30. Juni 2023
Dieses Protokoll stellt einen Arbeitsablauf für die Vermehrung, Differenzierung und Färbung von kultivierten SH-SY5Y-Zellen und primären Hippocampusneuronen der Ratte für die Visualisierung und Analyse der mitochondrialen Ultrastruktur unter Verwendung der stimulierten Emissionsverarmungsmikroskopie (STED) dar.
Unser Forschungsprogramm konzentriert sich auf strukturelle und funktionelle Aspekte der Mitochondrien, insbesondere im Zusammenhang mit altersbedingten Dysfunktionen. Zu diesem Zweck verwenden wir ein breites Spektrum an biophysikalischen, biochemischen und strukturellen Techniken, um die grundlegenden Mechanismen des mitochondrialen Alterns zu erforschen und therapeutische Interventionen zur Erhaltung und Wiederherstellung der mitochondrialen Gesundheit zu entwickeln. Mitochondriale Funktion und Struktur sind untrennbar miteinander verbunden.
Standard-Lichtmikroskopie-Techniken eignen sich für die Messung großräumiger mitochondrialer Merkmale wie grundlegende Morphologie und Netzwerkstrukturen. Die Analyse der mitochondrialen Ultrastruktur oder von Merkmalen, die eine höhere Auflösung als die herkömmliche optische Mikroskopie erfordern, erfolgt in der Regel mit Elektronenmikroskopie oder Tomographie an fixierten Proben. Die hochauflösende Mikroskopie ist ein fluoreszenzbasiertes Bildgebungsverfahren, das Merkmale jenseits der Beugungsgrenze misst.
Für Mitochondrien umfasst dies Messungen der nanoskaligen Proteinverteilung und der Cristae-Architektur. Das hier beschriebene Stead-Imaging-Protokoll ermöglicht es den Forschern, die detaillierte Struktur der inneren Membran in lebenden Zellen zu messen. Die Bildgebung lebender Zellen ermöglicht es uns, komplexe Merkmale von Cristae unter physiologisch relevanten Bedingungen zu beobachten und quantitativ zu analysieren, ohne dass eine Probenfixierung erforderlich ist.
Dies wird den Forschern neue Einblicke in die dynamischen Veränderungen geben, die in ultrastrukturellen Merkmalen auftreten, und ihre zeitlichen Reaktionen auf Stressoren und pharmakologische Verbindungen.
Diese Studie stellt ein Protokoll für die Vermehrung, Differenzierung und Färbung von SH-SY5Y-Zellen und primären hippocampalen Neuronen von Ratten vor. Ziel ist es, die mitochondriale Ultrastruktur mittels STED-Mikroskopie (stimulierte Emissionsdepletion) sichtbar zu machen und zu analysieren, um Einblicke in die strukturelle Dynamik der Mitochondrien in lebenden Zellen zu erhalten.
Die Live-Cell-STED-Bildgebung der Ultrastruktur der mitochondrialen Innenmembran in neuronalen Modellen ermöglicht eine direkte, quantitative Visualisierung der Kriterienarchitektur und nanoskaligen Proteinverteilungen unter physiologisch relevanten Bedingungen. Diese Fähigkeit schließt eine entscheidende Lücke beim Verknüpfen der mitochondrialen Struktur mit Funktion und Krankheitsmechanismen und unterstützt eine prädiktive Aussagekraft in der frühen Forschung zu Neurodegeneration sowie der Zielvalidierung. Die Integration der Super-Resolution-Bildgebung in Entdeckungsworkflows verbessert die mechanistische Risikominimierung und unterstützt risikoadjustierte Portfolioentscheidungen für neurotherapeutische Programme.
Dieses Live-Cell-STED-Abbildungssprotokoll integriert sich in den Übergang von der Entdeckung zur präklinischen Forschung und verbindet frühe mechanistische Studien mit translationsmedizinischer Forschung in Modellen neuronaler Erkrankungen.