Name: Verwendung des Hickman-Katheters für den langfristigen Gefäßzugang in einem präklinischen Schweinemodell (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-03-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: Erfahren Sie die Platzierung eines Hickman-Katheters für langfristigen Gefäßzugang im Schweinemodell. Diese Methode ermöglicht zuverlässige Blutentnahme und Medikamentengabe bei minimalen Komplikationen.

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Wir möchten uns für die Unterstützung der Armee, der Navy NIH, der Air Force, der VA und des Gesundheitsministeriums in Bezug auf die AFIRM II-Bemühungen im Rahmen der Auszeichnungen CTA05: W81XWH-13-2-0052 und CTA06: W81XWH-13-2-0053 bedanken. Die U.S. Army Medical Research Acquisition Activity, 820 Chandler Street, Fort Detrick MD 21702-5014, ist das Vergabe- und Verwaltungsbüro. Meinungen, Interpretationen, Schlussfolgerungen und Empfehlungen sind die des Autors und werden nicht notwendigerweise vom Verteidigungsministerium gebilligt. Darüber hinaus möchten wir uns für die Unterstützung durch die vom US-Verteidigungsministerium vom Kongress geleiteten medizinischen Forschungsprogramme (CDMRP) und das Reconstructive Transplantation Research Program (RTRP) durch die Auszeichnungen W81XWH-17-1-0280, W81XWH-17-1-0624, W81XWH-17-1-0287 und W81XWH18-1-0795 bedanken. Wir möchten uns auch bei der Abteilung für Plastische und Rekonstruktive Chirurgie und der Johns Hopkins University School of Medicine bedanken. Darüber hinaus möchten wir uns bei dem gesamten tierärztlichen Personal bedanken, darunter Melanie Adams, Karen Goss, Haley Smoot, Kayla Schonvisky und Victoria Manahan.

Hickman-Katheter für den langfristigen Gefäßzugang bei Schweinen

<ol><li>Pontes, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incidents+related+to+the+Hickman%C2%AE+catheter%3A+identification+of+damages%5BTitle%5D)+AND+%22Revista+Brasileira+de+Enfermagem%22%5BJournal%5D)">Incidents related to the Hickman® catheter: identification of damages.</a> Revista Brasileira de Enfermagem. 71 (4), 1915-1920 (2018).</li>
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<li>Habib, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MR+imaging+of+the+yucatan+pig+head+and+neck+vasculature%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Magnetic+Resonance+Imaging%22%5BJournal%5D)">MR imaging of the yucatan pig head and neck vasculature.</a> Journal of Magnetic Resonance Imaging. 38 (3), 641-649 (2013).</li>
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Keiner der Autoren hat ein finanzielles Interesse an den in diesem Manuskript erwähnten Produkten, Geräten oder Medikamenten.

Während ZVKs in der Großtierforschung ein Spektrum von Funktionen erfüllen, fehlt in der aktuellen Literatur ein Konsensansatz für eine sichere und nachhaltige Anwendung in Langzeitstudien über 30 Tage. Das schrittweise Verfahren dieses Protokolls für die HC-Einführung, Hautsicherung und Aufbewahrung in einem handgefertigten Beutel wurde zur Qualitätsverbesserung erheblich angepasst. Als solches stellt dieses Protokoll eine Technik für die HC-Anwendung dar, die einen effizienten und effektiven intravenösen Zugang ermögli...

Die unverzichtbare Rolle zentraler Venenkatheter (ZVK) in der Patientenversorgung ist auf ihre Bequemlichkeit, ihr günstiges Sicherheitsprofil und ihre Vielseitigkeit zurückzuführen1. Zu den Funktionen eines ZVK gehören ein zuverlässiger Zugang für die totale parenterale Ernährung, die hämatopoetische Stammzelltransplantation, die Plasmapherese/Apherese und die effiziente Verabreichung von Flüssigkeiten, Blut oder Co-Medikamenten2. In der Veterinärmedizin minimieren ZVKs auch die Beschwerden der Tiere durch die schnelle Verdünnung von Reizstoffen und die Blutentnahme ohne wiederholte Venenpunktion3. Trotz ihrer breiten Anwendung stellt der Einsatz von ZVK in der Großtierforschung noch einige erhebliche Herausforderungen dar4.
Die perkutane ZVK-Platzierung über einen Führungsdraht oder einen Einführkatheter kann für nicht-veterinärmedizinische Forscher schwierig sein, insbesondere bei Tieren mit tiefen Venenstrukturen5. Eine unsachgemäße ZVK-Installationstechnik kann zu einer unbeabsichtigten Platzierung in nahe gelegenen Strukturen führen, was eine ultraschallgesteuerte Platzierung oder eine Röntgenaufnahme der Positionierung nach dem Eingriff erforderlichmacht 6. Im Vergleich zu menschlichen Operationssälen ist Ultraschall in vielen großen Tierversuchslaboren jedoch nicht ohne weiteres verfügbar. Darüber hinaus kann die langfristige Verwendung von Dauerkathetern zu einem Abknicken der Leitung, Punktion, Infektion oder Befreiung durch Tiere führen, was zu einer Unterbrechung der rechtzeitigen Behandlung, der klinischen Überwachung und der Forschungsergebnisse führen kann 4,7. Der Austausch des ZVK erfordert zusätzliche Ressourcen, einschließlich Materialbeschaffung, Operationsplanung, Fastenzeit und Röntgenzugang. ZVK-bedingte Komplikationen können daher erhebliche technische und finanzielle Hindernisse oder eine Unterbrechung der produktiven translationalen Forschung, insbesondere bei Schweinen, darstellen. Kontamination durch Futter oder Kot, Kratzen an Käfigwänden und Treten an Reizstellen können einen ZVK beeinträchtigen, und das Risiko von ZVK-bedingten Komplikationen wird durch langfristige Anwendung verstärkt. Daher erfordert die sichere und unkomplizierte Aufrechterhaltung eines ZVK bei Schweinen eine sorgfältige Abwägung der ZVK-Auswahl, der Platzierung, der Sicherung, des Schutzes, der Hygiene und der Überwachung.
Der in diesem Protokoll verwendete Hickman-Katheter (HC) ist ein getunnelter ZVK mit einer Polyestermanschette und ein bis drei Lumen, der üblicherweise für den langfristigen intravenösen Zugang bei Menschen und Tieren verwendet wird 1,4,8,9. Der getunnelte Katheteransatz ist mit geringeren Komplikationsraten und Wartungskosten im Vergleich zu nicht getunnelten Varianten verbunden10,11,12. Die Manschette reduziert die HC-Befreiung, indem sie in das subkutane Gewebe einarbeitet, das die Hautaustrittsstelle umgibt. Das mehrlumige Design ermöglicht auch die Trennung von Medikamentenverabreichung und Blutentnahmen, wodurch die Kontamination und Ungenauigkeit von Blutproben minimiert wird. Trotzdem ist die Anwendung von HC nicht ohne Herausforderungen, von denen die häufigsten Frakturen, Migrationen, Okklusionen und Infektionen sind13,14,15,16. Die ordnungsgemäße Installation und Wartung eines HC sind daher unverzichtbare Fähigkeiten beim Einsatz in der translationalen Forschung. Die derzeitige Literatur bietet jedoch nur wenige Hinweise auf bewährte Verfahren für die Verwendung von HC bei Schweinen während Langzeitversuchen 5,6,17.
Das Ziel dieser Studie ist es, einen optimierten Ansatz für die HC-Insertion in die innere Halsvene (IJV), die Hautsicherung und einen dauerhaften Schutz zu skizzieren, der langfristige katheterbedingte Komplikationen und Beschwerden bei Schweinen minimiert. Eine Erörterung der wichtigen Überlegungen für den Einsatz von HC, potenzieller Herausforderungen, die auftreten können, und Modifikationen, die die Qualität dieses Ansatzes verbessern können, ist enthalten.

<table><tbody><tr><td>#10 Klinge</td><td>Medline</td><td>MDS15110</td><td></td></tr><tr><td>0,9% steriles Natriumchlorid</td><td>Baxter&nbsp;</td><td>2F7123</td><td></td></tr><tr><td>0-0 Beschichtetes und geflochtenes nicht resorbierbares Nahtmaterial</td><td>Covidien</td><td>S-196</td><td></td></tr><tr><td>0-0 Synthetisches, monofiles, nicht resorbierbares Polypropylen-Nahtmaterial</td><td>Ethicon</td><td>8690H</td><td></td></tr><tr><td>1 Zoll Medizinisches Klebeband</td><td>3M</td><td>1548S-1</td><td></td></tr><tr><td>10 USP-Einheiten/ml Heparin-Spülung</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>306424</td><td></td></tr><tr><td>3-0 Geflochtenes resorbierbares Nahtmaterial</td><td>Covidien</td><td>SL-636 (Schneidenadel), GL-122 (Kegelnadel)</td><td></td></tr><tr><td>3-0 Monofilament Resorbierbares Nahtmaterial</td><td>Covidien</td><td>SM-922 (Schneidenadel), CM-882 (Kegelnadel)</td><td></td></tr><tr><td>4-0 Beschichtete und geflochtene nicht resorbierbare Nahtbinder</td><td>Ethicon</td><td>A303H</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td>Vedco</td><td>VINV-IPA7</td><td></td></tr><tr><td>Adson-Gewebezange</td><td>MPM Medical Supply</td><td>132-508</td><td></td></tr><tr><td>Adson-Brown Pinzette</td><td>MPM Medical Supply</td><td>106-2572</td><td></td></tr><tr><td>Luftwärmende Decke und Kissen</td><td>3M Bair Hugger</td><td>UPC 00608223595770</td><td></td></tr><tr><td>Backhaus Handtuchklemme</td><td>MPM Medical Supply</td><td>117-5508</td><td></td></tr><tr><td>Brauner Nadelhalter</td><td>MPM Medical Supply</td><td>110-1513</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphin</td><td>PAR Pharmaceutical</td><td>3003408B</td><td></td></tr><tr><td>Cefazolin</td><td>Hikma Farmacuetica (Portugal)</td><td>PLB 133-WES/1</td><td></td></tr><tr><td>Chlorhexidin</td><td>Vet One</td><td>501027</td><td></td></tr><tr><td>Clave</td><td>Baxter</td><td>7N8399</td><td></td></tr><tr><td>Baumwollpolsterung</td><td>Medline</td><td>NON6027</td><td></td></tr><tr><td>Debakey Pinzette</td><td>MPM Medical Supply</td><td>106-5015</td><td></td></tr><tr><td>Elastisches Klebeband</td><td>3M</td><td></td><td></td>XH002016489</tr><tr><td>Halstead Mückenzange</td><td>MPM Medical Supply</td><td>115-4612</td><td></td></tr><tr><td>Hickman Katheter</td><td>Bard Access Systems</td><td>603710</td><td></td></tr><tr><td>Hickman Katheter Reparaturset, 7Fr, rote und weiße Anschlüsse</td><td>Bard Access Systems</td><td>0601690 (rot), 0601680 (weiß), 502017</td><td></td></tr><tr><td>Kelly hämostatische Pinzette</td><td>MPM Medical Supply</td><td>115-7014</td><td></td></tr><tr><td>Ketamin</td><td>Vet One</td><td>383010-03</td><td></td></tr><tr><td>Laktierte Ringer</td><td>Baxter</td><td>2B2324X</td><td></td></tr><tr><td>Maropitant Citrat</td><td>Zoetis</td><td>106</td><td></td></tr><tr><td>Mayo Schere</td><td>MPM Medical Supply</td><td>103-5014</td><td></td></tr><tr><td>Metzenbaum Schere</td><td>MPM Medical Supply</td><td>132-711</td><td></td></tr><tr><td>Pantoprazol</td><td>JH Apotheke</td><td>NDC 0143-9284-10</td><td></td></tr><tr><td>Skalpellklingengriff</td><td>Medline</td><td>MDS10801</td><td></td></tr><tr><td>Venenpick</td><td>SAI Infusionstechnologien</td><td>VP-10</td><td></td></tr><tr><td>Veterinär-Augensalbe</td><td>Dechra</td><td>IS4398</td><td></td></tr><tr><td>Xylazin</td><td>Vet One</td><td>510004</td><td></td></tr></tbody></table>

verwendung des hickman-katheters für den langfristigen gefäßzugang in einem präklinischen schweinemodell

Hickman Catheter Use for Long-Term Vascular Access in a Preclinical Swine Model

Zentralvenenkatheter (ZVK) sind in der Großtierforschung von unschätzbarem Wert, da sie eine Vielzahl von medizinischen Anwendungen ermöglichen, darunter die Blutüberwachung und die zuverlässige intravenöse Verabreichung von Flüssigkeit und Medikamenten. Insbesondere der getunnelte mehrlumige Hickman-Katheter (HC) wird aufgrund seiner geringeren Befreiungs- und Komplikationsraten häufig in Schweinemodellen verwendet. Trotz geringerer Komplikationen im Vergleich zu anderen ZVKs stellt die HC-bedingte Morbidität eine große Herausforderung dar, da sie laufende Studien erheblich verzögern oder anderweitig negativ beeinflussen kann. Das richtige Einsetzen und Warten von HCs ist von größter Bedeutung, um diese Komplikationen zu vermeiden, aber es gibt keinen Konsens über Best Practices. Der Zweck dieses Protokolls ist es, einen Ansatz für die Insertion und Aufrechterhaltung eines getunnelten HC in Schweinen umfassend zu beschreiben, der HC-bedingte Komplikationen und Morbidität mildert. Die Anwendung dieser Techniken bei >100 Schweinen hat zu komplikationsfreien Patentlinien von bis zu 8 Monaten und zu keiner katheterbedingten Mortalität oder Infektion der ventralen Operationsstelle geführt. Dieses Protokoll bietet eine Methode zur Optimierung der Lebensdauer des HC und eine Anleitung zur Herangehensweise an Probleme während des Gebrauchs.

Über 100 Schweine wurden in unserem Labor erfolgreich HC eingebracht. Der HC kann in weniger als 1 Stunde mit einem Chirurgen, Assistenten, Zirkulator und Anästhesisten sicher und korrekt platziert und gesichert werden. Die Herstellung des Katheterbeutels dauert etwa 15-20 Minuten. Die Technik ist unkompliziert und leicht zu erlernen und wurde von Tierärzten, chirurgischen Assistenzärzten und Medizinstudenten unter Anleitung durchgeführt.
HCs sind bis zu 8 Monate lang ohne Komplikationen oder ...

Es wird ein zuverlässiger und reproduzierbarer Ansatz für das Einführen und Halten eines getunnelten Hickman-Katheters für den langfristigen Gefäßzugang bei Schweinen beschrieben. Das Legen eines zentralen Venenkatheters ermöglicht eine bequeme tägliche Entnahme von Vollblut von wachen Tieren und die intravenöse Verabreichung von Medikamenten und Flüssigkeiten.

Verwendung des Hickman-Katheters für den langfristigen Gefäßzugang in einem präklinischen Schweinemodell

Central venous catheters (CVCs) are invaluable devices in large animal research as they facilitate a wide range of medical applications, including blood ...

Dieses Protokoll beschreibt eine zuverlässige und reproduzierbare Technik für das Einführen und Halten eines Tunnel-Hickman-Katheters für den langfristigen Gefäßzugang in einem Großtiermodell. Der Ansatz ermöglicht eine bequeme tägliche Entnahme von Vollblutproben von wachen Tieren und die intravenöse Verabreichung von Medikamenten und Flüssigkeiten. Einige der größten Herausforderungen für die langfristigen zentralen Venenleitungen bei großen Tieren sind Infektionen und Schäden.Da große Tiere gelegentlich in der Lage sind, sich Zugang zu den Leinen zu verschaffen und mechanische Traumata zu verursachen. Um diese Herausforderungen zu mildern, hat unsere Gruppe unsere speziellen Beutel erfunden, die die Leitung schützen und gleichzeitig einen einfachen Zugang zum selben Katheter ermöglichen. Zentralvenenkatheter sind von unschätzbarem Wert in der Großtierforschung, da sie eine Vielzahl von medizinischen Anwendungen ermöglichen, aber es gibt keinen Konsens über die besten Praktiken für ihre Einführung und Wartung.Als Reaktion darauf haben wir ein Protokoll vorgeschlagen, das umfassend einen Ansatz für die korrekte Platzierung eines getunnelten Hickman-Katheters bei Schweinen beschreibt, der katheterbedingte Komplikationen und Morbidität minimiert. Die Anwendung unseres Ansatzes bei über 100 Schweinen hat zu einer langfristigen Durchgängigkeit und minimalen Komplikationsraten geführt. Dieses Protokoll bietet eine Methode zur Optimierung der Lebensdauer des Hickman-Katheters und eine Anleitung zur Herangehensweise an Probleme während seiner Anwendung.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Hier präsentieren wir ein Protokoll zur Beurteilung der kardiopulmonalen Funktion bei wachen Schweinen, in Ruhe und während abgestufter Laufbandübungen. Die chronische Instrumentierung ermöglicht wiederholte hämodynamische Messungen ohne Einfluss von kardiodepressiven Anästhetika.

Chirurgische Platzierung von Kathetern für die langfristige Herz-Kreislauf und Sportmedizin in Swine

Das Video beschreibt im Detail die Katheterisierung der distalen brachial Arterie bei Schweinen. Dieses Verfahren genau misst arteriellen Blutdruck und ist eine einfache und schnelle Methode, um Proben für Gasmessungen arterielles Blut zu sammeln.

Brachial Arterie Katheterisierung bei Schweinen

Hier präsentieren wir einen geschlossenen Brustansatz für admittance-basierte biventrikuläre Druck-Volumen-Loop-Aufzeichnungen bei Schweinen mit akuter rechtsventrikulärer Dysfunktion.

Biventrikuläre Druck-Volumen-Loop-Aufnahmen mit Einlasskathetern im Schweinemodell

Dieses Protokoll beschreibt ein minimal-invasives chirurgisches Verfahren zur aufsteigenden Aortenbänder beim Schwein.

Ein minimal-invasives Modell der Aortenstenose beim Schwein

Diese Studie stellt ein hybrides quantitatives Modell für axilläre junktionale Blutungen bei Schweinen vor, das die Bewertung der präklinischen hämostatischen Intervention verbessert.

Ein neues hybrides quantitatives Bewertungsmodell für axilläre junktionale Blutungen bei Schweinen

In dieser Studie wird ein Schweinemodell zur Bewertung von Transplantaten mit kleinem Durchmesser in Oberschenkelarterien vorgestellt. Das Modell ahmt die Gefäßdynamik des Menschen nach und bewertet umfassend die Durchgängigkeit von Transplantaten, die Hämodynamik und den Gefäßumbau. Es bietet eine wertvolle Plattform, um Gefäßtransplantate zu testen und mit Doppler-Ultraschall und Angiographie zu überwachen.

Implantation eines femoralen Gefäßtransplantats in einem Schweinemodell zur Prüfung von Gefäßtransplantaten mit kleinem Durchmesser

Eine Methode des Gentransfers für die Behandlung von ischämischen Herzinsuffizienz wird anhand einer Schweinegrippe-Modell des Myokardinfarkts. Unsere einfache und reproduzierbare Methode ermöglicht es uns, leicht Beurteilung der Wirksamkeit verschiedener Gen-Transfers mit einer sehr einfachen und reproduzierbaren Art und Weise.

Gentransfer bei ischämischen Herzinsuffizienz in einem vorklinischen Modell

Großtiermodelle haben gute translationale Werte in der Untersuchung der Physiologie und Pharmakologie von neonataler Asphyxie. Mit neugeborenen Ferkeln, entwickeln wir ein experimentelles Protokoll neonatale Asphyxie die Vorteile eines Studiums der systemischen und regionalen Hämodynamik, Sauerstoff-Transport mit biochemischen und pathologischen Wege und Zusammenhänge hat zu simulieren.

A Swine Modell von neonataler Asphyxie

Zu eng mimischen Modus von Brandverletzungen erfordert das Zusammenspiel von klinischen Beobachtungen und Studien in Tiermodellen. In dieser Studie wurde ein Schweine-Modell der schwere Brandverletzung gegründet, um einer experimentellen Dressing in physiologische und pathophysiologische Einstellungen zu beurteilen.

Schwere Brandverletzungen in einem Schweine-Modell zur Beurteilung der klinischen Dressing

Wir beschreiben ein chirurgisches Verfahren, das zur indufären Ischämie bei Kaninchen mit Hyperlipidämie und Diabetes eingesetzt wird. Diese Operation dient als präklinisches Modell für Erkrankungen der peripheren Arterienerkrankung bei Patienten. Die Angiographie wird auch als Mittel zur Messung des Ausmaßes der eingeführten Ischämie und der Wiederherstellung der Perfusion beschrieben.

Präklinische Modell von Hind Limb Ischemia in diabetischen Kaninchen

Erfahren Sie die Platzierung eines Hickman-Katheters für langfristigen Gefäßzugang im Schweinemodell. Diese Methode ermöglicht zuverlässige Blutentnahme und Medikamentengabe bei minimalen Komplikationen.

Verwendung des Hickman-Katheters für den langfristigen Gefäßzugang in einem präklinischen Schweinemodell

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