Name: Gefäßrekonstruktion mit der Manschettentechnik bei der orthotopen Lebertransplantation der Maus (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-12-01T13:10:00.000+00:00
Duration: 5 min 25 s
Description: Lernen Sie die Manschettentechnik zur Gefäßrekonstruktion bei orthotoper Lebertransplantation der Maus. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Kälteischämie und Reperfusionsschäden.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Diese Arbeit wurde durch die JST-Grundlagenforschung 2022 (The Japanese Society for Transplantation) unterstützt.

Das Versuchsprotokoll wurde vom Tierversuchsausschuss der Universität Kyoto genehmigt. In der Studie wurden C57BL/6-Mäuse verwendet, die über 10 Wochen alt waren und zwischen 25 g und 30 g wogen, die aus einer kommerziellen Quelle gewonnen wurden (siehe Materialtabelle). Alle Tiere wurden mit 2,5 % Isofluran betäubt (nach institutionell anerkannten Protokollen), unter spezifischen pathogenfreien Bedingungen gehalten, und alle experimentellen Verfahren wurden in Übereinstimmung mit den Tierversuchsvorschriften der Universität Kyoto durchgeführt. Die für die Studie verwendeten Instrumente sind in der Materialtabelle aufgeführt und in Abbildung 1 und Abbildung 2 dargestellt.
1. Auswahl der Tiere
<ol><li>Verwenden Sie Mäuse mit einem Körpergewicht von 25-30 g. HINWEIS: Während Mausleber-Allotransplantate2 im Allgemeinen über die Haupthistokompatibilitätskomplexbarriere hinweg akzeptiert werden, haben wir uns in dieser Studie für das syngene MOLT-Modell entschieden, um uns auf den detaillierten Mechanismus der Reperfusionsschädigung durch Kälteischämiezu konzentrieren 10. Mäuse mit einem Gewicht von weniger als 25 g werden nicht empfohlen, da es unmöglich ist, einen inneren Stent in einen dünnen Gallengang einzuführen. Ebenso werden Mäuse mit einem Gewicht von mehr als 30 g nicht empfohlen, da eine große Menge an intraabdominalem Fett um die Gefäße herum vorhanden ist.</li>
</ol>2. Herstellung von Manschetten
<ol><li>Bereiten Sie 20 g bzw. 16 g intravenöse Katheter für die PV bzw. IHIVC vor.</li>
	<li>Schneiden Sie mit einem Skalpell den Katheter ab, um die Manschette zu erstellen. Der Hauptkörper der Manschette sollte 2 mm lang sein und einen Verlängerungsgriff von 1 mm haben (Abbildung 3A). HINWEIS: Wenn der Griff zu groß ist, kann es schwierig werden, die Manschette einzuführen.</li>
	<li>Gestalte auf der Oberfläche der Manschette eine flache Rille für die Fadenfixierung mit dem Rücken der Skalpellklinge. HINWEIS: Wenn Sie den Rücken der Skalpellklinge auf die Manschette aufsetzen, stellen Sie sicher, dass die Spitze der Klinge in einem Winkel von ca. 60 Grad steht (wie in Abbildung 3B gezeigt). Nachdem Sie die erste Rille gemacht haben, befestigen Sie die Skalpellklinge und drehen Sie die Manschette. Im Idealfall werden zwei Rillen empfohlen, aber eine einzige Rille kann ohne Probleme ausreichen.</li>
</ol>3. Manschetten-Befestigung
<ol><li>In einen rechteckigen Kunststoffbehälter kleine Eiswürfel geben und einen kleinen Metallbecher (6 cm Durchmesser) darauf stellen. Füllen Sie den Becher mit Organkonservierungsflüssigkeit (siehe Materialtabelle) und legen Sie das syngene Transplantat hinein.</li>
	<li>Rollen Sie das syngene Lebertransplantat (das von einer anderen Spendermaus gewonnen wurde) vorsichtig mit einem Wattestäbchen und achten Sie darauf, dass die Porta hepatis nach oben zeigt. Entfernen Sie gründlich jegliches Blut, das im Lumen der IVC gespeichert ist, mit Organerhaltungsflüssigkeit.</li>
	<li>Fädeln Sie das PV mit einem Faden, der z. B. an der Milzvene befestigt ist, durch die Manschette (siehe Abbildung 4A).</li>
	<li>Wenn sich der Manschettengriff in der 12-Uhr-Position befindet, befestigen Sie sowohl den Griff als auch die Manschette mit einer Bulldog-Klemme (siehe Materialtabelle) und positionieren Sie sie 2 bis 3 mm von der PV-Kante entfernt.</li>
	<li>Befestigen Sie die Bulldog-Klemme weiter mit einer großen Gefäßzange und einer Fixierform, um das Operationsfeld zu etablieren (siehe Abbildung 4B).</li>
	<li>Überprüfen Sie das PV-Lumen sorgfältig bei ca. 15- bis 20-facher Vergrößerung. Falls erforderlich, kann Tropfwasser die Sichtbarkeit des Lumens verbessern.</li>
	<li>Fassen Sie das PV-Lumen vorsichtig an und geben Sie es durch die Manschette nach außen.</li>
	<li>Sobald es vollständig externalisiert ist, sichern Sie es mit einer doppelten Ligatur mit 8-0 Seidenfaden entlang der Rille der Manschette (Abbildung 4C,D). HINWEIS: Stellen Sie sicher, dass die Ligatur nicht locker ist. Achten Sie auch darauf, dass der Ligaturpunkt nicht zu groß ist, da er das Einsetzen der Manschette beeinträchtigen kann. Der Ligaturpunkt kann in jede Richtung positioniert werden.</li>
	<li>Befestigen Sie die Manschette am IHIVC mit einem ähnlichen Verfahren wie beim PV (Abbildung 4E). HINWEIS: Wenn Sie den IHIVC mit der Manschette festklemmen, vermeiden Sie es, in das Leberparenchym zu beißen. Da der Hals kürzer als der PV ist, bestimmen Sie vorsichtig die Klemmposition.</li>
	<li>Erstellen Sie einen Slipknot, indem Sie den Faden um die Basis des IHIVC führen, um den IHIVC vorübergehend zu ligieren (Abbildung 5). Dieser Faden wird nach der Reperfusion entfernt.</li>
</ol>4. Rekonstruktion der Pfortader
<ol><li>Anästhesie der Empfängermaus durch Induktion einer Anästhesie mit Isofluran bei 2,5 % und Reduzierung auf 0,6 %, bevor die native Leber extrahiert wird, wie in der veröffentlichten Literatur beschrieben2. Desinfizieren Sie den Operationsbereich mindestens dreimal mit abwechselnden Runden Iodophor und 70%igem Ethanol vor der Laparotomie.</li>
	<li>Stellen Sie sicher, dass der Leberlappen richtig positioniert ist und dass der PV mit der Manschette frei von Knicken und Torsion ist.</li>
	<li>Fassen Sie die PV-Kante des Rezipienten vorsichtig mit einer Pean-Pinzette an und sichern Sie sie mit einem Schraubstock. HINWEIS: In diesem Artikel bezieht sich ein Schraubstock auf eine mechanische Vorrichtung, mit der die Pean-Pinzette auf dem Tisch befestigt wird. Weitere Informationen zum Schraubstock finden Sie unter Materialtabelle.</li>
	<li>Bringen Sie eine Gefäßklemme auf den PV des Empfängers an und übergeben Sie eine 8-0 Seidenfaden drumherum.</li>
	<li>Erstellen Sie einen 1/4-Umfangsquerschnitt ca. 0,5 mm von der PV-Kante entfernt (Abbildung 6A). Vergrößern Sie das Loch, während Sie die Kochsalzlösung mit einem speziellen Instrument (einer 27-G-Nadel, bei der die Spitze abgeschnitten und in eine L-Form gebogen wird) durch das Lumen leiten.</li>
	<li>Fassen Sie den Manschettengriff mit einer geraden Pinzette und führen Sie ihn in das Lumen ein.</li>
	<li>Sobald sie vollständig eingesetzt ist, sichern Sie die Manschette mit einem 8-0 Seidenfaden. Für die Fixation ist eine einzige Ligatur ausreichend.</li>
	<li>Entfernen Sie die Gefäßklemme und persolidieren Sie die Leber.</li>
	<li>Lösen Sie vorsichtig die Pean-Pinzette und schließen Sie die Rekonstruktion der Pfortader ab. Der gesamte PV-Umbau sollte ca. 5 Minuten dauern.</li>
</ol>5. Rekonstruktion der infrahepatischen Vena cava inferior
<ol><li>Positionieren Sie den Leberlappen entsprechend und bewegen Sie die Pean-Pinzette, die an der IHIVC-Empfängerzange befestigt ist, dorsal zum rechten Unterlappen des Transplantats und sichern Sie sie mit einem Schraubstock.</li>
	<li>Entfernen Sie restliches Lebergewebe um das IVIHC des Empfängers, indem Sie es vorsichtig mit einem Wattestäbchen abreiben.</li>
	<li>Pass an 8-0 Seidenfaden um den IVIHC des Empfängers.</li>
	<li>Erstellen Sie einen 1/4-Umfangsschnitt in einem Abstand von ca. 0,5 mm von der IVIHC-Kante des Empfängers (Abbildung 6B).</li>
	<li>Nachdem Sie normale Kochsalzlösung in das Lumen eingeführt haben, führen Sie die Manschette in das Lumen ein. HINWEIS: Durch den kurzen Halsausschnitt wird die Manschette oft flacher eingesetzt als bei der PV.</li>
	<li>Sichern Sie die Manschette vorsichtig mit einem 8-0 Seidenfaden und entfernen Sie dann die Gefäßklemme und die Pean-Pinzette.</li>
</ol>6. Nachsorge
<ol><li>Verwenden Sie ein Heizkissen und eine Wärmelampe, um die postoperative Genesung zu erleichtern.</li>
	<li>Überwachen Sie kontinuierlich Blutdruck, Herzfrequenz, Atemfrequenz, Körpertemperatur sowie Nahrungs- und Wasserverbrauch.</li>
	<li>Verabreichung von subkutaner Injektion von Carprofen (5 mg/kg, alle 6 h oder bis zur Bedarf) zur Linderung der postoperativen Schmerzen. Befolgen Sie die lokalen institutionellen Richtlinien. HINWEIS: Wenn sich der Zustand der Mäuse verschlechtert, wird das Experiment sofort abgebrochen und die Mäuse werden durch Einatmen von Kohlendioxid eingeschläfert.</li>
	<li>Um die Gewebeprobe zu entnehmen, betäuben Sie die Mäuse erneut und euthanasieren Sie sie mit einer von der IACUC zugelassenen Methode.</li>
</ol>

Strategien für eine effiziente vaskuläre Anastomose bei der Lebertransplantation der Maus

<ol><li>Qian, S. G., Fung, J. J., Demetris, A. V., Ildstad, S. T., Starzl, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+liver+transplantation+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Orthotopic liver transplantation in the mouse.</a> Transplantation. 52 (3), 562-564 (1991).</li>
<li>Yokota, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+mouse+liver+transplantation+to+study+liver+biology+and+allograft+tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Orthotopic mouse liver transplantation to study liver biology and allograft tolerance.</a> Nat Protoc. 11 (7), 1163-1174 (2016).</li>
<li>Shen, X. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+responses+in+a+new+mouse+model+of+prolonged+hepatic+cold+ischemia+followed+by+arterialized+orthotopic+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+Transpl%22%5BJournal%5D)">Inflammatory responses in a new mouse model of prolonged hepatic cold ischemia followed by arterialized orthotopic liver transplantation.</a> Liver Transpl. 11 (10), 1273-1281 (2005).</li>
<li>Kageyama, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ischemia-reperfusion+injury+in+allogeneic+liver+transplantation%3A+A+role+of+CD4+T+cells+in+early+allograft+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Ischemia-reperfusion injury in allogeneic liver transplantation: A role of CD4 T cells in early allograft injury.</a> Transplantation. 105 (9), 1989-1997 (2021).</li>
<li>Li, T., Hu, Z., Wang, L., Lv, G. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Details+determining+the+success+in+establishing+a+mouse+orthotopic+liver+transplantation+model%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Details determining the success in establishing a mouse orthotopic liver transplantation model.</a> World J Gastroenterol. 26 (27), 3889-3898 (2020).</li>
<li>Tian, Y., Rüdiger, H. A., Jochum, W., Clavien, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+arterialized+and+nonarterialized+orthotopic+liver+transplantation+in+mice%3A+Prowess+or+relevant+model%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Comparison of arterialized and nonarterialized orthotopic liver transplantation in mice: Prowess or relevant model.</a> Transplantation. 74 (9), 1242-1246 (2002).</li>
<li>Steger, U., Sawitzki, B., Gassel, A. M., Gassel, H. J., Wood, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+hepatic+rearterialization+on+reperfusion+injury+and+outcome+after+mouse+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Impact of hepatic rearterialization on reperfusion injury and outcome after mouse liver transplantation.</a> Transplantation. 76 (2), 327-332 (2003).</li>
<li>Chen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+various+techniques+of+mouse+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">A review of various techniques of mouse liver transplantation.</a> Transplant Proc. 45 (6), 2517-2521 (2013).</li>
<li>Kojima, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T+cell+carcinoembryonic+antigen-related+cell+adhesion+molecule+1-T+cell+immunoglobulin+domain+and+mucin+domain-containing+protein+3+cross+talk+alleviates+liver+transplant+injury+in+mice+and+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">T cell carcinoembryonic antigen-related cell adhesion molecule 1-T cell immunoglobulin domain and mucin domain-containing protein 3 cross talk alleviates liver transplant injury in mice and humans.</a> Gastroenterology. 165 (5), 1233-1248 (2023).</li>
<li>Yokota, S., Yoshida, O., Ono, Y., Geller, D. A., Thomson, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liver+transplantation+in+the+mouse%3A+Insights+into+liver+immunobiology%2C+tissue+injury%2C+and+allograft+tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+Transpl%22%5BJournal%5D)">Liver transplantation in the mouse: Insights into liver immunobiology, tissue injury, and allograft tolerance.</a> Liver Transpl. 22 (4), 536-546 (2016).</li>
</ol>

Kein Autor hat Interessenkonflikte offenzulegen.

Das Erlernen der Gefäßrekonstruktion ist der schwierigste Aspekt auf dem Weg zu einem erfolgreichen MOLT. Die Qualität der Manschette hat einen erheblichen Einfluss auf die Schwierigkeit der Rekonstruktion, da die Größe der Mäusegering ist 5. Dieser Artikel enthält ein detailliertes Protokoll für die Vorbereitung, Befestigung und Rekonstruktion der Manschette.
Obwohl es keine großen Unterschiede zu früheren Berichten bezüglich der Manschettenpräparation und -verbindung ...

Die orthotope Lebertransplantation (MOLT) der Maus ist eine wirksame experimentelle Methode, über die erstmals 1991 berichtetwurde 1. Dieses experimentelle Modell, das genetisch veränderte Mäuse und verschiedene Forschungsreagenzien verwendet, hat eine entscheidende Rolle bei der Untersuchung von warmer und kalter Ischämie und Reperfusionsverletzungen gespielt. Die hohe technische Komplexität des Modells hat jedoch die Entwicklung einer Basismedizin für die Lebertransplantation behindert2. Die MOLT umfasst drei Hauptschritte: (1) die Entnahme der Leber aus der Spendermaus, (2) die Operation am Rückentisch und (3) die Implantation der Leber in den Empfänger. Unter diesen Empfängerverfahren stellt die vaskuläre Anastomose die größte Herausforderung dar. Während die suprahepatische Anastomose der unteren Hohlvene typischerweise durch eine Handnahtvervollständigt wird 2, können die infrahepatische untere Hohlvene (IHIVC) und die Pfortader (PV) mit Kunststoffmanschetten anstelle von handgenähten Nähten effizienter rekonstruiert werden.
Die anhepatische Periode bezeichnet das Intervall zwischen der Entnahme der nativen Leber des Empfängers und der Implantation des Transplantats. Um konsistente Ergebnisse zu gewährleisten, ist es zwingend erforderlich, die anhepatische Zeit auf weniger als 20 Minuten zu begrenzen. Folglich wurden Studien, die dieses Modell anwendeten, aufbestimmte Institutionen beschränkt 3,4,5,6,7,8,9. Unter den verschiedenen Stadien der MOLT ist eine reibungslose PV- und IHIVC-Rekonstruktion entscheidend, um die anhepatische Zeit zu minimieren und eine erfolgreiche Transplantation zu gewährleisten.
Die PV- und IVC-Rekonstruktion wird in der Regel mit Hilfe von Gefäßmanschetten durchgeführt, da die Manschettentechnik die Gefäßanastomose im Vergleich zu handgenähten Nähten vereinfacht 2,5,8. Die Technik, die mit der Vorbereitung der Gefäßmanschette und der sicheren Befestigung der Manschette verbunden ist, hat einen erheblichen Einfluss auf die Komplexität der Gefäßrekonstruktion des Empfängers. Unser Ziel ist es, eine detaillierte visuelle Anleitung für zahlreiche technische Tipps im Zusammenhang mit der Manschettenmethode zu geben und so die Lernkurve zu verkürzen. Diese Videoclips vermitteln ein klares Verständnis dafür, wie die Manschette an den Gefäßen befestigt und die PV und IHIVC während der Empfängeroperation rekonstruiert werden.

<table><tbody><tr><td>16 g Katheter für intravenöse Arthritis</td><td>TERUMO</td><td>SR-FF2032</td><td>IHIVC-Manschette</td></tr><tr><td>20 G Katheter für intravenöse Arthritis</td><td>TERUMO</td><td>SR-FF1651</td><td>PV Manschette</td></tr><tr><td>8-0 geflochtene Seide</td><td>Natsume Seisakusho</td><td>CR9-80B2</td><td>8-0 Seide</td></tr><tr><td>Belzer UW Kühlhauslösung&nbsp;</td><td>Astellas</td><td></td><td>Organkonservierungsflüssigkeit</td></tr><tr><td>Bulldoggenklemme</td><td>B BRAUN</td><td>FB329R</td><td>Bulldoggenklemme</td></tr><tr><td>C57BL/6 Mäuse&nbsp; &nbsp;</td><td>Oriental Bio Service</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isofluran Inhalationslösung</td><td>Viatris</td><td></td><td>Anästhesie</td></tr><tr><td>Mikro Blunted Spitzen 0,1 mm x 0,06 mm&nbsp;</td><td>F.S.T</td><td>11253-20</td><td>Gerade Mikrozange</td></tr><tr><td>Micro Serrefine Klemmapplikator mit Schloss</td><td>F.S.T</td><td>18056-14</td><td>Gefäßclip-Applikator</td></tr><tr><td>Micro Serrefines&nbsp;</td><td>F.S.T</td><td>18055-4</td><td>Gefäßclip</td></tr><tr><td>Nr.11 Ersatzklingen</td><td>FEATHER Rasierhobel</td><td>11</td><td>Klingen</td></tr><tr><td>Augenschere, runder Griff</td><td>B BRAUN</td><td>FD103R</td><td>Mikroschere</td></tr><tr><td>rechteckiger Kunststoffbehälter&nbsp; &nbsp;</td><td>Daiso</td><td></td><td>10 cm lang, 15 cm breit und 6 cm hoch</td></tr><tr><td>SuperGrip Spitzen</td><td>F.S.T</td><td>00649-11&nbsp;</td><td>Gebogene Mikrozange</td></tr><tr><td>SZX7</td><td>Olympus</td><td>SZX7</td><td>Mikroskop</td></tr><tr><td>Schraubstock</td><td>Niigataseiki</td><td>00505351</td><td>Ein mechanisches Werkzeug, um Pean Pinzetten auf dem Tisch zu befestigen</td></tr></tbody></table>

gefäßrekonstruktion mit der manschettentechnik bei der orthotopen lebertransplantation der maus

Vascular Reconstruction with the Cuff Technique in Mouse Orthotopic Liver Transplantation

Die orthotope Lebertransplantation der Maus ist eine effektive Methode zur Untersuchung der zugrundeliegenden Mechanismen von Leberischämie und Reperfusionsschäden. Die technischen Herausforderungen stellen jedoch ein Hindernis dar, um dieses wertvolle experimentelle Modell zu nutzen und diese Fähigkeiten an die nächste Generation weiterzugeben. Der schwierigste Aspekt dieses Eingriffs ist die Gefäßrekonstruktion, einschließlich der Pfortader (PV), der infrahepatischen unteren Hohlvene (IHIVC) und der suprahepatischen unteren Hohlvene. Die Verwendung von Kunststoffmanschetten anstelle von Nähten ermöglicht eine reibungslosere PV- und IHIVC-Rekonstruktion. Bei der Rekonstruktion der Gefäße wird eine Manschette aus einem intravenösen Katheter an der Spitze des Transplantatgefäßes befestigt und die Manschette in das Empfängergefäß eingesetzt. Die beiden wichtigsten Aspekte sind die richtige Visualisierung des inneren Lumens des Gefäßes und die Vermeidung übermäßiger Krafteinwirkung. Unser Ziel ist es, einen technischen Überblick über Gefäßrekonstruktionen mit der Manschettentechnik in der Empfängerchirurgie zu geben. Diese technischen Tipps für die Manschettentechnik sollen Mikrochirurgen dabei helfen, die Gefäßrekonstruktion zu erleichtern und ihre Forschung voranzutreiben.

Die PV-Rekonstruktion ist erfolgreich, wenn beim Lösen der Pfortader keine Tortuosität auftritt und die Leber gleichmäßig durchblutet ist. Die anhepatische Zeit sollte unter 20 Minuten liegen, da anhepatische Zeiten von mehr als 25 Minuten das Mortalitätsrisiko bei Mäusen erhöhen. Die IHIVC-Rekonstruktion gilt als erfolgreich, wenn keine Blutinsuffizienz aus dem Transplantat vorliegt.
Die Lagerung des Transplantats bei kalten Temperaturen für 1 h mit Organkonservierungslösung führt zu einem Se...

Dieses Protokoll enthält technische Informationen für die Gefäßrekonstruktion mit der Manschettentechnik bei der orthotopen Lebertransplantation der Maus.

Gefäßrekonstruktion mit der Manschettentechnik bei der orthotopen Lebertransplantation der Maus

Mouse orthotopic liver transplantation is an effective methodology for investigating the underlying mechanisms of liver ischemia and reperfusion injury. ...

Wir konzentrieren uns in unserer Forschung auf die Lebertransplantation, insbesondere auf die kalte Ischämie und die Schädigung der warmen Reperfusion. Zu diesem Zweck verwenden wir das Lebertransplantationsmodell der Maus als Forschungsinstrument. Weil die Technik schwierig ist, kann es lange dauern, bis man sie erlernt und konsistente Ergebnisse erzielt hat.In Zukunft möchten wir an der Fettlebertransplantation forschen. Dies ist immer noch ein Problem, das bei der klinischen Lebertransplantation überwunden werden muss.

vascular-reconstruction-with-cuff-technique-mouse-orthotopic-liver

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Wir präsentieren einen einfach zu etablieren Revision der klassischen Zwei-Manschette Technik zur orthotopen Lebertransplantation in der Ratte.

Lebertransplantation bei der Ratte

Die murine Gebärmutterhalskrebs Herztransplantation Modell ist für immunologische sowie Ischämie Reperfusionsschaden Studien gut geeignet. Wir modifizierten das Verfahren mit einem nicht-Nahttechnik und Manschette durchgeführt mehr als 1.000 erfolgreiche Transplantationen mit diesem Ansatz.  Hier stellen wir weitere Einzelheiten dieser Technik, um das Video zu ergänzen.

Murine Cervical Herztransplantation Modell mithilfe eines modifizierten Cuff-Technik

Die Manschettentechnik verkürzt und erleichtert das Modell der heterotopen zervikalen Herztransplantation bei Mäusen, indem technisch anspruchsvolle Nahtanastomosen kleiner Gefäße vermieden werden. Die technischen Details, die in diesem Videopapier gezeigt werden, sollten es Forschern ermöglichen, dieses Modell in ihren Labors zu etablieren.

Heterotope Cervical Herztransplantation bei Mäusen

Hier ist ein Protokoll mit neu arterialized Ratte teilweise Lebertransplantation vorgestellt. Insbesondere war 70 % Leber resezierten in Vivo durch eine aktualisierte Technik des Schiffes-orientierte Hepatektomie. Die leberarterie wurde in einer End-to-Side Weise rekonstruiert. Die Manschette Technik wurde modifiziert, um die Anastomose Infrahepatic Vena Cava verkürzen.

Re Arterialized Ratte teilweise Leber Transplantation mit einem in Vivo Schiff-orientierte 70 % Hepatektomie

Die Rekonstruktion der Suprahepatic Vena Cava (SHVC) bleibt ein schwieriger Schritt in der Ratte orthotopen Leber Transplantation. In diesem Artikel zeigen wir Schritt für Schritt-Protokoll für den Wiederaufbau der SHVC bei Ratten mit einer neuartigen magnetischen Anastomose-Technik.

Einem Rattenmodell der orthotopen Lebertransplantation mit einer neuartigen magnetischen Anastomose-Technik für Suprahepatic Vena Cava Wiederaufbau

Das Ziel dieser Studie ist es, das orthotopische Lebertransplantationsmodell der Ratte zu modifizieren, um die Transplantation menschlicher Leber besser darzustellen und das Überleben der Empfänger zu verbessern. Die vorgestellte Methode stellt den hepatischen arteriellen Zufluss wieder her, indem die gemeinsame Leberarterie der Spenderleber mit der richtigen Leberarterie der Empfängerleber verbunden wird.

Reduzierte Komplikationen nach arterieller Wiederverbindung in einem Rattenmodell der orthotopischen Lebertransplantation

Wir führen einen inneren Röhrenansatz zur Manschettentechnik für die heterotopische Herztransplantation der Maus ein, um das Gefäß über die Manschette zu bringen. Wir stellten fest, dass die Zusammenarbeit zwischen zwei erfahrenen Chirurgen die Operationszeit deutlich verkürzt.

Optimierung der Manschettentechnik für DieMurine Heart Transplantation

Im vorliegenden Protokoll wird ein Maus-Herztransplantationsmodell verwendet, um den Mechanismus der kardialen Allotransplantatabstoßung zu untersuchen. In diesem heterotopen Herztransplantationsmodell wird die Operationseffizienz verbessert und das Überleben von Herztransplantaten durch eine zervikale End-to-End-Anastomose der Herzimplantation unter Verwendung einer modifizierten Manschettentechnik sichergestellt.

Eine modifizierte Manschettentechnik für das zervikale heterotope Herztransplantationsmodell der Maus

Maus-Herztransplantationsmodelle stellen wertvolle Forschungswerkzeuge für die Untersuchung der Transplantationsimmunologie dar. Das vorliegende Protokoll beschreibt die heterotope zervikale Herztransplantation der Maus, bei der Manschetten auf die gemeinsame Halsschlagader des Empfängers und den Lungenarterienstamm des Spenders gelegt werden, um einen laminaren Blutfluss zu ermöglichen.

Heterotope zervikale Herztransplantation der Maus mit Gefäßmanschetten

In diesem Protokoll diskutieren wir die Implementierung eines Modells für eine erfolgreiche orthotope Lebertransplantation (OLT) bei Mäusen. Darüber hinaus werden auch Adjuvantien zur weiteren Analyse der Durchgängigkeit von Transplantaten nach erfolgreicher OLT in einer Maus diskutiert, insbesondere unter Verwendung von Mikrocomputertomographie (microCT)-Scans.

Erfolgreiche orthotope Lebertransplantation bei Mäusen mittels Mikrocomputertomographie-Angiographie

Lernen Sie die Manschettentechnik zur Gefäßrekonstruktion bei orthotoper Lebertransplantation der Maus. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Kälteischämie und Reperfusionsschäden.

Gefäßrekonstruktion mit der Manschettentechnik bei der orthotopen Lebertransplantation der Maus

Weitere Videos entdecken