhre oberhalb der Carina und führen Sie ein TA-Klammergerät herum.Blasen Sie die Lunge auf 50 bis 60 % des Atemzugvolumens auf, bevor Sie den Endotrachealtubus herausziehen und die Luftröhre teilen. Entfernen Sie alle verbleibenden Aufsätze und extrahieren Sie den Lungenblock aus dem Spender. Überprüfen Sie die Brusthöhle sorgfältig, um Blutungsstellen zu erkennen, da ein kontinuierlicher Blutverlust den Pumpenfluss verringern kann.Der Anteil der Patienten mit interstitieller Lungenerkrankung war am höchsten, gefolgt von chronisch obstruktiver Lungenerkrankung und Bronchiektasen. Die meisten Empfänger hatten eine Rauchergeschichte. Nur 16,7 % hatten eine systemische Hypertonie und 10 % einen Diabetes mellitus.Pulmonale Hypertonie lag bei 14 Empfängern vor. Ein Empfänger benötigte intraoperativ extrakorporale lebenserhaltende Maßnahmen während der Operation mit ECMO. Die mediane kalte ischämische Zeit betrug 292,5 Minuten für das erste Transplantat und 405 Minuten für das zweite.Es gab keine intraoperativen Todesfälle. Zwei Empfängerinnen benötigten aufgrund einer primären Transplantatdysfunktion eine postoperative ECMO-Unterstützung. Die mediane Zeit für die postoperative Intubation betrug 24 Stunden.Der Aufenthalt auf der Intensivstation betrug 3,1 Tage und der Krankenhausaufenthalt 18,9 Tage. Eine akute zelluläre Abstoßung in den ersten drei Wochen war bei 12 Empfängern vorhanden. Es gab keine Krankenhausmortalität und das 30-Tage-Überleben betrug 100%.Die wichtigsten Punkte dieser Methode sind prämortale Eingriffe, Kanülierung, Platzierung von Aortenverschlussballons und die Maßnahmen zur Vermeidung von Volumenverlust und Pumpenfluss während des Lungenerhalts und der Lungenbeschaffung.Diese Methode wurde bei pädiatrischen Spendern mit einer erhöhten Transplantatverwertungsrate und einer hervorragenden Überlebensrate der Empfänger angewendet.

lung-rapid-recovery-procurement-combined-with-abdominal-normothermic

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Rand Transplantate, wie Fettleber, Transplantate von älteren Spendern oder Lebern nach Herztod (DCD) abgerufen tolerieren herkömmlichen, Kälte statische Speicher nur schlecht. Wir entwickelten ein neuartiges Modell der subnormothermic ex vivo Perfusion der Leber für die Erhaltung, Bewertung und Instandsetzung von Randlebertransplantationen vor der Transplantation.

Technik der Subnormothermic<em&gt; Ex-vivo-</em&gt; Leberperfusion für die Lagerung, Bewertung, Reparatur von Marginal Lebertransplantate

Wir beschreiben ein Verfahren zur ex vivo-Maschine Perfusion von menschlichen Lebertransplantate in subnormothermic Temperatur (21 ° C).

Funktionale Menschliche Leber Erhaltung und Rückgewinnung mittels Subnormothermic Maschine Perfusion

Dieses Protokoll zeigt einen einfachen und flexiblen Ansatz für die Bewertung neuer Konditionierungsmittel oder Strategien zur Erhöhung der Durchführbarkeit von Herzspenden nach Kreislauftod.

Präklinisches Modell der Herzspende nach Kreislauftod

Das Protokoll beschreibt ein Großtiermodell der Spende nach Kreislauftod, gefolgt von einer thorakoabdominalen normothermen regionalen Perfusion, die das klinische Szenario bei Herztransplantationen genau simuliert und das Potenzial hat, therapeutische Studien und Strategien zu erleichtern.

Großtiermodell der Spende nach Kreislauftod und normothermer regionaler Perfusion zur kardialen Beurteilung

In diesem Protokoll wird ein Modell der porcinen orthotopen Lebertransplantation nach statischer Kältelagerung von Spenderorganen für 20 h ohne Verwendung eines veno-venösen Bypasses während der Anpflanzung beschrieben. Der Ansatz verwendet eine vereinfachte Operationstechnik mit Minimierung der anhepatischen Phase und ausgefeiltem Volumen- und Vasopressormanagement.

Schweinelebertransplantation ohne veno-venösen Bypass als erweitertes Kriterien-Spendermodell

In dieser Arbeit stellen wir ein Bewertungsprotokoll eines heterotopisch implantierten Herzens nach normothermer ex situ Konservierung im Rattenmodell vor.

Rattenmodell der normothermischen Ex-situ-perfundierten heterotopen Herztransplantation

Dieses Protokoll beschreibt die Methodik zur Etablierung eines Schweinemodells unter Verwendung einer variablen temperaturgesteuerten maschinellen Perfusion (MP) zur Erhaltung der Spenderleber, gefolgt von einer orthotopen Lebertransplantation (OLTx). Ziel ist es, die Erfolgsrate von OLTx mittels Spenderspende nach Kreislauftod (DCD) Leber zu fördern und ein stabiles Modell zu etablieren.

Erhalt der Schweinespendeleber nach zirkulatorischem Tod (DCD) durch Perfusion und orthotope Lebertransplantation

Das Ziel ist es, ein neues ex vivo Lungenperfusionsmodell (EVLP) an Ratten zu entwickeln, das eine konsistente Lungenfunktion für 4 Stunden während der gesamten EVLP aufrechterhalten kann und der Industrie Implementierungsspezifikationen liefert, die eine robuste Methode zur Anwendung von EVLP auf Nagetiermodelle bieten.

Etablierung eines neuartigen ex vivo Lungenperfusionssystems für Rattenlungen nach Kreislauftod

Das Protokoll beschreibt hier ein High-Fidelity-Schweinemodell der Herztransplantation nach Spende nach Kreislauftod unter Verwendung einer ex vivo-Perfusion des Allotransplantats.

Ein High-Fidelity-Schweinemodell der orthotopen Herztransplantation nach Spende nach Kreislauftod

Dieses Protokoll stellt ein ex-vivo-Lungenperfusionsmodell von Ratten vor, das eine vorübergehende Exposition gegenüber einer kalibrierten thermischen Belastung beinhaltet und endogene Schutzmechanismen für die therapeutische Rekonditionierung geschädigter Lungentransplantate fördert. Der Ansatz ist skalierbar und reproduzierbar und unterstützt die Entwicklung nicht-medikamentöser Therapien zur Verbesserung des Erfolgs von Lungentransplantationen.

Thermische Präkonditionierung bei der ex-vivo Lungenperfusion zur Rehabilitation geschädigter Lungentransplantate vor der Transplantation

Erfahren Sie eine Lungenkühlungsmethode mit abdomineller normothermer regionaler Perfusion zur Organentnahme bei kontrolliertem Kreislauftod. Diese Technik erweitert den Spenderpool sicher und minimiert ischämische Schäden.

Schnelle Genesung der Lunge in Kombination mit abdominaler normothermer regionaler Perfusion bei kontrollierter Spende nach Kreislauftod (Video) | JoVE Journal

Schnelle Genesung der Lunge in Kombination mit abdominaler normothermer regionaler Perfusion bei kontrollierter Spende nach Kreislauftod

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