Name: Schnelle und effiziente Anreicherung von Mikroglia des Rückenmarks der Maus (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-09-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 15 s
Description: Erfahren Sie eine Methode zur Anreicherung von Mikroglia aus dem Rückenmark der Maus mit bis zu 99% Reinheit. Dieses Protokoll ermöglicht präzise Studien zu Neuroinflammation und chronischen Schmerzen.

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Diese Arbeit wurde durch Stipendien des National Council of Science and Technology (CONACYT) unterstützt (702361). Die Autoren würdigen das Ph.D.-Programm in Biological Chemical Sciences der National School of Biological Sciences des National Polytechnic Institute.

Die Studie wurde in Übereinstimmung mit der offiziellen mexikanischen Norm NOM-062-ZOO-1999 und dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Versuchstieren durchgeführt. Die Genehmigung für die Studie wurde von den Ausschüssen für Forschung, Ethik und Biosicherheit des mexikanischen Kinderkrankenhauses (HIM/2023/006) und der Kommission für Forschung und Bioethik des Allgemeinen Krankenhauses von Mexiko Eduardo Liceaga (DI/21/501/04/62) erteilt. Drei C57BL/6-Mäuse im Alter von 6 bis 8 Wochen wurden aus dem Mexico Children's Hospital bezogen, wo sie unter isolierten Bedingungen in belüfteten Racks in Übereinstimmung mit den institutionellen Richtlinien für die Pflege und Verwendung von Tieren aufgezogen wurden.
1. Vorbereitung von Materialien und Reagenzien
<ol><li>Ca2+ und Mg2+ freies PBS sowie Hank's Balanced Salt Solution (HBSS) auf 37 °C vorwärmen.</li>
	<li>Ergänzen Sie die HBSS-Lösung mit 100 μg/ml Liberase und 4 μg/ml DNase (HBSS-LD). Stellen Sie sicher, dass die Lösung einen physiologischen pH-Wert von 7,4 beibehält. HINWEIS: 1 ml Arbeitslösung pro Rückenmark ist erforderlich.</li>
	<li>Bereiten Sie eine isotonische 90%ige Lösung für die Dichtegradientenzentrifugation vor (handelsüblich, siehe Materialtabelle) und wärmen Sie sie auf 37 °C vor.</li>
	<li>Bereiten Sie den Färbepuffer vor, indem Sie 5 % hitzeinaktiviertes fötales Kälberserum (FBS) mit PBS kombinieren, und lagern Sie die Mischung auf Eis.</li>
	<li>Dulbecco's Modified Eagle's Medium-High Glucose (1g/L) (DMEM) auf 37 °C vorwärmen.</li>
	<li>Ergänzen Sie das DMEM-Medium mit 10 % FBS, 2 mM L-Glutamin, 200 U/ml Penicillin, 200 μg/ml Streptomycin und 500 pg/ml Amphotericin B (siehe Materialtabelle), um DMEM-S herzustellen.</li>
</ol>2. Dissektion und Präparation des Rückenmarks
<ol><li>Euthanasieren Sie die Maus mit einer intraperitonealen Überdosis Pentobarbital in einer Dosis von 150 mg/kg. Sterilisieren Sie den Thorax und den Rücken der Maus mit 70%igem Ethanol. HINWEIS: Vergewissern Sie sich, dass die Euthanasie erfolgreich war, bevor Sie mit der Sektion der Maus fortfahren.</li>
	<li>Rasieren Sie den thorakolumbalen Bereich und befestigen Sie die Extremitäten mit Klebeband am Sezierbrett.</li>
	<li>Machen Sie mit einem Skalpell einen vorsichtigen Schnitt entlang der dorsalen Mittellinie vom Hinterhaupt bis zum Sakralbereich (Abbildung 2).</li>
	<li>Mit Hilfe eines stereoskopischen Operationsmikroskops wird in Schichten präpariert, bis die Lendenwirbelsäule erreicht ist und der letzte Rippenbogen identifiziert wird. HINWEIS: Die 13 Rippenbögen sind in den Brustwirbeln artikuliert; wenn sie präpariert werden, werden sie oberhalb des L1-Wirbelssichtbar 2.</li>
	<li>Bestimmen Sie den letzten Halswirbel und das Kreuzbein und machen Sie dann einen Schnitt, um die Wirbelsäule zu trennen (Abbildung 2).</li>
	<li>Führen Sie mit einer Präparierzange eine dorsale Laminektomie der Wirbel durch, um das Rückenmark zu extrahieren (Abbildung 3A-D). HINWEIS: Mit Ausnahme der ersten beiden Halswirbel (Atlas und Achse) haben alle beweglichen Wirbel ein gemeinsames morphologisches Design in verschiedenen Regionen (Hals-, Brust- oder Lendenwirbelsäule). Jeder typische bewegliche Wirbel weist an seinem vorderen Ende einen zylindrischen Wirbelkörper auf. An der Rückseite des Körpers ist ein knöcherner Bogen befestigt, der als Wirbelbogen (Neuralbogen) bezeichnet wird und aus Laminae und Dornfortsätzen besteht. Zwischen diesen Strukturen liegt das Foramen vertebralis15.</li>
	<li>Entfernen Sie die Nerven, die durch die Foramina (dorsale und ventrale Wurzeln) austreten, die das periphere Nervensystem bilden und infiltrierte Makrophagen enthalten können (Abbildung 3D). HINWEIS: Es ist nicht notwendig, die Pia mater oder die Hirnhäute zu entfernen, da das Dichtegradientenmedium kontaminierende Astrozyten effektiv eliminiert. Darüber hinaus verkürzt die Retention der Hirnhäute die Reinigungszeit und verbessert die Lebensfähigkeit.</li>
</ol>3. Gewebeverdauung und Isolierung von Mikroglia
<ol><li>Legen Sie das Rückenmark auf das Präparierbrett und schneiden Sie das Rückenmark mit einer Vannas-Schere in 2 mm große Stücke, was durchschnittlich 10 Stücke ergibt.</li>
	<li>Die Abschnitte des Rückenmarks werden in ein 2-ml-Mikroröhrchen mit flachem Boden überführt (Abbildung 3E,F).</li>
	<li>1 ml der HBSS-LD-Arbeitslösung zugeben (Schritt 1.2). Bei 37 °C 25 min inkubieren, alle 5 min kräftig vortexieren.</li>
	<li>Den Inhalt jedes Aufschlusses durch ein 40-μm-Sieb passieren und dann 7 ml HBSS mit 2 % FBS hinzufügen, um den Aufschluss zu neutralisieren.</li>
	<li>Zerkleinern Sie das verbleibende Gewebe mit einem 1-ml-Spritzenkolben. Die Suspension wird in einem konischen 50-ml-Röhrchen 5 min bei 220 x g, 4 °C zentrifugiert.</li>
	<li>Verwerfen Sie den Überstand mit einer 1-ml-Mikropipette und resuspendieren Sie das Pellet in 2 ml HBSS mit 2 % FBS in einem konischen 15-ml-Röhrchen. Mit 2 ml isotonischem Dichtegradientenmedium mit 90 % kombinieren. 25 min bei 160 x g, 18 °C zentrifugieren. HINWEIS: Verwenden Sie langsames Beschleunigen und vermeiden Sie es, die Bremse zu benutzen.</li>
	<li>Verwenden Sie eine Transferpipette, um die Schnittstelle zu entnehmen und in ein konisches 15-ml-Röhrchen zu überführen. Die Zellen werden mit 10 ml PBS gewaschen und 5 Minuten lang bei 220 x g und 4 °C zentrifugiert.</li>
	<li>Resuspendieren Sie die Zellen in DMEM-S (Schritt 1.6) und lagern Sie sie auf Eis.</li>
</ol>4. Bestimmung der Reinheit/Lebensfähigkeit
<ol><li>Für die Quantifizierung lebensfähiger Zellen mit einer Hämozytometerkammer wird eine 0,4%ige Trypanblaufärbung verwendet (siehe Materialtabelle). HINWEIS: Im Durchschnitt liefert eine einzelne Maus 4-6 Millionen Zellen.</li>
	<li>Um lebensfähige Zellen mit einem Durchflusszytometer zu quantifizieren, verwenden Sie die kommerziell erhältliche aminreaktive Fluoreszenzfarbstofffärbung (siehe Materialtabelle).<ol><li>1 Million Zellen in ein 5-ml-Polystyrol-Rundbodenröhrchen (FACS) überführen. Verdünnen Sie den Fluoreszenzfarbstoff mit PBS in einem Verhältnis von 1:1000 (wodurch die Arbeitslösung für die Lebensfähigkeit entsteht).</li>
		<li>Die Proben werden mit der Viabilitätslösung im Dunkeln bei 4 °C für 30 min inkubiert. Waschen Sie die Zellen zweimal mit eiskaltem PBS. Resuspendieren Sie die Zellen in 400 μl Färbepuffer (Schritt 1.4).</li>
		<li>Blockieren Sie die Zellen mit 2,4G2 Anti-FcRIII/I (siehe Materialtabelle) im eiskalten Färbepuffer für 15 min bei 4 °C.</li>
		<li>Formulieren Sie den Antikörper-Färbecocktail durch Zugabe der fluoreszenzmarkierten monoklonalen Antikörper CD45-PerCP und CD11b-eFluor 450 zum Färbepuffer (in einer Verdünnung von 1:300) (siehe Materialtabelle). HINWEIS: Obwohl beide Techniken verfügbar sind, wählen Sie diejenige aus, die am besten zum nachfolgenden Protokoll passt.</li>
		<li>Die Proben mit dem Antikörper-Färbecocktail werden im Dunkeln bei 4 °C für 30 min inkubiert. Waschen Sie die Zellen zweimal mit eiskaltem Färbepuffer. Resuspendieren Sie die Zellen in 400 μl Färbepuffer.</li>
		<li>Erfassen Sie 250.000 Ereignisse auf einem Durchflusszytometer, wie durch die Gating-Strategie in Schritt 6 beschrieben (Abbildung 4).</li>
	</ol></li>
</ol>5. Immunfluoreszenz-Färbung
<ol><li>Legen Sie ein vorbehandeltes Deckglas in eine Vertiefung einer 6-Well-Platte. HINWEIS: Um Deckgläser zu behandeln, geben Sie sie in eine Petrischale mit 500 μl L-Polylysin-Lösung (0,01 mg/ml, siehe Materialtabelle) und inkubieren Sie sie 1 Stunde lang. Waschen Sie sie anschließend dreimal mit destilliertem Wasser und lassen Sie sie trocknen.</li>
	<li>Säen Sie 200.000 Zellen mit 500 μl DMEM-S-Lösung auf das behandelte Deckglas. 24 Stunden inkubieren.</li>
	<li>Entfernen Sie die Deckgläser und fixieren Sie die Zellen mit 3,7 % Paraformaldehyd (PFA) für 20 Minuten bei Raumtemperatur. Waschen Sie die Deckgläser dreimal mit eiskaltem PBS.</li>
	<li>Permeabilisieren Sie die Zellen mit 0,2% Triton X-100 in PBS für 15 min bei Raumtemperatur. Anschließend die Deckgläser dreimal mit kaltem PBS waschen. Blockieren Sie die Zellen mit 0,2% BSA in PBS für 1 h bei Raumtemperatur.</li>
	<li>Die fluoreszenzmarkierten monoklonalen Antikörper (in einer Verdünnung von 1:300, siehe Materialtabelle) werden in der Blockierungslösung verdünnt und 1 h bei Raumtemperatur inkubiert. Waschen Sie die Deckgläser dreimal mit eiskaltem PBS.</li>
	<li>Tragen Sie DAPI-haltiges Eindeckmedium auf den Objektträger auf und versiegeln Sie es dann mit einem Deckglas. HINWEIS: Die Objektträger können sofort mit einem Fluoreszenz- oder Konfokalmikroskop analysiert oder bis zu 3 Monate bei -20 °C gelagert werden.</li>
</ol>6. Gating-Strategie für Rückenmarksmikroglia
<ol><li>Generieren Sie ein Punktdiagramm und richten Sie ein Gate ein, um lebensfähige Zellen auf der Grundlage der Viabilitätsfärbung und eines leeren Fluoreszenzkanalszu isolieren 16. Schließen Sie nicht lebensfähige Zellen aus.</li>
	<li>Erstellen Sie ein weiteres Diagramm unter Verwendung von Vorwärts- und Seitenstreuparametern, um Trümmerzu eliminieren 16.</li>
	<li>Entwicklung eines zusätzlichen Punktdiagramms und Analyse der Expression von CD11b und CD45 zur Differenzierung von Mikroglia.</li>
</ol>

Extraktion und enzymatische Aufreinigung von Mikroglia aus dem Rückenmark der Maus

<ol><li>Schröder,, Moser,, Huggenberger, <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSchr%C3%B6der%2C+H+%22Neuroanatomy+of+the+Mouse%22">Neuroanatomy of the Mouse</a>. , Springer, Switzerland. 59-78 (2020).</li>
<li>Sengul, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytoarchitecture+of+the+spinal+cord+of+the+postnatal+%28P4%29+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Anat+Rec%22%5BJournal%5D)">Cytoarchitecture of the spinal cord of the postnatal (P4) mouse.</a> Anat Rec. 295, 837-845 (2012).</li>
<li>Bab, I., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBab%2C+I+%22Microtomographic+atlas+of+the+mouse+skeleton%22">Microtomographic atlas of the mouse skeleton</a>. VIII, First ed, Springer. 205(2007).</li>
<li>Nayak, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+development+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Microglia development and function.</a> Annu Rev Immunol. 32, 367-402 (2014).</li>
<li>Martinez, F. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+activation+and+polarization%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Biosci%22%5BJournal%5D)">Macrophage activation and polarization.</a> Front Biosci. 13, 453-461 (2008).</li>
<li>Masuda, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+heterogeneity+in+the+single-cell+era%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Microglia heterogeneity in the single-cell era.</a> Cell Rep. 30 (5), 1271-1281 (2020).</li>
<li>Prinz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+biology%3A+one+century+of+evolving+concepts%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Microglia biology: one century of evolving concepts.</a> Cell. 179 (2), 292-311 (2019).</li>
<li>de Haas, A. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Region-specific+expression+of+immunoregulatory+proteins+on+microglia+in+the+healthy+CNS%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">Region-specific expression of immunoregulatory proteins on microglia in the healthy CNS.</a> Glia. 56 (8), 888-894 (2008).</li>
<li>Xuan, F. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+of+microglia+in+the+brain+and+the+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Cell+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Differences of microglia in the brain and the spinal cord.</a> Front Cell Neurosci. 13, 504(2019).</li>
<li>Paolicelli, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+states+and+nomenclature%3A+A+field+at+its+crossroads%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Microglia states and nomenclature: A field at its crossroads.</a> Neuron. 110 (21), 3458-3483 (2022).</li>
<li>Li, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+IL-36%CE%B3%2FIL-36R+participates+in+the+maintenance+of+chronic+inflammatory+pain+through+astroglial+JNK+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">Spinal IL-36γ/IL-36R participates in the maintenance of chronic inflammatory pain through astroglial JNK pathway.</a> Glia. 67 (3), 438-451 (2019).</li>
<li>Prinz, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+and+central+nervous+system-associated+macrophages-from+origin+to+disease+modulation%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Microglia and central nervous system-associated macrophages-from origin to disease modulation.</a> Annu Rev Immunol. 39, 251-277 (2021).</li>
<li>Yip, P. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+isolation+and+culture+of+primary+microglia+from+adult+mouse+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Rapid isolation and culture of primary microglia from adult mouse spinal cord.</a> J Neurosci Methods. 183 (2), 223-237 (2009).</li>
<li>Akhmetzyanova, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Severity-+and+time-dependent+activation+of+microglia+in+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mo.+Sci%22%5BJournal%5D)">Severity- and time-dependent activation of microglia in spinal cord injury.</a> Int J Mo. Sci. 24 (9), 1-16 (2023).</li>
<li>Mahadevan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy+of+the+vertebral+column%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Anatomy of the vertebral column.</a> Surgery. 36 (7), 327-332 (2018).</li>
<li>Krukowski, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporary+microglia-depletion+after+cosmic+radiation+modifies+phagocytic+activity+and+prevents+cognitive+deficits%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Temporary microglia-depletion after cosmic radiation modifies phagocytic activity and prevents cognitive deficits.</a> Sci Rep. 8 (1), 1-13 (2018).</li>
<li>Cardona, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+murine+microglial+cells+for+RNA+analysis+or+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Isolation of murine microglial cells for RNA analysis or flow cytometry.</a> Nat Protoc. 1, 1947-1951 (2006).</li>
<li>Schmidt, V. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+enzymatic+efficiency+of+Liberase+TM+and+tumor+dissociation+enzyme%3A+effect+on+the+viability+of+cells+digested+from+fresh+and+cryopreserved+human+ovarian+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Reprod+Biol+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Comparison of the enzymatic efficiency of Liberase TM and tumor dissociation enzyme: effect on the viability of cells digested from fresh and cryopreserved human ovarian cortex.</a> Reprod Biol Endocrinol. 16 (57), 1-14 (2018).</li>
<li>Kusminski, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MitoNEET-parkin+effects+in+pancreatic+%CE%B1-+and+%CE%B2-cells%2C+cellular+survival%2C+and+intrainsular+cross+talk%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">MitoNEET-parkin effects in pancreatic α- and β-cells, cellular survival, and intrainsular cross talk.</a> Diabetes. 65 (6), 1534-1555 (2016).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass keine Interessenkonflikte bestehen.

Für die Untersuchung von Mikroglia wurden aufgrund ihrer Bedeutung für die Homöostase des Gehirns zahlreiche Protokolle entwickelt. Bei diesen Methoden werden Mikroglia typischerweise aus den Großhirnhemisphären von embryonalen oder neonatalen Ratten und Mäusen gewonnen17. Eine begrenzte Anzahl von Studien befasste sich mit der Reinigung von Mikroglia aus dem Rückenmark erwachsener Mäuse13,14. Diese Techniken beinhalten eine enzymatische V...

Das bestimmende Merkmal von Wirbeltieren ist die Wirbelsäule oder Wirbelsäule, in der der Notochord durch eine Abfolge segmentierter Knochen ersetzt wurde, die als Wirbel bezeichnet werden und durch Bandscheiben getrennt sind. Diese Abfolge von knöchernem Material formt den Spinalkanal, einen Hohlraum, der das Rückenmark umschließt und schützt1. Bei der Gattung Rodentia besteht die Wirbelsäule in der Regel aus sieben Halswirbeln, dreizehn Brustwirbeln, sechs Lendenwirbeln und einer variablen Anzahl von Schwanzwirbeln 2,3. Die Länge des Rückenmarks ähnelt der der Wirbelsäule, und das terminale Filumum ist eine nicht-nervöse Struktur, die das Rückenmark im Kreuzbein verankert. Zusätzlich treten Nervenfasern durch das Foramen intervertebralisaus 1.
Die Entwicklung und ordnungsgemäße Funktion des zentralen Nervensystems bei Säugetieren hängt entscheidend von der Aktivität der im Nervensystem ansässigen Makrophagen, den sogenannten Mikroglia4, ab. Obwohl Mikroglia ursprünglich als hirnresidente Phagozyten beschrieben wurden, haben neuere Forschungen diesen Zellen viele dynamische Funktionen zugeschrieben 5,6. Die Größe von Mikroglia reicht von 7 bis 10 μm in der Homöostase; Sie gelten als eine der vielseitigsten Zellen des Körpers und können sich morphologisch und funktionell an ihre sich ständig verändernde Umgebung anpassen7. Diese Zellen weisen sowohl im embryonalen als auch im adulten Stadium eine hohe Heterogenität auf8,9, während sie im adulten Stadium auch eine komplexe funktionelle Heterogenität aufweisen, die auf ihrem raumzeitlichen Kontext beruht10. Die Heterogenität und die vielfältigen Funktionen von Mikroglia ermöglichen eine unterschiedliche Genexpression und ein unterschiedliches Verhalten im Rückenmark und im Gehirn. Es konnte gezeigt werden, dass die Expression von CD11b, CD45, CD86 und CCR9 im Rückenmark höher ist als im Gehirn 8,9.
Es existieren mehrere Protokolle für die Isolierung zerebraler Mikroglia11,12; Für Rückenmarksmikroglia existieren jedoch nur wenige13,14. Die Optimierung einer Methode zur Reinigung von Mikroglia aus dem Rückenmark erleichtert die Entwicklung mehrerer Studien, die sich auf die Entdeckung der Mikroglia-Physiologie konzentrieren. Dieses Protokoll zielt darauf ab, eine einfache und hochgradig reproduzierbare Extraktion des Rückenmarks der Maus und die Reinigung von Mikroglia zu beschreiben (Abbildung 1).

<table><tbody><tr><td>15 mL Entnahmeröhrchen</td><td>Corning, USA</td><td>430790</td><td></td></tr><tr><td>2 mL Mikroröhrchen</td><td>Axygen, USA</td><td>MCT-200-G</td><td></td></tr><tr><td>2.4G2 Anti-FcR</td><td>BioLegend, USA</td><td>101302</td><td></td></tr><tr><td>50 mL Entnahmeröhrchen</td><td>Corning, USA</td><td>430829</td> 70% <td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Antibiotikum-Antimykotikum (Penicillin, Streptomycin, Amphotericin b)</td><td>Gibco, USA</td><td>15240062</td><td></td></tr><tr><td>Antikörper CD11b eFluor 450 gegen Maus</td><td>eBioscience, USA</td><td>48-0112</td><td></td></tr><tr><td>Antikörper CD45 PerCP gegen Maus&nbsp; &nbsp;</td><td>BioLegend, USA</td><td>103130</td><td></td></tr><tr><td>Ausgewogene Salzlösung (PBS) Calcium-Magnesium-frei</td><td>Corning, USA</td><td>46-013-CM</td><td></td></tr><tr><td>Blue Cell Sieb 40 &mu; m</td><td>Corning, USA</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>Costar 6-well Klar Nicht behandelt&nbsp;</td><td>Corning, USA</td><td>CLS3736</td><td></td></tr><tr><td>Deckgläser</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Digital Heizung Schütteln Trockenbad&nbsp;</td><td>Thermo Scientific Digital HS Drybath, USA</td><td>88870001</td><td></td></tr><tr><td>Präparierzange für die Mikrochirurgie</td><td>FT von DUMONT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DNase</td><td>Roche, USA</td><td>4536282001</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&acute; s Modifizierter Adler&akut; s Mittelhohe Glukose (DMEM) &nbsp;</td><td>Merck, USA</td><td>D6429</td><td></td></tr><tr><td>Elektrorasierer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>FACS Schlauch</td><td>Thermo, USA</td><td>352058</td><td></td></tr><tr><td>Fötales Rinderserum (FBS)</td><td>PAN Biotech, Deutschland</td><td>P30-3306</td><td></td></tr><tr><td>Durchflusszytometer Cytoflex&nbsp;</td><td>Beckman Coulter</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hank' s ausgewogene Salzlösung&nbsp;</td><td>Merck, USA</td><td>H2387</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamin</td><td>Corning, USA&nbsp;</td><td></td><td></td>15393631</tr><tr><td>Liberase TM&nbsp;</td><td>Roche, USA</td><td>5401119001</td><td></td></tr><tr><td>Neubauer Kammer Zählkammern</td><td>China</td><td>1103</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Percoll&nbsp;</td><td>Merck, USA</td><td>17089101</td><td>Dichtegradientenzentrifugation&nbsp;</td></tr><tr><td>Poly-L-Lysin-Lösung&nbsp;</td><td>Merck, USA</td><td>P8920</td><td></td></tr><tr><td>Skalpell Nr. 25&nbsp;</td><td>HERGOM, Mexiko</td><td>H23</td><td></td></tr><tr><td>Snaplock-Mikrozentrifugenröhrchen 2 mL</td><td>Axygen, USA</td><td>10011-680</td><td></td></tr><tr><td>Stereoskopisches Mikroskop</td><td>Velab, Mexiko</td><td>HG927831</td><td></td></tr><tr><td>Gerade chirurgische Schere (10 cm)</td><td>HERGOM, Mexiko</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gerade Vannas Schere</td><td>HERGOM, Mexiko</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Triton X100</td><td>Merck, USA</td><td>X100</td><td></td></tr><tr><td>Trypanblauer Fleck 0,4%&nbsp;</td><td>Merck, USA</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Vortex-Mischer</td><td>DLAB, China</td><td>8031102000</td><td></td></tr><tr><td>Zombie Aqua Fixable Viability Kit</td><td>BioLegend, USA</td><td>423102</td><td>Amin-reaktive Fluoreszenzfarbstofffärbung&nbsp;</td></tr></tbody></table>

schnelle und effiziente anreicherung von mikroglia des rückenmarks der maus

Rapid and Efficient Enrichment of Mouse Spinal Cord Microglia

Die Wirbelsäule definiert ein Wirbeltier und formt den Wirbelkanal, einen Hohlraum, der das Rückenmark umschließt und schützt. Die richtige Entwicklung und Funktion des zentralen Nervensystems von Säugetieren hängt maßgeblich von der Aktivität der ansässigen Makrophagen ab, die als Mikroglia bekannt sind. Mikroglia weisen Heterogenität und Multifunktionalität auf, was eine unterschiedliche Genexpression und ein unterschiedliches Verhalten im Rückenmark und im Gehirn ermöglicht. Zahlreiche Studien haben die Funktion der zerebralen Mikroglia untersucht und die Reinigungsmethoden ausführlich beschrieben. Für die Reinigung von Mikroglia aus dem Rückenmark bei Mäusen fehlt jedoch eine umfassende Beschreibung. Im Gegensatz dazu fehlt der Verwendung einer hochgereinigten Kollagenase im Gegensatz zu einem unraffinierten Extrakt die Berichterstattung im Gewebe des zentralen Nervensystems. In dieser Studie wurden die Wirbelsäule und das Rückenmark von 8-10 Wochen alten C57BL/6-Mäusen herausgeschnitten. Bei der anschließenden Verdauung wurde eine hochgereinigte Kollagenase verwendet, und bei der Mikrogliareinigung wurde ein Dichtegradient verwendet. Die Zellen wurden für die Durchflusszytometrie gefärbt, wobei die Lebensfähigkeit und Reinheit durch CD11b- und CD45-Färbung beurteilt wurde. Die Ergebnisse ergaben eine durchschnittliche Viabilität von 80 % und eine mittlere Reinheit von 95 %. Zusammenfassend lässt sich sagen, dass die Manipulation der Mikroglia der Maus eine Verdauung mit einer hochgereinigten Kollagenase beinhaltete, gefolgt von einem Dichtegradienten. Dieser Ansatz erzeugte effektiv beträchtliche Populationen von Rückenmark-Mikroglia.

Unter Verwendung von Rückenmarksgewebe von Mäusen wurde die enzymatische Verdauung mit einer Mischung durchgeführt, die stark mit Kollagenase und Thermolysin angereichert war. Das resultierende verdaute Gewebe wurde durch einen 40-μm-Filter geleitet, um unverdautes Material zu eliminieren. Die gesammelten Zellen wurden durch einen Percoll-Dichtegradienten angereichert, wobei 90 % im unteren und 45 % im oberen Teil lagen. Die mit Mikroglia angereicherten Zellen innerhalb der Grenzfläche wurden dann mit CD45- und CD11b-Ant...

Mikroglia gelten als einige der vielseitigsten Zellen des Körpers, die zur morphologischen und funktionellen Anpassung fähig sind. Ihre Heterogenität und Multifunktionalität ermöglicht die Aufrechterhaltung der Homöostase des Gehirns und ist gleichzeitig mit verschiedenen neurologischen Pathologien verbunden. Hier wird eine Technik zur Reinigung von Rückenmarksmikroglia beschrieben.

Schnelle und effiziente Anreicherung von Mikroglia des Rückenmarks der Maus

The vertebral column defines a vertebrate and shapes the spinal canal, a cavity that encloses and safeguards the spinal cord. Proper development and ...

Unsere Forschung konzentriert sich auf die Heterogenität von Mikroglia, die sowohl pro-inflammatorische als auch entzündungshemmende Verhaltensweisen über verschiedene Pathologien und Regionen wie Gehirn und Rückenmark hinweg zeigen können. Unser Ziel ist es, ein tieferes Verständnis des Verhaltens von Rückenmarksmikroglia in verschiedenen Szenarien zu ermöglichen. Die Heterogenität der Mikroglia hat es schwierig gemacht, sie zu klassifizieren.In diesem Jahr wurde eine neue und breite Klassifikation vorgeschlagen, die über einen pro- oder entzündungshemmenden Status hinausgeht. Derzeit ist das Erreichen einer hohen Reinheit und eines Gels bei der Isolierung von Rückenmarksmikroglia aus Tiermodellen neurologischer Pathologien ein bedeutendes Experiment und eine Herausforderung. Wir identifizierten einen neuen Zytokin-Signalweg in der Mikroglia des Rückenmarks bei chronischen Schmerzen.Unser Protokoll ermöglicht eine kontrolliertere und somatische Verdauung, gefolgt von einem Dichtegradienten. Beides führt zu einer geringeren Kontamination durch Astrozyten im Vergleich zu derzeit verwendeten Techniken zur Reinigung von Mikroglia aus dem Rückenmark, dem Gehirn oder Embryonen.

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Research

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JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

In diesem Video beschreiben wir ein Protokoll zur Isolierung von CD11b-Zellen, einschließlich Mikroglia, aus Mäuse-Welpengehirnen mittels magnetisch aktivierter Zellsortierung. Das Hirngewebe wird homogenisiert, um Einzelzellsuspensionen zu erhalten, die mit Anti-CD11b-Antikörpern beschichteten Mikrokügelchen inkubiert werden, gefolgt von einer magnetischen Säulentrennung, um die CD11b+-Zellpopulation zu reinigen.

Magnetische Isolierung von Mikroglia aus dem Gehirn von Maus-Welpen

Dieses Video demonstriert eine Technik zur Isolierung und Kultivierung von primären gemischten Gliazellen aus adultem Rückenmarksgewebe von Mäusen. Das Protokoll beinhaltet die enzymatische Verdauung des Gewebes, gefolgt von der Entfernung von gebrochenen Zellmembranen und Myelintrümmern, um eine Einzelzellpopulation zu erhalten. Die Zellen werden dann in Medien kultiviert, die für das Wachstum gemischter Gliazellen optimiert sind.

Etablierung primärer gemischter Gliazellkulturen aus dem Rückenmark einer Maus

Wir skizzieren Methoden für die effiziente und schnelle Isolierung / Kultur lebensfähiger Mikroglia aus dem Neugeborenen Hirnrinde und erwachsenen Rückenmark. Die Präparation und Beschichtung der kortikalen Mikroglia kann innerhalb von 90 Minuten erreicht werden, mit der anschließenden Mikroglia Ernte stattfindet ~ 10 Tage nach der ersten Sektion.

Kultivierung Mikroglia aus dem Neugeborenen und Erwachsenen Central Nervous System

Die Entwicklung von neuropathischen Schmerzen handelt pathologischen Veränderungen der Wirbelsäule Gliazellen. Eine zuverlässige Gliazellen Kultursystem aus adulten Rückenmarksgewebe abgeleitet und für diese Zellen in vitro zu studieren fehlt. Deshalb zeigen wir hier, wie primären gemischten Glia-Kulturen von adulten Mausrückenmarksgewebe herzustellen.

Herstellung von primären gemischten Gliazellen Kulturen von erwachsenen Maus Rückenmarksgewebe

Hier präsentieren wir ein Protokoll Mikroglia aus postnataler Maus Welpen (Tag 1) für in - vitro - Experimente zu isolieren. Diese improvisierte Isolierungsmethode erzeugt sowohl hohe Ausbeute und Reinheit, einen bedeutenden Vorteil gegenüber alternativen Methoden, die für die Zwecke der Erläuterung Mikroglia biology breites Spektrum Experimente ermöglicht.

Schnelle und Refined CD11b Magnetic Isolierung von primären Mikroglia mit erhöhter Reinheit und Vielseitigkeit

Ein Protokoll für die Isolierung von primären Mikroglia aus murine Gehirn wird vorgestellt. Diese Technik hilft bei der Förderung des gegenwärtigen Verständnis von neurologischen Erkrankungen. Dichte-Gradienten-Zentrifugierung und magnetische Trennung werden kombiniert, um genügend Ertrag einer hochreinen Probe zu produzieren. Darüber hinaus erläutern wir die Schritte zur Charakterisierung der Mikroglia.

Charakterisierung und Isolierung der Maus primären Mikroglia durch Dichte-Gradienten-Zentrifugierung

Wir bieten ein Protokoll zur Isolierung von Mikroglia aus verschiedenen sezierten Regionen einer erwachsenen Maushirnhälfte, gefolgt von halbautomatischer Bibliotheksvorbereitung für die tiefe einzelzellige RNA-Sequenzierung von Transkriptomen in voller Länge. Diese Methode wird dazu beitragen, die funktionelle Heterogenität von Mikroglia bei Gesundheit und Krankheit aufzuklären.

Isolierung von regionsspezifischer Mikroglia von einer Erwachsenenmaus Gehirnhälfte für tiefe einzellige RNA-Sequenzierung

Dieses Protokoll ist eine effiziente, kostengünstige und robuste Methode zur Isolierung primärer Mikroglia aus lebendem, erwachsenem, menschlichem Hirngewebe. Isolierte primäre menschliche Mikroglia kann als Werkzeug für die Untersuchung zellulärer Prozesse bei Homöostase und Krankheit dienen.

Gewinnung menschlicher Mikroglia aus erwachsenem menschlichem Hirngewebe

Hier präsentieren wir ein Protokoll zur Isolierung und Reinigung primärer Mikroglia in Tiermodellen demyelinisierender Krankheiten unter Verwendung der säulenförmigen magnetisch aktivierten Zellsortierung.

Isolierung von primären Mausmikroglia durch magnetisch aktivierte Zellsortierung in Tiermodellen der Demyelinisierung

Dieses Protokoll beschreibt die Isolierung von gereinigten Astrozyten und Mikroglia aus dem Rückenmark der erwachsenen Maus und erleichtert spätere Anwendungen wie RNA-Analyse und Zellkultur. Es umfasst detaillierte Zelldissoziationsmethoden und -verfahren, die darauf ausgelegt sind, sowohl die Qualität als auch die Ausbeute isolierter Zellen zu verbessern.

Isolierung von reinen Astrozyten und Mikroglia aus dem Rückenmark adulter Mäuse für In-vitro-Assays und Transkriptomstudien

Die Identifizierung von Mikroglia (MG) und peripheren infiltrierenden Makrophagen (Mø) im verletzten Rückenmark ist schwierig. In diesem Protokoll wurde die Durchflusszytometrie (FCM) verwendet, um M1-like MG, M2-like MG, M1-like Mø bzw. M2-like Mø zu identifizieren. Diese Technologie kann auch auf andere Erkrankungen des Zentralnervensystems angewendet werden, um die Rolle von MG und Mø zu verstehen.

Identifizierung von Mikroglia und peripher infiltrierenden Makrophagen im verletzten Rückenmark mittels Durchflusszytometrie

Erfahren Sie eine Methode zur Anreicherung von Mikroglia aus dem Rückenmark der Maus mit bis zu 99% Reinheit. Dieses Protokoll ermöglicht präzise Studien zu Neuroinflammation und chronischen Schmerzen.

Schnelle und effiziente Anreicherung von Mikroglia des Rückenmarks der Maus

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