Name: Messung der Thermogenese der Skelettmuskulatur bei Mäusen und Ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-07-27T14:40:00.000+00:00
Duration: 7 min 56 s
Description: Erfahren Sie die Messung der Skelettmuskelthermogenese bei Mäusen und Ratten mit minimalinvasiven Fernmesstranspondern. Diese kostengünstige Methode ermöglicht parallele Tests mehrerer Tiere unter pharmakologischer Stimulation.

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Diese Arbeit wird von R15 DK097644 und R15 DK108668 unterstützt. Wir danken Dr. Chaitanya K Gavini und Dr. Megan Rich für frühere Beiträge und Dr. Stanley Dannemiller für die Sicherstellung der Einhaltung der institutionellen Tierverwendungsrichtlinien. Ein besonderer Dank geht an Dr. Tim Bartness für die Bereitstellung der Grundlagenforschung, die notwendig ist, um diese Methode und die damit verbundenen Studien zu entwickeln. Die Abbildungen 1A, C, D und Abbildung 2A wurden mit Biorender.com erstellt.

<ol><li>Periasamy, M., Herrera, J. L., Reis, F. C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skeletal+muscle+thermogenesis+and+its+role+in+whole+body+energy+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Metabolism+Journal%22%5BJournal%5D)">Skeletal muscle thermogenesis and its role in whole body energy metabolism.</a> Diabetes Metabolism Journal. 41 (5), 327-336 (2017).</li>
<li>Rowland, L. A., Bal, N. C., Periasamy, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+skeletal-muscle-based+thermogenic+mechanisms+in+vertebrate+endothermy%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Reviews+of+the+Cambridge+Philosophical+Society%22%5BJournal%5D)">The role of skeletal-muscle-based thermogenic mechanisms in vertebrate endothermy.</a> Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society. 90 (4), 1279-1297 (2015).</li>
<li>Maurya, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sarcolipin+is+a+key+determinant+of+the+basal+metabolic+rate%2C+and+its+overexpression+enhances+energy+expenditure+and+resistance+against+diet-induced+obesity%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Sarcolipin is a key determinant of the basal metabolic rate, and its overexpression enhances energy expenditure and resistance against diet-induced obesity.</a> Journal of Biological Chemistry. 290 (17), 10840-10849 (2015).</li>
<li>Grigg, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-body+endothermy%3A+Ancient%2C+homologous+and+widespread+among+the+ancestors+of+mammals%2C+birds+and+crocodylians%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Reviews+of+the+Cambridge+Philosophical+Society%22%5BJournal%5D)">Whole-body endothermy: Ancient, homologous and widespread among the ancestors of mammals, birds and crocodylians.</a> Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society. 97 (2), 766-801 (2022).</li>
<li>Franck, J. P. C., Slight-Simcoe, E., Wegner, N. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothermy+in+the+smalleye+opah+%28Lampris+incognitus%29%3A+A+potential+role+for+the+uncoupling+protein+sarcolipin%5BTitle%5D)+AND+%22Comparative+Biochemistry+and+Physiology+-+Part+A%3A+Molecular+%26+Integrative+Physiology%22%5BJournal%5D)">Endothermy in the smalleye opah (Lampris incognitus): A potential role for the uncoupling protein sarcolipin.</a> Comparative Biochemistry and Physiology - Part A: Molecular & Integrative Physiology. 233, 48-52 (2019).</li>
<li>Nowack, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+nonshivering+thermogenesis+in+a+feral+mammal%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Muscle nonshivering thermogenesis in a feral mammal.</a> Scientific Reports. 9, 6378(2019).</li>
<li>Oliver, S. R., Anderson, K. J., Hunstiger, M. M., Andrews, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Turning+down+the+heat%3A+Down-regulation+of+sarcolipin+in+a+hibernating+mammal%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience+Letters%22%5BJournal%5D)">Turning down the heat: Down-regulation of sarcolipin in a hibernating mammal.</a> Neuroscience Letters. 696, 13-19 (2019).</li>
<li>Gorrell, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skeletal+muscle+thermogenesis+induction+by+exposure+to+predator+odor%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Skeletal muscle thermogenesis induction by exposure to predator odor.</a> The Journal of Experimental Biology. 223, Pt 8 (2020).</li>
<li>Gavini, C. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leanness+and+heightened+nonresting+energy+expenditure%3A+Role+of+skeletal+muscle+activity+thermogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Physiology+-+Endocrinology+and+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Leanness and heightened nonresting energy expenditure: Role of skeletal muscle activity thermogenesis.</a> The American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. 306 (6), 635-647 (2014).</li>
<li>Almundarij, T. I., Gavini, C. K., Novak, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suppressed+sympathetic+outflow+to+skeletal+muscle%2C+muscle+thermogenesis%2C+and+activity+energy+expenditure+with+calorie+restriction%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reports%22%5BJournal%5D)">Suppressed sympathetic outflow to skeletal muscle, muscle thermogenesis, and activity energy expenditure with calorie restriction.</a> Physiological Reports. 5 (4), 13171(2017).</li>
<li>Harshaw, C., Lanzkowsky, J., Tran, A. D., Bradley, A. R., Jaime, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxytocin+and+%27social+hyperthermia%27%3A+Interaction+with+beta3-adrenergic+receptor-mediated+thermogenesis+and+significance+for+the+expression+of+social+behavior+in+male+and+female+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Hormones+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Oxytocin and 'social hyperthermia': Interaction with beta3-adrenergic receptor-mediated thermogenesis and significance for the expression of social behavior in male and female mice.</a> Hormones and Behavior. 131, 104981(2021).</li>
<li>Caldwell, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxytocin+and+vasopressin%3A+Powerful+regulators+of+social+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22The+Neuroscientist%22%5BJournal%5D)">Oxytocin and vasopressin: Powerful regulators of social behavior.</a> The Neuroscientist. 23 (5), 517-528 (2017).</li>
<li>Harshaw, C., Leffel, J. K., Alberts, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxytocin+and+the+warm+outer+glow%3A+Thermoregulatory+deficits+cause+huddling+abnormalities+in+oxytocin-deficient+mouse+pups%5BTitle%5D)+AND+%22Hormones+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Oxytocin and the warm outer glow: Thermoregulatory deficits cause huddling abnormalities in oxytocin-deficient mouse pups.</a> Hormones and Behavior. 98, 145-158 (2018).</li>
<li>Gavini, C. K., Britton, S. L., Koch, L. G., Novak, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inherently+lean+rats+have+enhanced+activity+and+skeletal+muscle+response+to+central+melanocortin+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Obesity%22%5BJournal%5D)">Inherently lean rats have enhanced activity and skeletal muscle response to central melanocortin receptors.</a> Obesity. 26 (5), 885-894 (2018).</li>
<li>Gavini, C. K., Jones, W. C., Novak, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventromedial+hypothalamic+melanocortin+receptor+activation%3A+regulation+of+activity+energy+expenditure+and+skeletal+muscle+thermogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Ventromedial hypothalamic melanocortin receptor activation: regulation of activity energy expenditure and skeletal muscle thermogenesis.</a> The Journal of Physiology. 594 (18), 5285-5301 (2016).</li>
<li>Zaretsky, D. V., Romanovsky, A. A., Zaretskaia, M. V., Molkov, Y. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+oxidative+metabolism+can+increase+the+difference+between+local+temperature+and+arterial+blood+temperature+by+up+to+1.3%28o%29C%3A+Implications+for+brain%2C+brown+adipose+tissue%2C+and+muscle+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Temperature%22%5BJournal%5D)">Tissue oxidative metabolism can increase the difference between local temperature and arterial blood temperature by up to 1.3(o)C: Implications for brain, brown adipose tissue, and muscle physiology.</a> Temperature. 5 (1), 22-35 (2018).</li>
<li>Yoo, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+activates+compensatory+thermoregulatory+reaction+in+rats%3A+A+modeling+study%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Exercise activates compensatory thermoregulatory reaction in rats: A modeling study.</a> Journal of Applied Physiology. 119 (12), 1400-1410 (2015).</li>
<li>Langer, F., Fietz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ways+to+measure+body+temperature+in+the+field%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Thermal+Biology%22%5BJournal%5D)">Ways to measure body temperature in the field.</a> Journal of Thermal Biology. 42, 46-51 (2014).</li>
<li>Pence, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+apolipoprotein+A-IV+stimulates+thermogenesis+in+brown+adipose+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Central apolipoprotein A-IV stimulates thermogenesis in brown adipose tissue.</a> International Journal of Molecular Sciences. 22 (3), 1221(2021).</li>
<li>Li, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Homeostatic+disturbance+of+thermoregulatory+functions+in+rats+with+chronic+fatigue%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Research%22%5BJournal%5D)">Homeostatic disturbance of thermoregulatory functions in rats with chronic fatigue.</a> Journal of Neuroscience Research. 165, 45-50 (2021).</li>
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<li>Koganti, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+KATP+channel+expression+in+skeletal+muscle+by+targeted+oligonucleotide+delivery+promotes+activity-linked+thermogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy%22%5BJournal%5D)">Disruption of KATP channel expression in skeletal muscle by targeted oligonucleotide delivery promotes activity-linked thermogenesis.</a> Molecular Therapy. 23 (4), 707-716 (2015).</li>
<li>Bal, N. C., Periasamy, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uncoupling+of+sarcoendoplasmic+reticulum+calcium+ATPase+pump+activity+by+sarcolipin+as+the+basis+for+muscle+non-shivering+thermogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Philosophical+Transactions+of+the+Royal+Society+B%22%5BJournal%5D)">Uncoupling of sarcoendoplasmic reticulum calcium ATPase pump activity by sarcolipin as the basis for muscle non-shivering thermogenesis.</a> Philosophical Transactions of the Royal Society B. 375 (1793), 20190135(2020).</li>
<li>Hicks, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Body+temperature+and+cardiac+changes+induced+by+peripherally+administered+oxytocin%2C+vasopressin+and+the+non-peptide+oxytocin+receptor+agonist+WAY+267%2C464%3A+a+biotelemetry+study+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Body temperature and cardiac changes induced by peripherally administered oxytocin, vasopressin and the non-peptide oxytocin receptor agonist WAY 267,464: a biotelemetry study in rats.</a> British Journal of Pharmacology. 171 (11), 2868-2887 (2014).</li>
<li>Kasahara, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxytocin+receptor+in+the+hypothalamus+is+sufficient+to+rescue+normal+thermoregulatory+function+in+male+oxytocin+receptor+knockout+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Oxytocin receptor in the hypothalamus is sufficient to rescue normal thermoregulatory function in male oxytocin receptor knockout mice.</a> Endocrinology. 154 (11), 4305-4315 (2013).</li>
<li>Kasahara, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+the+oxytocin+receptor+expressed+in+the+rostral+medullary+raphe+in+thermoregulation+during+cold+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Role of the oxytocin receptor expressed in the rostral medullary raphe in thermoregulation during cold conditions.</a> Frontiers in Endocrinology. 6, 180(2015).</li>
<li>Yuan, J., Zhang, R., Wu, R., Gu, Y., Lu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+oxytocin+to+rectify+metabolic+dysfunction+in+obese+mice+are+associated+with+increased+thermogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">The effects of oxytocin to rectify metabolic dysfunction in obese mice are associated with increased thermogenesis.</a> Molecular and Cellular Endocrinology. 514, 110903(2020).</li>
<li>Scholl, J. L., Afzal, A., Fox, L. C., Watt, M. J., Forster, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sex+differences+in+anxiety-like+behaviors+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Physiology+%26+Behavior%22%5BJournal%5D)">Sex differences in anxiety-like behaviors in rats.</a> Physiology & Behavior. 211, 112670(2019).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine Interessenkonflikte haben.

Dieses Temperaturtestprotokoll bietet dem Feld eine Möglichkeit, die Thermogenese der Skelettmuskulatur direkt zu messen. Dies ist von entscheidender Bedeutung, da sich die Forschung mit der Identifizierung der Mechanismen befasst, die der Muskelthermogenese zugrunde liegen33. Die Methode bietet zwei kostengünstige Protokolle zur Messung der Thermogenese der Skelettmuskulatur unter kontextuellen und pharmakologischen Bedingungen. Dieses Protokoll betont die Bedeutung sowohl der Gewöhnung als auch ...

Innerhalb der Stoffwechselforschung ist die Untersuchung der Thermogenese der Skelettmuskulatur ein vielversprechender neuer Weg, um die Homöostase des Körpergewichts zu untersuchen. Die veröffentlichte Literatur unterstützt die Idee, dass die thermogenen Reaktionen eines der größten Organsysteme des Körpers - der Skelettmuskulatur - einen Weg zur Erhöhung des Energieverbrauchs und anderer metabolischer Effekte bieten, wodurch Systeme innerhalb von Krankheiten wie Fettleibigkeit effektiv wieder ins Gleichgewicht gebrachtwerden 1,2,3. Wenn der Muskel als thermogenes Organ betrachtet werden kann, müssen Studien eine praktische Methodik verwenden, um thermogene Veränderungen innerhalb dieses Organs zu untersuchen. Der Wunsch, die endothermen Auswirkungen der Skelettmuskulatur zu verstehen, und der Nutzen dieser Methodik zur Untersuchung der Thermogenese nicht zitternder Muskeln sind nicht spezifisch für metabolische Studien. Disziplinen wie Evolution4, vergleichende Physiologie5 und Ökophysiologie6,7 haben ein persönliches Interesse daran gezeigt, zu verstehen, wie die Muskelthermogenese zur Endothermie beitragen kann und wie sich dieser Mechanismus an die Umwelt anpasst. Das vorgestellte Protokoll bietet die kritischen Methoden, die zur Beantwortung dieser Fragen erforderlich sind.
Die bereitgestellte Methode kann bei der Bewertung der kontextuellen und pharmakologischen Stimulimodulation der Muskeltemperatur verwendet werden, einschließlich der einzigartigen Technik der Bereitstellung von Raubtiergeruch (PO), um den Kontext zu verschieben, um die Bedrohung durch Raubtiere zu replizieren. Frühere Berichte haben die Fähigkeit von PO gezeigt, schnell einen beträchtlichen Anstieg der Muskelthermogenese zu induzieren8. Darüber hinaus können pharmakologische Reize auch die Muskeltemperatur verändern. Dies wurde im Zusammenhang mit der PO-induzierten Muskelthermogenese gezeigt, bei der die pharmakologische Blockade peripherer β-adrenerger Rezeptoren unter Verwendung von Nadolol die Fähigkeit von PO hemmte, die Muskelthermogenese zu induzieren, ohne die kontraktile Thermogenese während des Laufbandgehens signifikant zu beeinflussen8. Die zentrale Verabreichung von Melanocortin-Rezeptor-Agonisten bei Ratten wurde auch verwendet, um Gehirnmechanismen zu erkennen, die die Thermogenese verändern 9,10.
Hier ist eine vorläufige Untersuchung der Fähigkeit des Neurohormons Oxytocin (Oxt), die Muskelthermogenese bei Mäusen zu verändern. Ähnlich wie bei der Bedrohung durch Raubtiere erhöhen soziale Begegnungen mit einem gleichgeschlechtlichen Artgenossen die Körpertemperatur, ein Phänomen, das als soziale Hyperthermie bezeichnetwird 11. Angesichts der Relevanz von Oxt für das Sozialverhalten12 wurde spekuliert, dass Oxt ein Vermittler der sozialen Hyperthermie bei Mäusen ist. Tatsächlich verringert ein Oxytocin-Rezeptor-Antagonist die soziale Hyperthermie bei Mäusen11, und Mäusewelpen, denen Oxt fehlt, zeigen Defizite in Verhaltens- und physiologischen Aspekten der Thermoregulation, einschließlich Thermogenese13. Angesichts der Tatsache, dass Harshaw et al. (2021) keine Beweise für die β3-adrenerge rezeptorabhängige Thermogenese des braunen Fettgewebes (BAT) mit sozialer Hyperthermie11 gefunden haben, wurde postuliert, dass soziale Hyperthermie durch Oxts Induktion der Muskelthermogenese angetrieben werden könnte.
Um die Thermogenese der Skelettmuskulatur zu messen, verwendet das folgende Protokoll die Implantation von vorprogrammierten IPTT-300-Transpondern neben dem interessierenden Muskel innerhalb einer Maus oder Ratte 8,10,14,15. Bei diesen Transpondern handelt es sich um glasgekapselte Mikrochips, die mit entsprechenden Transponderlesern ausgelesen werden. Wenig bis gar keine Forschung hat diese Technologie in dieser Eigenschaft eingesetzt, obwohl Studien auf die Notwendigkeit der Spezifität dieser Methode hindeuten16,17. Frühere Untersuchungen haben die Zuverlässigkeit dieses Verfahrens und eine Vielzahl von Möglichkeiten gezeigt, wie Temperaturtransponder im Vergleich zu anderen Temperaturprüfverfahren18 oder in Verbindung mit chirurgischen Verfahren (z. B. Kanülierung19) verwendet werden können. Studien dieser Art stützen sich jedoch auf verschiedene strategische Platzierungen, um die Gesamtkörpertemperatur20,21,22 oder spezifizierte Gewebe wie BAT23,24,25 zu messen.
Anstatt die Temperatur von diesen Stellen oder unter Verwendung von Ohr- oder Rektalthermometern26 zu messen, bietet das hier beschriebene Verfahren Spezifität für den interessierenden Muskel. Die Fähigkeit, eine Stelle durch direkte Implantation von Transpondern in der Nähe der interessierenden Muskeln anzugreifen, ist effektiver, um die Muskelthermogenese gezielt zu untersuchen. Es bietet einen neuen Weg zusätzlich zu denen, die die Oberflächeninfrarot-Thermometrie 27,28 oder die Hauttemperaturmessungen über Thermoelement 29 bieten. Darüber hinaus bieten die durch diese Methode gelieferten Daten eine Reihe von Forschungsmöglichkeiten, wodurch die Notwendigkeit großer, teurer High-Tech-Geräte und Software wie Infrarot-Thermografie 30,31,32 vermieden wird.
Diese Methode wurde erfolgreich verwendet, um die Temperatur im Quadrizeps und Gastrocnemius entweder einseitig oder bilateral zu messen. Diese Methode hat sich auch in Verbindung mit der stereotaktischen Chirurgie als wirksam erwiesen14,15. Innerhalb von ~7-10 cm des Transpondergliedes werden tragbare Transponderleser (DAS-8027/DAS-7007R) zum Scannen, Messen und Anzeigen der Temperatur verwendet. Dieser Abstand war für frühere Untersuchungen kritisch und wertvoll 8,9,10, da er potenzielle Stressoren und temperaturverändernde Variablen wie den Umgang mit Tieren während der Testverfahren minimiert. Mithilfe von Zeitschaltuhren können dann Messungen aufgezeichnet und über einen längeren Zeitraum ohne direkte Interaktion mit den Tieren gesammelt werden.
Um die Störung von Mäusen während des Tests weiter zu minimieren, beschreibt diese Methode die Montage und Verwendung von Steigleitungen aus PVC-Rohrleitungen, um dem Experimentator während der Prüfung Zugang zum Boden der Heimkäfige zu geben. Mit den Tragegurten in Verbindung mit dem digitalen Lesegerät können Temperaturmessungen der Transpondergliedmaße ohne tierische Interaktion nach dem Setzen des Stimulus durchgeführt werden. Zu minimalen Kosten kann diese Methode in Verbindung mit pharmakologischen und kontextuellen Stimuli verwendet werden, was sie für Forscher leicht zugänglich macht. Darüber hinaus kann diese Methode mit einer beträchtlichen Anzahl von Probanden (~ 16 Mäuse oder ~ 12 Ratten) gleichzeitig angewendet werden, was Zeit spart, um den Gesamtdurchsatz für jedes Forschungsprojekt zu erhöhen.
Bei dieser Methode wird ein handgefertigter Mechanismus zur Darstellung von Gerüchen an Mäuse mit Edelstahl-Mesh-Tee-Infuser-Bällen eingeführt, die von nun an als "Teekugeln" bezeichnet werden. Obwohl diese Teebällchen ideal sind, um Geruchsmaterial zu enthalten, werden in diesen Studien Handtücher, die über 2-3 Wochen als Einstreu im Käfig für Frettchen, ein natürliches Raubtier von Mäusen und Ratten, dienten, in jede Behandlung Teeball gelegt. Jedes Handtuch wird in Quadrate von 5 cm x 5 cm geschnitten. Diese Aliquotierung wiederholt sich auch bei ansonsten identischen geruchlosen Kontrolltüchern. Die Präsentation dieser Gerüche ohne Barriere (z. B. Teeball) führte dazu, dass Mäuse die Fasern in ihren Käfigen zerkleinerten und die körperliche Aktivität erhöhten. Dieses Verhalten war bei Ratten nicht so auffällig. Teekugeln bieten eine belüftete Hülle für das Handtuch, die vollen Zugang zum Geruch bietet, während sie für die gesamte experimentelle Studie geschützt bleiben. Diese Teebällchen können in Übereinstimmung mit den Tierverwendungsprotokollen desinfiziert, vorbereitet und direkt nach der Operation eingeführt werden, um die Tiere zusammen mit dem Kontrollreiz an die Struktur zu gewöhnen. Mäuse können dann mit der zusätzlichen Bereicherung leben, wodurch die Bedeutung der akuten Reizpräsentation verringert wird.
Die Gewöhnung an das Vorhandensein des Teeballs ist nur ein Aspekt der Gewöhnung, der für diese Methode entscheidend ist. Das beschriebene Gewöhnungsprotokoll besteht auch aus wiederholter Exposition gegenüber dem Testverfahren, um die Testumgebung zu normalisieren (d.h. Personal, Transport und Bewegung zum Testort, Exposition gegenüber Reizen). Diese erweiterte Gewöhnung minimiert nuancierte Reaktionen der Tiere und fokussiert die Messungen auf die gewünschten abhängigen Variablen (z. B. pharmakologische oder kontextuelle Reize). Frühere Bewertungen dieses Protokolls haben vier Studien als die Mindestanzahl von Gewöhnungen identifiziert, die vor Temperaturtests in Heimkäfigen bei Ratten erforderlich sind8. Wenn die Prüfung durch lange Zeiträume (mehr als 2-3 Wochen) getrennt ist, müssen die Tiere wieder gewöhnt werden. Bei wiederholter Gewöhnung sind mindestens ein bis zwei Versuche ausreichend. Wenn Temperaturtests jedoch durch längere Zeitabschnitte getrennt werden, kann eine Wiederholung weiterer Versuche erforderlich sein.
In den fortgesetzten Bemühungen, Mäuse und Ratten an das Testverfahren zu gewöhnen, sollte in jeder experimentellen Studie eine Akklimatisierungsphase vor der Präsentation des Stimulus enthalten sein. Diese Akklimatisierungszeit ist entscheidend, um Temperatur und Aktivität nach der Verlagerung an den Testort wieder ins Gleichgewicht zu bringen. Nagetiere neigen dazu, aufgrund von Translokation stark zu temperaturerhöhungen. Die Akklimatisierung sollte aus mindestens 1 h ohne Interaktion des Experimentators am Testtag bestehen, bevor ein pharmakologischer Wirkstoff oder kontextuelle Stimuli hinzugefügt werden. Dies ist an jedem Testtag notwendig.
In den skizzierten Hauskäfig-Temperaturtests haben Mäuse die freie Reichweite ihres Heimkäfigs, um sich als Reaktion auf den getesteten Reiz zu bewegen. Dies kann zu variablen Aktivitätsverschiebungen führen, die sich auf die Genauigkeit der Temperaturmessungen und damit auf die Analyse der thermogenen Effekte der unabhängigen Variablen (z. B. pharmakologischer oder kontextueller Stimulus) auswirken. In Anerkennung der möglichen Temperaturänderungen aufgrund des Aktivitätsniveaus ist unten ein Protokoll enthalten, das die Verwendung der Temperatur während des Laufbandgehens beschreibt. Die veröffentlichte Literatur beschreibt den erfolgreichen Einsatz dieses Verfahrens bei Ratten, und es wird derzeit mit Mäusen 8,10,14,15 angewendet. Das Laufband hält eine konstante Aktivitätsgeschwindigkeit für die Testperson aufrecht. Für diese Studie werden Laufbänder ausschließlich zur Kontrolle des Aktivitätsniveaus verwendet und daher auf die niedrigste verfügbare Geschwindigkeit auf dem Laufband eingestellt, um das Gehen für Mäuse und eine ähnlich niedrige Einstellung für Ratten zu fördern.
Das folgende Verfahren wird für die Temperaturmessung von einseitigem Gastrocnemius bei Mäusen und Raubtiergeruch beschrieben. Das Design kann in Verbindung mit pharmakologischen Wirkstoffen verwendet werden und ist auf Ratten und andere Skelettmuskelgruppen (z. B. Quadrizeps) in Mäusen übertragbar. Bei Ratten können Transponder bilateral im Gastrocnemius und im braunen Fettgewebe platziert werden. Aufgrund von Größen- und Entfernungsbeschränkungen kann nur ein Transponder pro Maus verwendet werden. Geringfügige Modifikationen (z. B. die Entfernung kontextueller Reize) können vorgenommen werden, um thermogene Reaktionen auf pharmakologische Wirkstoffe zu beurteilen.

<table><tbody><tr><td>1012M-2 Modulares geschlossenes Stoffwechsel-Laufband für Mäuse, 2 Bahnen mit Shock</td><td>Columbus Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1012R-2 Modulares geschlossenes Stoffwechsel-Laufband für Ratten, 2 Bahnen mit Shock</td><td>Columbus Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1-1/4 Zoll Ratschen-PVC-Cutter</td><td>BrassCraft</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mL Spritzen</td><td>Fisher Scientific</td><td>BD 309659</td><td></td></tr><tr><td>Betadine Tupfer</td><td>Fisher Scientific</td><td>19-898-945</td><td></td></tr><tr><td>Booster Coil</td><td>BioMedic Data Systems</td><td></td><td>Transponder Zubehör</td></tr><tr><td>Elektrische Clippers</td><td>Andis</td><td></td><td>40 Ultraedge Clipper Blade</td></tr><tr><td>Flexible Spiegelfolien</td><td>Amazon</td><td></td><td>Selbstklebende Spiegelfliesen ohne Glas</td></tr><tr><td>Pinzette</td><td>Fisher Scientific</td><td>89259-940</td><td></td></tr><tr><td>Heizkissen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Induktionskammer (Isofluran)</td><td>Kent Scientific</td><td>VetFlo-0730</td><td>3,0 l kostengünstige Kammern für herkömmliche Verdampfer</td></tr><tr><td>Ketoprophen</td><td>Med-Vet Intl.</td><td>RXKETO-50</td><td></td></tr><tr><td>Magnetstreifen</td><td>Amazon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Magnete</td><td>Amazon</td><td></td><td>DIYMAG Magnethaken 40lbs</td></tr><tr><td>Nadeln</td><td>Med-Vet Intl.</td><td>26400</td><td></td></tr><tr><td>Neomycin/Polymixin/Bacitracin mit Hydrocortison Augensalbe, 3,5 g</td><td>Med-Vet Intl.</td><td>RXNPB-HC</td><td></td></tr><tr><td>Oasis Resorbierbares Nahtmaterial</td><td>Med-Vet Intl.</td><td>MV-H821-V</td><td></td></tr><tr><td>Predator (Frettchen) Geruchshandtücher</td><td>Marshall BioResources</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PVC-Rohr</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Reflex Wound Clip Remover</td><td>CellPoint Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Reflex Wound Clip, 7 mm (Maus)</td><td>CellPoint Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Reflex Wound Clip, 9 mm (Ratte)</td><td>CellPoint Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Srerile Autoclip, 7 mm (Maus)</td><td>CellPoint Scientific</td><td></td><td>Wund-Clip-Applikator (Maus)</td></tr><tr><td>Rostfreie Siebe Intervallgewürze Tee-Ei</td><td>Amazon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steriler Autoclip, 9 mm (Ratte)</td><td>CellPoint Scientific</td><td></td><td>Wund-Clip-Applikator (Ratte)</td></tr><tr><td>Sterile Kochsalzlösung</td><td>Med-Vet Intl.</td><td>RX0.9NACL-10</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Schere</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-951-5</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Laken</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Handtücher (Kontrolle/Gewöhnung)</td><td>Amazon</td><td></td><td>100% Baumwolle Handtücher, weiß</td></tr><tr><td>Transponder</td><td>BioMedic Data Systems</td><td></td><td>Modell: IPTT-300</td></tr><tr><td>Transponder Reader</td><td>BioMedic Data Systems</td><td></td><td>Modell: DAS-8027-IUS/ DAS-7007R</td></tr><tr><td>Versaclean</td><td>Fisher Scientific</td><td>18-200-700</td><td>Flüssigwaschmittel</td></tr><tr><td>Webcol Alcohol Preps</td><td>Covidien</td><td>22-246-073&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Keilstücke für PVC-Rohre</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

messung der thermogenese der skelettmuskulatur bei mäusen und ratten

Measuring Skeletal Muscle Thermogenesis in Mice and Rats

Die Thermogenese der Skelettmuskulatur bietet einen möglichen Weg, um die metabolische Homöostase und die Mechanismen, die dem Energieverbrauch zugrunde liegen, besser zu verstehen. Es gibt überraschend wenig Beweise, um die neuronalen, myozellulären und molekularen Mechanismen der Thermogenese direkt mit messbaren Veränderungen der Muskeltemperatur in Verbindung zu bringen. Dieser Artikel beschreibt eine Methode, bei der Temperaturtransponder verwendet werden, um direkte Messungen der Skelettmuskeltemperatur von Maus und Ratte abzurufen.
Remote-Transponder werden chirurgisch in den Muskel von Mäusen und Ratten implantiert, und die Tiere erhalten Zeit, sich zu erholen. Mäuse und Ratten müssen dann wiederholt an die Testumgebung und das Testverfahren gewöhnt werden. Veränderungen der Muskeltemperatur werden als Reaktion auf pharmakologische oder kontextuelle Reize im heimischen Käfig gemessen. Die Muskeltemperatur kann auch während der vorgeschriebenen körperlichen Aktivität (d. H. Laufbandlaufen mit konstanter Geschwindigkeit) gemessen werden, um Veränderungen der Aktivität als Beitrag zu den durch diese Reize induzierten Veränderungen der Muskeltemperatur auszuschließen.
Diese Methode wurde erfolgreich eingesetzt, um Mechanismen aufzuklären, die der thermogenen Muskelkontrolle auf der Ebene des Gehirns, des sympathischen Nervensystems und der Skelettmuskulatur zugrunde liegen. Bereitgestellt werden Demonstrationen dieses Erfolgs mit Raubtiergeruch (PO; Frettchengeruch) als kontextueller Stimulus und Injektionen von Oxytocin (Oxt) als pharmakologischer Stimulus, wobei Raubtiergeruch die Muskelthermogenese induziert und Oxt die Muskeltemperatur unterdrückt. Somit zeigen diese Datensätze die Wirksamkeit dieser Methode bei der Erkennung schneller Änderungen der Muskeltemperatur.

Transponder wurden einseitig in den rechten Gastrocnemius von zehn 4-6 Monate alten Wildtyp-Mäusen (WT) implantiert, die aus dem SF1-Cre-Stamm gezüchtet wurden (Tg(Nr5a1-cre)7Lowl/J, Stamm #012462, C57BL/6J und FVB-Hintergrund; weiblich N = 5; männlich N = 5). Nach der Genesung wurden die Mäuse an ein Temperaturtestverfahren für den heimischen Käfig gewöhnt, das keinen kontextuellen Reiz (z. B. PO) beinhaltete. Temperaturmessungen mit einem Transponderstab wurden in ihrem Wohnraum und nach der Übergabe an den Prüfort auf...

Mäuse und Ratten werden chirurgisch mit Remote-Temperaturtranspondern implantiert und dann an die Testumgebung und das Testverfahren gewöhnt. Veränderungen der Muskeltemperatur werden als Reaktion auf pharmakologische oder kontextuelle Reize im häuslichen Käfig oder während vorgeschriebener körperlicher Aktivität (z. B. Laufbandlaufen mit konstanter Geschwindigkeit) gemessen.

Messung der Thermogenese der Skelettmuskulatur bei Mäusen und Ratten

Skeletal muscle thermogenesis provides a potential avenue for better understanding metabolic homeostasis and the mechanisms underlying energy expenditure. ...

Dieses Protokoll ist von Bedeutung, da es eine direkte und kostengünstige Methode zur Messung der Skelettmuskeltemperatur bietet. Darüber hinaus kann es in verschiedenen Kontexten und unter der Stimulation von pharmakologischen Wirkstoffen verwendet werden. Der Hauptvorteil dieser Technik ist die Anzahl der Tiere, die gleichzeitig getestet werden können.Die hier beschriebene minimale Tierstörung vermeidet High-Tech-Methoden wie Infrarot-Thermographie. Einzelpersonen können Schwierigkeiten haben, die Temperatur der Tiere im Hauskäfig oder auf Laufbändern während der Bewegung zu messen. Dies kann durch das Üben von Messtechniken während der Gewöhnungsversuche gemildert werden.Beginnen Sie mit dem Erwärmen der beiliegenden Transponder zwischen den behandschuhten Händen und achten Sie bei der Arbeit mit Transpondern auf Sterilität. Messen Sie die Temperatur mit einem Temperaturscanner und prüfen Sie, ob der Transponder die Temperaturänderungen liest. Nach der Betäubung der Maus, wie im Manuskript beschrieben, verwenden Sie eine chirurgische Schere, um einen flachen Schnitt durch die Haut an der rechten Hinterbein zu machen.Legen Sie die scharfe Kante eines vorprogrammierten und ungedeckelten sterilen Transponders parallel zum Gastrocnemius in den Einschnitt. Stellen Sie sicher, dass der grüne Kolben nach oben zeigt und sichtbar ist. Schieben Sie den Transponderapplikator so lange in den Einschnitt, bis die Öffnung des Transponderapplikators nicht mehr sichtbar ist.Drehen Sie den Applikator um 180 Grad, so dass der grüne Kolben nach unten zum Glied der Maus zeigt und für den Experimentator nicht mehr sichtbar ist. Sobald der Transponderapplikator neben dem Gastrocnemius platziert oder teilweise eingeschlossen ist, drücken Sie den grünen Kolben, so dass der Druck des Applikators die Hand des Prüfers von der Maus wegführen kann. Halten Sie die offene Haut mit einer Pinzette zusammen.Legen Sie einen Wundclip mit einem sterilen Autoclip und biegen Sie ihn bei Bedarf. Verwenden Sie resorbierbare Nähte vor dem sterilen Autoclip, um die Faszienschicht zu schließen. Überprüfen Sie mit dem Transponderleser die Temperatur des Mausmuskels.Nachdem Sie die Maus aus der Anästhesie entfernt haben, legen Sie sie in einen sauberen Hauskäfig auf einem Heizkissen und stellen Sie sicher, dass der Heimkäfig einen Teeball mit einem geruchlosen Handtuch enthält, um mit der Gewöhnung zu beginnen. Weisen Sie der Riserkarte im Testraum eine Position zu, und trennen Sie die Riser, die so eingestellt sind, dass sie unterschiedliche kontextuelle Stimuli empfangen, um mindestens zwei Meter, um störende Variablen. Befestigen Sie mit Magnetstreifen chirurgische Folien über dem Steigrohr und schaffen Sie eine visuelle Barriere, um Temperaturschwankungen aufgrund der Mausaktivität als Reaktion auf die Bewegung des Experimentators zu minimieren.Bereiten Sie Teebällchen mit Kontroll- und Raubtiergeruchstüchern vor. Überführen Sie das Tier in den vorbereiteten Testraum. Platzieren Sie das Tier an einem vorher zugewiesenen Ort auf dem Steiggurt und vermeiden Sie es, den Standort des Steiggurts zwischen Gewöhnungs- und Testverfahren zu ändern.Entfernen Sie den heimischen Käfigball aus dem Heimatkäfig der Maus. Stellen Sie den Käfig mit einem Tuch oder einer OP-Folie wieder her und lassen Sie die Maus ein bis zwei Stunden an den Testraum gewöhnen. Verwenden Sie nach Abschluss der Akklimatisierung den Scanner, um die Ausgangstemperatur des Motivs zu messen und aufzuzeichnen.Decken Sie den Käfig auf und legen Sie den Teeball auf den Boden des heimischen Käfigs. Ersetzen Sie den Käfigdeckel und die Stoffabdeckung. Starten Sie die Stoppuhr und messen Sie die Temperaturen der Probanden in der gleichen Reihenfolge der Teeballplatzierung.Notieren Sie die Temperaturen und die Uhrzeit der Messungen nach den gewünschten Zeitpunkten. Bereiten Sie die Laufbänder für die Tests vor und stellen Sie sicher, dass die Schocker funktionsfähig sind. Stellen Sie sicher, dass die Tiere dasselbe Laufband für Gewöhnungs- und Testverfahren verwenden.Bewegen Sie die Maus in den Testraum und lassen Sie sie ein bis zwei Stunden in ihrem Heimkäfig akklimatisieren. Bevor Sie die Maus zum Laufband bewegen, messen und notieren Sie die Ausgangstemperatur. Für eine einfache Platzierung und Demontage kleben Sie die Kontroll- oder Raubtiergeruchstücher an der Decke oder unter der Vorderseite des Laufbandes.Führen Sie die Maus in das zugewiesene Laufband. Schalten Sie den Laufbandgurt und den Schocker ein, starten Sie die Stoppuhr und messen Sie die Testpersonen in der gleichen Reihenfolge, in der sie in den Laufbändern aufgestellt wurden. Notieren Sie die Temperaturen und die Uhrzeit der Messungen nach den gewünschten Zeitpunkten.Sobald der Test abgeschlossen ist, schalten Sie den Schocker und das Laufband aus und bringen Sie die Maus in ihren Heimatkäfig zurück. Reinigen Sie das Laufband mit flüssigem Reinigungsmittel und Wasser und entfernen Sie Restgeruch von Raubtieren. Wiederholte Gewöhnungsversuche senkten signifikant die Muskeltemperatur von Mäusen und zeigten, dass Mäuse an die Testumgebung und das Protokoll gewöhnt waren.Die kombinierte Geschlechtsanalyse von Versuch vier zeigte keinen signifikanten Unterschied zwischen Temperaturmessungen vor dem Umzug und Ausgangstemperatur, was die Wirksamkeit einer einstündigen Akklimatisierung an den Testkontext zeigt. Die pharmakologische Stimulation mit Oxytocin bei Mäusen zeigte eine verringerte Muskeltemperatur im Vergleich zum Ausgangswert mit einer maximalen Abnahme nach 30 Minuten. Die Muskeltemperaturen wurden 60 Minuten nach der Oxytocin-Injektion normalisiert.Ein anhaltender Anstieg der Muskeltemperatur wurde bei Sprague Dawley-Ratten beobachtet, nachdem Raubtiergeruch als kontextuelle Reize entfernt wurde. Sprague Dawley-Ratten zeigten einen robusten Temperaturanstieg als Reaktion auf Frettchengeruch im Vergleich zum Kontrollgeruch. In Gegenwart anderer aversiver Gerüche erzeugt und erhält Frettchengeruch eine robuste thermogene Veränderung im Vergleich zu allen anderen Bedingungen.Während dieses Verfahrens ist es wichtig, die Tiere an das Testprotokoll zu gewöhnen und ein bis zwei Stunden Akklimatisierung pro Testtag einzuplanen.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Behavior

Verhalten

Verfahren zur funktionellen Bildgebung von Maus braunen Fettgewebe (BAT) beschrieben, bei dem kalte-stimulierte Aufnahme von 18F-Fluorodeoxyglucose (FDG) in BAT nichtinvasiv beurteilt mit einer standardisierten micro-PET/CT Protokoll ist. Diese Methode ist robust und sensibel auf Unterschiede in der BAT-Aktivitäten in Maus-Modellen erkennen.

Funktionelle Bildgebung Brown Fat in Mäusen mit FDG micro-PET/CT

Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung einer Zusammensetzung Körperanalyse und metabolische Tier Überwachungssystem Körperzusammensetzung und metabolischen Parametern bei Mäusen zu charakterisieren. Eine Adipositas-Modell induziert durch fettreiche Fütterung dient als Beispiel für die Anwendung dieser Techniken.

Körperzusammensetzung und festsetzende Stoffwechselanalyse bei hohen Fett Fed Mäusen

Hier präsentieren wir eine neue Methode, um Körper Temperaturunterschiede im passiven systemische Anaphylaxie (PSA) und Lebensmittel Allergie-Maus-Modellen mit Infrarot-Thermometer messen. Dieses Verfahren wurde in früheren PSA Ergebnisse genau dupliziert.

Maus-Körper-Temperaturmessung mit Infrarot-Thermometer während Passive systemische Anaphylaxie und Essen Allergieabklärung

Eine intakte Regulierung der Muskelglukoseaufnahme ist wichtig für die Aufrechterhaltung der Ganzkörperglukose-Homöostase. Dieses Protokoll stellt die Bewertung der insulin- und kontraktionsstimulierten Glukoseaufnahme in isolierten und inkubierten reifen Skelettmuskeln dar, wenn die Auswirkungen verschiedener physiologischer Interventionen auf den Glukosestoffwechsel des ganzen Körpers beschrieben werden.

Messung der insulin- und kontraktionsstimulierten Glukoseaufnahme in isolierten und inkubierten reifen Skelettmuskeln von Mäusen

Funktionelle Bildgebung und Quantifizierung von thermogenen Fettdepots in Mäusen mit einem mikro-PET/MR-bildgebenden Ansatz.

Visualisierung und Quantifizierung von braunem und beigem Fettgewebe in Mäusen mittels [18F]FDG Micro-PET/MR Imaging

Dieses Manuskript beschreibt ein Protokoll zur Messung des Grundumsatzes und der oxidativen Kapazität von thermogenen Adipozyten bei übergewichtigen Mäusen.

Bestimmung des basalen Energieverbrauchs und der Fähigkeit thermogener Adipozyten, Energie bei übergewichtigen Mäusen zu verbrauchen

In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll vor, um die physiologische Bedeutung des Einflusses der Aktivität des braunen Fettgewebes (BAT) auf den menschlichen Stoffwechsel zu quantifizieren. Dies wird durch die Kombination von Kohlenhydratbeladung und indirekter Kalorimetrie mit Messungen supraklavikulärer Temperaturänderungen erreicht. Dieser neuartige Ansatz kann dazu beitragen, ein pharmakologisches Ziel für die BAT-Thermogenese beim Menschen zu entwickeln.

Verwendung einer Kombination aus indirekter Kalorimetrie, Infrarot-Thermografie und Blutzuckerspiegeln zur Messung der Thermogenese von braunem Fettgewebe beim Menschen

In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll zur Messung der Aktivität von braunem Fettgewebe nach einer Mahlzeit bei Menschen und Versuchstieren vor.

Infrarot-Thermografie zur Detektion von Veränderungen der Aktivität des braunen Fettgewebes

In diesem Protokoll werden Methoden beschrieben, die für die BAT-optimierte arteriovenöse Metabolomik mittels GC-MS in einem Mausmodell relevant sind. Diese Methoden ermöglichen es, wertvolle Einblicke in den BAT-vermittelten Metabolitenaustausch auf organismischer Ebene zu gewinnen.

Arteriovenöse Metabolomik zur Messung des In-vivo-Metabolitenaustauschs in braunem Fettgewebe

Hier beschreiben wir eine umfassende Methode zur Messung der mitochondrialen oxidativen Phosphorylierung in frischen permeabilisierten Skelettmuskelfasern aus menschlichen oder Mausmuskeln. Diese Methode ermöglicht die Echtzeit-Quantifizierung der mitochondrialen Atmung und die Beurteilung der Brennstoffpräferenz und der metabolischen Flexibilität unter Beibehaltung bestehender mitochondrialer Netzwerke und der Membranintegrität.

Messung der mitochondrialen Atmung in Skelettmuskelfasern von Mensch und Maus mittels hochauflösender Respirometrie

Erfahren Sie die Messung der Skelettmuskelthermogenese bei Mäusen und Ratten mit minimalinvasiven Fernmesstranspondern. Diese kostengünstige Methode ermöglicht parallele Tests mehrerer Tiere unter pharmakologischer Stimulation.

Messung der Thermogenese der Skelettmuskulatur bei Mäusen und Ratten

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