December 8th, 2023
Hier schlagen wir drei verschiedene Methoden vor, um die sensorischen Fasern, die die Hornhaut innervieren, zu schädigen. Diese Methoden erleichtern die Untersuchung der Axonregeneration bei Mäusen. Diese drei Methoden, die auf andere Tiermodelle adaptierbar sind, sind ideal für die Untersuchung der Physiologie und Regeneration der Hornhautinnervation.
Die Hornhaut, das transparente Gewebe, das das Auge bedeckt, benötigt eine ausgewogene Mikroumgebung, um ihre Integrität zu erhalten. Die dichte Innervation der Hornhaut ist an dieser Mikroumgebung beteiligt. Wenn es zu einem teilweisen oder vollständigen Verlust dieser Innervation kommt, tritt ein spezifischer Zustand auf, der als neurotrophe Keratitis bezeichnet wird.
Um neue Heilmittel und wirksame Heilmittel für diese Krankheit zu finden, brauchen wir spezifische Modelle. Die Ausweitung des Einsatzes transgener tiertragender fluoreszierender Reporter und mikroskopische Fortschritte haben neue Möglichkeiten zur Visualisierung der axonären Generierung eröffnet. In vivo Imagine ist für jedes Forschungslabor, das bereit ist, den Neurogenerationsprozess zu verfolgen, zugänglicher geworden.
Die verschiedenen Ursachen, die eine neurotrophe Keratitis hervorrufen, liegen den Schwierigkeiten zugrunde, nur ein Modell zum Testen von Nervenregenerationstherapien zu haben. Diese drei Modelle reproduzieren verschiedene Situationen, die in Kliniken beobachtet werden, und der Austausch dieser Methoden wird es anderen Laboren ermöglichen, neue Aspekte der Hornhautinnervation aufzudecken, aus denen innovative Behandlungen entwickelt werden.
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Diese Studie stellt drei unterschiedliche Methoden zur Schädigung von sensorischen Fasern in der Hornhaut von Mäusen vor, die die Erforschung der Axonregeneration erleichtern. Diese Methoden sind für den Einsatz in verschiedenen Tiermodellen anpassbar und liefern Einblicke in die Physiologie der Hornhautinnervation und Regenerationstechniken.
Robust preclinical models of neurotrophic keratitis are essential for de-risking early-stage ophthalmic drug discovery and regenerative medicine portfolios. The three murine corneal injury strategies described enable precise interrogation of nerve degeneration and regeneration, supporting predictive confidence in translational research. These models facilitate the evaluation of novel pharmacological and gene therapy candidates targeting corneal nerve repair and disease modification.
These murine corneal injury models bridge early discovery and preclinical validation, supporting workflows from target identification through lead optimization and translational research.