Name: Eine modifizierte Methode zur intrathekalen Katheterisierung bei Ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-02-14T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 15 s
Description: Erfahren Sie eine modifizierte Methode zur intrathekalen Katheterisierung bei Ratten für neuropathische Schmerzforschung. Diese verbesserte Technik ermöglicht zuverlässige, wiederholbare Arzneimittelgaben mit hoher Erfolgsrate.

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<ol><li>Kong, G., Huang, Z., Zhu, Q., Wan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+two+modified+methods+of+intrathecal+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Anim%22%5BJournal%5D)">Comparison of two modified methods of intrathecal catheterization in rats.</a> Exp Anim. 69 (2), 219-223 (2020).</li>
<li>Xu, C. S., Sun, P., Lin, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((a+new+design+puncture+needle+and+a+device+of+microcatheter+protection+for+lumbar+intrathecal+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Zhongguo+Ying+Yong+Sheng+Li+Xue+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">a new design puncture needle and a device of microcatheter protection for lumbar intrathecal catheterization in rats.</a> Zhongguo Ying Yong Sheng Li Xue Za Zhi. 36 (3), 283-288 (2020).</li>
<li>Yamamoto, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurosteroid+dehydroepiandrosterone+sulphate+enhances+pain+transmission+in+rat+spinal+cord+dorsal+horn%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Neurosteroid dehydroepiandrosterone sulphate enhances pain transmission in rat spinal cord dorsal horn.</a> Br J Anaesth. 123 (2), e215-e225 (2019).</li>
<li>Mattioli, T. A., Sutak, M., Milne, B., Jhamandas, K., Cahill, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrathecal+catheterization+influences+tolerance+to+chronic+morphine+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Intrathecal catheterization influences tolerance to chronic morphine in rats.</a> Anesth Analg. 114 (3), 690-693 (2012).</li>
<li>Wang, B. C., Hillman, D. E., Li, D., Turndorf, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lumbar+subarachnoid+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Biochem+Behav%22%5BJournal%5D)">Lumbar subarachnoid catheterization in rats.</a> Pharmacol Biochem Behav. 38 (3), 685-688 (1991).</li>
<li>Yaksh, T. L., Rudy, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+catheterization+of+the+spinal+subarachnoid+space%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Chronic catheterization of the spinal subarachnoid space.</a> Physiol Behav. 17 (6), 1031-1036 (1976).</li>
<li>Martin, H., Kocher, L., Chery-Croze, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+lumbar+intrathecal+catheterization+in+the+rat+with+reduced-length+spinal+compression%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Chronic lumbar intrathecal catheterization in the rat with reduced-length spinal compression.</a> Physiol Behav. 33 (1), 159-161 (1984).</li>
<li>Mazur, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+simple%2C+rapid%2C+and+robust+intrathecal+catheterization+method+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Development of a simple, rapid, and robust intrathecal catheterization method in the rat.</a> J Neurosci Methods. 280, 36-46 (2017).</li>
<li>Zhang, S. X., Huang, F., Gates, M., White, J., Holmberg, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+scarring+induced+by+chronic+intrathecal+tubing+augmented+cord+tissue+damage+and+worsened+functional+recovery+after+rat+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Extensive scarring induced by chronic intrathecal tubing augmented cord tissue damage and worsened functional recovery after rat spinal cord injury.</a> J Neurosci Methods. 191 (2), 201-207 (2010).</li>
<li>Ohara, P. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+intrathecal+catheterization+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Long-term intrathecal catheterization in the rat.</a> J Neurosci Methods. 110 (1-2), 81-89 (2001).</li>
<li>StØrkson, R. V., KjØrsvik, A., TjØlsen, A., Hole, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lumbar+catheterization+of+the+spinal+subarachnoid+space+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Lumbar catheterization of the spinal subarachnoid space in the rat.</a> J Neurosci Methods. 65 (2), 167-172 (1996).</li>
<li>Poon, Y. Y., Chang, A. Y., Ko, S. F., Chan, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+procedure+for+catheterization+of+the+thoracic+spinal+subarachnoid+space+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">An improved procedure for catheterization of the thoracic spinal subarachnoid space in the rat.</a> Anesth Analg. 101 (1), table of contents 155-160 (2005).</li>
<li>Xu, F., Li, T., Zhang, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+protecting+and+fixing+the+lumbar+catheters+placed+in+the+spinal+subarachnoid+space+of+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">An improved method for protecting and fixing the lumbar catheters placed in the spinal subarachnoid space of rats.</a> J Neurosci Methods. 183 (2), 114-118 (2009).</li>
<li>Igawa, Y., Andersson, K. E., Post, C., Uvelius, B., Mattiasson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rat+model+for+investigation+of+spinal+mechanisms+in+detrusor+instability+associated+with+infravesical+outflow+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Urol+Res%22%5BJournal%5D)">A rat model for investigation of spinal mechanisms in detrusor instability associated with infravesical outflow obstruction.</a> Urol Res. 21 (4), 239-244 (1993).</li>
<li>Hou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+procedure+for+lumbar+intrathecal+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Neurol+Res%22%5BJournal%5D)">A modified procedure for lumbar intrathecal catheterization in rats.</a> Neurol Res. 38 (8), 725-732 (2016).</li>
<li>Farhadi, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+open+and+ultrasound-guided+placement+of+central+venous+catheter+in+children+weighing+less+than+five+kilograms%3B+a+randomized+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Acad+Radiol%22%5BJournal%5D)">Comparison of open and ultrasound-guided placement of central venous catheter in children weighing less than five kilograms; a randomized clinical trial.</a> Acad Radiol. 30 (7), 1419-1425 (2023).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>1 cc Spritze</td><td></td><td>Jiangxi Hongda Medical Equipment Co., Ltd</td><td>1 cc</td></tr><tr><td>22 Gauge & mal 1 "Nadeln</td><td></td><td>Jiangxi Hongda Medical Equipment Co., Ltd</td><td>22G</td></tr><tr><td>23 Gauge & mal 1" Nadeln</td><td></td><td>Jiangxi Hongda Medical Equipment Co., Ltd</td><td>23G</td></tr><tr><td>25 &mu; L Hamilton Spritzen</td><td></td><td>Shanghai Bolige Co.,Ltd</td><td>0,31mm 25 &mu; L&nbsp;</td></tr><tr><td>4-O MERSILK NICHT RESORBIERBARES NAHTMATERIAL</td><td></td><td>ETHICON</td><td>SA83G</td></tr><tr><td>50 mL Corning Zentrifugenröhrchen 3 cm Durchmesser</td><td>430820</td><td>CORNING</td><td></td></tr><tr><td>Epiduralkatheter und -anschluss</td><td></td><td>Henan Tuoren Medical Device Co., Ltd</td><td>reguläres</td></tr><tr><td>Sondengerät</td><td></td><td>Shanghai Bolige Co., Ltd</td><td>8#</td></tr><tr><td>PE-10 Mirco Medical Tubing</td><td>BB31695-PE/1</td><td>Scientific Commodities, Inc</td><td></td></tr><tr><td>Skalpellgriff und #10 Klingen</td><td></td><td>Jiangsu Songxin Medical Equipment Co., Ltd</td><td>125mm</td></tr><tr><td>Schere</td><td></td><td>Jiangsu Songxin Medical Equipment Co., Ltd</td><td>100mm</td></tr><tr><td>Sprague-Dawley (SD) Ratten</td><td></td><td>Shanghai BK/KY Biotechnology Co., Ltd</td><td>Männlich</td></tr><tr><td>Edelstahldraht 0,2 mm Durchmesser</td><td></td><td>Dongguan Jiazhi Metallprodukte Technologie Co., Ltd.</td><td>0,2 mm&nbsp; & mal; &nbsp; 1m</td></tr><tr><td>Zahnzange</td><td></td><td>Jiangsu Songxin Medical Equipment Co., Ltd</td><td>18cm</td></tr><tr><td>URGO Seidenband</td><td></td><td>URGO</td><td>1,25cm & mal 9,1m</td></tr></tbody></table>

eine modifizierte methode zur intrathekalen katheterisierung bei ratten

A Modified Method for Intrathecal Catheterization in Rats

Für die intrathekale Injektion wurde die extrakorporale Spitze des PE10-Schlauchs abgeschnitten und der PE10-Schlauch mit einer Verschlusskappe zwischen zwei Arzneimittelinjektionen verschlossen. In unserer Pilotstudie lag die Erfolgsrate der intrathekalen Katheterisierung bei etwa 95 % (19 von 20 Ratten); Der Erfolg wurde durch ein Schwanzschnippen und/oder die Freisetzung von farbloser, transparenter Flüssigkeit während des Eingriffs angezeigt. Etwa 85 % der Schläuche blieben 7 Tage nach der Operation an Ort und Stelle, und etwa 80 % blieben 28 Tage nach der Operation an Ort und Stelle. Die Ratten erholten sich kurz nach der Operation, und innerhalb von 7 Tagen nach der Operation wurden keine Komplikationen beobachtet. Die täglichen Bewegungen waren normal, und Verhaltensauffälligkeiten wurden nicht beobachtet. Diese Ergebnisse deuten darauf hin, dass unsere Methode den zuvor berichteten Methoden in Bezug auf die Erfolgsrate und die Verweildauer überlegen ist.
Eine vollständige Lähmung der unteren Extremitäten nach Lidocain-Injektion über Katheter deutet auf eine erfolgreiche intrathekale Katheterisierunghin 15. Die Erfolgsrate der intrathekalen Katheterisierung wird berechnet, indem die Gesamtzahl der Ratten durch die Anzahl der Ratten mit erfolgreicher Katheterisierung dividiert wird. Mit unserer modifizierten Methode lag die Erfolgsrate bei 95 %, was höher war als die Rate, die mit der von Hou et al. berichteten Methode (88 %)15 erreicht wurde. Dies ist in Abbildung 4 dargestellt.
Die intrathekale Sonde wurde 2, 5 und 7 Tage nach der intrathekalen Katheterisierung überwacht und die Rate des erfolgreichen Verweilkatheters wurde als Anzahl der Ratten mit erfolgreichem Verweilkatheter / Gesamtzahl der Ratten × 100% berechnet. 2, 5 und 7 Tage nach der intrathekalen Katheterisierung betrug die Rate des erfolgreichen Verweilkatheters in der Studie von StØrkson et al.11 94 %, 81 % bzw. 65 %. Die Rate des erfolgreichen Verweilkatheters nach 2, 5 und 7 Tagen nach der intrathekalen Katheterisierung betrug mit unserer Technik 95 %, 90 % bzw. 85 % (Abbildung 5).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig1.jpg"> 
Abbildung 1. Materialien und Instrumente, die für die intrathekale Katheterisierung verwendet werden. (A) Es wurde ein 15 cm langer PE10-Schlauch vorbereitet, und der Schlauch wurde in einem Abstand von 2 cm von einem Ende markiert, um die Einführtiefe anzuzeigen. (B) Ein 20 cm langer Edelstahldraht mit zwei polierten Enden wurde als Stütze in das PE10-Rohr eingeführt. (C) Die scharfe Spitze der 22G-Nadel wurde mit einer Schere durchtrennt und das distale Ende mit einer Pinzette versiegelt. (D) Ein Epiduralkatheter (1,0 mm Außendurchmesser) wurde in 1 cm große Fragmente geschnitten, die dann in die spitzenfreie 22G-Nadel eingeführt wurden. (E) Das distale Ende des Epiduralkatheters wurde mit einer erhitzten geraden Pinzette verschlossen; Diese Vorrichtung wurde als Rohrverschlusskappe bezeichnet. (F) Mit einer Schere wurde ein 0,3 cm × 0,5 cm langes antiallergisches Band (Seidenband, 1,25 cm × 9,1 m) vorbereitet. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig2.jpg"> 
Abbildung 2. Vorbereitung von Instrumenten für die intrathekale Katheterisierung. Instrumente (wie Zahnzange, Schere, Sondenapparat, Skalpellgriff und #10 Klingen) wurden ca. 2 h lang mit Ethanol sterilisiert und dann ca. 30 min vor der Operation mit normaler Kochsalzlösung gewaschen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig3.jpg"> 
Abbildung 3. Ergebnisse des Lidocain-Validierungsexperiments nach intrathekaler Katheterisierung. Nach intrathekaler Injektion von 20 μl 2 % Lidocain, gefolgt von einer Injektion von 10 μl normaler Kochsalzlösung, war die Ratte vorübergehend gelähmt: Die Lähmung der unteren Gliedmaßen trat innerhalb von 30 s auf und verschwand 30 min später, was auf eine erfolgreiche intrathekale Katheterisierung hinweist. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig4.jpg"> 
Abbildung 4. Vergleich der Rate der erfolgreichen Katheterisierung zwischen unserer modifizierten Methode und einer zuvor berichteten Methode. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig5.jpg"> 
Abbildung 5. Vergleich der Katheterrate mit langer Verweilzeit zwischen unserer modifizierten Methode und einer zuvor beschriebenen Methode. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig5large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>　</td>
			<td>Modifizierte Methode</td>
			<td>Vorherige Methode</td>
			<td>Vorteile des modifizierten Verfahrens</td>
			<td>Nachteile der vorherigen Methode</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="4">Führungsmethode für das Einführen</td>
			<td rowspan="4">ein Edelstahldraht</td>
			<td rowspan="4">Führungskanüle (20G 0,9× 38 mm)</td>
			<td>Erhöht die Elastizität des Rohres,</td>
			<td>Der Widerstand ist schwer zu spüren, was die Schwierigkeit der Bedienung erhöht</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Verbessert die Erfolgsrate der intrathekalen Katheterisierung</td>
			<td>Schädigung des Gewebes durch wiederholte Punktion</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reduziert den Bedarf an Operationsraum</td>
			<td>Ein Ende des Rohres wird auf das 1,5-fache der ursprünglichen Länge gedehnt, wodurch der Durchmesser beider Enden unterschiedlich ist</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Minimiert die Schädigung des Gewebes um die Lendenwirbelsäule</td>
			<td>Anfälligkeit für Liquorleckagen, da der Durchmesser der 20G-Führungskanüle das 2-fache oder mehr des Durchmessers eines gedehnten PE10-Schlauchs beträgt</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Länge des PE10-Rohres</td>
			<td>ca. 15 cm</td>
			<td>14 oder 28 cm</td>
			<td>Einfache Bestimmung der Länge des PE10-Schlauchs, unabhängig von der Dauer der Verweildauer des Katheters</td>
			<td>Die Verweildauer des Katheters ist bei kürzeren PE10-Schläuchen kürzer; Anfälligkeit für das Herausfallen aus dem Körper bei langen PE10-Rohren</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methode der Fixierung</td>
			<td>"8" Naht und 4 mal</td>
			<td>1 oder 2 Perlen</td>
			<td>Vermeidet die Bewegung und das Zurückziehen des Schlauchs während der Tieraktivitäten</td>
			<td>Unterschied im Durchmesser des Rohrs an beiden Enden und Anfälligkeit für die Verschiebung des PE10-Rohrs während der Perlenherstellung </td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Verfahren zur Rohrversiegelung</td>
			<td rowspan="2">Selbstgemachte Mütze</td>
			<td rowspan="2">Nein</td>
			<td>Verhindert das Austreten von Liquor cerebrospinalis </td>
			<td rowspan="2">Anforderung des wiederholten Schneidens des PE10-Rohrs </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vermeidet das wiederholte Schneiden von PE10-Rohren </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Verfahren zur Verhinderung des Rückzugs</td>
			<td>Antiallergisches Band</td>
			<td>1 oder 2 Perlen</td>
			<td>Verhindert das Zurückziehen des Schlauchs während der Tieraktivitäten </td>
			<td>Anfälligkeit für Retraktion</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabelle 1. Vor- und Nachteile der modifizierten Methode und einer zuvor berichteten Methode.

Eine modifizierte Methode zur intrathekalen Katheterisierung bei Ratten

Intrathecal catheterization has been widely applied in animal experiments, especially those on neuropathic pain. However, the traditional methods still ...

a-modified-method-for-intrathecal-catheterization-in-rats

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Das Video demonstriert eine Methode zur Generierung eines Rattenmodells mit weit verbreiteter zerebraler kortikaler Demyelinisierung. Dabei wird die Blut-Hirn-Schranke gestört, indem proinflammatorische Zytokine in Mäuse injiziert werden, die mit rekombinantem Myelinscheidenprotein geprimt sind. Dieser Prozess erleichtert die Infiltration von Immunzellen, was zu einer weit verbreiteten Demyelinisierung der Großhirnrinde führt.

Erzeugung der weit verbreiteten zerebralen kortikalen Demyelinisierung in einem Rattenmodell

Quelle: Chen, Y., et al. Intrathekale Verabreichung von Antisense-Oligonukleotiden im Zentralnervensystem der Ratte. J. Vis. Exp. (2019)Dieses Video zeigt die Verabreichung einer Testverbindung in die Zerebrospinalflüssigkeit (CSF) durch einen Katheter, der in die lumbale Wirbelsäule eines Rattenmodells implantiert wurde. Die Verbindung zirkuliert entlang des Liquors zum Gehirn und zum Rückenmark, dringt in Neuronen ein und bietet therapeutisches Potenzial.

Intrathekale Verabreichung einer Testsubstanz an das Zentralnervensystem der Ratte

Wir beschreiben ein Verfahren, um Medikamente mit dem zentralen Nervensystem Ziel entweder durch Einsetzen eines Katheters oder Durchführen einer Bolus-Injektion in die rechte laterale Ventrikel in Mäusen. Wir konzentrieren uns speziell auf den Transport von Antisense-Oligonukleotiden. Diese Technik ist leicht an andere Medikamente und Ratten.

Direkt Intraventrikuläre Abgabe von Arzneimitteln an die Nager Central Nervous System

Vaskuläre Zugänge zur Messung der Hämodynamik, zur Bereitstellung von Flüssigkeiten und zur Durchführung von Blutproben sind wichtig für jede Kleintiermodellstudie. Wir stellen eine Technik zur Implantation von Kathetern in die Halsschlagader und die Vena jugularis communis bei einer anästhesierten Ratte vor, um sie an ein System zur Durchführung von Monitoring, Infusionen und Probenahmen anzuschließen.

Katheterisierung der Halsschlagader und Vena jugularis zur hämodynamischen Maßnahmen im Conscious Rattenmodell durchführen, Infusionen und Blutentnahme

Das hier vorgestellte Protokoll ermöglicht die Reproduktion einer weit verbreiteten Demyelinisierung der grauen Substanz beider kortikaler Hemisphären bei erwachsenen männlichen Dunklen Agouti-Ratten. Die Methode umfasst die intrazerebrale Implantation eines Katheters, die subklinische Immunisierung gegen Myelin-Oligodendrozyten-Glykoprotein und die intrazerebrale Injektion einer entzündungsfördernden Zytokinmischung durch den implantierten Katheter.

Rattenmodell der weit verbreiteten zerebralen kortikalen Demyelinisierung, induziert durch eine intrazerebrale Injektion von entzündungsfördernden Zytokinen

Hier beschreiben wir eine Methode zur Abgabe von Medikamenten an das zentrale Nervensystem der Ratte, indem wir einen Katheter in den lendenintrathekalen Raum der Wirbelsäule implantieren. Wir konzentrieren uns auf die Lieferung von Antisense-Oligonukleotiden, obwohl diese Methode auch für die Lieferung anderer therapeutischer Modalitäten geeignet ist.

Intrathekale Lieferung von Antisense Oligonukleotiden im Zentralen Nervensystem der Ratte

Die Subarachnoidalblutung birgt nach wie vor eine hohe Belastung durch Mortalität und Morbidität beim Menschen. Um die weitere Erforschung der Erkrankung und ihrer Pathophysiologie zu erleichtern, wird ein prächiasmatisches Einzelinjektionsmodell vorgestellt.

Prächiasmatische, einmalige Injektion von Eigenblut zur Induktion einer experimentellen Subarachnoidalblutung in einem Rattenmodell

Es wird ein chirurgischer Eingriff beschrieben, bei dem Injektionen in die Lendenwirbelkammer der juvenilen Ratte durchgeführt werden. Dieser Ansatz wurde für die intrathekale Verabreichung von Gentherapie-Vektoren verwendet, aber es wird erwartet, dass dieser Ansatz für eine Vielzahl von Therapeutika, einschließlich Zellen und Medikamenten, verwendet werden kann.

Intrathekale Vektorverabreichung bei juvenilen Ratten über die Injektion in die Lendenwirbelsäule

Eine lumbale intrathekale Injektion stellt einen translational relevanten Verabreichungsweg für die Verabreichung einer Gentherapie an das zentrale Nervensystem dar. Dieses umfassende standardisierte Protokoll für lumbale intrathekale Injektionen bei Neugeborenen, juvenilen und adulten Mäusen und Ratten soll Forscher bei der Übernahme dieser Technik für präklinische Gentherapiestudien unterstützen.

Lumbale intrathekale Injektion von Gentherapie-Vektoren für das Targeting des Zentralnervensystems bei Mäusen und Ratten

Dieses chirurgische Protokoll ist eine Schritt-für-Schritt-Anleitung zum Einführen eines intrathekalen Katheters in den spinalen Subduralraum eines Nagetiers, um eine gezielte Behandlung durchzuführen.

Zugang zum subduralen Raum des Rückenmarks von Nagetieren für die Behandlung

Erfahren Sie eine modifizierte Methode zur intrathekalen Katheterisierung bei Ratten für neuropathische Schmerzforschung. Diese verbesserte Technik ermöglicht zuverlässige, wiederholbare Arzneimittelgaben mit hoher Erfolgsrate.

Eine modifizierte Methode zur intrathekalen Katheterisierung bei Ratten

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