Name: Ein Trap-Vaccinate-Release-Protokoll für die Immunisierung von Stinktieren und weiteren Tollwutvektoren gegen Tollwut (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-11-29T12:20:00.000+00:00
Duration: 4 min 10 s
Description: Lernen Sie das Trap-Vaccinate-Release-Verfahren zur Tollwutimpfung von Stinktieren ohne chemische Immobilisierung. Diese Methode ermöglicht sichere Impfungen und unterstützt die Tollwutbekämpfung in Wildtierpopulationen.

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<ol><li>Rosatte, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+elimination+of+raccoon+rabies+from+Wolfe+Island%2C+Ontario%3A+animal+density+and+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">The elimination of raccoon rabies from Wolfe Island, Ontario: animal density and movements.</a> Journal of Wildlife Diseases. 43 (2), 242-250 (2007).</li>
<li>Marston, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+a+rabies+virus+host+shift+event+reveals+within-host+viral+dynamics+in+a+new+host%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Evolution%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of a rabies virus host shift event reveals within-host viral dynamics in a new host.</a> Virus Evolution. 3 (2), vex038(2017).</li>
<li>Freuling, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+elimination+of+fox+rabies+from+Europe%3A+determinants+of+success+and+lessons+for+the+future%5BTitle%5D)+AND+%22Philosophical+Transactions+of+the+Royal+Society+B%3A+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">The elimination of fox rabies from Europe: determinants of success and lessons for the future.</a> Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 368, 20120142(2013).</li>
<li>Slate, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oral+rabies+vaccination+in+North+America%3A+opportunities%2C+complexities%2C+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Oral rabies vaccination in North America: opportunities, complexities, and challenges.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 3 (12), e549-e549 (2009).</li>
<li>Wohlers, A., Lankau, E. W., Oertli, E. H., Maki, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Challenges+to+controlling+rabies+in+skunk+populations+using+oral+rabies+vaccination%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Zoonoses+and+Public+Health%22%5BJournal%5D)">Challenges to controlling rabies in skunk populations using oral rabies vaccination: A review.</a> Zoonoses and Public Health. 65 (4), 373-385 (2018).</li>
<li>Sterner, R. T., Meltzer, M. I., Shwiff, S. A., Slate, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tactics+and+economics+of+wildlife+oral+rabies+vaccination%2C+Canada+and+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Tactics and economics of wildlife oral rabies vaccination, Canada and the United States.</a> Emerging Infectious Diseases. 15 (8), 1176-1184 (2009).</li>
<li>Elmore, S. A., Chipman, R. B., Slate, D., Huyvaert, K. P., VerCauteren, K. C., Gilbert, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Management+and+modeling+approaches+for+controlling+raccoon+rabies%3A+The+road+to+elimination%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Management and modeling approaches for controlling raccoon rabies: The road to elimination.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 11, e0005579(2017).</li>
<li>Kuzmin, I. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+inferences+suggest+multiple+host+shifts+of+rabies+viruses+from+bats+to+mesocarnivores+in+Arizona+during+2001-2009%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Molecular inferences suggest multiple host shifts of rabies viruses from bats to mesocarnivores in Arizona during 2001-2009.</a> PLoS Pathogens. 8 (6), e1002786(2012).</li>
<li>Shwiff, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+and+indirect+costs+of+rabies+exposure%3A+a+retrospective+study+in+southern+California+%281998-2002%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">Direct and indirect costs of rabies exposure: a retrospective study in southern California (1998-2002).</a> Journal of Wildlife Diseases. 43 (2), 251-257 (2007).</li>
<li>Shwiff, S. A., Elser, J. L., Ernst, K. H., Shwiff, S. S., Anderson, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cost-benefit+analysis+of+controlling+rabies%3A+placing+economics+at+the+heart+of+rabies+control+to+focus+political+will%5BTitle%5D)+AND+%22OIE+Scientific+and+Technical+Review%22%5BJournal%5D)">Cost-benefit analysis of controlling rabies: placing economics at the heart of rabies control to focus political will.</a> OIE Scientific and Technical Review. 37 (2), 681-689 (2018).</li>
<li>Rosatte, R. C., Power, M. J., Machines, C. D., Campbell, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trap-vaccinate-release+and+oral+vaccination+for+rabies+control+in+urban+skunks%2C+raccoons+and+foxes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">Trap-vaccinate-release and oral vaccination for rabies control in urban skunks, raccoons and foxes.</a> Journal of Wildlife Diseases. 28 (4), 562-571 (1992).</li>
<li>Slavinski, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trap-vaccinate-release+program+to+control+raccoon+rabies%2C+New+York%2C+USA%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Trap-vaccinate-release program to control raccoon rabies, New York, USA.</a> Emerging Infectious Diseases. 18 (7), 1170-1172 (2012).</li>
<li>Rosatte, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+control+of+raccoon+rabies+in+Ontario+Canada%3A+Proactive+and+reactive+tactics%2C+1994-2007%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">The control of raccoon rabies in Ontario Canada: Proactive and reactive tactics, 1994-2007.</a> Journal of Wildlife Diseases. 45 (3), 772-784 (2009).</li>
<li>Rosatte, R. C., Howard, D. R., Campbell, J. B., Maclnnes, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intramuscular+vaccination+of+skunks+and+raccoons+against+rabies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">Intramuscular vaccination of skunks and raccoons against rabies.</a> Journal of Wildlife Diseases. 26 (2), 225-230 (1990).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>#8 x 1-1/2 in. R4 Multi-Purpose Star Drive Flat Head Screw (110 per Pack)</td><td>Home Depot</td><td>96085</td><td>Verwendet, um die Basis mit dem Plunger-Druckstab zu befestigen</td></tr><tr><td>#8 x 1-1/4 in. #2 Phillips, Wafer-Head Wood Screw (100-Pack)</td><td>Home Depot</td><td>SD8X1.25-R</td><td>Verwendet, um das Fallenschild am Pfosten zu befestigen</td></tr><tr><td>2&nbsp; in. x 2 in. x 8 ft. Furring Strip Board Lumber</td><td>Home Depot</td><td>75800593</td><td>Druckstab für Plunger</td></tr><tr><td>20 G&nbsp; x 1,5 " Nadel</td><td>Kendall monoject</td><td>8881</td><td>Verwendet zur Impfung von Tieren</td></tr><tr><td>3 mL Spritze</td><td>Kendall monoject</td><td>513934</td><td>Verwendet zur Impfung von Tieren</td></tr><tr><td>48 oz. Stahl-Bohrhammer</td><td>Home Depot</td><td>MRF3LB</td><td>Verwendet, um das Fallenschild in den Boden zu stecken</td></tr><tr><td>7-1/4 in. x 140-Tooth OSB/Plywood Circular Saw Blade</td><td>Home Depot</td><td>A07140A</td><td>Sägeblatt für die Kreissäge zum Schneiden von Sperrholz</td></tr><tr><td>Aluminium-Klappbrett - Öffnung oben, Letter</td><td>ULINE</td><td>S-20173</td><td>Verwendet, um Datenblätter aufzuzeichnen und zu speichern</td></tr><tr><td>Kreissäge</td><td>Home Depot</td><td>CSB144LZK</td><td>Verwendet zum Schneiden von Holz zur Herstellung eines Plungers</td></tr><tr><td>Kältepacks - 6 oz</td><td>ULINE</td><td>S-9902</td><td>Verwendet, um die Temperatur des Impfstoffs zu regulieren</td></tr><tr><td>Geschirrspülmittel</td><td>ULINE</td><td>S-9975</td><td>Verwendet zur Reinigung von Fallen</td></tr><tr><td>Dupont Tyvek&nbsp;Schutzkleidung</td><td>ULINE</td><td>S-11495</td><td>Verwendet, um das Personal vor Skunk-Sprühungen zu schützen. Die Größe hängt von der Größe des Personals ab. Sie können auch den Overall ohne Kapuze S-9636 verwenden.</td></tr><tr><td>Handheld GPS-Gerät</td><td>Garmin</td><td>ETrex 32X</td><td>Verwendet, um den Standort der Falle und der gefangenen Tiere zu erfassen</td></tr><tr><td>Handspiegel 6 in. x 7 in.</td><td>Walmart</td><td>Equate</td><td>Verwendet, um das Geschlecht des Tieres zu bestimmen</td></tr><tr><td>Kopflampe</td><td>Home Depot</td><td>HDB32EH</td><td>Zum Überprüfen der Fallen vor Sonnenaufgang</td></tr><tr><td>Glas Erdnussbutter</td><td>Walmart</td><td>40 oz Glas</td><td>Köder zum Fangen von Skunks.&nbsp;</td></tr><tr><td>Lebendfalle für Skunks</td><td>Tomahawk</td><td>103</td><td>Verwendet, um Skunks zu fangen</td></tr><tr><td>Lebendfalle für Skunks und andere Carnivoren</td><td>Tomahawk</td><td>205; 602</td><td>Verwendet, um Skunks und andere Carnivoren zu fangen</td></tr><tr><td>Nitrilhandschuhe</td><td>ULINE</td><td>S-14179</td><td>Verwendet, um das Personal vor Krankheitserregern zu schützen. Größe und Verwendung von pulverisierten oder nicht-pulverisierten Handschuhen hängen von der Wahl des Personals ab.</td></tr><tr><td>ONE+ 18 V Akku-Drehmoment-Drehmaschine 3/8 in. mit 1,5 Ah Akku, Ladegerät, Handwerkzeugen, Zubehör und Werkzeugtasche</td><td>Home Depot</td><td>PCL201K1SB</td><td>Verwendet, um Schilder an Pfosten zu montieren</td></tr><tr><td>Paper Mate Profile 8er Pack Kugelschreiber 1,4 mm Fettspitze Schwarz</td><td>Staples</td><td>2095460</td><td>Verwendet, um auf Datenblättern zu schreiben</td></tr><tr><td>Tollwattimpfungsschild 9 in. x 12 in.</td><td>FedEx Office</td><td>NA</td><td>Anbringen am Pfosten in der Nähe der Fallenstelle</td></tr><tr><td>Tollwattimpfung</td><td>Boehringer Ingelheim</td><td>Imrab&reg;</td><td>1 mL pro Tier; https://www.boehringer-ingelheim.com/animal-health/companion-animals-products/rabisin-imrab#:~:text=Rabisin%C2%AE%20%2F%20Imrab%C2%AE%20is,signs%20due%20to%20rabies%20infection.</td></tr><tr><td>Tollwarnschild 4 in. x 6 in.</td><td>FedEx Office</td><td>NA</td><td>Befestigung oben an der Falle</td></tr><tr><td>Waschbär- und Fuchsohrmarke</td><td>National Band and Tag Company</td><td>1005-3</td><td>Ohrmarken für Waschbären und Füchse</td></tr><tr><td>Waschbär- und Fuchsohrmarke</td><td>National Band and Tag Company</td><td>1005s3</td><td>Ohrmarkenzange zum Anbringen von Ohrmarken an Waschbären und Füchsen</td></tr><tr><td>Refresh 6-Pack Lunch Cooler</td><td>4imprint.com</td><td>155149</td><td>Verwendet, um den Impfstoff im Feld zu transportieren</td></tr><tr><td>Rolle Plastikfolie 12 ft. x 400 ft.</td><td>3M</td><td>6723</td><td>Verwendet, um das Tier zu beruhigen und das Personal zu schützen</td></tr><tr><td>Schutzbrille oder Einweg-Gesichtsschutz</td><td>ULINE</td><td>S-24607</td><td>Verwendet, um das Gesicht des Personals vor Skunk-Sprühungen und Krankheitserregern zu schützen.</td></tr><tr><td>Sanded Plywood (Common: 1/2 in. x 2 ft. x 4 ft.; Actual: 0,451 in. x 23,75 in. x 47,75 in.)</td><td>Home Depot</td><td>300896</td><td>Basis für Plunger</td></tr><tr><td>Waage 55 lb x 0,5 oz</td><td>Brecknell</td><td>Modell 816965007486</td><td>Verwendet, um Käfig und Tier zu wiegen</td></tr><tr><td>Sharpie Black Fine Tip Permanent Marker 1er Pack</td><td>Ace Hardware</td><td>35010</td><td>Verwendet, um Sandwichtüten zu beschriften</td></tr><tr><td>Sharps Container - 1 Quart</td><td>ULINE</td><td>S-15307</td><td>Zum Aufbewahren gebrauchter Spritzen</td></tr><tr><td>Skunk-Ohrmarke</td><td>National Band and Tag Company</td><td>1005-1</td><td>Ohrmarken für Skunks</td></tr><tr><td>Skunk-Ohrmarkenapplikator</td><td>National Band and Tag Company</td><td>1005s1&nbsp;</td><td>Ohrmarkenzange zum Anbringen von Ohrmarken an Skunks</td></tr><tr><td>Leitungswasser</td><td>NA</td><td></td><td>Verwendet zur Reinigung von Fallen</td></tr><tr><td>Fallenleitungsdraht</td><td>Minnesota Trap Line Products, INC</td><td>11GA-01</td><td>Fallendraht zum Befestigen des Schildes an der Falle https://www.minntrapprod.com/Snares/departments/577/</td></tr><tr><td>Universal Forest 48 in. x 1 in. x 2 in. Holz-Grade-Pfosten 24er Pack</td><td>Ace Hardware</td><td>5606413</td><td>Pfosten für Fallenschild&nbsp;</td></tr><tr><td>XM Series 3 Zoll Kapazität Stahlfederklemme mit Griffen und Spitzen, 3-1/3 Zoll Kehlentiefe</td><td>Home Depot</td><td>XM7</td><td>Verwendet, um die Plastikfolie an der Falle zu befestigen oder die Fallentür offen zu halten</td></tr><tr><td>Ziploc-Sandwichtüten</td><td>ULINE</td><td>S-23777</td><td>Verwendet, um Ohrmarken zu halten</td></tr></tbody></table>

ein trap-vaccinate-release-protokoll für die immunisierung von stinktieren und weiteren tollwutvektoren gegen tollwut

A Trap-Vaccinate-Release Protocol for Immunization of Skunks and Additional Rabies Vectors Against Rabies

Ein Trap-Vaccinate-Release-Protokoll für die Immunisierung von Stinktieren und weiteren Tollwutvektoren gegen Tollwut

Oral vaccination of wildlife against rabies via the distribution of vaccine-laden baits is used widely as a management tool in Europe and North America. ...

a-trap-vaccinate-release-protocol-for-immunization-skunks-additional

Research

Forschung

JoVE Journal

Environment

Umwelt

Wir boten in Gefangenschaft Mongooses Placebo orale Tollwut-ImpfstoffKöder mit Ethyl- oder Methyl-Iophenoxsäure als Biomarker und verifizierte Köderaufnahme mit einer neuartigen Flüssigchromatographie mit Tandem-Massenspektrometrie (LC-MS/MS) Methode an.

Analyse von Iophenoxic Acid Analoga in Small Indian Mongoose (Herpestes Auropunctatus) Sera zur Verwendung als orale Tollwut-Impfung Biologischer Marker

Der direkte schnelle immunhistochemische Test (DRIT) bietet eine anerkannte Alternative zur direkten fluoreszierenden Antikörper-Diagnose (World Organization for Animal Health and World Health Organization(Who). Dieser Test ermöglicht feldbasierte Anwendungen, die bei Hirnabdrücken mit Hilfe der Lichtmikroskopie in ca. 1 h durchgeführt werden können.

Verbesserte Tollwutüberwachung mit einem direkten schnellen immunhistochemischen Test

Dieses Protokoll führt ein Standard-Labor-Betriebsverfahren für diagnostische Tests von Lyssavirus-Antigenen bei Fledermäusen in Taiwan.

Standard-Betriebsverfahren für Lyssavirus-Überwachung der Fledermauspopulation in Taiwan

Ein Pan-Lysavirus verschachtete Umkehr-Transkription Polymerase-Kettenreaktion wurde entwickelt, um speziell alle bekannten Lyssaviren zu erkennen. Die Validierung mit Tollwut-Hörnproben verschiedener Tierarten ergab, dass diese Methode eine Empfindlichkeit und Spezifität hat, die dem Gold-Standard-Fluoreszenz-Antikörper-Test entspricht und für die routinemäßige Tollwutdiagnostik verwendet werden könnte.

Bewertung einer universellen, veralteten Transcription Polymerase Chain Reaction zur Erkennung von Lyssaviren

Hier beschreiben wir eine indirekte ELISA-Sandwich-Immunocapture zur Bestimmung des immunogenen Glykoproteingehalts in Tollwut-Impfstoffen. Dieser Test verwendet einen neutralisierenden monoklonalen Antikörper (mAb-D1), der Glykoproteintrimer erkennt. Es ist eine Alternative zum in vivo NIH-Test, um die Konsistenz der Impfstoff-Potenz während der Produktion zu verfolgen.

In Vitro ELISA-Test zur Bewertung der Wirksamkeit von Tollwut-Impfstoffen

Diese Echtzeit-RT-PCR mit dsDNA interkalierenden Farbstoff ist geeignet, Lyssavirus-Infektionen zu diagnostizieren. Die Methode beginnt mit RNA, die aus Tollwut-Verdachtsproben für Ante-Mortem- oder Post-Mortem-Proben extrahiert wird, detaillierung der Master-Mix-Vorbereitung, RNA-Addition, Einrichtung der Echtzeitmaschine und korrekte Interpretation der Ergebnisse.

Pan-lyssavirus Echtzeit RT-PCR für Tollwut-Diagnose

Wir präsentieren ein vollständiges Protokoll zur postmortalen Diagnose von Tiertollwut unter Feldbedingungen mit Hilfe eines schnellen immunchromatographischen diagnostischen Tests (RIDT), von der Probenahme der Hirnbiopsie bis zur endgültigen Interpretation. Wir beschreiben auch weitere Anwendungen mit dem Gerät für molekulare Analyse und virale Genotypisierung.

Field Postmortem Rabies Rapid Immunochromatographischer Diagnostischer Test für ressourcenbegrenzte Einstellungen mit weiteren molekularen Anwendungen

Dieses Protokoll stellt einen qRT-PCR-basierten Ansatz zur Bestimmung der Virus-Nukleoprotein (N)-Genkopienummer innerhalb verschiedener anatomischer Rinderhirnstrukturen unter Verwendung von In-vitro-Transkription dar.

Quantifizierung des Tollwutvirus in verschiedenen Rinderhirnstrukturen

Diese Methode beschreibt die Verkapselung des Tollwutantigens in biologisch abbaubare polymere Mikropartikel mit strukturellen und materiellen Eigenschaften, die eine pulsierende Freisetzung nach einer vorgegebenen Verzögerung ermöglichen. Die ELISA-Bewertung des aus dem Partikelkern gewonnenen Antigens (Enzyme-linked Immunosorbent Assay) bestätigt das Vorhandensein eines intakten Glykoproteins des trimeren Tollwutvirus durch Partikelherstellung.

Herstellung pulsatiler polymerer Mikropartikel, die das Tollwutantigen verkapseln

Hier stellen wir einen schnellen und kostengünstigen Workflow zur Charakterisierung von Tollwutvirusgenomen (RABV) mit Hilfe der Nanoporentechnologie vor. Der Arbeitsablauf soll die genomikgestützte Überwachung auf lokaler Ebene unterstützen und Informationen über zirkulierende RABV-Linien und deren Einordnung in regionale Phylogenien liefern, um Maßnahmen zur Tollwutbekämpfung zu steuern.

Sequenzierung des gesamten Genoms zur schnellen Charakterisierung des Tollwutvirus mittels Nanoporentechnologie

Dieses Protokoll demonstriert den Echtzeit-Assay für die Reverse-Transkriptase-Polymerase-Kettenreaktion (RT-PCR) des Pan-Lyssavirus LN34 von der Gewebeentnahme bis zur Ergebnisinterpretation, einschließlich Aktualisierungen von Primersequenzen und Formulierungen zur Verbesserung der Assay-Leistung für einige Nicht-Tollwut-Lyssaviren und Hasentiere. Wir demonstrieren auch den Assay-Aufbau für ein Single-Well-LN34-Multiplexformat (LN34M).

Postmortale Diagnose von Tollwut bei Tieren mit dem aktualisierten, multiplexierten LN34 Echtzeit-Reverse-Transkriptase-Polymerase-Kettenreaktionsassay

Lernen Sie das Trap-Vaccinate-Release-Verfahren zur Tollwutimpfung von Stinktieren ohne chemische Immobilisierung. Diese Methode ermöglicht sichere Impfungen und unterstützt die Tollwutbekämpfung in Wildtierpopulationen.

Ein Trap-Vaccinate-Release-Protokoll für die Immunisierung von Stinktieren und weiteren Tollwutvektoren gegen Tollwut

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