October 4th, 2024
Hier beschreiben wir eine umfassende Methode zur Messung der mitochondrialen oxidativen Phosphorylierung in frischen permeabilisierten Skelettmuskelfasern aus menschlichen oder Mausmuskeln. Diese Methode ermöglicht die Echtzeit-Quantifizierung der mitochondrialen Atmung und die Beurteilung der Brennstoffpräferenz und der metabolischen Flexibilität unter Beibehaltung bestehender mitochondrialer Netzwerke und der Membranintegrität.
Unsere Forschung konzentriert sich auf die Überschneidung von Stoffwechsel und Stressreaktionen bei Stoffwechselerkrankungen, einem Hauptthema des NORD-Programms der Washington University. Durch Synergien zwischen unseren NORD-Kernen sind wir in der Lage, komplexe Fragestellungen im Ernährungsstoffwechsel und bei Krankheiten durch einen interdisziplinären und kollaborativen Ansatz anzugehen. Traditionelle mitochondriale Atmungsassays untersuchten isolierte Mitochondrien.
Die Isolierung von Mitochondrien ist zeitaufwändig und kann die Integrität der äußeren Mitochondrienmembran beeinträchtigen. Darüber hinaus sind Mitochondrien nicht alleine, sondern Teil eines dynamischen Netzwerks der zellulären metabolischen Anpassung. Unser Protokoll pflegt dieses Netzwerk, um eine physiologisch relevante Beurteilung der mitochondrialen Funktion zu ermöglichen.
Unser Fokus hat sich auf die Identifizierung von Regulatoren der metabolischen Anpassung ausgeweitet, die für Gesundheit und Krankheit wichtig sind. Zu den wichtigsten Fragen, die wir uns stellen, gehören: Sind diese Regulatoren, wie die Site-1-Protease, für verschiedene Gewebetypen gleich wichtig? Und welche physiologische Bedeutung haben sie?
Diese Studie präsentiert ein umfassendes Protokoll zur Messung der mitochondrialen oxidativen Phosphorylierung in frischen permeabilisierten Skelettmuskelfasern aus menschlichen oder Mausmodellen. Die Methode ermöglicht die Echtzeit-Quantifizierung der mitochondrialen Atmung, der Brennstoffpräferenz und der metabolischen Flexibilität bei gleichzeitiger Erhaltung mitochondrialer Netzwerke und Membranintegrität.
High-resolution respirometry in permeabilized skeletal muscle fibers enables precise, physiologically relevant measurement of mitochondrial oxidative phosphorylation, a critical determinant of cellular energy metabolism. This approach supports early discovery and target validation for metabolic disease portfolios by providing robust, quantitative insights into mitochondrial function and metabolic flexibility. Integrating these measurements enhances predictive confidence at key inflection points in metabolic and muscle health R&D pipelines.
This high-resolution respirometry protocol bridges early discovery, lead identification, and preclinical research by enabling robust mitochondrial function assessment in both human and mouse muscle fibers.