Name: Die Etablierung von kalvarialen, naht-knöchernen Kompositdefekten bei Ratten: Ein standardisiertes Modell für die Untersuchung der nahtregenerativen Therapie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-05-10T14:10:00.000+00:00
Duration: 4 min 17 s
Description: Lernen Sie die chirurgische Erstellung kalvarialer Naht-Knochen-Defekte bei Ratten für regenerative Therapien. Dieses standardisierte Modell ermöglicht Selbstkontrollen und liefert wertvolle Erkenntnisse zur Heilung.

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<meta charset="utf8"></head><body>Standardisierung des Modells der kalvarialen Naht-Knochendefekt-Defekte von Ratten für regenerative Studien

<ol><li>Li, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+suture+mesenchymal+stem+cells%3A+insights+and+advances%5BTitle%5D)+AND+%22Biomolecules%22%5BJournal%5D)">Cranial suture mesenchymal stem cells: insights and advances.</a> Biomolecules. 11 (8), 1129(2021).</li>
<li>Opperman, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+sutures+as+intramembranous+bone+growth+sites%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Cranial sutures as intramembranous bone growth sites.</a> Dev Dyn. 219 (4), 472-485 (2000).</li>
<li>Lenton, K. A., Nacamuli, R. P., Wan, D. C., Helms, J. A., Longaker, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+suture+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Top+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Cranial suture biology.</a> Curr Top Dev Biol. 66 (4), 287-328 (2005).</li>
<li>Slater, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+sutures%3A+A+brief+review%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Cranial sutures: A brief review.</a> Plast Reconstr Surg. 121 (4), 170-178 (2008).</li>
<li>Zhao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+suture+provides+a+niche+for+mesenchymal+stem+cells+of+craniofacial+bones%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The suture provides a niche for mesenchymal stem cells of craniofacial bones.</a> Nat Cell Biol. 17 (4), 386-396 (2015).</li>
<li>Maruyama, T., Jeong, J., Sheu, T. -J., Hsu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cells+of+the+suture+mesenchyme+in+craniofacial+bone+development%2C+repair+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Stem cells of the suture mesenchyme in craniofacial bone development, repair and regeneration.</a> Nat Commun. 7 (1), 10526(2016).</li>
<li>Wilk, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postnatal+calvarial+skeletal+stem+cells+expressing+PRX1+reside+exclusively+in+the+calvarial+sutures+and+are+required+for+bone+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Postnatal calvarial skeletal stem cells expressing PRX1 reside exclusively in the calvarial sutures and are required for bone regeneration.</a> Stem Cell Reports. 8 (4), 933-946 (2017).</li>
<li>Doro, D. H., Grigoriadis, A. E., Liu, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calvarial+suture-derived+stem+cells+and+their+contribution+to+cranial+bone+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Physiol%22%5BJournal%5D)">Calvarial suture-derived stem cells and their contribution to cranial bone repair.</a> Front Physiol. 8, 956(2017).</li>
<li>Kajdic, N., Spazzapan, P., Velnar, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Craniosynostosis-recognition%2C+clinical+characteristics%2C+and+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Bosn+J+Basic+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">Craniosynostosis-recognition, clinical characteristics, and treatment.</a> Bosn J Basic Med Sci. 18 (2), 110-116 (2018).</li>
<li>Park, S., Zhao, H., Urata, M., Chai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sutures+possess+strong+regenerative+capacity+for+calvarial+bone+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Sutures possess strong regenerative capacity for calvarial bone injury.</a> Stem Cells Dev. 25 (23), 1801-1807 (2016).</li>
<li>Quarto, N., Behr, B., Longaker, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Opposite+spectrum+of+activity+of+canonical+Wnt+signaling+in+the+osteogenic+context+of+undifferentiated+and+differentiated+mesenchymal+cells%3A+Implications+for+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Opposite spectrum of activity of canonical Wnt signaling in the osteogenic context of undifferentiated and differentiated mesenchymal cells: Implications for tissue engineering.</a> Tissue Eng Part A. 16 (10), 3185-3197 (2010).</li>
<li>Kaku, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+Stem+Cell-Induced+Cranial+Suture-Like+Gap+in+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal Stem Cell-Induced Cranial Suture-Like Gap in Rats.</a> Plast Reconstr Surg. 127 (1), 69-77 (2011).</li>
<li>Yu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+suture+regeneration+mitigates+skull+and+neurocognitive+defects+in+craniosynostosis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cranial suture regeneration mitigates skull and neurocognitive defects in craniosynostosis.</a> Cell. 184 (1), e18 243-256 (2021).</li>
<li>Koons, G. L., Diba, M., Mikos, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Materials+design+for+bone-tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mater%22%5BJournal%5D)">Materials design for bone-tissue engineering.</a> Nat Rev Mater. 5 (8), 584-603 (2020).</li>
<li>Mardas, N., Kostopoulos, L., Karring, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+and+suture+regeneration+in+calvarial+defects+by+e-PTFE-membranes+and+demineralized+bone+matrix+and+the+impact+on+calvarial+growth%3A+an+experimental+study+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Craniofac+Surg%22%5BJournal%5D)">Bone and suture regeneration in calvarial defects by e-PTFE-membranes and demineralized bone matrix and the impact on calvarial growth: an experimental study in the rat.</a> J Craniofac Surg. 13 (3), 453-462 (2002).</li>
<li>Kostopoulos, L., Karring, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+of+the+sagittal+suture+by+GTR+and+its+impact+on+growth+of+the+cranial+vault%5BTitle%5D)+AND+%22J+Craniofac+Surg%22%5BJournal%5D)">Regeneration of the sagittal suture by GTR and its impact on growth of the cranial vault.</a> J Craniofac Surg. 11 (6), 553-561 (2000).</li>
<li>Mosaddad, S. A., Hussain, A., Tebyaniyan, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+the+use+of+animal+models+in+craniofacial+regenerative+medicine%3A+A+narrative+review%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+B+Rev%22%5BJournal%5D)">Exploring the use of animal models in craniofacial regenerative medicine: A narrative review.</a> Tissue Eng Part B Rev. , (2023).</li>
<li>Tan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PgC3Mg+metal-organic+cages+functionalized+hydrogels+with+enhanced+bioactive+and+ROS+scavenging+capabilities+for+accelerated+bone+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mater+Chem+B%22%5BJournal%5D)">PgC3Mg metal-organic cages functionalized hydrogels with enhanced bioactive and ROS scavenging capabilities for accelerated bone regeneration.</a> J Mater Chem B. 10 (28), 5375-5387 (2022).</li>
<li>Yazdanian, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+and+properties+of+%CE%B2TCP%2FZeolite%2FGelatin+scaffold+as+developed+scaffold+in+bone+regeneration%3A+in+vitro+and+in+vivo+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Biocybern+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Fabrication and properties of βTCP/Zeolite/Gelatin scaffold as developed scaffold in bone regeneration: in vitro and in vivo studies.</a> Biocybern Biomed Eng. 40 (4), 1626-1637 (2020).</li>
<li>Soufdoost, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+and+in+vivo+evaluation+of+novel+Tadalafil%2F%CE%B2-TCP%2FCollagen+scaffold+for+bone+regeneration%3A+A+rabbit+critical-size+calvarial+defect+study%5BTitle%5D)+AND+%22Biocybern+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">In vitro and in vivo evaluation of novel Tadalafil/β-TCP/Collagen scaffold for bone regeneration: A rabbit critical-size calvarial defect study.</a> Biocybern Biomed Eng. 39 (3), 789-796 (2019).</li>
<li>Russell, W. P., Russell, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy%2C+head+and+neck%2C+coronal+suture%5BTitle%5D)+AND+%22StatPearls%22%5BJournal%5D)">Anatomy, head and neck, coronal suture.</a> StatPearls. , (2022).</li>
<li>Menon, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skeletal+stem+and+progenitor+cells+maintain+cranial+suture+patency+and+prevent+craniosynostosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Skeletal stem and progenitor cells maintain cranial suture patency and prevent craniosynostosis.</a> Nat Commun. 12 (1), 4640(2021).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>4% Paraformaldehyd</td><td>Biosharp</td><td>BL539A</td><td></td></tr><tr><td>2% Iodophorlösung</td><td>Chengdu Jinshan Chemisches Reagenz Co., Ltd.</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>75% Ethanol</td><td>Chengdu Jinshan Chemisches Reagenz Co., Ltd.</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Wattebällchen</td><td>Haishi Hainuo Group Co., Ltd.&nbsp;</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Wattestäbchen</td><td>Lakong Medical Devices Co.,&nbsp;</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Gebogene Pinzette</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Dataviewer und Ctan-Software für die Bewertung des Restdefektvolumens</td><td>Bruker</td><td>None Dental</td><td></td></tr><tr><td>Rundbohrer mit niedriger Geschwindigkeit</td><td>Dreybird Medical Equipment Co., Ltd.</td><td>RA3-012 RA1-008</td><td></td></tr><tr><td>Steriles Einwegskalpell</td><td>Hangzhou Huawei Medical Supplies Co., Ltd.</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Einwegspritzen (22 G)</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>SB1-089(IX)</td><td></td></tr><tr><td>Elektrorasierer</td><td>JASE</td><td>BM320210</td><td></td></tr><tr><td>Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA)</td><td>BioFroxx</td><td>1340GR500</td><td></td></tr><tr><td>Hämatoxylin- und Eosin-Fleckenset</td><td>Biosharp</td><td>BL700B</td><td></td></tr><tr><td>Spülnadel (23 g)</td><td>Sichuan New Century Medical Polymer Products Co., Ltd.</td><td>Verifizierter</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Lieferant - Guangzhou Dental Guard Technology Co., Ltd.</td><td>Keine Masson</td><td></td></tr><tr><td>' s Trichrome Stain Kit</td><td>Solarbio</td><td>G1340</td><td></td></tr><tr><td>Medizinische Vliesstoffe</td><td>Henan Yadu Industrial Co., Ltd.&nbsp;</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Mikro-Computertomographie (&Mikro; CT)&nbsp;</td><td>Scanco Medical AG&</td><td>micro; CT45</td><td></td></tr><tr><td>Mimics 20.0 für Schnittbilder</td><td>Materialise</td><td>None</td><td></td></tr><tr><td>Nadelhalter</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>Verifizierter</td><td></td></tr><tr><td>Lieferant</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Kochsalzlösung</td><td>Sichuan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd.</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Scanco Medical Visualizer Software für die 3D-Bildrekonstruktion</td><td>Scanco Medical AG</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>SPSS Statistics 20.0 für statistische Analysen</td><td>IBM</td><td>Keine</td> Sprague-Dawley <td></td></tr><tr><td>Ratten&nbsp;</td><td>Byrness Weil Biotech Ltd</td><td>Keine</td> gerade Schere Chengdu Shifeng Co., Ltd<td></td></tr><tr><td></td><td>.</td><td>None</td><td></td></tr><tr><td>Surgical Motor</td><td>MARATHON</td><td>N3-140232</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgisches Nahtmaterial (3-0 monofil)</td><td>Hangzhou Huawei Medical Supplies Co., Ltd.</td><td>nichts</td><td></td></tr></tbody></table>

die etablierung von kalvarialen, naht-knöchernen kompositdefekten bei ratten: ein standardisiertes modell für die untersuchung der nahtregenerativen therapie

The Establishment of Calvarial Suture-Bony Composite Defects in Rats: A Standardized Model for Suture-Regenerative Therapy Investigation

In dieser Studie wurde der Kompositdefekt zwischen Schädeldach und Knochen der Ratte durch Bohren eines 4,5 mm x 2 mm großen rechteckigen Lochs durch die koronale Naht festgestellt. Die schematische Darstellung des chirurgischen Schemas und das Flussdiagramm der Forschung sind in Abbildung 3 dargestellt. Die 3D-Aufnahme und die Schnittansicht der postoperativen 0-Tage-Proben, d.h. der Proben, die unmittelbar nach der Operation entnommen wurden, bestätigten die erfolgreiche Schaffung eines Schädelbergdefekts in voller Dicke, bei dem die koronale Naht sowie die angrenzenden Knochenstrukturen an beiden Enden vollständig entfernt wurden (Abbildung 4A). μCT-Bilder und die entsprechenden statistischen Analyseergebnisse 6 Wochen nach der Operation zeigten eine natürliche Neigung zum Defektverschluss, begleitet von unregelmäßigen verkalkten Knötchen, die sich innerhalb des Defekts bildeten (Abbildung 4). Diese Tendenz verstärkte sich 12 Wochen nach der Operation (Abbildung 4), was auf eine mögliche Nahtfusion im Laufe der Zeit hinweist. Weitere histologische Analysen wurden mit H&amp;E und der Trichrom-Färbung von Masson durchgeführt. Zwei Wochen postoperativ beobachteten wir eine bemerkenswerte Ausdehnung und Kontinuität des Periosts und der Dura mater, die dichtes und dickes fibröses Gewebe bildeten und den Defektbereich effektiv versiegelten (Abbildung 5). Bemerkenswert ist, dass zu diesem frühen Zeitpunkt das Auftreten von bläulich gefärbten mineralisierten Fasern festgestellt wurde, deren Vorhandensein bis 6 Wochen nach der Operation erheblich zunahm (Abbildung 5). In der postoperativen 12. Woche wurden große Stücke neuen Knochens im Defektzentrum beobachtet (Abbildung 5), was die ungünstige Prognose der Stromaverkalkung und des Nahtverschlusses bestätigte. Die ungünstigen natürlichen Heilungsergebnisse von Naht-Knochen-Kompositdefekten unterstreichen die Notwendigkeit einer Regeneration der Schädelnaht durch therapeutische Eingriffe, wie z.B. die Implantation von Biomaterialien 13,15,16.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig01v2.jpg"> Abbildung 1: Chirurgische Instrumente. (A) Die chirurgischen Gegenstände wurden in der Reihenfolge ihrer Verwendung nummeriert, einschließlich (1) gebogener Pinzette, (2) sterilem Einwegskalpell, (3) Periostlift, (4) Spülnadel, (5) Wattebällchen, (6) Handstück mit niedriger Geschwindigkeit, (7) chirurgischem Motor (gelber Pfeil steht für den RPM-Knopf und weißer Pfeil für den Schalter), (8) Zahnbohrern mit niedriger Geschwindigkeit, (9) Nadelhalter, (10) 3-0 monofile Nähte und (11) gerade Schere. (B) Runde Bohrer mit niedriger Geschwindigkeit von 1,2 mm und 0,8 mm Durchmesser. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig01largev2.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig02.jpg"> Abbildung 2: Chirurgischer Eingriff. (A) Positionieren Sie die Ratte in Bauchlage. (B) Rasieren Sie das Haar mit einem Elektrorasierer von der Kopfhaut. (C) Haut mit einem Einwegskalpell einschneiden. (D) Schneiden Sie das Periost mit einem Skalpell ein. (E1, E2) Heben Sie das Periost an, um koronale Nähte mit einem Periostlift freizulegen. Die gelben Pfeile zeigen koronale Nähte. (F1) Bohren Sie eine Positioniernut. (F2) Erstellen Sie zunächst einen rechteckigen Defekt mit einem 1,2 mm Rundbohrer. (G1, G2) Schneiden Sie den Defekt mit einem 0,8 mm Rundbohrer ab, um eine rechteckige Standardform von 4,5 x 2 mm zu erhalten. (H1, H2) Kalibrieren Sie die Breite und Länge des Defekts mit einem Messschieber. (I) Verschließen Sie die Haut mit 3-0 monofilen Nähten. Bei dieser Darstellung wird eine Leiche verwendet, die absichtlich unbedeckt gelassen wird, um eine verbesserte anatomische Visualisierung zu ermöglichen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig03.jpg"> Abbildung 3: Schematische Darstellung des kalvarialen Naht-Knochen-Komposit-Defekts und Forschungsstrategie dieser Studie. Abkürzungen: H&amp;E = Hämatoxylin und Eosin; μCT = Mikro-Computertomographie. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig04.jpg"> Abbildung 4: Verschlusstendenz des Schädeldach-Naht-Knochen-Komposit-Defekts. (A) Repräsentative μCT-Bilder und Schnittansichten von Naht-Knochen-Kompositdefekten am postoperativen Tag 0, in Woche 6 und Woche 12. Die Querschnitte stellen die Positionen dar, die durch die gelben gestrichelten Linien in 3D-Bildern gekennzeichnet sind. Maßstabsbalken = 2 mm. (B) Quantitative Analyse des Restdefektvolumens nach der Operation durch μCT-Beurteilungen. n = 6 Replikate/Gruppe. Die Daten werden als Mittelwert ± SD ausgedrückt. Einfache ANOVA, gefolgt von Dunnetts Mehrfachvergleichstest. S&lt;0.001. Abkürzungen: PO = postoperativ; μCT = Mikro-Computertomographie. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig04large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig05.jpg"> Abbildung 5: Histologische Variationen von Naht-Knochen-Kompositdefekten. (A) H&amp;E und (B) Masson-Trichrom-Färbung von Naht-Knochen-Kompositdefekten in PO Woche 2, Woche 6 und Woche 12. Die rot gestrichelten Umrisse zeigen das fibröse Gewebe, das den Defektbereich umschließt. Die schwarzen Pentagramme stellen die blau gefärbten mineralisierten Fasern dar. Die gelben Pentagramme markieren den neuen Knochen, der im Defektzentrum gebildet wird. Maßstabsleisten = 500 μm; 200 μm (Einschub). Abkürzungen: PO = postoperativ; H&amp;E = Hämatoxylin und Eosin. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig05large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
Ergänzende Abbildung S1: Koronale Nahtbreite in anterior-posteriorer Richtung (Schädeldachbild in sagittaler Ebene). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/Supplementary%20Figure%201.zip" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.</a>

Die Etablierung von kalvarialen, naht-knöchernen Kompositdefekten bei Ratten: Ein standardisiertes Modell für die Untersuchung der nahtregenerativen Therapie

Large-scale calvarial defects often coincide with cranial suture disruption, leading to impairments in calvarial defect restoration and skull development ...

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Protokoll beschreibt die Isolierung von Fettgewebe gewonnen Stromazellen aus lipoaspirate und die Schaffung einer 4 mm kritische Größe Calvaria Defekt Skelett Regeneration zu bewerten.

Reparatur eines Critical-sized Calvaria Defect Modells mit aus Fettgewebe gewonnenen Stromazellen aus Lipoaspirate Geerntet

In diesem Video beschreiben wir das chirurgische Verfahren zur Generierung eines Kaninchen-Kalvarienbergmodells, um die Knochenregenerationskapazitäten von Knochenprobenersatzmaterialien von Interesse zu bewerten.

Generierung eines Modells für kalvariale Defekte bei Kaninchen: Ein chirurgisches Verfahren zur Erzeugung runder Defekte im oberen Teil des Kaninchenschädels zur Beurteilung von Knochenersatzmaterialien für die Knochenregenerationsfähigkeit

Aus Fett gewonnene Stromazellen können nützlich sein, um neues Gewebe aus den eigenen Zellen eines Patienten zu züchten. Wir präsentieren ein Protokoll für die Isolierung einer Subpopulation von humanen Fettgewebe-abgeleiteten Stromazellen (ASCs) mit erhöhtem osteogenem Potenzial, gefolgt von der Anwendung der Zellen in einem in vivo Kalvarienberg-Heilungsassay.

Schnelle Isolierung von BMPR-IB + Fettgewebe gewonnene Stromazellen für die Verwendung in einem Schädeldachdefektheilung Modell

Hier präsentieren wir ein Protokoll zur Blutgefäß Bildung in Vivo zu visualisieren und in Echtzeit in 3D Gerüste multiphoton Mikroskopie. Angiogenese in gentechnisch veränderten Gerüste wurde in einem murinen calvarial kritische Knochen-defekt-Modell untersucht. Mehr neue Blutgefäße waren in der Behandlungsgruppe als Kontrollen erkannt.

Visualisierung von Angiogenese durch Multiphoton Mikroskopie In Vivo in gentechnisch veränderten 3D-PLGA/nHAp Gerüst für Calvarial kritische Knochen defekt Reparatur

In Vivo Säugetier-Modelle der kritischen Größe Knochendefekte sind essentiell für Forscher heilenden Mechanismen und orthopädische Therapien. Hier stellen wir ein Protokoll für die Erstellung von reproduzierbaren, segmentale, femoralen Mängel bei Ratten mit Fixateur externe stabilisiert.

Eine zuverlässige und reproduzierbare kritische Größe segmentale femoralen defekt-Modell bei Ratten mit einer benutzerdefinierten Fixateur externe stabilisiert

Hier stellen wir ein operationschirurgisches Protokoll bei Kaninchen vor, mit dem Ziel, Knochensubstitutionsmaterialien in Bezug auf die Knochenregenerationskapazitäten zu bewerten. Durch die Verwendung von PEEK-Zylindern, die an Kaninchenschädeln befestigt sind, können Osteokontintion, Osteoinduktion, Osteogenese und Vaskulogenese, die durch die Materialien induziert werden, entweder an lebenden oder eingeschläferten Tieren bewertet werden.

Calvarial-Modell der Knochenvergrößerung bei Kaninchen zur Beurteilung des Knochenwachstums und der Neovaskularisation in Knochensubstitutionsmaterialien

Dieses Protokoll stellt ein standardisiertes Nahtexpansions-Mausmodell und eine 3D-Visualisierungsmethode vor, um die mechanobiologischen Veränderungen der Naht und des Knochenumbaus unter Zugkraftbelastung zu untersuchen.

Eine 3D-Visualisierungstechnik für den Knochenumbau in einem Nahtexpansions-Mausmodell

Hier stellen wir ein Protokoll zur Erzeugung eines Box-Cavity-Defekts in Femurdiaphysegewebe von Ratten vor. Dieses Modell kann die Leistung von Biomaterialien unter biomechanischer Belastung bewerten und Mechanismen der Knochenregeneration im Zusammenhang mit der intramembranösen Osteogenese untersuchen.

Erstellung eines Modells eines Box-Cavity-Defekts im kortikalen Knochen von Femora der Ratte

Diese Studie etablierte ein Modell des Ratten-Femoral-Halbsegmentdefekts, um die mechanische und osteogene Leistungsfähigkeit von Knochenersatzmaterialien unter lasttragenden Bedingungen ohne interne oder externe Fixation zu bewerten.

Modell des halbsegmentalen diaphysären Knochendefekts bei Ratten zur Bewertung der Knochensubstitutionsleistung in belastenden Bereichen

Die Studie kombiniert innovativ Nähte und Titannadeln für eine stabile innere Fixation in einem Rattenradialbruchmodell. Die Bruchheilung wurde mittels Mikrocomputertomographie (Mikro-CT) untersucht, und primäre Neuronen des dorsalen Wurzelganglions (DRG) wurden isoliert und für weitere Untersuchungen kultiviert.

Entwicklung eines neuartigen internen Fixationsmodells für Rattenradialfrakturen: Bruchheilungsbewertung und Isolierung des dorsalen Wurzelganglions

Lernen Sie die chirurgische Erstellung kalvarialer Naht-Knochen-Defekte bei Ratten für regenerative Therapien. Dieses standardisierte Modell ermöglicht Selbstkontrollen und liefert wertvolle Erkenntnisse zur Heilung.

Die Etablierung von kalvarialen, naht-knöchernen Kompositdefekten bei Ratten: Ein standardisiertes Modell für die Untersuchung der nahtregenerativen Therapie (Video) | JoVE Journal

Die Etablierung von kalvarialen, naht-knöchernen Kompositdefekten bei Ratten: Ein standardisiertes Modell für die Untersuchung der nahtregenerativen Therapie

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