Name: Überwachung des Blutzuckers bei Mäusenachkommen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-05-17T13:40:00.000+00:00
Duration: 6 min 11 s
Description: Erfahren Sie, wie man einen ICSI-ET-Mausmodell etabliert, um altersbedingte Veränderungen des Glukosestoffwechsels bei Nachkommen zu untersuchen. Diese Methode liefert wertvolle Erkenntnisse für die reproduktive Gesundheit.

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<meta charset="utf8"></head><body>ICSI-ET-Mausmodell zur Untersuchung langfristiger Auswirkungen auf den Glukosestoffwechsel

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</ol>

<table><tbody><tr><td>1,25 % Avertin (2,2,2-Tribromethanol)</td><td>Nanjing Aibei</td><td>M2960</td><td>für die Anästhesie</td></tr><tr><td>Bakteriologische Petrischalen 35 x 10 mm mit dichtem Deckel, reines Polystyrol in Kristallqualität, steril</td><td>BD</td><td>353001</td><td></td></tr><tr><td>Bakteriologische Petrischalen 50 x 9 mm mit dichtem Deckel, reines Polystyrol in Kristallqualität, steril</td><td>BD</td><td>351006</td><td></td></tr><tr><td>Biosicherheitswerkbank</td><td>ESCO</td><td>class <img alt="Gleichung 1" src="/files/ftp_upload/66212/66212eq01.jpg" style="margin: auto; "></td><td>BSC Aseptische Operationen, Herstellung von Kulturschalen, Aliquotierung von Reagenzien usw.</td></tr><tr><td>CO2-Inkubator</td><td>Thermo</td><td>8000DH</td><td></td></tr> Embryokultur-Dissektionsmikroskop <tr><td></td><td>Olympus</td><td>SZX16</td><td>Verwendung beim Embryotransfer von Mäusen</td></tr><tr><td>Fluorinert Fc-770</td><td>SIGMA</td><td>F3556</td><td>Fluorinert FC-770 ist eine thermisch stabile, vollfluorierte Flüssigkeit mit hoher Durchschlagsfestigkeit und hohem spezifischen Widerstand, die als Betriebsmittel verwendet</td></tr> wird <tr><td>Handglukometer</td><td>Roche</td><td>AccuChek performa</td><td>Blut Glukosemessung</td></tr><tr><td>HTF</td><td>Merck</td><td>MR-070-D</td><td>Die EmbryoMax Human Tubal Fluid (HTF) (1x), Flüssigkeit, die für die Verwendung mit Maus-IVF entwickelt wurde, ist in einem 50-ml-Format erhältlich und wurde für die Embryokultur optimiert und validiert.</td></tr><tr><td>Hydraulischer Mikroinjektor</td><td>Eppendorf</td><td>CellTram 4r Öl, 5196000030</td><td>Für die Spermieninjektion</td></tr><tr><td>Inverses Mikroskop</td><td>Nikon</td><td>TI2-U</td><td>Mikromanipulation Beobachtungshost</td></tr><tr><td>KSOM</td><td>Merck</td><td>MR-020P-D(</td><td>1x), Pulver, ohne Phenolrot, 5 x 10 mL</td></tr><tr><td>M2 Merck</td><td></td><td>MR-015-D</td><td>EmbryoMax M2 Medium (1x), Flüssigkeit, mit Phenolrot</td></tr><tr><td>Mikromanipulator</td><td>NARISHIGE</td><td>NTX-N4</td><td>Mikromanipulationsarm</td></tr><tr><td>Mineralöl </td><td>SIGMA</td><td>M8410</td><td>Mineralöl eignet sich als Deckschicht zur Kontrolle von Verdunstung und Kreuzkontamination in verschiedenen molekularbiologischen Anwendungen.</td></tr><tr><td>Nadelschneider</td><td>Nanjing Aibei</td><td>Sutter MF-800</td><td>Verwendung zur Herstellung von Mikromanipulationsnadeln</td></tr><tr><td>Nadelabzieher</td><td>Nanjing Aibei</td><td>Sutter Modell p-100</td><td>Verwendung zur Herstellung von Mikromanipulationsnadeln</td></tr><tr><td>Piezo Drill Trip Mouce ICSI</td><td>Eppendorf</td><td>5195000.087</td><td>Anwendung der ICSI-Injektionsnadel.</td></tr><tr><td>Piezoelektrischer Mikromanipulator (Membranbrecher)</td><td>Eppendorf</td><td>Eppendorf PiezoXpert</td><td>Verwendung von Mikroimpulsen zum Aufbrechen der Zona pellucida und des Oolemma der Eizelle</td></tr><tr><td>Pneumatischer Mikroinjektor</td><td>Eppendorf</td><td>CellTram 4r Air, 5196000013</td><td>Zur Fixierung der Eizelle</td></tr><tr><td>Gebrauchsfertiges humanes Choriongonadotropin (Hcg)</td><td>Nanjing Aibei</td><td>M2520</td><td>Sterilisationsreagenz, intraperitoneale Injektion. 50 IE/ml</td></tr><tr><td>Gebrauchsfertiges Trächtigkeitsserum Gonadotropin (PMSG)</td><td>Nanjing Aibei</td><td>M2620</td><td>Sterilisationsreagenz, intraperitoneale Injektion. 50 I.E./ml</td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Olympus</td><td>SZX7</td><td>Eizellentnahme und Beobachtung der Embryonalentwicklung</td></tr></tbody></table>

Überwachung des blutzuckers bei mäusenachkommen nach intrazytoplasmatischer spermieninjektion

Monitoring Blood Glucose in Mouse Offspring After Intracytoplasmic Sperm Injection

In unserem Labor haben wir mittels ICSI mit nebenhoden kaudalen Spermien bei Mäusen eine Befruchtungsrate von 89,57 % und eine 2-Zell-Rate von 87,38 % erreicht. Die Geburtenrate der Nachkommen nach ET liegt bei etwa 42,50%. Bemerkenswert ist, dass alle Befruchtungsraten, 2-Zell-Raten und Geburtenraten der Nachkommen mit den Werten vergleichbar sind, die bei der menschlichen ART erreicht werden, was eine umfassende Simulation der verschiedenen Stadien menschlicher ART-Techniken bei Mäusen ermöglicht. Weitere Einzelheiten sind in Tabelle 1 und Tabelle 2 enthalten. Es gab keine signifikante Fluktuation der zufälligen Blutzuckerspiegel zwischen natürlich geborenen Mäusen und ICSI-Mäusen während des Wachstums- und Entwicklungsprozesses (Abbildung 2). Männliche ICSI-Mäuse zeigten jedoch während des gesamten Experiments kontinuierlich hohe Nüchternblutzuckerspiegel (Abbildung 3), was auf eine gestörte Nüchternblutzuckerhomöostase hinweist. Interessanterweise zeigten weibliche ICSI-Mäuse keine Veränderungen im Vergleich zur Kontrollgruppe. Bei GTT zeigte der Blutzuckerspiegel eine signifikante Veränderung zwischen männlichen ICSI-Mäusen und der Kontrollgruppe (Abbildung 4), und bei weiblichen Mäusen gab es keinen solchen Unterschied. Diese Ergebnisse deuteten darauf hin, dass die mit der ICSI-Technologie gewonnenen Nachkommen an Diabetes leiden könnten, und das Ergebnis hing mit dem Geschlecht zusammen. Obwohl die weiblichen Mäuse den Diabetes-Phänotyp nicht zeigten, war der übergewichtige Phänotyp sowohl bei männlichen als auch bei weiblichen ICSI-Mäusen konsistent (Abbildung 5).
Mit dem hier beschriebenen Protokoll der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (ICSI) erreichten wir bei Mäusen hohe Befruchtungs- und Embryoentwicklungsraten. In einem repräsentativen Experiment wurden 89,57% der Eizellen nach der ICSI befruchtet, was durch die Bildung von zwei Vorkernen belegt wurde. 24 Stunden nach der ICSI entwickelten sich 87,38% der Zygoten bis zum 2-Zell-Embryostadium. Nach dem Embryotransfer auf die Empfängerweibchen lag die Geburtenrate bei lebenden Jungtieren bei 42,50% (positive Ergebnisse). Unter Verwendung des hier beschriebenen optimierten intrazytoplasmatischen Spermieninjektionsprotokolls (ICSI) haben wir effizient Nachkommen aus Eizellen und Spermien von Mäusen erzeugt. Wichtig ist, dass eine gründliche Charakterisierung von ICSI-abgeleiteten Tieren metabolische Störungen in Abwesenheit von groben Entwicklungsdefekten aufdeckte.
Im Vergleich zu natürlich gezüchteten Kontrollen zeigten männliche, aber nicht weibliche ICSI-Mäuse eine gestörte Glukosehomöostase, was sich in einem erhöhten Nüchternblutzucker (Abbildung 3) und einer reduzierten Glukosetoleranz in intraperitonealen Glukosetoleranztests (Abbildung 4) zeigte. Diese Veränderungen können auf Reprogrammierungsdefizite während der ICSI-vermittelten Befruchtung oder auf subtile genetische/epigenetische Anomalien zurückzuführen sein, die während der Spermienmanipulation auftreten.
Darüber hinaus zeigten sowohl männliche als auch weibliche ICSI-Mäuse im Vergleich zu Kontrollen ein erhöhtes Körpergewicht (Abbildung 5), was auf eine Neigung zu Fettleibigkeit hindeutet. Während die Maus-ICSI-Technik die ICSI-Ergebnisse beim Menschen zuverlässig modelliert, unterstreichen die beobachteten metabolischen Phänotypen die Notwendigkeit, die Ergebnisse von ICSI-Tiermodellen vorsichtig zu interpretieren. Eine umfassende Bewertung von Wachstum, Gesundheit und Verhalten ist unerlässlich, um die Eignung von ICSI-Mäusen für Downstream-Anwendungen zu bestimmen.
Zusammengenommen verdeutlichen diese Daten den Nutzen des Maus-ICSI-Protokolls für die effiziente Erzeugung von Nachkommen für Studien und unterstreichen gleichzeitig die Bedeutung einer gründlichen Bewertung der phänotypischen Ergebnisse bei ICSI-abgeleiteten Tieren. Die in diesem Beispiel beobachteten geschlechtsspezifischen metabolischen Anomalien unterstreichen die Notwendigkeit einer sorgfältigen Interpretation der Ergebnisse aus ICSI-Mausmodellen.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66212/66212fig01.jpg"> Abbildung 1: Diagramm der Zubereitung der Schale für die intrazytoplasmatische Spermieninjektion bei Mäusen. Der Deckel der Zellkulturschale wurde in eine obere und eine untere Hälfte geteilt. Die obere Hälfte enthielt Tröpfchen aus 10% iger Polyvinylpyrrolidonlösung für die Spermienplatzierung. Die untere Hälfte enthielt Tröpfchen des M2-Mediums zur Durchführung des ICSI-Verfahrens. Alle Tröpfchen wurden mit Mineralöl überzogen, um eine Verdunstung zu verhindern. Dieser Schalenaufbau ermöglichte den sequentiellen Transfer von Spermien und Eizellen zwischen PVP- und M2-Tröpfchen, um den ICSI-Prozess zu ermöglichen. Die abgetrennten Bereiche verhinderten die Vermischung von Medien während des Eingriffs. Abkürzungen: ICSI = intrazytoplasmatische Spermieninjektion; PVP = Polyvinylpyrrolidon. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66212/66212fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66212/66212fig02.jpg"> Abbildung 2: Wöchentliche zufällige Blutzuckerspiegel bei natürlich gezüchteten Kontroll- (n = 5) und ICSI-Mäusen (n = 5) während der postnatalen Entwicklung. Der Blutzuckerspiegel wurde wöchentlich nach nächtlichem Fasten aus der Schwanzvene von Kontroll- und ICSI-Mäusen mit einem Glukometer gemessen. Die Daten werden als Mittelwert ± SEM dargestellt. Die statistische Signifikanz wurde mit einer bidirektionalen ANOVA, ns, P &gt; 0,05 bewertet. Abkürzungen: SEM = Standardfehler des Mittelwerts; ICSI = intrazytoplasmatische Spermieninjektion; ns = nicht signifikant; NM = natürliche Verpaarung. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66212/66212fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66212/66212fig03.jpg"> Abbildung 3: Wöchentliche Nüchternblutzuckerspiegel bei natürlich gezüchteten Kontroll- (n = 7 für Rüden, n = 7 für Hündinnen) und ICSI-behandelten Mäusen (n = 7 für Rüden, n = 7 für Hündinnen) während der postnatalen Entwicklung. Nach dem nächtlichen Fasten wurden wöchentlich die Blutzuckerspiegel aus der Schwanzvene von nüchternen Kontroll- und ICSI-behandelten Mäusen mit einem Glukometer gemessen. Es wurde beobachtet, dass männliche ICSI-behandelte Mäuse, aber nicht weibliche, signifikant erhöhte Nüchternblutzuckerspiegel im Vergleich zu ihren geschlechtsangepassten Kontrollen ab einem Alter von 8 Wochen aufwiesen. Die Daten werden als Mittelwert ± SEM dargestellt. Die statistische Signifikanz wurde anhand einer bidirektionalen ANOVA (ns, P &gt; 0,05, ***P &lt; 0,001, ****P &lt; 0,0001) bewertet. Abkürzungen: SEM = Standardfehler des Mittelwerts; ICSI = intrazytoplasmatische Spermieninjektion; ns = nicht signifikant; NM = natürliche Verpaarung. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66212/66212fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66212/66212fig04.jpg"> Abbildung 4: Intraperitonealer Glukosetoleranztest bei natürlich gezüchteten Kontrollmäusen (n = 5) und ICSI-behandelten männlichen Mäusen (n = 5) im Alter von 16 Wochen. Nach einem Fasten über Nacht erhielten die Mäuse eine intraperitoneale Glukoseinjektion (2 g/kg Körpergewicht). Der Blutzuckerspiegel wurde dann 0, 30, 60 und 120 Minuten nach der Injektion gemessen. Männliche ICSI-behandelte Mäuse zeigten während der IPGTT nach 30, 60 und 120 Minuten signifikant höhere Blutzuckerspiegel im Vergleich zu natürlich gezüchteten Kontrollen. Die Daten werden als mittlere ± REM dargestellt. Die Analysen wurden mit bidirektionaler ANOVA durchgeführt. ns, P &gt; 0,05. *P &lt; 0,05. Abkürzungen: IPGTT = Intraperitonealer Glukosetoleranztest; SEM = Standardfehler des Mittelwerts; ICSI = intrazytoplasmatische Spermieninjektion; ns = nicht signifikant; NM = natürliche Verpaarung. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66212/66212fig04large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66212/66212fig05.jpg"> Abbildung 5: Körpergewichtsmessung von natürlich gezüchteten Kontrollmäusen (n = 5 Männchen, n = 5 Weibchen) und ICSI-behandelten Mäusen (n = 5 Männchen, n = 5 Weibchen) im Alter von 4 bis 20 Wochen. Wöchentliche Messungen zeigten, dass sowohl männliche als auch weibliche ICSI-behandelte Mäuse ab einem Alter von 8 Wochen im Vergleich zu ihren geschlechtsspezifischen Kontrollen ein signifikant erhöhtes Körpergewicht aufwiesen. Die Daten werden als mittlere ± REM dargestellt. Die Analysen wurden mit bidirektionaler ANOVA durchgeführt. P &lt; 0,001. P &lt; 0,0001. Abkürzungen: SEM = Standardfehler des Mittelwerts; ICSI = intrazytoplasmatische Spermieninjektion; ns = nicht signifikant; NM = natürliche Verpaarung. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66212/66212fig05large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<table border="1" fo:font-size="8px" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td style="min-width: 60px;"></td>
			<td style="min-width: 60px;">Eizellen</td>
			<td style="min-width: 60px;">Zygoten</td>
			<td style="min-width: 60px;">Befruchtungsrate (%)</td>
			<td style="min-width: 60px;">2 Zellen</td>
			<td style="min-width: 60px;">2-Zellen-Rate (%)</td>
			<td style="min-width: 60px;">4-8 Zellen</td>
			<td style="min-width: 60px;">4-8 Zellenfrequenz (%)</td>
			<td style="min-width: 60px;">Morula</td>
			<td style="min-width: 60px;">Morula Kurs</td>
			<td style="min-width: 60px;">Blastozysten</td>
			<td style="min-width: 60px;">Blastozysten-Rate</td>
		</tr><tr><td style="min-width: 60px;">Cauda-Sperma ICSI1</td>
			<td style="min-width: 60px;">90</td>
			<td style="min-width: 60px;">84</td>
			<td style="min-width: 60px;">93.33</td>
			<td style="min-width: 60px;">76</td>
			<td style="min-width: 60px;">90.48</td>
			<td style="min-width: 60px;">72</td>
			<td style="min-width: 60px;">85.71</td>
			<td style="min-width: 60px;">69</td>
			<td style="min-width: 60px;">82.14</td>
			<td style="min-width: 60px;">64</td>
			<td style="min-width: 60px;">76.19</td>
		</tr><tr><td style="min-width: 60px;">Cauda-Sperma ICSI2</td>
			<td style="min-width: 60px;">80</td>
			<td style="min-width: 60px;">72</td>
			<td style="min-width: 60px;">90</td>
			<td style="min-width: 60px;">62</td>
			<td style="min-width: 60px;">86.11</td>
			<td style="min-width: 60px;">59</td>
			<td style="min-width: 60px;">81.94</td>
			<td style="min-width: 60px;">53</td>
			<td style="min-width: 60px;">73.61</td>
			<td style="min-width: 60px;">46</td>
			<td style="min-width: 60px;">63.89</td>
		</tr><tr><td style="min-width: 60px;">Cauda Sperma ICSI3</td>
			<td style="min-width: 60px;">60</td>
			<td style="min-width: 60px;">50</td>
			<td style="min-width: 60px;">83.33</td>
			<td style="min-width: 60px;">42</td>
			<td style="min-width: 60px;">84</td>
			<td style="min-width: 60px;">37</td>
			<td style="min-width: 60px;">74</td>
			<td style="min-width: 60px;">32</td>
			<td style="min-width: 60px;">64</td>
			<td style="min-width: 60px;">28</td>
			<td style="min-width: 60px;">56</td>
		</tr><tr><td style="min-width: 60px;">Gesamt</td>
			<td style="min-width: 60px;">230</td>
			<td style="min-width: 60px;">206</td>
			<td style="min-width: 60px;">89.57</td>
			<td style="min-width: 60px;">180</td>
			<td style="min-width: 60px;">87.38</td>
			<td style="min-width: 60px;">168</td>
			<td style="min-width: 60px;">81.55</td>
			<td style="min-width: 60px;">154</td>
			<td style="min-width: 60px;">74.76</td>
			<td style="min-width: 60px;">138</td>
			<td style="min-width: 60px;">66.99</td>
		</tr></tbody></table>Tabelle 1: Entwicklungsergebnisse nach ICSI bei Mäusen. Abkürzung: ICSI = intrazytoplasmatische Spermieninjektion.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Nein.</td>
			<td>Nein. von übertragenen Embryonen</td>
			<td>Nein. der Geburt (%)</td>
			<td>Männlich</td>
			<td>Weiblich</td>
			<td>Geburtenrate (%)</td>
		</tr><tr><td>1</td>
			<td>6</td>
			<td>3</td>
			<td>3</td>
			<td>0</td>
			<td></td>
		</tr><tr><td>2</td>
			<td>6</td>
			<td>1</td>
			<td>1</td>
			<td>0</td>
			<td></td>
		</tr><tr><td>3</td>
			<td>5</td>
			<td>2</td>
			<td>0</td>
			<td>2</td>
			<td></td>
		</tr><tr><td>4</td>
			<td>8</td>
			<td>4</td>
			<td>2</td>
			<td>2</td>
			<td></td>
		</tr><tr><td>5</td>
			<td>8</td>
			<td>2</td>
			<td>1</td>
			<td>1</td>
			<td></td>
		</tr><tr><td>6</td>
			<td>7</td>
			<td>5</td>
			<td>3</td>
			<td>2</td>
			<td></td>
		</tr><tr><td>Gesamt</td>
			<td>40</td>
			<td>17</td>
			<td>10</td>
			<td>7</td>
			<td>42.5</td>
		</tr></tbody></table>Tabelle 2: Geburtsergebnisse nach Uterustransplantation von ICSI-Mausembryonen. Abkürzung: ICSI = intrazytoplasmatische Spermieninjektion.

Überwachung des Blutzuckers bei Mäusenachkommen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion

Human lifespan is considerably long, while mouse models can simulate the entire human lifespan in a relatively short period, with one year of mouse life ...

monitoring-blood-glucose-mouse-offspring-after-intracytoplasmic-sperm

Research

Forschung

JoVE Journal

Developmental Biology

Entwicklungsbiologie

Dieses Video zeigt die Wirkung einer kontinuierlichen Infusion von Medikamenten in das Gehirn von Mäusen auf den Blutzuckerspiegel. Der Glukosestoffwechsel wird beurteilt, indem Blut aus dem Schwanz einer nüchternen Maus entnommen und der Glukosespiegel vor und nach der oralen Glukoseverabreichung gemessen wird. Die Insulintoleranz wird durch Injektion von Insulin in die Maus bewertet, wobei der Glukosespiegel in bestimmten Abständen aufgezeichnet wird.

Bewertung der Wirkung einer kontinuierlichen Infusion von Medikamenten in das Gehirn von Mäusen auf den peripheren Glukosespiegel

Dieses Protokoll untersucht die Rolle der Chemokin (C-C-Motiv) Liganden 5 (CCL5) im Hypothalamus durch die Bereitstellung von Antagonist MetCCL5, in das Gehirn der Maus mit einem Mikro-osmotischen Pumpe Gehirn Infusion System. Diese vorübergehende Hemmung der CCL5 Aktivität unterbrochen Hypothalamus Insulin Signalisierung, Glukoseintoleranz und periphere systemische Insulinsensitivität führen.

Studium der Hypothalamus Insulin-Signal an peripheren Glukoseintoleranz mit einem kontinuierlichen Medikament Infusion System in das Gehirn der Maus

In dieser Studie beschreiben wir eine in Ovo -System als ein viel versprechendes Instrument, Insulin-mimetischen Verbindungen in einem lebenden Organismus zu testen. Die Hauptvorteile sind angemessene Durchsatzraten und vertretbaren Kosten, die die Identifizierung von sekundären Pflanzenstoffen mit Insulin-mimetischen Eigenschaften ermöglichen.

Ein In Ovo -Modell zum Testen Insulin-mimetischen Verbindungen

Hier beschreiben wir eine neue Methode, um die erfolgreiche Etablierung der gemeinsamen Durchblutung von zwei Parabionten durch eine kaudale Veneninjektion von Glukose zu erkennen, die minimale Schäden verursacht und für die Parabionten nicht tödlich ist.

Nachweis der gemeinsamen Blutversorgung bei parabiotischen Mäusen durch Kaudalenvene Glucose Injection

Diese Studie beschreibt die direkte Messung der hepatischen Glukoseproduktion in einem Mausmodell mit polyzystischem Ovarialsyndrom unter Verwendung eines stabilen Isotopenglukose-Tracers über die Schwanzvene sowohl im nüchternen als auch im glukosereichen Zustand im Tandem.

Evaluierung der hepatischen Glukoseproduktion in einem Mausmodell mit polyzystischem Ovarialsyndrom

Eine Infektion der Mutter ist ein Risikofaktor für neurologische Entwicklungsstörungen. Mausmodelle der mütterlichen Immunaktivierung (MIA) können die Auswirkungen der Infektion auf die Entwicklung und Funktion des Gehirns aufklären. Hier werden allgemeine Richtlinien und ein Verfahren bereitgestellt, um zuverlässig belastbare und anfällige Nachkommen zu erzeugen, die MIA ausgesetzt sind.

Erstellung eines reproduzierbaren Modells der mütterlichen Immunaktivierung in der Mitte der Schwangerschaft unter Verwendung von Poly(I:C) zur Untersuchung der Suszeptibilität und Resilienz bei Nachkommen

Dieser Artikel beschreibt ein detailliertes Protokoll zur Erhöhung der Glukosekonzentration im Liquor cerebrospinalis (CSF) von Mäusen. Dieser Ansatz kann nützlich sein, um die Auswirkungen einer hohen Liquorglukose auf die Neurodegeneration, die Kognition und den peripheren Glukosestoffwechsel bei Mäusen zu untersuchen.

Osmotische Minipump-Implantation zur Erhöhung der Glukosekonzentration im Liquor der Maus

Hier stellen wir eine Methode zur Durchführung der runden Spermatideninjektion (ROSI) bei Mäusen vor, eine Technik mit vielversprechenden klinischen Anwendungen und Nutzen für die Untersuchung der Mechanismen, die der Embryonalentwicklung zugrunde liegen.

Runde Maus-Spermatiden-Injektion

Dieses Protokoll beschreibt die Methode zur Reduzierung der Aufnahme von Folsäure oder Cholin über die Nahrung bei weiblichen Mäusen vor der Schwangerschaft mit dem Ziel, den Einfluss der mütterlichen Ernährung auf die Gesundheit der Nachkommen zu untersuchen.

Änderung des Folsäure- oder Cholingehalts in der Nahrung, um die Auswirkungen von Mangelerscheinungen auf die Gesundheit der Nachkommen zu untersuchen

Der Artikel bietet ein umfassendes Protokoll zur Erstellung eines mütterlichen Immunaktivierungsmodells (MIA), das die Auswirkungen früher Schwangerschafts-Entzündungen auf die Neuroentwicklung untersucht, einschließlich wichtiger Kennzahlen zur Gewährleistung von Zuverlässigkeit und Reproduzierbarkeit.

Erzeugung des frühgestationalen mütterlichen Immunaktivierungsmodells zur Beurteilung pränataler Entzündungen auf die Neuroentwicklung

Erfahren Sie, wie man einen ICSI-ET-Mausmodell etabliert, um altersbedingte Veränderungen des Glukosestoffwechsels bei Nachkommen zu untersuchen. Diese Methode liefert wertvolle Erkenntnisse für die reproduktive Gesundheit.

Überwachung des Blutzuckers bei Mäusenachkommen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion

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