Name: Dynamische kontinuierliche Blutentnahme aus Rattenherzen mittels nicht-invasiver Mikrodialysetechnik (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-09-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 52 s
Description: Lernen Sie die dynamische Mikrodialyse zur nicht-invasiven Blutentnahme aus Rattenherzen für kardiovaskuläre Forschung. Diese Methode ermöglicht Echtzeit-Analysen von Biomarkern.

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Diese Arbeit wurde von der National Natural Science Foundation of China (82104533), der China Postdoctoral Science Foundation (2020M683273), dem Science &; Technology Department der Provinz Sichuan (2021YJ0175) und dem Key R&D Project of Sichuan Provincial Science and Technology Plan (2022YFS0438) unterstützt. In der Zwischenzeit möchten sich die Autoren bei Herrn Yuncheng Hong, einem leitenden Ausrüstungsingenieur bei TRI-ANGELS D&H TRADING PTE, bedanken. LTD. (Singapur, Singapur) für die Erbringung technischer Dienstleistungen für Mikrodialysetechniken.

Das Tierprotokoll wurde vom Verwaltungsausschuss der Universität für Traditionelle Chinesische Medizin Chengdu genehmigt (Aktennummer: 2021-11). Spezifizierte pathogenfreie männliche Sprague Dawley (SD) Ratten (8-10 Wochen, 260-300 g) wurden in unabhängigen Lüftungskäfigen aufgezogen, wobei die Laborumgebung bei 22 °C und 65% relativer Luftfeuchtigkeit gehalten wurde, und wurden für die vorliegende Studie verwendet. Die Tiere stammen aus einer kommerziellen Quelle (siehe Materialtabelle). Alle Ratten wurden während des Zeitraums an eine adaptive Fütterung für 1 Woche mit freiem Wasser und Diät gewöhnt.
1. Versuchsvorbereitung
<ol><li>Montieren Sie die Geräte, die an der Mikrodialyse der Blutentnahme beteiligt sind (siehe Materialtabelle), wie in Abbildung 1 dargestellt.</li>
	<li>Bereiten Sie gerinnungshemmende Citrat-Dextrose-Lösung (ACDs) vor, die 3,50 mmol/l Citrat, 7,50 mmol/l Natriumcitrat und 13,60 mmol/l Glukose als Perfusionsflüssigkeit für die Blutentnahme in der Mikrodialyse enthält (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>Filtern Sie die ACDs vor Gebrauch mit einer 0,22 μm Membranfiltrationseinheit und entfernen Sie Blasen mit Ultraschall. Halten Sie ACDs bei 37 °C, um die Stimulation für SD-Ratten zu reduzieren.</li>
</ol>2. Durchgängigkeitsprüfung von Mikrodialyse-Rohrleitungssystemen
<ol><li>Befestigen Sie den Einlass der Sonde der Dialyseeinheit mit der Spritzennadel, dem Schlauchadapter und dem fep-Schlauch (siehe Materialtabelle). Anmerkungen: Das blaue Ende der Mikrodialysesonde ist für den Flüssigkeitszufluss und das transparente Ende für den Flüssigkeitsausfluss.</li>
	<li>Überprüfen Sie die Durchgängigkeit des Mikrodialyse-Rohrleitungssystems, indem Sie ACDs18 mit einer Geschwindigkeit von 2 μl/min in das Rohrleitungssystem einleiten. HINWEIS: Wenn ACDs von der Probenentnahmestelle abfließen, kann das ungehinderte Mikrodialysesystem für die weitere Herzblutentnahme verwendet werden. Ist dies nicht der Fall, muss die Blutsonde auf gebrochene Undichtigkeiten oder auf eine Abdichtung der Rohr-Rohr-Verbindung überprüft werden.</li>
</ol>3. Implantation der Mikrodialysesonde
<ol><li>Betäuben Sie die Ratten mit 2%igem Isofluran in einem Luft-Sauerstoff-Gemisch von 0,6 l/min, befestigen Sie die völlig bewusstlosen Ratten auf dem Operationstisch und halten Sie die Körpertemperatur mit einem tierischen Temperaturhalter auf 37 °C (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>Entfernen Sie das Fell mit einem Elektrorasierer vom Hals und desinfizieren Sie die Operationsstelle mit drei abwechselnden Runden Betadin und 70% Alkohol. Injizieren Sie der Ratte Bupivacain (1,5 mg/kg). Freilegung der rechten Halsvene durch stumpfe Dissektion des Weichgewebes und der perivaskulären Faszie durch einen 1,5 cm langen Schnitt entlang der Mittellinie des Halses. HINWEIS: Alle chirurgischen Instrumente und Werkzeuge, die im Experiment verwendet werden, sollten im Voraus durch Autoklavieren sterilisiert werden. Verwenden Sie sterile Handschuhe und OP-Abdeckungen. Der gesamte Versuchsbetrieb sollte in einer sterilen Umgebung durchgeführt werden. Befolgen Sie die örtlichen Richtlinien zur Verwendung von Tieren für Anästhesie und Analgesie.</li>
	<li>Machen Sie einen abnehmbaren Slipknot mit einer chirurgischen 4-0-Naht in der rechten Halsvene am distalen Ende des Herzens, um den Blutfluss vorübergehend zu blockieren, und machen Sie einen 1,5 cm langen Schnitt in der rechten Halsvene in der Nähe des Herzens.</li>
	<li>Führen Sie einen nadelförmigen Katheter-Mandrin (Länge 25 mm, Durchmesser 0,7 mm, siehe Materialtabelle) in die rechte Halsvene in Richtung des proximalen Endes des Rattenherzens ein, führen Sie die Blut-Mikrodialysesonde (Gesamtlänge der Sonde 24 mm, Membranlänge 10 mm) in einen Katheter ein und implantieren Sie die Sonde mit einer Augenzange entlang des schrägen Schnittes des Katheter-Stiletts19.</li>
	<li>Entfernen Sie den geführten Kathetermandrin und tauchen Sie die semipermeable Membran der Sonde (Membranlänge 10 mm, Membrandurchmesser 0,5 mm) vollständig in die rechte Halsvene ein. Entwirren Sie den abnehmbaren Slipknot am distalen Ende des Herzens, um den Blutfluss in der rechten Halsvene wiederherzustellen.</li>
	<li>Ligaturieren Sie die Sonde mit der rechten Halsvene mit chirurgischen 4-0-Nähten und fädeln Sie das Sondenschwanzrohr subkutan durch den Nacken. In Abbildung 2 sind die einzelnen Schritte der Sondenimplantation aufgeführt. HINWEIS: Der molekulare Cut-off-Wert der in dieser Studie verwendeten Blutmikrodialysesonde beträgt >20 kD. Die entnommenen Blutproben enthalten Substanzen mit einem Molekulargewicht von weniger als 20 kD.</li>
</ol>4. Probenahme der Mikrodialyse
<ol><li>Eine Woche nach der Implantation der Mikrodialysesonde werden Ratten, die sich von einem chirurgischen Trauma erholen, einer Mikrodialyseprobe unterzogen. Setzen Sie die wache Ratte in ein frei bewegliches Becken (siehe Materialtabelle) und schließen Sie die Sonde an das Mikrodialysesystem an. Gleichen Sie die Dialysemembran der Sonde aus, indem Sie ACDs mit einer Rate von 2 μl/min für 1 h spülen.</li>
	<li>Entnehmen Sie Mikrodialyse-Blutproben mit einer Flussrate von 2 μl/min und bewahren Sie sie vorübergehend in einem fraktionierten 4 °C-Behälter auf. HINWEIS: Die gewonnenen Blutproben können direkt durch Zentrifugieren bei 20.000 x g für 10 min bei Raumtemperatur getestet werden. Oder es könnte bei -80 °C für die folgenden Tests gelagert werden. Bei der Entnahme von Proben ist immer darauf zu achten, ob die Sonde prolapsiert und/oder ausläuft.</li>
</ol>5. Betrieb nach der Probenahme
<ol><li>Betäubung der SD-Ratten mit 2%igem Isofluran in einem Luft-Sauerstoff-Gemisch bei 0,6 l/min.</li>
	<li>Sezieren Sie, um erneut zu bestätigen, dass sich die Sonde in der rechten Halsvene befindet. Entfernen Sie die Mikrodialysesonde aus der rechten Halsvene und legen Sie sie in Reinstwasser.</li>
	<li>Zum Schluss werden die Ratten durch Inhalation von 5 % Isofluran eingeschläfert.</li>
	<li>Schließen Sie die Sonde an die Rohrleitung an und spülen Sie sie über Nacht mit einer Rate von 2 μl/min mit Reinstwasser, um das restliche Salz in Rohr und Sonde vollständig auszuwaschen.</li>
	<li>Entfernen Sie die Sonde und weichen Sie sie in Reinstwasser ein. Bei 4 °C lagern, um zu verhindern, dass sich die Dialysemembran der Sonde zusammenzieht. HINWEIS: Wenn das Volumen der Dialyseflüssigkeit nicht mit dem Volumen der Perfusionsflüssigkeit übereinstimmt, kann die Sonde durch geronnenes Blut blockiert werden. Die Sonde kann so lange in die Pankreasproteinlösung eingelegt werden, bis sich die sichtbare Substanz von der Spitze der Sondenmembran ablöst.</li>
</ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Herz-Kreislauf-Erkrankungen sind eine häufige chronische Erkrankung in Kliniken mit allmählich steigender Inzidenz in China, und das Erkrankungsalter ist tendenziell jünger, was bei den meisten Patienten Besorgnis und Panik auslöst20,21. Herz-Kreislauf-Erkrankungen sind die weltweit häufigste Todesursache und können einen Hirninfarkt und andere Erkrankungen mit hoher Sterblichkeit auslösen, die das gesunde Leben der Patienten ernsthaft bedrohen2...

Mit der Beschleunigung des Lebenstempos und der Zunahme des psychischen Drucks treten Herz-Kreislauf-Erkrankungen (CVD) tendenziell bei jungen, mittelalten und älteren Menschen auf 1,2. Die Morbidität und Mortalität von Herz-Kreislauf-Erkrankungen ist hoch, wobei die Merkmale eines akuten Beginns, eines schnellen Fortschreitens und eines langen Krankheitsverlaufs die Sicherheit der Patienten erheblich beeinträchtigen3. Das Auftreten von Herz-Kreislauf-Erkrankungen kann eng mit den Veränderungen einiger Blutbestandteile wie Cholesterin, Serumlipide, Blutzucker, Myokardenzyme und Proteinkinase K 4,5,6 zusammenhängen. Die relevante Situation des Patienten kann am schnellsten durch die Analyse von routinemäßigen Blutuntersuchungen behandelt werden. Daher bestimmt die Qualität der Blutproben die Genauigkeit der Testergebnisse. Herkömmliche Methoden zur Blutentnahme haben jedoch einige unvermeidliche Nachteile, die die Versuchsergebnisse ernsthaft beeinträchtigen, wie z. B. ein großes Traumagebiet, ein kleines Blutentnahmevolumen, hohe Anforderungen an die Bediener, die Unfähigkeit, Arzneimitteländerungen in Echtzeit widerzuspiegeln, eine umständliche Vorbehandlung der Blutproben, ein hoher Verbrauch von Versuchstieren und die Nichteinhaltung tierethischer Anforderungen 7,8,9 . Mit den kontinuierlichen Fortschritten in der Medizintechnik sind auch die Anforderungen an die Qualität der Blutentnahme gestiegen. Daher ist es dringend erforderlich, eine neue Blutentnahmetechnologie zu entwickeln, um die oben genannten Mängel zu überwinden.
Die Mikrodialyse ist eine In-vivo-Probenahmetechnik, die auf den Dialyseprinzipien10 basiert. Unter Nichtgleichgewichtsbedingungen werden die zu messenden Verbindungen diffundiert und aus dem Gewebe entlang des Konzentrationsgradienten in die im Gewebe eingebettete Mikrodialysesonde in das Dialysat perfundiert, das zusammen mit dem Dialysat kontinuierlich entfernt wird, wodurch der Zweck der Probenahme aus dem lebenden Gewebeerreicht wird 11, 12. Im Vergleich zu herkömmlichen Probenahmemethoden hat die Mikrodialysetechnik hervorragende Vorteile in den folgenden Aspekten13,14,15: kontinuierliche Echtzeitverfolgung der Veränderungen verschiedener Verbindungen im Blut; Die Probenahme erfordert keine langwierige Vorverarbeitung und kann die Konzentration der Zielverbindung an der Probenahmestelle wirklich darstellen. Sonden können in verschiedene Teile des Körpers implantiert werden, um die Absorption, Verteilung, Verstoffwechselung, Ausscheidung und Toxizität der Zielverbindungen zu untersuchen. die gewonnene Probe enthält keine biologischen Makromoleküle (>20 kD). Daher gewährleisten die qualitativ hochwertigeren Blutproben eine bessere Interpretation von Herz-Kreislauf-Erkrankungen und des ethnisch medizinischen Mechanismus.
Mikrodialyse-Probenahmesysteme bestehen im Allgemeinen aus Mikroinjektionspumpen, Verbindungsschläuchen, tierfreien Behältern, Mikrodialysesonden und Probensammlern16. Als kritischster Teil der Vorrichtung des Mikrodialysesystems umfassen gängige Mikrodialysesonden konzentrische Sonden, flexible Sonden, lineare Sonden und Shuntsonden17. Flexible Sonden sind weiche und nichtmetallische Sonden, die hauptsächlich zur Entnahme von Proben aus Blutgefäßen und peripheren Geweben wie Herz, Muskeln, Haut und Fett von wachen und sich frei bewegenden oder betäubten Tieren verwendet werden13. Bei Kontakt mit Blutgefäßen oder Geweben kann die Sonde flexibel gebogen werden, wodurch irreversible Schäden an der Sonde oder der Probenahmestelle vermieden werden. Mit der kontinuierlichen Weiterentwicklung der Sondentechnologie vertieft sich auch die Anwendung der Mikrodialysetechnik in verschiedenen Bereichen. In dieser Arbeit wurde das Blut des Rattenherzens dynamisch und kontinuierlich durch die nichtinvasive Mikrodialysetechnologie durch die flexible Sonde gewonnen, die für die Blutentnahme entwickelt wurde.

<table><tbody><tr><td>Anästhesiesystem für Tiere</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>R500IE</td><td></td></tr><tr><td>Temperaturhalter für Tiere</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>69020</td><td></td></tr><tr><td>Mikrodialysesonde für Blut</td><td>; CMA Mikrodialyse AB</td><td>T55347</td><td></td></tr><tr><td>Katheter</td><td>  CMA Microdialysis AB</td><td>T55347</td><td></td></tr><tr><td>Citrat</td><td>Merck Chemical Technology (Shanghai) Co., Ltd</td><td>251275</td><td></td></tr><tr><td>Elektrorasierer</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>CP-5200</td><td></td></tr><tr><td>Fep-Schläuche</td>&amp;<td>nbsp; CMA Microdialysis AB</td><td>3409501</td><td></td></tr><tr><td>Freilaufbecken für Tiere</td><td>  CMA Microdialysis AB</td><td>CMA120</td><td></td></tr><tr><td>Glukose</td><td>Merck Chemical Technology (Shanghai) Co., Ltd</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>Hämostatische Pinzette</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>F21020-16</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>R510-22</td><td></td></tr><tr><td>Mikroschere</td><td>Beyotime Biotechnology Co., Ltd</td><td>FS221</td><td></td></tr><tr><td>Mikrodialyse Auffangröhrchen</td><td>  CMA Mikrodialyse AB</td><td>7431100</td><td></td></tr><tr><td>Mikrodialyse-Sammler</td><td> CMA Microdialysis AB</td><td>CMA4004</td><td></td></tr><tr><td>Mikrodialyse in vitro Stand</td><td>  CMA Microdialysis AB</td><td>CMA130</td><td></td></tr><tr><td>Mikrodialyse-Mikroinjektionspumpe</td><td>  CMA Microdialysis AB</td><td>788130</td><td></td></tr><tr><td>Mikrodialyse-Spritze (1,0 mL)</td><td> CMA Microdialysis AB</td><td>8309020</td><td></td></tr><tr><td>Adapter für Mikrodialyseschläuche</td><td> CMA Microdialysis AB</td><td>3409500</td><td></td></tr><tr><td>Mikroporöse Filtermembran</td><td>Merck Millipore Ltd.</td><td></td><td></td>R0DB36622</tr><tr><td>Nicht resorbierbares chirurgisches Nahtmaterial</td><td>Shanghai Tianqing Biological Materials Co., Ltd</td><td>S19004</td><td></td></tr><tr><td>Operationstisch</td><td>Yuyan Scientific Instrument Co., Ltd</td><td>30153</td><td></td></tr><tr><td>Ophthalmische Pinzette</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>F12016-15</td><td></td></tr><tr><td>Natriumcitrat</td><td>Merck Chemical Technology (Shanghai) Co., Ltd</td><td>1613859</td><td></td></tr><tr><td>Sprague Dawley  (SD) Ratten</td><td>Chengdu Dossy Experimental Animals Co., Ltd</td><td>SYXK(<img alt="Gleichung 1" src="/files/ftp_upload/64531/64531eq01.jpg" style="margin: auto; ">)2019-049</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Schere</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>S14014-15</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Schere</td><td>Shanghai Bingyu Fluid Technology Co., Ltd</td><td>BY-103</td><td></td></tr><tr><td>Spritzennadel</td><td>  CMA Microdialysis AB</td><td>T55347</td><td></td></tr><tr><td>Ultraschallreiniger</td><td>Guangdong Goote Ultrasonic Co., Ltd</td><td>KMH1-240W8101</td><td></td></tr></tbody></table>

dynamische kontinuierliche blutentnahme aus rattenherzen mittels nicht-invasiver mikrodialysetechnik

Dynamic Continuous Blood Extraction from Rat Heart via Noninvasive Microdialysis Technique

Die dynamische Analyse von Blutbestandteilen ist von großer Bedeutung für das Verständnis von Herz-Kreislauf-Erkrankungen und den damit verbundenen Erkrankungen wie Myokardinfarkt, Herzrhythmusstörungen, Arteriosklerose, kardiogenem Lungenödem, Lungenembolie und Hirnembolie. Gleichzeitig ist es dringend notwendig, die Technik der kontinuierlichen Herzblutentnahme bei lebenden Ratten zu durchbrechen, um die Wirksamkeit einer ausgeprägten ethnischmedizinischen Therapie zu bewerten. In dieser Studie wurde eine Blut-Mikrodialysesonde in einem präzisen und nicht-invasiven chirurgischen Verfahren in die rechte Halsvene von Ratten implantiert. Anschließend wurden Herzblutproben mit einer Rate von 2,87 nL/min bis 2,98 ml/min entnommen, indem eine Verbindung zu einem Online-Mikrodialyse-Probenentnahmesystem hergestellt wurde. Noch bedeutsamer ist, dass die gewonnenen Blutproben in Mikrodialysebehältern bei 4 °C zwischengelagert werden können. Das auf Mikrodialyse basierende kontinuierliche Online-Blutentnahmeprogramm aus Rattenherzen hat die Qualität der Blutproben in hohem Maße garantiert, die wissenschaftliche Rationalität der Forschung zu systemischen Herz-Kreislauf-Erkrankungen vorangetrieben und belebt und die ethnomedizinische Therapie aus der Perspektive der Hämatologie bewertet.

Das vorliegende Protokoll ermöglichte die Gewinnung des Herzblutes von bewussten Ratten gemäß den in den Mikrodialysegeräten eingestellten Probenahmeparametern. Normale Blutproben müssen hellrot sein, während Tiere mit Hypoxie, potenziellen Blutgerinnseln oder anämischen Erkrankungen dunkelviolett oder dunkelrot sein können. Proben, die durch die Blutmikrodialysetechnik gewonnen werden, sind farblos, klar und transparent, was zur Analyse der Serummarker verschiedener Krankheiten und der Blutverteilung von Medikamenten un...

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine einfache und effiziente Methode zur dynamischen Echtzeitgewinnung von Rattenherzblut mit Hilfe der Mikrodialysetechnik.

Dynamische kontinuierliche Blutentnahme aus Rattenherzen mittels nicht-invasiver Mikrodialysetechnik

Dynamic analysis of blood components is of great importance in understanding cardiovascular diseases and their related diseases, such as myocardial ...

Unsere dynamische kontinuierliche Blutentnahmetechnik aus einem Rattenherzen ist sehr wichtig für die Analyse der Blutbestandteile und trägt zum Verständnis von Herz-Kreislauf-Erkrankungen und den damit verbundenen Erkrankungen bei. Im Vergleich zu herkömmlichen Probenahmemethoden hat diese Technik den Vorteil, dass sie in vivo, in Echtzeit, dynamisch und nicht-invasiv ist, ohne biologische Mikromolekulare und Titerprobenvorverarbeitung für einen ausländischen Test. Diese Technik ist nicht nur auf Herz-Kreislauf-Erkrankungen anwendbar, sondern sollte auch für die Diagnose und Behandlung von Krankheiten geeignet sein, indem Blut-Biomarker in Kombination mit Hochphasenflüssigkeitschromatographie und Massenspektrometrie nachgewiesen werden.Mit dieser Methode können Herz-Kreislauf-Erkrankungen wie Herzinfarkt, Apnoe und Arteriosklerose untersucht werden. Darüber hinaus gilt sie auch für kardiogene Lungenödeme sowie Lungen- und Hirnembolien. Befestigen Sie nach der Versuchsvorbereitung den Einlass der Sonde der Dialyseeinheit mit der Spritzennadel, dem Schlauchadapter und dem FEP-Schlauch.Überprüfen Sie die Durchgängigkeit des Mikrodialyse-Rohrleitungssystems, indem Sie gerinnungshemmen

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode, um kardiale interstitielle Flüssigkeit aus dem isolierten, perfundierten Rattenherz zu sammeln. Um das interstitielle Transudat aus dem koronaren venösen Abwässer-Perfusat körperlich zu trennen, wird das Langendorff-Perfundherz umgekehrt, und das auf der Herzoberfläche gebildete Transudat (interstitielle Flüssigkeit) wird mit einer weichen Latexkappe gesammelt.

Das invertierte Herzmodell für interstitielle Transudat-Sammlung aus dem isolierten Rattenherz

Hier beschreiben wir eine Methode zur in Vivo Mikrodialyse Aspartat- und Glutamat Freisetzung im ventralen Hippocampus von epileptischen und nicht-epileptischen Ratten, in Kombination mit EEG-Ableitungen zu analysieren. Extrazelluläre Konzentrationen von Aspartat- und Glutamat können mit den verschiedenen Phasen der Erkrankung korreliert werden.

Mikrodialyse exzitatorischen Aminosäuren während der EEG-Ableitungen in Ratten frei beweglich

Hier beschreiben wir eine Einrichtung zur gleichzeitigen Erfassung von Elektrokardiographie und intra-arterielle Blutdruck (BP) in experimentellen Ratten, die mit standard-Ausrüstung in Tierhaltung möglich ist und können auch auf physiologische oder pharmakologische Studien zur Pathogene oder therapeutische Mechanismen in der Herz-Kreislauf-Medizin zu untersuchen.

Gleichzeitige Elektrokardiographie Aufnahme und Invasive Blut Druckmessung bei Ratten

Dieser Artikel stellt eine effiziente Methode zur Durchführung von Myokard-Ischämie und anschließender chronischer Reperfusion bei Ratten mit einem minimal-invasiven Ansatz dar. Darüber hinaus wird die linksventrikuläre hämodynamische Funktion von Ratten durch Echokardiographie und isolierte Arbeitsherzmethoden beurteilt.

Semi-Minimal Invasive Methode zur Induzieren von Myokardinfarkt bei Ratten und der Beurteilung der Herzfunktion durch ein isoliertes funktionierendes Herzsystem

Der Goldstandard in der Kardiologie für zelluläre und molekulare Funktionsexperimente sind Kardiomyozyten. Dieser Artikel beschreibt Anpassungen an die Nicht-Langendorff-Technik zur Isolierung von Maus-Kardiomyozyten.

Eine einfache und effektive Methode zur konsistenten Isolierung von Maus-Kardiomyozyten

Das vorliegende Protokoll beschreibt die Aortenkanülierung und die retrograde Perfusion des ex-vivo neonatalen murinen Herzens.  Eine Zwei-Personen-Strategie mit einem Seziermikroskop und einer abgestumpften kleinen Messnadel ermöglicht eine zuverlässige Kanülierung. Die Quantifizierung der longitudinalen kontraktilen Spannung erfolgt mit einem Kraftaufnehmer, der mit der Spitze des linken Ventrikels verbunden ist.

Modifizierte Technik zur Verwendung von neonatalen Murinherzen im Langendorff-Präparat

Das vorliegende Protokoll bietet eine detaillierte dynamische Echtzeit-Probenahme von extrazellulärer Flüssigkeit aus dem Hippocampus wacher Ratten unter Verwendung eines Mikrodialysesystems.

Dynamische Echtzeit-Entnahme von extrazellulärer Flüssigkeit aus dem Hippocampus von bewussten Ratten mit Hilfe eines Mikrodialysesystems

Das Protokoll zeigt wiederholte Liquor- und Blutentnahmen von epileptischen Ratten, die parallel zur kontinuierlichen Video-Elektroenzephalogramm-Überwachung (EEG) durchgeführt werden. Diese sind von entscheidender Bedeutung, um mögliche Zusammenhänge zwischen Veränderungen verschiedener Körperflüssigkeitsmoleküle und der Anfallsaktivität zu untersuchen.

Entnahme von Liquor und Blut aus der seitlichen Schwanzvene bei Ratten während EEG-Aufzeichnungen

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode zur Messung des linksventrikulären Drucks und Volumens unter Verwendung der Druck-Volumen-Leitfähigkeitstechnik. Diese Methode ermöglicht eine kontinuierliche Echtzeitüberwachung der Auswirkungen von Medikamenten auf das Herz.

Echtzeit-Nachweis von Ferulasäure-Effekten auf den linken Ventrikel der Ratte mit einem Druck-Volumen-Leitfähigkeitskatheter

Dieses Protokoll beschreibt fortschrittliche Materialherstellungs- und ex vivo-Methoden am Rattenherzen für optische und elektrische bidirektionale Bioschnittstellen, die eine präzise Herzstimulation, Aufzeichnung und Infarktmodellierung für die bioelektronische Forschung ermöglichen.

Bidirektionale elektrische und optoelektronische Grenzflächen in gesunden und ischämischen ex vivo Rattenherzen

Lernen Sie die dynamische Mikrodialyse zur nicht-invasiven Blutentnahme aus Rattenherzen für kardiovaskuläre Forschung. Diese Methode ermöglicht Echtzeit-Analysen von Biomarkern.

Dynamische kontinuierliche Blutentnahme aus Rattenherzen mittels nicht-invasiver Mikrodialysetechnik

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