Name: Duodenal-Jejunal-Bypass-Operation bei ernährungsinduzierten adipösen diabetischen Mäusen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-10-18T12:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 50 s
Description: Erfahren Sie die duodenal-jejunale Bypass-Operation bei ernährungsinduzierten adipösen diabetischen Mäusen. Diese Methode verbessert den Glukosestoffwechsel und reduziert die Insulinresistenz für metabolische Forschung.

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Alle im Folgenden beschriebenen Protokollschritte folgen den Richtlinien des Animal Care and Use Committee des General Hospital des Southern Theater Command unter der Zulassungsnummer 2020112501.
1. Allgemeine präoperative Vorbereitung
HINWEIS: Es wurden dreißig 6 Wochen alte männliche C57BL/6-Mäuse gekauft. Die Mäuse wurden in einem spezifisch pathogenfreien (SPF) Labor unter einem 12-stündigen Hell-Dunkel-Zyklus untergebracht; Temperatur, 22 ± 2 °C; und Luftfeuchtigkeit, 55-65%. Die Mäuse erhielten freien Zugang zu Wasser und erhielten 6 Wochen lang eine Diät mit 60 % kcal Fett, um Fettleibigkeit zu induzieren. Eine intraperitoneale Injektion von 40 mg/kg Streptozotocin wurde 5 Tage lang verabreicht, um Diabetes17 zu induzieren. Unter den dreißig Mäusen wurden zweiundzwanzig Mäuse auf zufällige Blutzuckerwerte &gt; 300 mg/dl gescreent und nach dem Zufallsprinzip der DJB- (n = 15) und der Scheinchirurgie (n = 7) zugeteilt. Acht Mäuse wurden aufgrund von minderwertigem Blutzuckerspiegel vom Experiment ausgeschlossen.
<ol><li>Fasten Sie die Mäuse 8 Stunden vor der Operation. Entnehmen Sie das Wasser 2 h vor der Operation.</li>
	<li>Verabreichen Sie 1% Natrium-Pentobarbital-Lösung (6 ml/kg) und Buprenorphin (1 mg/kg) intraperitoneal. Berühren Sie die Zehen oder Schwänze der Mäuse mit einer Pinzette und stellen Sie sicher, dass die Mäuse kein offensichtliches Zucken oder Zittern zeigen. Unter adäquater Narkose können die Mäuse ohne zusätzlichen Sauerstoff frei atmen.</li>
	<li>Legen Sie die Mäuse in Rückenlage auf eine sterile Platte und unter ein Stereomikroskop. Tragen Sie Augensalbe auf die Augen auf. Verwenden Sie eine Heizdecke, um die Mäuse während des gesamten Eingriffs warm zu halten. Verwenden Sie sterile Verfahren, einschließlich OP-Kittel, sterile Handschuhe und autoklavierte Instrumente.</li>
	<li>Bei Scheinkontrollmäusen werden die beiden Schnitte im Zwölffingerdarm jeweils 1 cm unterhalb des Pylorus und im Jejunum 5 cm unterhalb der Treitz vorgenommen und dann die Schnitte vernäht.</li>
</ol>2. Zwölffingerdarm-Jejunalbypass: Chirurgischer Eingriff
<ol><li>Tragen Sie die Enthaarungspaste aus dem Xiphoid auf den Bauch auf, um Haare aus diesem Bereich zu entfernen. Wischen Sie die Creme ab und stellen Sie sicher, dass die Haut sauber ist. Schrubben Sie den Bereich dreimal abwechselnd mit Jod- und Alkohollösungen.</li>
	<li>Decken Sie die Maus mit einem sterilen Tuch ab, lassen Sie den Operationsbereich frei, und machen Sie einen 2 cm langen Schnitt vom Xiphoid bis zum Bauch.</li>
	<li>Verwenden Sie einen Bauchretraktor, um die Bauchhöhle freizulegen. Schieben Sie das Bauchfett mit einem feuchten Wattestäbchen weg und bewegen Sie die Leber zur Kopfseite, um Magen und Darm vollständig freizulegen.</li>
	<li>Der Magen und der Pylorus befinden sich unterhalb der Leber, und das Band von Treitz befindet sich am distalen Zwölffingerdarm. Doppelte Ligatur des Jejunums, 5 cm distal des Treitz-Bandes mit einer 6-0-Seidennaht (Abbildung 1A). Schneiden Sie das Jejunum in der Mitte der beiden Ligaturen und vernähen Sie den Jejunalstumpf mit einer 10-0-Seidennaht (Abbildung 1B). HINWEIS: Vermeiden Sie es, die mesenterialen Blutgefäße zu verdrehen.</li>
	<li>Ziehen Sie den proximalen Jejunalschnitt 5 cm entlang des Darms bis zum Jejunum, um eine Jejunal-Jejunal-Anastomose zu erzeugen. Richten Sie die beiden Därme horizontal aus und verwenden Sie dann eine 10-0-Seidennaht, um die laterale Anastomose zu erzeugen (Abbildung 1C). HINWEIS: Halten Sie den Darm während der Operation mit Kochsalzlösung feucht, um den Wasserverlust zu reduzieren. Dies verhindert, dass sich der Darm zusammenrollt, und erleichtert das Nähen.</li>
	<li>Sichern Sie beide Enden des Darms und schneiden Sie den Schnitt auf die gleiche Länge (Abbildung 1D). Vernähen Sie die zweite Schicht der hinteren Darmwand mit einer durchgehenden Naht in voller Dicke. HINWEIS: Die Schnittlänge beträgt ca. 0,5-0,6 cm und der Nadelabstand ~0,5 mm.</li>
	<li>Befestigen Sie beide Enden des Darms und nähen Sie die vordere Darmwand. Die erste Schicht der Vorderwand mit einer einfachen durchgehenden Naht und die zweite Schicht mit einer horizontalen Varusnaht vernähen (Abbildung 1E-F). HINWEIS: Tupfen Sie den Darminhalt mit Wattestäbchen ab, um eine Infektion der Bauchhöhle zu verhindern.</li>
	<li>Ziehen Sie den distalen Jejunalschnitt 1 cm unterhalb des Pylorus in den Zwölffingerdarm, um eine Zwölffingerdarm-Jejunal-Anastomose zu erzeugen (Abbildung 1G). Vernähen Sie es mit der gleichen Methode wie in den Schritten 2.6-2.7 (Abbildung 1H-K). HINWEIS: Überprüfen Sie die Naht an der Anastomosenecke, um Anastomosenleckagen zu reduzieren.</li>
	<li>Ligustieren Sie den Darm mit der Mikrozange und schneiden Sie den Darm mit der Mikroschere. Ligatur des Zwölffingerdarms mit einer 6-0-Seidennaht, 2 mm vom distalen Ende der Zwölffingerdarm-Jejunalanastomose entfernt. Schneiden Sie mit einer Mikroschere in der Mitte und nähen Sie den Stumpf mit einer 10-0 Seidennaht (Abbildung 1L). HINWEIS: Die gastroduodenalen Gefäße verzweigen sich senkrecht zum Kopf der Bauchspeicheldrüse und grenzen an den Pylorus, was eine sorgfältige Untersuchung der Gefäße im Querschnitt erfordert. Der Zusammenfluss von Gallengang communis und Duodenum wurde lokalisiert, wobei darauf geachtet wurde, dass weder die Bauchspeicheldrüse noch der gemeinsame Gallengang beschädigt wurden.</li>
	<li>Spülen Sie die Bauchhöhle mit 30 °C Kochsalzlösung aus. Führe den Darm wieder in die Bauchhöhle zurück. Nähen Sie den Muskel und die Haut separat mit einer 6-0 Seide. Desinfizieren Sie dann die Haut mit einem Jodophor.</li>
	<li>Nach der Operation 30 °C Kochsalzlösung (30 ml/kg) subkutan in den Rücken injizieren, um eine Austrocknung zu verhindern. Injizieren Sie Penicillin (10 mg/kg) intramuskulär, um eine Infektion zu verhindern.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66049/66049fig01.jpg"> Abbildung 1: Duodenal-Jejunal-Bypass-Verfahren. (A) Lage des Jejunums 5 cm distal des Bandes von Treitz. (B) Ligatur des Jejunums mit 6-0 Seide verdoppeln und durch die Mitte der Ligatur schneiden. (C) Jejunal-Jejunal-Anastomose. (D) Machen Sie einen 0,5-0,6 cm langen Schnitt und nähen Sie die hintere Wand. (E-F) Vollständige Jejunal-Jejunal-Anastomose. (G) Ziehen Sie das distale Jejunal 1 cm unterhalb des Pylorus zum Zwölffingerdarm. (H) Duodenal-Jejunal-Anastomose. (I) Schneiden Sie die Zwölffingerdarm-Jejunal-Anastomose mit einem 0,5-0,6 cm langen Schnitt und vernähen Sie die hintere Wand mit einer einfachen durchgehenden Naht. (J-K) Vollständige Duodenal-Jejunal-Anastomose. (L) Bei 2 mm Abstand von der distalen zur Zwölffingerdarm-Jejunalanastomose den Zwölffingerdarm mit 6-0 Seide doppelt ligatisieren und die Mitte der Ligatur durchschneiden. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66049/66049fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
3. Allgemeine postoperative Betreuung
<ol><li>Legen Sie die Mäuse nach der Operation auf eine Heizdecke, um eine Unterkühlung zu vermeiden. Lassen Sie die Mäuse frei kriechen, bis sie vollständig wach sind, bevor Sie in ihre Käfige zurückkehren.</li>
	<li>Beschränken Sie am postoperativen Tag die Nahrungs- und Wassermenge und injizieren Sie 2 ml Kochsalzlösung subkutan in den Rücken der Mäuse. Geben Sie am ersten postoperativen Tag 10 ml 10% Glukose und ein funktionelles Getränk (Verhältnis 1:1) ohne Nahrung und injizieren Sie 1 ml Kochsalzlösung subkutan.</li>
	<li>Füttern Sie die Mäuse am zweiten und dritten postoperativen Tag mit einer Mischung aus 20 ml 10% Glukose und einem funktionellen Getränk. Geben Sie den Mäusen nach dem vierten Tag reines Wasser und eine fettreiche Ernährung. Die Übergangsfütterung sollte entsprechend dem postoperativen Erholungsstatus in der folgenden Reihenfolge erfolgen: Lösung, halbflüssige oder feste Nahrung.</li>
	<li>Postoperative Analgesie: Injizieren Sie Buprenorphin (0,1 mg/kg) alle 12 Stunden von Tag 1 bis 3 und dann einmal täglich bis zum Tag 5.</li>
	<li>Beobachten Sie nach der Operation die Fütterungsbedingungen, die Aktivität, den Kot und die Wundheilung der Mäuse.</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66049/66049fig02.jpg"> Abbildung 2: Das Diagramm der DJB-Operation. (A) Duodenal-Jejunal-Anastomose. (B) Jejunal-Jejunal-Anastomose. (C) Biliopankreatische Gliedmaße. (D) Verdauungsglied. (E) Gemeinsame Gliedmaße. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66049/66049fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66049/66049fig03.jpg"> Abbildung 3: Anatomie der DJB-Chirurgie. (A) Duodenal-Jejunal-Anastomose. (B) Jejunal-Jejunal-Anastomose. (C) Biliopankreatische Gliedmaße. (D) Verdauungsglied. (E) Gemeinsame Gliedmaße. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66049/66049fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
4. Postoperative Bewertung der metabolischen Parameter
<ol><li>Messung des Körpergewichts<ol><li>Fasten Sie die Mäuse 8 h vor der Messung. Wiegen Sie die Mäuse 8 Wochen lang wöchentlich am Montag vor und nach der Operation.</li>
	</ol></li>
	<li>Messung der Nahrungsaufnahme<ol><li>Halten Sie eine Maus in jedem Käfig. Messen Sie die Menge an fester Nahrung in jedem Käfig vor und nach 24 Stunden. Die Differenz zwischen den beiden Werten stellt die tägliche Nahrungsaufnahme dar.</li>
	</ol></li>
	<li>Stichprobenartige Blutzuckermessung<ol><li>Entnehmen Sie am wöchentlichen Montag der Messung um 8:00 Uhr einen Tropfen Blut von der Spitze des Mausschwanzes und geben Sie ihn auf einen Glukosestreifen, der in das Blutzuckermessgerät eingeführt wird.</li>
	</ol></li>
	<li>Oraler Glukosetoleranztest<ol><li>Acht Wochen nach der DJB-Operation fasten Sie die Mäuse 8 Stunden lang, bevor Sie den oralen Glukosetoleranztest durchführen. Sammeln Sie einen Tropfen Blut von der Spitze des Mausschwanzes und legen Sie ihn auf einen Glukosestreifen, der in das Blutzuckermessgerät eingeführt wird. Verabreichen Sie eine orale Dosis von 20 % D-Glukose (2 g/kg). Messen Sie den Blutzuckerspiegel nach 0, 15, 30, 60, 90, 120, 150 und 180 Minuten nach der Sonde.</li>
	</ol></li>
</ol>

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<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Close-up+on+lab+animal+microsurgery%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">Close-up on lab animal microsurgery.</a> Lab Anim (NY). 35 (1), 43(2006).</li>
<li>Couceiro, J., Castro, R., Tien, H., Ozyurekoglu, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Step+by+step%3A+microsurgical+training+method+combining+two+nonliving+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Step by step: microsurgical training method combining two nonliving animal models.</a> J Vis Exp. (99), e52625(2015).</li>
<li>Nasser, K. M., Wahba, H. A., Kamal, E., El-Makhzangy, A. M., Bahaa, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+model+for+training+and+improvement+of+the+surgical+skills+in+endolaryngeal+microsurgery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Voice%22%5BJournal%5D)">Animal model for training and improvement of the surgical skills in endolaryngeal microsurgery.</a> J Voice. 26 (3), 351-357 (2012).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Abdominaler Retraktor</td><td>F.S.T</td><td>17000-03</td><td>Colibri Retraktor -3cm, Retraktorbereich 1,5cm/3cm lang</td></tr><tr><td>1% Natrium-Pentobarbital-Lösung</td><td>Guangzhou Chemical Reagent Factory</td><td>/</td><td>&nbsp; Lösen Sie 500 mg Pentobarbital-Natriumpulver in 50 ml normaler Kochsalzlösung, um 1% ige Pentobarbital-Natriumlösung zu erhalten.</td></tr><tr><td>Benzylpenicillin-Natrium für die Injektion</td><td>North China Pharmaceutical Company Ltd.</td><td>F2062121</td><td>Penicillin</td></tr><tr><td>Buprenorphin</td><td>Guangzhou Chemische Reagenzfabrik</td> <td>/</td> <td>Analgesie</td></tr><tr><td>Buprenorphin</td><td>Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd</td> <td>/</td> <td>Analgetikum</td></tr><tr><td>Zitronensäure-Natriumcitrat-Puffer</td><td>LEAGENE</td><td>R00522</td><td>Pufferlösung</td></tr><tr><td>Wattestäbchen</td><td>HaoZheng Medical</td><td>60220610</td><td>Wattestäbchen</td></tr><tr><td>Enthaarungspaste</td><td>Veet</td><td>AAPR-S222</td><td>Haarentfernungscreme</td></tr><tr><td>Ohrmarke</td><td>ZEYA</td><td>SUS304</td><td>Ohrmarke</td></tr><tr><td>Heizdecke</td><td>ZOSEN</td><td>ZS-CWDRT</td><td>Wärmekissen</td></tr><tr><td>Elektronische Waage</td><td>WETTLER TOLEDO</td><td>20060902-6</td><td>Messen Sie das Gewicht</td></tr><tr><td>Enterales Ernährungspulver</td><td>Abbott Laboratories</td><td>/</td><td>Ernährungspulver</td></tr><tr><td>Auge Salbe</td><td>Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd</td><td>/</td><td>Protect the eyes</td></tr><tr><td>Glucometer</td><td>Roche</td><td>6993788001</td><td>Assess blood</td></tr><tr><td>glucose Graphpad Prism Version 9.4.1</td><td>GraphPad Software</td><td>Version 9.4.1</td><td>Software für statistische Analysen</td></tr><tr><td>Fettreiche Diät (High Fat [60FDC] Purified Nagetier Diet)</td><td>Dyets</td><td>112252</td><td>60kcal% High Fat Diet</td></tr><tr><td>Micro Pinzette</td><td>Jinzhong Medical</td><td>18-1140</td><td>Mikrozange</td></tr><tr><td>Mikronadelhalter</td><td>Jinzhong Medical</td><td>EMT-160-Z</td><td>Nadelhalter</td></tr><tr><td>Mikroschere</td><td>Jinzhong Medical</td><td>YBC010</td><td>Mikroschere</td></tr><tr><td>Mikroskopkamera</td><td>LAPSUN</td><td>E 2000</td><td>Video</td></tr><tr><td>Ophthalmische Schere</td><td>Jinzhong Medical</td><td>Y00030</td><td>Chirurgische Schere</td></tr><tr><td>Pentobarbital</td><td>Guangzhou Chemische Reagenzfabrik</td> <td>/</td> <td>Narkose</td></tr><tr><td>Natriumchlorid-Injektion</td><td>Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd</td><td>B21L0301</td><td>NaCl 0,9%</td></tr> <tr><td>Stereomikroskop</td><td>ZEISS</td><td>Stemi 305</td><td>Binokulares Stereomikroskop</td></tr><tr><td>Streptozotocin</td><td>Sigma</td><td>S110910-1g</td><td>STZ</td></tr><tr><td>Nahtlinie</td><td>LINGQIAO NAHT</td><td>ZS-LQPMRZ5/ 0</td><td>Prolene 6/0,Prolene 10/0</td></tr><tr><td>Gewebezange</td><td>Jinzhong Medical</td><td>H1701</td><td>Chirurgische Zange</td></tr></tbody></table>

duodenal-jejunal-bypass-operation bei ernährungsinduzierten adipösen diabetischen mäusen

Duodenal-Jejunal Bypass Surgery in Diet-Induced Obese Diabetic Mice

Rahmenbedingungen Die mittlere Operationszeit für das DJB-Verfahren betrug 84,5 ± 2,6 Minuten. Fünfzehn Mäuse wurden einer DJB-Operation unterzogen, neun Mäuse überlebten. Wie in Tabelle 1 gezeigt, ereigneten sich die meisten Todesfälle während der Operation oder in den folgenden 7 Tagen. Die Ursachen für den postoperativen Tod waren Blutungen (n=2) am postoperativen Tag 1, Anastomosenleckagen (n=1) am postoperativen Tag 4, Anastomosenobstruktion (n=2) am postoperativen Tag 7 und unbe...

Duodenal-Jejunal-Bypass-Operation bei ernährungsinduzierten adipösen diabetischen Mäusen

The prevalence of obesity and type 2 diabetes is a serious global health concern. Obesity is a major pathogenic factor in type 2 diabetes, cardiovascular ...

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Zahlreiche Studien über Magen-Bypass-Ratte Modelle wurden erst kürzlich durchgeführt, um die zugrunde liegenden physiologischen Mechanismen der Roux-en-Y-Magenbypass-Operationen aufzudecken. Dieser Artikel soll zeigen, und diskutieren die technische und experimentelle Details unserer veröffentlichten Magen-Bypass-Ratten-Modell, um Vorteile und Grenzen dieser experimentelles Werkzeug zu verstehen.

Roux-en-Y-Magenbypass Operation in Ratten

Dieses Video beschreibt ein bariatrisches Chirurgie-Roux-en-Y-Verfahren. Dabei wird das Jejunum - der mittlere Teil des Darms - durchtrennt, um zwei Darmgliedmaßen zu erzeugen. Die Gallengliedmaße wird an die bestehende Darmschlinge und die Verdauungsgliedmaße an den Magen angehängt, wodurch ein Magenbypass entsteht. Der hier angelegte Magenbypass hilft, die Nährstoffaufnahme zu verringern und das Körpergewicht effizient zu reduzieren.

Roux-en-Y Magenbypass-Verfahren: Ein bariatrisches chirurgisches Verfahren zur Magenresektion im Mausmodell

Bariatrische Chirurgie ist der effizienteste Weg, um das Körpergewicht und die tödlichen metabolischen Komplikationen (Diabetes, Fettleibigkeit und Dyslipidämie) zu reduzieren, die häufig mit krankhafter Fettleibigkeit verbunden sind. Mausmodelle der bariatrischen Chirurgie stellen einen einzigartigen Vorteil dar, um die molekularen Mechanismen zu entschlüsseln, die hinter den positiven Auswirkungen dieser Operationen auf Diabetes, Bluthochdruck und Dyslipidämie stehen.

Techniken der Schlauchmagen-Operation und Modified Roux-en-Y-Magenbypass bei Mäusen

Dieses Protokoll zeigt die Mäuseinselisolation und die Aussaat auf ein dezelluläres Gerüst. Gerüstunterstützte Inselchen wurden in das epididymale Fettpolster von Streptozotocin (STZ) -induzierten diabetischen Mäusen transplantiert. Islets überlebten an der Transplantationsstelle und umkehrten den hyperglykämischen Zustand.

Gerüstgestützte Transplantation von Inseln in der epididymalen Fettauflage von diabetischen Mäusen

Das folgende beschreibt die Leistung der vertikalen Sleeve-Gastrektomie bei Mäusen. Dies ist eine Art von Gewichtsverlust Chirurgie, die etwa 70 % des Magens entfernt wird.

Ein Mausmodell der vertikalen Sleeve-Gastrektomie

Dieses Protokoll ist für die Erfüllung einer Anastomose Magenbypass (OAGB) auf Ratte. Der Operator führt einen langen, röhrenförmigen geheftet Magen Beutel gefolgt von handgenähter Anastomose. Für dieses Modell reproduziert der Betreiber das gleiche Verhältnis zwischen biliopankreatischen und gemeinsame Gliedmaßen beim Menschen; Daher misst die Biliopancreatic Limb 35 cm.

Eine Anastomose Magenbypass (OAGB) bei Ratten

Die Prävalenz von Diabetes und Adipositas nimmt weltweit kontinuierlich zu. Die Mechanismen zwischen Diabetes, Adipositas und der damit verbundenen Sterblichkeit und Komorbiditäten müssen weiter untersucht werden. Hier stellen wir ein Protokoll zur Hülsengastrektomie (SG) bei Tieren als unkompliziertes präklinisches Modell der bariatrischen Chirurgie vor.

Ärmel-Gastrektomie bei Mäusen mit chirurgischen Clips

Roux-en-Y Magenbypass (RYGB) wird zur Behandlung von Fettleibigkeit und Diabetes durchgeführt. Die Mechanismen, die der Wirksamkeit von RYGB zugrunde liegen, sind jedoch nicht vollständig verstanden, und die Studien sind durch technische Schwierigkeiten begrenzt, die zu einer hohen Mortalität in Tiermodellen führen. Dieser Artikel enthält Anweisungen zur Durchführung von RYGB bei Ratten mit hohen Erfolgsraten.

Ein Protokoll für Roux-en-Y Magenbypass bei Ratten mit linearen Heftern

Der Duodeno-ileale Bypass mit einfacher Anastomose (SADI-S) ist ein aufstrebendes bariatrisches Verfahren mit wichtigen metabolischen Auswirkungen. In diesem Artikel stellen wir ein zuverlässiges und reproduzierbares Modell von SADI-S in Mäusen vor.

Duodeno-ilealer Bypass mit Sleeve-Gastrektomie-Modell bei Mäusen

Bestimmung der Magenentleerung mit einem nicht-invasiven...

Beurteilung der Magenentleerung in Non-adipösen diabetischen Mäusen mit a [<sup&gt; 13</sup&gt; C]-Octansäure Atemtest

Erfahren Sie die duodenal-jejunale Bypass-Operation bei ernährungsinduzierten adipösen diabetischen Mäusen. Diese Methode verbessert den Glukosestoffwechsel und reduziert die Insulinresistenz für metabolische Forschung.

Duodenal-Jejunal-Bypass-Operation bei ernährungsinduzierten adipösen diabetischen Mäusen

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