19. Juli 2024
Wir verwendeten die Zellproliferationsfärbung, um ruhende Zellen im Zebrafisch-T-Modell für akute lymphatische Leukämie zu identifizieren. Die Färbung wird in nicht teilenden Zellen zurückgehalten und während der Zellproliferation reduziert, was die Selektion ruhender Zellen für die weitere Befragung ermöglicht. Dieses Protokoll bietet ein funktionales Werkzeug, um die Selbsterneuerung im Kontext der zellulären Ruhe zu untersuchen.
Leukämie-Stammzellen sind eine seltene Subpopulation von Zellen innerhalb der Leukämie, die für die langfristige Aufrechterhaltung der Krankheit und den Rückfall verantwortlich sind. Unser Ziel ist es, diese Zellen besser zu charakterisieren, um Wege zu finden, sie gezielt zu eliminieren und die Patientenergebnisse zu verbessern. Krebsstammzellen, einschließlich Leukämie-Stammzellen, befinden sich in einem Zustand der Ruhe oder des langsamen Wachstums, was es ihnen ermöglichen könnte, antiproliferativen Krebsbehandlungen zu entgehen.
Das Verständnis der zellulären Ruhe wird dazu beitragen, potenzielle Schwachstellen von Leukämie-Stammzellen und neue Wege zu identifizieren, um sie zu bekämpfen. Mit Hilfe dieses Protokolls können wir ruhende Leukämiezellen aus einem Zebrafischmodell der akuten lymphatischen T-Zell-Leukämie identifizieren und isolieren. Diese Zellen können für nachgelagerte Anwendungen verwendet werden, wie z. B. In-vivo-Wirkstoffscreening, Transkriptomics-Profiling und Proteomik-Analysen.
Diese Studie konzentriert sich auf die Identifizierung inaktiver Leukämie-Stammzellen in einem Zebrafisch-Modell der T-Zell-akuten lymphatischen Leukämie. Durch die Verwendung von Zellproliferationsfärbung können Forscher inaktive Zellen für weitere Analysen isolieren und so das Verständnis der zellulären Quieszenz und deren Auswirkungen auf die Krebsbehandlung verbessern.
Quiescent leukemia stem cells (LSCs) present a major challenge in T-cell acute lymphoblastic leukemia (T-ALL) due to their role in disease persistence and relapse. The ability to functionally identify and isolate these dormant cells in a zebrafish model enables mechanistic de-risking and supports predictive confidence in early discovery. This workflow provides a scalable platform for interrogating LSC vulnerabilities and informing risk-adjusted portfolio decisions.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling functional isolation of quiescent LSCs for downstream analysis and screening.