17. Mai 2024
Das aktuelle Protokoll beschreibt ein Rattenmodell des Verschlusses/der Reperfusion der mittleren Hirnarterien, das die anatomische Struktur der Hirngefäße bewahrt, ohne Schäden zu verursachen.
In dieser Studie wird ein Rattenmodell für den Verschluss oder die Reperfusion der mittleren Hirnarterie entwickelt, das die Integration der zerebralen Gefäße aufrechterhält. Es konzentriert sich auf die Einführung einer neuen Methode zur Induktion eines ischämischen Schlaganfallmodells bei Ratten, ohne die zerebrale Gefäßanatomie zu beeinträchtigen. Das Projekt nutzt mikrochirurgische Techniken und die filamentinduzierte Ischämie.
Es wird eine Methode eingeführt, um eine Ischämie zu induzieren, ohne die Arteria carotis communis oder das externe Karotissystem zu schädigen. Im Gegensatz zu Techniken, die den Blutfluss dauerhaft beeinträchtigen oder die zerebrale Gefäßanatomie schädigen können, behält dieses Protokoll die anatomische Integrität mehrerer Gefäße bei. Es bietet einen genaueren, weniger schädlichen Ansatz zur Untersuchung des ischämischen Schlaganfalls.
Zu Beginn setzen Sie die betäubte Ratte auf eine Operationsplattform. Nach der Rasur des Fells um den Hals und den linken Halsbereich desinfizieren Sie die Operationsstelle dreimal mit Betadin und 70% Ethanol. Machen Sie einen 1,5 Zentimeter langen Mittellinienschnitt an der Bauchseite des Halses und öffnen Sie die oberflächliche Faszie.
Führen Sie eine stumpfe Dissektion durch, um die Arteria carotis externa, die Arteria carotis interna und die Arteria carotis communis freizulegen. Platzieren Sie drei 4-0-Seidennähte um die Arteria carotis communis und eine weitere Seidennaht durch die Arteria carotis externa in der Nähe der Bifurkation der Arteria carotis interna. Binden Sie einen lösbaren Schlupfknoten an der proximalen Arteria carotis.
Ziehen Sie die Naht an der distalen Arteria carotis communis mit einem Blutstiller fest, um den Blutfluss zu blockieren. Binden Sie während des Nähens einen weiteren Schlupfknoten locker um die Arteria carotis communis, um sicherzustellen, dass das Gefäß nicht verschlossen wird. Machen Sie nun mit einer Schere einen 0,5 Millimeter großen Schnitt zwischen der proximalen Seidennaht und der mittleren Naht an der Arteria carotis communis.
Führen Sie ein drei Zentimeter langes 4-0-Filament in die Halsschlagader ein. Ziehen Sie die Seidennähte um die Halsschlagader fest, um das intraluminale Filament zu sichern und Blutungen zu vermeiden. Entfernen Sie dann die Naht von der distalen Arteria carotis communis.
Führen Sie das Filament weiterhin in das Lumen der mittleren Hirnarterie ein und steuern Sie die Nähte um die Arteria carotis externa. Starten Sie einen Timer und notieren Sie den Zeitpunkt, zu dem die Okklusion beginnt. Vernähen Sie den Halsschnitt mit 3-0 Seidennähten.
Setzen Sie das Tier vorsichtig in einen Auffangkäfig. Nach der ischämischen Modellierung wird der Halsschnitt der anästhesierten Ratte wieder geöffnet. Ziehen Sie unter einem Präpariermikroskop das okkludierende Filament vorsichtig zurück, während Sie die Mikroklemme horizontal in der Nähe des intraluminalen Nahtknotens platzieren.
Ziehen Sie sich weiter zurück, bis die weiße Spitze in der Nähe des Schnitts der Arteria carotis communis deutlich sichtbar ist. Entfernen Sie dann das Filament vollständig und lösen Sie den gesicherten intraluminalen Nahtknoten. Platzieren Sie eine weitere Mikroklemme in der Nähe der Herzseite des proximalen Knotens der Arteria carotis.
Entfernen Sie anschließend den Nahtknoten um die proximale Arteria carotis. Spülen Sie die Inzisionsstelle mit Kochsalzlösung ab. Trocknen Sie den Bereich mit einem sterilen Wattebausch, um das Blut zu entfernen und ein klares Operationsfeld zu erhalten.
Bei 4-facher Vergrößerung vernähen Sie nun den Schnitt an der Halsschlagader mit 11-0 mikrochirurgischen Nähten in einem unterbrochenen Muster. Entfernen Sie nach dem Nähen die Mikroklemmen an beiden Enden der Arteria carotis, um den Blutfluss wiederherzustellen. Üben Sie mit einem sterilen Wattebausch 30 Sekunden lang Druck auf die Nahtstelle der Arteria carotis communis aus.
Beobachten Sie die Halsschlagader zwei Minuten lang, um sicherzustellen, dass keine Blutungen auftreten. Nähen Sie den Halsschnitt und legen Sie die Ratte zur Wiederherstellung der Anästhesie in eine 35 Grad Celsius heiße Pflegebox. Drei Tage nach der Ischämie-Reperfusion ist das Gehirn der euthanasierten Ratte zu entfernen.
Frieren Sie das Gehirn bei minus 20 Grad Celsius für 20 Minuten ein. Schneiden Sie nach dem Einfrieren das Gehirn mit einem Skalpell in zwei Millimeter dicke Kronenschnitte. Inkubieren Sie die Gehirnabschnitte mit 2%TTC für 20 Minuten bei 37 Grad Celsius.
Nach der Inkubation werden die Gehirnabschnitte in eine kleine Petrischale überführt und 2 % TTC verworfen. Fixieren Sie dann die Gehirnabschnitte mit 10% Formalin für 30 Minuten bei Raumtemperatur. Entsorgen Sie das Formalin und spülen Sie die Gehirnabschnitte mit PBS aus.
Nehmen Sie digitale Fotos von aufeinanderfolgenden Schichten auf. Messen Sie mit der ImageJ-Software quantitativ die Infarktbereiche. Nach der TTC-Färbung wurden die Infarkte infolge einer zerebralen Ischämie sowohl im Striatum als auch im Kortex beobachtet.
Drei Tage nach dem ischämischen Schlaganfall wurde der Gesamtinfarktanteil bei etwa 30 % der Hemisphäre gemessen, mit einer Mortalitätsrate von 16,7 % nach der Operation.
Diese Studie entwickelt ein Rattenmodell für die Okklusion oder Reperfusion der Arteria cerebri media, das die Integrität der zerebralen Gefäße bewahrt. Im Mittelpunkt steht eine neue Methode zur Induktion eines ischämischen Schlaganfalls, ohne die anatomische Struktur des zerebralen Gefäßsystems zu beeinträchtigen.
Die Erhaltung der zerebralen Gefäßanatomie in präklinischen Schlaganfallmodellen ist entscheidend für die Übertragbarkeit und die Reduzierung mechanistischer Risiken in der neurovaskulären Arzneimittelentwicklung. Dieses Rattenmodell ermöglicht eine quantitative Beurteilung des ischämischen Schadens, während vaskuläre Schädigungen, die störend wirken können, minimiert werden, wodurch das Vorhersagevertrauen bei der Validierung von Zielstrukturen in frühen Stadien gestärkt wird. Der Ansatz verbessert die Portfolio-Entscheidungsfindung, indem er ein physiologisch relevanteres System zur Bewertung neuroprotektiver und Reperfusionsstrategien bereitstellt.
Dieses Modell fügt sich in die Kontinuum von der frühen Entdeckung bis zur präklinischen Validierung für die Entwicklung von neurovaskulären Arzneimitteln ein und verbindet mechanistische Studien mit der testbaren Übertragbarkeit der Wirksamkeit.