2. Juni 2023
In diesem Artikel wird ein Protokoll zur manuellen Tyramid-Signalverstärkung (TSA) Multiplex-Immunfluoreszenz (mIF) in Kombination mit Bildanalyse und räumlicher Analyse beschrieben. Dieses Protokoll kann mit formalinfixierten Paraffin-eingebetteten (FFPE) Schnitten für die Färbung von zwei bis sechs Antigenen pro Objektträger verwendet werden, je nachdem, welcher Objektträgerscanner im Labor verfügbar ist.
In unserem Labor untersuchen wir menschlichen Darmkrebs. Das Fortschreiten der metastasierenden Erkrankung und das Ansprechen auf die Behandlung, einschließlich der Immuntherapie. Wir versuchen, neue prädiktive und prognostische Biomarker zu finden, indem wir die Mikroumgebung des Tumorimmuns und das intratumorale Mikrobiom bei primären und metastasierten Erkrankungen untersuchen.
In unserem Projekt implementieren wir derzeit verschiedene Technologien wie RNA-Sequenzierung, Sequenzierung des gesamten Exoms, TCR-Sequenzierung, zirkulierende zellfreie DNA-Analyse, Immunfluoreszenz und Fluoreszenz-Institutshybridisierung. Im Moment besteht unsere größte Herausforderung darin, die Hybridisierungsfärbung des Fluoreszenzinstituts mit der Tyramid-Signalverstärkungs-Multiplex-Immunfluoreszenz zu kombinieren, um die Interaktion zwischen dem Mikrobiom und den Immunzellen zu untersuchen. Unsere Methode ist robust, reproduzierbar, einfach anzuwenden und kostengünstig.
Es kann in jedem Labor eingerichtet werden, das über einen Fluoreszenzlichtscanner verfügt, und die Methode kann mit jedem kommerziell erhältlichen IHC-Antikörper verwendet werden, im Gegensatz zu kommerziell erhältlichen Kits, die normalerweise für eingeschränkte Antigene optimiert sind.
Dieser Artikel beschreibt ein Protokoll für die manuelle Tyramid-Signalverstärkung (TSA) Multiplex-Immunfluoreszenz (mIF) in Kombination mit Bild- und räumlicher Analyse. Die Methode ist anwendbar für formalin-fixierte, paraffin-eingebettete (FFPE) Schnitte zur Färbung mehrerer Antigene pro Objektträger.
Multiplex immunofluorescence (mIF) with spatial image analysis enables high-content, quantitative mapping of the tumor microenvironment (TME), supporting biomarker discovery and mechanistic de-risking in oncology pipelines. This workflow provides actionable insights into immune and stromal cell interactions, informing predictive biomarker strategies and translational research. Its reproducibility and compatibility with diverse antibodies position it as a scalable capability for enterprise-level oncology R&D.
This mIF and spatial analysis workflow bridges early discovery, biomarker validation, and translational research in oncology portfolios.