October 6th, 2023
Wir haben eine Gewebeverarbeitungstechnik entwickelt, bei der ein Vibratom und in Agarose eingebettetes Lungengewebe verwendet werden, um Lungenschnitte zu erzeugen, wodurch hochauflösende Bilder der Lungenarchitektur aufgenommen werden können. Wir verwendeten Immunfluoreszenzfärbung, um die räumliche Proteinexpression anhand spezifischer Lungenstrukturmarker zu beobachten.
Dieses Protokoll ist besonders nützlich bei großen Tiermodellen für Lungentransplantation und -regeneration, wie z. B. Schweinen, bei denen wir im Laufe der Zeit kleine Stücke beproben können. Diese Technik kann uns helfen, die räumliche Biologie, die in diesen Modellen eine Rolle spielt, besser zu verstehen. Diese Technik erzeugt minimal bearbeitete Lungenschnitte, die für die Immunfluoreszenzbildgebung geeignet sind, ohne dass eine Antigengewinnung erforderlich ist, und hat sich bei allen bisher getesteten Antikörpern als wirksam erwiesen.
Dieses Verfahren kann angepasst werden, um etwas dickere Abschnitte, z. B. etwa einen Millimeter, zu schneiden, die dann in der Lichtblattfluoreszenzmikroskopie verwendet werden können, um die räumliche Proteinexpression in einem dreidimensionaleren Volumen zu untersuchen. Unsere Forschung untersucht Faktoren, die die Abstoßung von Lungentransplantaten beeinflussen, und entwickelt Therapien, um die Abstoßung mit unserem Schweinemodell zu reduzieren. Diese Technik hilft, räumliche Proteinveränderungen zu verstehen, die sich auf die Transplantationsergebnisse nach der Operation auswirken.
Wir verwenden diese Technik derzeit, um die räumliche Proteinexpressionslandschaft in unserem Schweinelungentransplantationsmodell zu untersuchen. Wir hoffen, dass es uns helfen wird, die Mechanismen hinter unseren experimentellen Therapien besser zu verstehen. Der Schlüssel zum Erfolg liegt hier in Vibratomsichtungen, hohe Blattamplituden und niedrigere Kraftgeschwindigkeiten sind wichtige Dinge, auf die man achten sollte, wenn die Sektion schlecht läuft.
Diese Studie präsentiert eine neuartige Gewebebearbeitungstechnik unter Verwendung eines Vibratoms und in Agarose eingebettetem Lungengewebe zur Erzeugung hochauflösender Lungenschnitte. Die Methode ermöglicht Immunfluoreszenz-Färbungen zur Beobachtung der räumlichen Proteinexpression in der Lungenarchitektur.
Automated vibratome sectioning of agarose-embedded lung tissue enables reproducible, minimally processed lung slices for multiplex fluorescence imaging across species. This workflow addresses the challenge of preserving native lung architecture and antigenicity, supporting high-content spatial protein analysis critical for translational lung research. The approach enhances predictive confidence in preclinical lung models and informs mechanistic studies of injury, regeneration, and transplant outcomes.
This method integrates from early discovery through preclinical validation, supporting workflows in lung injury, regeneration, and transplantation research.