Name: Endotracheale Intubation mittels Tracheotomie und anschließender Thorakotomie bei Ratten für Anwendungen ohne Überleben (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-03-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 43 s
Description: Lernen Sie die endotracheale Intubation mittels Tracheotomie und Thorakotomie bei Ratten für nicht-überlebende Anwendungen. Diese Methode ermöglicht präzise invasive Beatmung und verbessert die Reproduzierbarkeit experimenteller Messungen.

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Alle hier beschriebenen Tieraktivitäten wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) des Regierungspräsidiums Baden-Württemberg in Karlsruhe genehmigt. Die Versuchstiere wurden nach institutionellen Standards und nach den deutschen Gesetzen zur Verwendung und Pflege von Tieren und gemäß den Richtlinien des Rates der Europäischen Gemeinschaft (2010/63/EU) sowie den ANARRIVE-Richtlinien gehalten und in akkreditierten Einrichtungen durchgeführt. Zum Einsatz kamen männliche Spraque Dawley Ratten von Janvier Labs mit einem Bestellgewicht von 400 g.
1. Vorbereitung des Eingriffs (Abbildung 1)
<ol>
	<li>Bereiten Sie die chirurgischen Präparationshaken vor, indem Sie die Kanülen in einem Winkel von 135° in einem Abstand von 1 cm zur Spitze falten, sie über einen Luer-Lock mit Kunststoff-Perfusionsschläuchen verbinden und mit einer chirurgischen Moskitoklemme Spannung ausüben (Abbildung 1A,B).</li>
	<li>Bereiten Sie ein chirurgisches Expositionsgerät für Nagetiere vor. HINWEIS: Neben der Verfügbarkeit kommerzieller Plattformen können diese auch leicht und kostengünstig selbst gebaut werden, wie in dieser Studie.<ol>
		<li>Verwenden Sie dazu eine 40 cm x 50 cm große Stahlplatte mit einer Dicke von 4 mm. Erzeugen Sie mit einem Stahlbohrer an der gewünschten Stelle mehrere 8 mm Löcher für nachfolgende Spannpunkte. Platzieren Sie die Y-förmigen Befestigungsstäbe an diesen Stellen.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Legen Sie ein Heizkissen auf die Stahlplatte des chirurgischen Expositionsgeräts, um eine thermische Unterstützung zu gewährleisten.</li>
	<li>Bereiten Sie die chirurgischen Vorbereitungshaken mit beigefügten Kunststoffschläuchen und chirurgischen Moskitoklemmen vor, um später das Gewebe für die chirurgische Exposition zu spannen.</li>
	<li>Entfernen Sie den Stopfen einer 10-ml-Kunststoffspritze mit einem männlichen Luer-Lock-Ende und schneiden Sie das proximale Ende der Spritze ab. Führen Sie den distalen Teil wie abgebildet in den Beatmungsbeutel ein und verschließen Sie ihn luftdicht, indem Sie ihn mit einem Schrumpfschlauch abdecken und mit einem Laborbrenner sanfter Hitze anwenden (Abbildung 1D-F).</li>
	<li>Kürzen und fasen Sie intravenöse Katheter unterschiedlich groß ab und führen Sie einen Führungsdraht aus einem arteriellen Leader-Katheter-Set mit dem flexiblen Drahtende an der Spitze in die für die jeweilige Tiergröße am besten geeignete Kathetergröße (vermutlich 14 G) für die anschließende Seldinger-Technik22,23 während der Intubation ein (Abbildung 1G,H).</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig01v2.jpg"> 
Abbildung 1: Versuchsaufbau. (A) Eine gefaltete Kanüle, die mit einem Perfusionsschlauch verbunden ist und als chirurgischer Vorbereitungshaken verwendet wird. (B) Präparationshaken mit Klemme, die in einer Befestigungsstange aus Metall positioniert ist. (C) Das Tier wurde vor der Intervention sediert. (D) Beatmungsbeutel aus der Neonatologie. (E-F) Die luftdichte Befestigung einer Luer-Lock-Spritze auf dem Beatmungsbeutel erfolgt mit einem Schrumpfschlauch. (G) Verkürzte und abgeschrägte intravenöse Katheter in verschiedenen Größen mit einem Führungsdraht aus einem arteriellen Leader-Katheter-Set für die Seldinger-Technik. (H) Endgültige Sonderanfertigung. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig01largev2.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
2. Anästhesie und Analgesie
<ol>
	<li>Betäuben Sie die Ratte mit dem Medikament Ihrer Wahl. HINWEIS: Hier wurden Anästhesie und Analgesie mit Ketamin 10% (100 mg/ml), Xylazin 2% (20 mg/ml), Carprofen 50 mg/ml und Isofluran etabliert. Eine 1:10-Verdünnung von Xylazin und Carprofen wurde als Stammlösungen für die Anwendung verwendet.<ol>
		<li>Induzieren Sie die Anästhesie, indem Sie das Tier mit einem Verdampfer in eine mit 100 % Sauerstoff geflutete Induktionsbox mit einer Zuflussrate von 5 l/min, ergänzt durch 4 % (v) Isofluran, legen.</li>
		<li>Nachdem die Bewusstlosigkeit erreicht wurde, nehmen Sie das Tier aus der Induktionsbox und injizieren Sie ihm 100 mg/kg Ketamin und 4 mg/kg Xylazin (i.p.). HINWEIS: Dies entspricht 40 mg Ketamin (0,4 mL der Originallösung) und 1,6 mg Xylazin (0,08 mL der Originallösung oder 0,8 mL der 1:10-Lösung) für ein Tier mit 400 mg.</li>
		<li>Setzen Sie das Tier wieder in die mit Isofluran überflutete Induktionsbox, bis die Wirkung der i.p.-Injektion einsetzt.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Garantieren Sie die richtige Narkosetiefe, indem Sie testen, ob die Ratte nicht auf ein festes Einklemmen der Zehe reagiert.</li>
	<li>Tragen Sie eine Augensalbe auf die Augen auf.</li>
	<li>Beurteilen und erhalten Sie die Narkosetiefe während der Operation.<ol>
		<li>Wenn die narkotische Wirkung im Laufe der Zeit (etwa stündlich) nachlässt, injizieren Sie dem Tier zusätzlich 50 mg/kg Ketamin und 1 mg/kg Xylazin pro Körpergewicht. Dies entspricht 20 mg Ketamin (0,2 mL der Originallösung) und 0,4 mg Xylazin (0,2 mL der 1:10-Lösung) für ein 400 mg Tier.</li>
		<li>Führen Sie vor der Thorakotomie eine zusätzliche Analgesie mit einer s.c.-Injektion von 5 mg/kg Carprofen mit Körpergewicht durch. Dies entspricht 2 mg Carprofen (0,04 mL der Originallösung oder 0,4 mL der 1:10-Lösung) für ein Tier mit 400 mg.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Chirurgische Vorbereitung (Abbildung 2)
<ol>
	<li>Sättigen Sie den Tierkreislauf mit Sauerstoff, indem Sie eine Inhalation von 100 % Sauerstoff über eine transnasale Neugeborenenmaske anbieten (Abbildung 2A).</li>
	<li>Wechseln Sie nach 5 Minuten von der transnasalen Neugeborenenmaske zur Konstruktion eines Neugeborenen-Beatmungsbeutels mit einer Luer-Lock-Spitze aus Kunststoffspritze für Männer, wie oben beschrieben, und bieten Sie Sauerstoff im Überlauf an, wobei die Spritzenspitze nahe der Nasenspitze des Tieres liegt (Abbildung 2B).</li>
	<li>Führen Sie einen medianen thorakozervikalen Hautschnitt über die gewünschte Länge durch und legen Sie den chirurgischen Situs mit den chirurgischen Präparationshaken frei (Abbildung 2C,D).</li>
	<li>Treiben Sie die Präparation durch stumpfe Dissektion mit einer feinen Schere durch die Halsfaszie voran. Legen Sie den M. sternocleidomastoideus und den Musculus infrahyoidalis frei und lateralisieren Sie den Musculus infrahyoidalis medianus nach rechts nach der Dissektion der linken lateralen Membran (Abbildung 2E-G).</li>
	<li>Führen Sie eine stumpfe Dissektion in Richtung der Luftröhre und eine Tunnelung der Luftröhre mit Overholt-Klemmen durch (Abbildung 2H-I).</li>
	<li>Die Luftröhre wird mit einer Silikongefäßschlaufe umschlingt und die distale Luftröhre mit einer polyfilen Naht für die spätere Fixierung der endotrachealen Kanüle doppelt geschlingen (Abbildung 2J-N).</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig02.jpg"> 
Abbildung 2: Vorbereitung der Luftröhre. (A) Inhalation von Sauerstoff über eine Maske. (B) Wechseln Sie von der Maske zur männlichen Luer-Lock-Spritze für die Sauerstoffanwendung. (C) Thorakzervikaler Hautschnitt. (D) Präparation durch die Halsfaszie. (E) Freilegung des Musculus sternocleidomastoideus und des Musculus infrahyoidalis. (F) Lateralisation des Musculus infrahyoidalis medianus. (G) Stumpfe Dissektion in Richtung Luftröhre. (H) Tunnelung der Luftröhre mit Hilfe von Overholt-Klemmen. (I) Schleudern der Luftröhre mit einer Silikongefäßschlaufe. (J-N) Kaudale Doppelschlinge der Luftröhre mit einer Polyfilamentnaht zur späteren Fixierung der endotrachealen Kanüle. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
4. Ablauf der Intubation (Abbildung 3)
<ol>
	<li>Verlängern Sie die Luftröhre kaudal mit einer atraumatischen Zange (Abbildung 3A,B).</li>
	<li>Führen Sie mit einer Schere einen Teilschnitt der Luftröhre von 180° Umfang durch (Abbildung 3C-F).</li>
	<li>Führen Sie einen Seldinger-Führungsdraht mit dem flexiblen Ende in die Luftröhre ein (Abbildung 3G-H) und führen Sie anschließend den modifizierten intravenösen Katheter mit entsprechendem Umfang in die Luftröhre ein, geführt durch den Seldinger-Draht (Abbildung 3I-N).</li>
	<li>Entfernen Sie den Seldinger-Draht (Abbildung 3O), verbinden Sie die Luer-Lock-Spitze des Trachealkatheters mit dem modifizierten Beatmungsbeutel und beginnen Sie mit der sanften lungenschonenden manuellen Beatmung mit hoher Frequenz und geringem Atemzugvolumen (Abbildung 3P). Führen Sie eine manuelle Beatmung durch, solange keine mediane Thorakotomie durchgeführt wurde und die Lunge nicht sichtbar ist.</li>
	<li>Binden Sie die zuvor platzierte Verriegelungsnaht mit einem Gleitknoten, um Leckagen aus der Luft und eine versehentliche Entfernung des Katheters zu vermeiden (Abbildung 3Q-T).</li>
</ol>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig03.jpg"> 
Abbildung 3: Endotracheale Intubation mittels Tracheotomie. (A) Ausgangssituation nach der Präparation. (B) Kaudale Verlängerung der Luftröhre mit einer atraumatischen Zange. (C-F) Teilweiser Schnitt der Luftröhre mit einem Umfang von 180°. (G,H) Einbringen eines Seldinger-Führungsdrahtes in die Luftröhre. (I-M) Einführung des modifizierten intravenösen Katheters in die Luftröhre geführt durch den Seldinger-Draht. (N-O) Entfernen des Seldinger-Drahtes. (P) Luer-Lock-Verbindung des Trachealkatheters mit dem modifizierten Beatmungsbeutel. (Q-T) Binden der zuvor platzierten Verriegelungsnaht, um eine versehentliche Entfernung des Katheters zu vermeiden. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
5. Manuelle Beatmung und mediane Thorakotomie (Abbildung 4)
<ol>
	<li>Beginnen Sie die mediane Thorakotomie am Xiphoid mit einer stumpfen und stabilen Materialschere (Abbildung 4A,B) und setzen Sie sie kranial durch das Brustbein fort. Pausieren Sie die Beatmung immer für einige Sekunden, wenn Sie mit der Schere substernal vorrücken und schneiden, um ein Trauma der Lunge zu vermeiden (Abbildung 4C-E).</li>
	<li>Die Thoraxfreilegung erfolgt mit chirurgischen Präparationshaken und die Entfernung der mediastinalen Serosalmembranen (Abbildung 4F-H).</li>
	<li>Die manuelle Beatmung mit der gewünschten Häufigkeit und dem gewünschten Atemzugvolumen fortsetzen und das Monitoring erweitern (z. B. Etablierung einer intraarteriellen Blutdruckmessung, Anlage eines zentralen venösen oder pulmonalarteriellen Katheters je nach Zweck oder jeweiliger Forschungsfragestellung) (Abbildung 4I-L).</li>
</ol>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig04.jpg"> 
Abbildung 4: Manuelle Beatmung und mediane Thorakotomie. (A) Ausgangssituation nach Intubation. (B-E) Mediane Thorakotomie ausgehend vom Xiphoid. (F-I) Thoraxfreilegung mit chirurgischen Präparationshaken. (J) Endeinrichtung während der Beatmung. (K-L) der Prozess der manuellen Beatmung. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig04large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
6. Euthanasie
<ol>
	<li>Erreichen Sie Euthanasie durch abrupte scharfe Kardiektomie mit einer Schere bei dem tief betäubten Tier.</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>Tracheotomie-basiertes endotracheales Intubationsprotokoll für Rattenmodelle, die nicht überleben

<ol><li>Czigany, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limb+remote+ischemic+conditioning+of+the+recipient+protects+the+liver+in+a+rat+model+of+arterialized+orthotopic+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Limb remote ischemic conditioning of the recipient protects the liver in a rat model of arterialized orthotopic liver transplantation.</a> PLoS One. 13 (4), e0195507(2018).</li>
<li>Czigány, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+research+practice+in+rat+orthotopic+and+partial+orthotopic+liver+transplantation%3A+A+review%2C+recommendation%2C+and+publication+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Improving research practice in rat orthotopic and partial orthotopic liver transplantation: A review, recommendation, and publication guide.</a> Eur Surg Res. 55 (1-2), 119-138 (2015).</li>
<li>Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+procedures+for+a+rat+model+of+partial+orthotopic+liver+transplantation+with+hepatic+arterial+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction.</a> J Vis Exp. 73, e4376(2013).</li>
<li>Jahshan, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+for+assessment+of+laryngotracheal+injury+following+transoral+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Pediatr+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">A novel rat model for assessment of laryngotracheal injury following transoral intubation.</a> Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 113, 4-10 (2018).</li>
<li>Lamoureux, L., Radhakrishnan, J., Gazmuri, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rat+model+of+ventricular+fibrillation+and+resuscitation+by+conventional+closed-chest+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A rat model of ventricular fibrillation and resuscitation by conventional closed-chest technique.</a> J Vis Exp. 98, 52413(2015).</li>
<li>Wang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoinducer-2+of+streptococcus+mitis+as+a+target+molecule+to+inhibit+pathogenic+multi-species+biofilm+formation+in+vitro+and+in+an+endotracheal+intubation+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Autoinducer-2 of streptococcus mitis as a target molecule to inhibit pathogenic multi-species biofilm formation in vitro and in an endotracheal intubation rat model.</a> Front Microbiol. 7, 88(2016).</li>
<li>Jahshan, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+for+tracheal+mucosal+damage+assessment+of+following+long+term+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Pediatr+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">A novel rat model for tracheal mucosal damage assessment of following long term intubation.</a> Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 128, 109738(2020).</li>
<li>Rivard, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+intubation+and+ventilation+for+surgical+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Surg%22%5BJournal%5D)">Rat intubation and ventilation for surgical research.</a> J Invest Surg. 19 (4), 267-274 (2006).</li>
<li>Na, N., Zhao, D. Q., Huang, Z. Y., Hong, L. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+rat+intubation+and+thymectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Chin+Med+J+%28Engl%29%22%5BJournal%5D)">An improved method for rat intubation and thymectomy.</a> Chin Med J (Engl). 124 (17), 2723-2727 (2011).</li>
<li>Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthesia+protocols+in+laboratory+animals+used+for+scientific+purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomed%22%5BJournal%5D)">Anesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes.</a> Acta Biomed. 89 (3), 337-342 (2018).</li>
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<li>Massick, D. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+the+learning+curve+for+percutaneous+dilatational+tracheotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Quantification of the learning curve for percutaneous dilatational tracheotomy.</a> Laryngoscope. 110 (2 Pt 1), 222-228 (2000).</li>
<li>Giugliano, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Learning+curve+for+translaryngeal+tracheotomy+in+head+and+neck+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Learning curve for translaryngeal tracheotomy in head and neck surgery.</a> Laryngoscope. 111 (4 Pt 1), 628-633 (2001).</li>
<li>Mort, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emergency+tracheal+intubation%3A+Complications+associated+with+repeated+laryngoscopic+attempts%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Emergency tracheal intubation: Complications associated with repeated laryngoscopic attempts.</a> Anesth Analg. 99 (2), 607-613 (2004).</li>
<li>Hasegawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+between+repeated+intubation+attempts+and+adverse+events+in+emergency+departments%3A+An+analysis+of+a+multicenter+prospective+observational+study%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Emerg+Med%22%5BJournal%5D)">Association between repeated intubation attempts and adverse events in emergency departments: An analysis of a multicenter prospective observational study.</a> Ann Emerg Med. 60 (6), 749-754.e742 (2012).</li>
<li>Titu, I. M., Delaca, G. B., Teterea, F., Ciulic, S. A., Palade, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+tracheostomy+using+the+Seldinger+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Multimed+Man+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Percutaneous tracheostomy using the Seldinger technique.</a> Multimed Man Cardiothorac Surg. 2023, (2023).</li>
<li>Garry, B. P., Bivens, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Seldinger+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiothorac+Anesth%22%5BJournal%5D)">The Seldinger technique.</a> J Cardiothorac Anesth. 2 (3), 403(1988).</li>
<li>Carbone, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimating+mouse+and+rat+use+in+American+laboratories+by+extrapolation+from+animal+welfare+act-regulated+species%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Estimating mouse and rat use in American laboratories by extrapolation from animal welfare act-regulated species.</a> Sci Rep. 11 (1), 493(2021).</li>
<li>Su, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacious+and+safe+orotracheal+intubation+for+laboratory+mice+using+slim+torqueable+guidewire-based+technique%3A+Comparisons+between+a+modified+and+a+conventional+method%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Anesthesiol%22%5BJournal%5D)">Efficacious and safe orotracheal intubation for laboratory mice using slim torqueable guidewire-based technique: Comparisons between a modified and a conventional method.</a> BMC Anesthesiol. 16, 5(2016).</li>
<li>Clary, E. M., O'halloran, E. K., De La Fuente, S. G., Eubanks, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Videoendoscopic+endotracheal+intubation+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Videoendoscopic endotracheal intubation of the rat.</a> Lab Anim. 38 (2), 158-161 (2004).</li>
<li>Ghali, M. G. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+technique+for+tracheostomy+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22MethodsX%22%5BJournal%5D)">Microsurgical technique for tracheostomy in the rat.</a> MethodsX. 5, 61-67 (2018).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Ambu Spur II Einweg-Beatmungsbeutel für Neugeborene</td><td>Meier Medizintechnik</td><td>335 102 000</td><td>Beatmungsbeutel</td></tr><tr><td>BD Microlance 3 Kanüle 20 G</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>301300</td><td>Kanüle</td></tr><tr><td>BD Microlance Discardit II 20 mL Spritze</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>300296</td><td>Kunststoffspritze</td></tr><tr><td>Fixierstäbe</td><td>Legefirm</td><td>&lrm; 500343896</td><td>Stimmgabeln zur Verwendung als Y-förmige Fixierstäbe aus Metall</td></tr><tr><td>Schrumpfschlauch</td><td>Sekesoer</td><td>RSG-400</td><td>Schrumpfschlauch</td></tr><tr><td>Intravenöser Katheter</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>393230</td><td>BD Venflon Pro Sicherheit intravenöser Katheter 14 G; mit Schere gekürzt; alternativ können 16 G oder 18 G verwendet werden</td></tr><tr><td>Perfusorschlauch aus Kunststoff</td><td>M. Schilling GmbH</td><td>S702NC150</td><td>Verbindungsschlauch COEX 150 cm</td></tr><tr><td>Polyfil-Naht</td><td>COVIDIEN</td><td>CL331</td><td>Polyfilament-Operationsnaht empfohlen mit einer Stärke von 1 bis 2; Nadel kann entfernt</td></tr><tr><td>werden Royal Gardineer Heizkissen Größe S, 20 Watt</td><td>Royal Gardineer</td><td>IP67</td><td>Heizkissen</td></tr><tr><td>Seldinger Führungsdraht</td><td>VYGON</td><td>115.798</td><td>Metall-Führungsdraht aus dem arteriellen Führungsset</td></tr><tr><td>Silikongefäß-Schlaufenbinder</td><td>SERAG WIESSNER</td><td>SL26</td><td>Silikongefäß Schlaufenbinder 2,5 mm rot</td></tr><tr><td>Spraque Dawley Ratten</td><td>Janvier Labs Männliche</td><td></td><td>Ratten mit einem Gewicht von 400 Gramm</td></tr><tr><td>Stahlblech</td><td>Maschinenbau Feld GmbH</td><td>C010206</td><td>Verzinktes Blechblech, 40 x 50 cm, Dicke 4,0 mm</td></tr></tbody></table>

endotracheale intubation mittels tracheotomie und anschließender thorakotomie bei ratten für anwendungen ohne Überleben

Endotracheal Intubation via Tracheotomy and Subsequent Thoracotomy in Rats for Non-Survival Applications

Eine endotracheale Intubation mittels Tracheotomie und anschließender Thorakotomie wurde bei 10 männlichen Ratten (Durchschnittsgewicht 405 ± 30 g) für Nicht-Überlebensanwendungen durchgeführt. Der Eingriff wurde von einem chirurgischen Assistenzarzt im zweiten Jahr durchgeführt. Die Erfolgsrate, die durch das Überleben über 20 Minuten Intubation und Beatmung definiert wurde, betrug 100%. Die mittlere Dauer der Präparation und des Intubationsverfahrens von der Hautinzision bis zur Fixierung des Intubationsschlauchs betrug 6:55 ± 0:53 min (Tabelle 1).
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Anzahl der verwendeten Tiere</td>
			<td>10</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Körpergewicht (Mittelwert und Standardabweichung)</td>
			<td>405 ± 30 g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Erfolgsquote bei der Intubation</td>
			<td>100%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dauer des Eingriffs (Mittelwert und Standardabweichung)</td>
			<td>6:55 ± 0:53 min</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mittlere Sauerstoffsättigung</td>
			<td>96%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Minimale Sauerstoffsättigung</td>
			<td>92%</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabelle 1: Repräsentative Ergebnisse. Repräsentative Ergebnisse des Protokolls an 10 Tieren.
Die Sättigung wurde durch eine Einweg-Selbststick-Pulsoximetrie-Sonde am Hinterbein überwacht und fiel nie unter 92 %. Die Spontanbeatmung wurde bis zur Inzision des Zwerchfells eingedämmt. Alle Ratten überlebten die für die experimentellen Messungen erforderlichen 20 Minuten bis zur absichtlichen Euthanasie durch abrupte scharfe Kardiektomie (Abbildung 5).
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig05.jpg"> 
Abbildung 5: Periphere Sauerstoffsättigung. Periphere Sauerstoffsättigung, gemessen über die gesamte Dauer dieses Verfahrens. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig05large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>

Endotracheale Intubation mittels Tracheotomie und anschließender Thorakotomie bei Ratten für Anwendungen ohne Überleben

Endotracheal intubation and subsequent ventilation are often basic requirements for translational research in rat models for various interventions that ...

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

In diesem Video demonstrieren wir die Trachealintubation — ein invasives Verfahren zum Einführen eines Endotrachealtubus durch den Mund in einem Kaninchenmodell. Dieses Verfahren ermöglicht eine mechanische Beatmung der Lunge.

Trachealintubation zur mechanischen Beatmung: ein Verfahren zum Einführen eines Endotrachealtubus in die Luftröhre eines Kaninchenmodells

Wir haben eine einfache, zuverlässige und relativ kostengünstiges Verfahren zur Intubation bei Mäusen durch direkte Laryngoskopie mit einem Otoskop mit einem 2,0-mm-Spekulum entwickelt. Diese Technik ist atraumatisch und für wiederholte Messungen bei chronischen Experimente eingesetzt werden. Wir finden es besser als zuvor berichtet, Tracheostoma oder chirurgischen Techniken.

Intubation bei Mäusen<em&gt; Über</em&gt; Direkte Laryngoskopie Mit einem Otoskop

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Ein verbessertes Verfahren zur schnellen Intubation der Luftröhre in Mice

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Offene Tracheotomie Magensäure Aspiration Mausmodell der akuten Lungenschädigung Ergebnisse in Maximal Akute nonlethal Lung Injury

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Die linke Pneumonektomie kombiniert mit Monocrotaline oder Sugen als Modell der pulmonalen Hypertonie bei Ratten

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Lernen Sie die endotracheale Intubation mittels Tracheotomie und Thorakotomie bei Ratten für nicht-überlebende Anwendungen. Diese Methode ermöglicht präzise invasive Beatmung und verbessert die Reproduzierbarkeit experimenteller Messungen.

Endotracheale Intubation mittels Tracheotomie und anschließender Thorakotomie bei Ratten für Anwendungen ohne Überleben

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