June 23rd, 2023
Hier diskutieren wir einen Arbeitsablauf zur Präparation, Sektion, Montage und Bildgebung von lebenden Explantatgehirnen aus Drosophila melanogaster-Larven des dritten Stadiums, um die zelluläre und subzelluläre Dynamik unter physiologischen Bedingungen zu beobachten.
Unsere Forschung konzentriert sich auf die Untersuchung des Einflusses der asymmetrischen Zellteilung (ACD) auf die Proliferation und Differenzierung von Stammzellen. Wir verwenden Drosophila-neurale Stammzellen oder Neuroblasten als Modell, um die Mechanismen, Regulationsmechanismen und Auswirkungen der asymmetrischen Zellteilung auf die Entwicklung und Neurogenese zu verstehen. Die jüngsten Entwicklungen im Bereich der künstlichen Intelligenz haben große Fortschritte bei der Bildquantifizierung und -analyse gemacht, was das Gebiet der Bildgebung lebender Zellen erheblich vorangetrieben hat.
Die Aufrechterhaltung der Probenqualität für einen Langzeitfilm ist eine langjährige Herausforderung. Es ist zwar aufschlussreich, eine Probe acht bis 10 Stunden lang zu beobachten, aber logistische Einschränkungen, wie z. B. die Anforderungen an die Bildgebung der Probe und die verfügbaren Bildgebungswerkzeuge, machen es schwierig. Unser Protokoll adressiert dieses Problem, indem es eine Langzeitbildgebung demonstriert, ohne die Qualität der Probe zu beeinträchtigen.
Unsere Technik konnte von Neulingen leicht übernommen und auf das Feld angewendet werden. Mit etwas Zeit und Übung kann man kurz- und langfristige Filme erstellen, die das Potenzial haben, aufschlussreiche und aussagekräftige Daten zu liefern.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Dieser Artikel beschreibt einen Arbeitsablauf zur Vorbereitung, Dissektion, Montage und Bildgebung von lebenden Explantat-Gehirnen von Drosophila melanogaster-Larven im dritten Larvenstadium. Der Fokus liegt auf der Beobachtung von zellulären und subzellulären Dynamiken unter physiologischen Bedingungen, insbesondere im Kontext der asymmetrischen Zellteilung in neuronalen Stammzellen.
Live-cell imaging of Drosophila third instar larval brains enables direct observation of neural stem cell asymmetric division, supporting mechanistic de-risking and target validation in neurodevelopmental research. This workflow addresses the challenge of maintaining sample viability for extended imaging, providing robust, quantitative data on cell polarity, spindle orientation, and differentiation. The method enhances predictive confidence at early discovery inflection points and supports translational continuity for neurogenesis-focused portfolios.
This live-cell imaging protocol integrates from early discovery through lead identification and preclinical research in neurobiology-focused pipelines.