Name: Im lebenden Organismus Konfokale Fluoreszenzbildgebung der durch sensorische Stimulation induzierten neuronalen Aktivität bei teilweise gefesselten Zebrafischlarven (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-04-18T12:10:00.000+00:00
Duration: 5 min 12 s
Description: Lernen Sie die konfokale Fluoreszenzbildgebung neuronaler Aktivität in transgenen Zebrafischlarven mit GCaMP-Indikatoren. Diese Methode ermöglicht die Echtzeit-Analyse von Calciumdynamiken im lebenden Organismus.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Ahrens, M. B., Orger, M. B., Robson, D. N., Li, J. M., Keller, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-brain+functional+imaging+at+cellular+resolution+using+light-sheet+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Method%22%5BJournal%5D)">Whole-brain functional imaging at cellular resolution using light-sheet microscopy.</a> Nat Method. 10 (5), 413-420 (2013).</li>
<li>Meyer, M. P., Smith, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+from+in+vivo+imaging+that+synaptogenesis+guides+the+growth+and+branching+of+axonal+arbors+by+two+distinct+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Evidence from in vivo imaging that synaptogenesis guides the growth and branching of axonal arbors by two distinct mechanisms.</a> J Neurosci. 26 (13), 3604-3614 (2006).</li>
<li>Sagasti, A., Guido, M. R., Raible, D. W., Schier, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repulsive+interactions+shape+the+morphologies+and+functional+arrangement+of+zebrafish+peripheral+sensory+arbors%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Repulsive interactions shape the morphologies and functional arrangement of zebrafish peripheral sensory arbors.</a> Curr Biol. 15 (9), 804-814 (2005).</li>
<li>Son, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+FingRs+for+live+mapping+of+synaptic+dynamics+in+genetically-defined+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Transgenic FingRs for live mapping of synaptic dynamics in genetically-defined neurons.</a> Sci Rep. 6, 18734(2016).</li>
<li>Zada, D., Tovin, A., Lerer-Goldshtein, T., Vatine, G. D., Appelbaum, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+behavioral+performance+and+live+imaging+of+circuit-specific+neural+deficiencies+in+a+zebrafish+model+for+psychomotor+retardation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Altered behavioral performance and live imaging of circuit-specific neural deficiencies in a zebrafish model for psychomotor retardation.</a> PLoS Genet. 10 (9), e1004615(2014).</li>
<li>Chen, T. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasensitive+fluorescent+proteins+for+imaging+neuronal+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Ultrasensitive fluorescent proteins for imaging neuronal activity.</a> Nature. 499 (7458), 295-300 (2013).</li>
<li>Abdelfattah, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((and+photostable+chemigenetic+indicators+for+extended+in+vivo+voltage+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">and photostable chemigenetic indicators for extended in vivo voltage imaging.</a> Science. 365 (6454), 699-704 (2019).</li>
<li>Abdelfattah, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensitivity+optimization+of+a+rhodopsin-based+fluorescent+voltage+indicator%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Sensitivity optimization of a rhodopsin-based fluorescent voltage indicator.</a> Neuron. 111 (10), 1547-1563.e9 (2023).</li>
<li>Gao, Y. J., Ji, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((c-Fos+and+pERK%2C+which+is+a+better+marker+for+neuronal+activation+and+central+sensitization+after+noxious+stimulation+and+tissue+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Open+Pain+J%22%5BJournal%5D)">c-Fos and pERK, which is a better marker for neuronal activation and central sensitization after noxious stimulation and tissue injury.</a> Open Pain J. 2, 11-17 (2009).</li>
<li>Kawashima, T., Okuno, H., Bito, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+era+for+functional+labeling+of+neurons%3A+activity-dependent+promoters+have+come+of+age%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neural+Circuits%22%5BJournal%5D)">A new era for functional labeling of neurons: activity-dependent promoters have come of age.</a> Front Neural Circuits. 8, 37(2014).</li>
<li>Randlett, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-brain+activity+mapping+onto+a+zebrafish+brain+atlas%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Whole-brain activity mapping onto a zebrafish brain atlas.</a> Nat Methods. 12, 1039-1046 (2015).</li>
<li>Reijmers, L. G., Perkins, B. L., Matsuo, N., Mayford, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localization+of+a+stable+neural+correlate+of+associative+memory%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Localization of a stable neural correlate of associative memory.</a> Science. 317 (5842), 1230-1233 (2007).</li>
<li>Mohr, M. A., Argast, P., Pantazis, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Labeling+cellular+structures+in+vivo+using+confined+primed+conversion+of+photoconvertible+fluorescent+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protoc%22%5BJournal%5D)">Labeling cellular structures in vivo using confined primed conversion of photoconvertible fluorescent proteins.</a> Nature Protoc. 11 (12), 2419-2431 (2016).</li>
<li>Arrenberg, A. B., Del Bene, F., Baier, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+control+of+zebrafish+behavior+with+halorhodopsin%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Optical control of zebrafish behavior with halorhodopsin.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (42), 17968-17973 (2009).</li>
<li>Wyart, C., Del Bene, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Let+there+be+light%3A+zebrafish+neurobiology+and+the+optogenetic+revolution%5BTitle%5D)+AND+%22Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Let there be light: zebrafish neurobiology and the optogenetic revolution.</a> Rev Neurosci. 22 (1), 121-130 (2011).</li>
<li>Douglass, A. D., Kraves, S., Deisseroth, K., Schier, A. F., Engert, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Escape+behavior+elicited+by+single%2C+channelrhodopsin-2-evoked+spikes+in+zebrafish+somatosensory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Escape behavior elicited by single, channelrhodopsin-2-evoked spikes in zebrafish somatosensory neurons.</a> Curr Biol. 18 (15), 1133-1137 (2008).</li>
<li>Portugues, R., Severi, K. E., Wyart, C., Ahrens, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetics+in+a+transparent+animal%3A+circuit+function+in+the+larval+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opinion+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Optogenetics in a transparent animal: circuit function in the larval zebrafish.</a> Curr Opinion Neurobiol. 23 (1), 119-126 (2013).</li>
<li>Best, J. D., Alderton, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish%3A+An+in+vivo.+model+for+the+study+of+neurological+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropsychiat+Dis+Treatment%22%5BJournal%5D)">Zebrafish: An in vivo. model for the study of neurological diseases.</a> Neuropsychiat Dis Treatment. 4 (3), 567-576 (2008).</li>
<li>Goldsmith, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+as+a+pharmacological+tool%3A+the+how%2C+why+and+when%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opinion+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Zebrafish as a pharmacological tool: the how, why and when.</a> Curr Opinion Pharmacol. 4 (5), 504-512 (2004).</li>
<li>Roberts, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Habituation+of+the+C-start+response+in+larval+zebrafish+exhibits+several+distinct+phases+and+sensitivity+to+NMDA+receptor+blockade%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Habituation of the C-start response in larval zebrafish exhibits several distinct phases and sensitivity to NMDA receptor blockade.</a> PloS One. 6 (12), e29132(2011).</li>
<li>Wolman, M. A., Jain, R. A., Liss, L., Granato, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+modulation+of+memory+formation+in+larval+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Chemical modulation of memory formation in larval zebrafish.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (37), 15468-15473 (2011).</li>
<li>Ji, N., Freeman, J., Smith, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technologies+for+imaging+neural+activity+in+large+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Technologies for imaging neural activity in large volumes.</a> Nat Neurosci. 19 (9), 1154-1164 (2016).</li>
<li>Panier, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+functional+imaging+of+multiple+brain+regions+in+intact+zebrafish+larvae+using+selective+plane+illumination+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neural+Circuits%22%5BJournal%5D)">Fast functional imaging of multiple brain regions in intact zebrafish larvae using selective plane illumination microscopy.</a> Front Neural Circuits. 7, 65(2013).</li>
<li>Distel, M., Köster, R. W. In vivo time-lapse imaging of zebrafish embryonic development. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDistel%2C+M+%22CSH+Protoc%22">CSH Protoc</a>. 2007, (2007).</li>
<li>Liu, T. T., Hou, H., Du, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+protocol+for+simultaneous+Ca2%2B+and+morphology+imaging+of+brain+endothelial+tip+cells+in+larval+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22STAR+Protoc%22%5BJournal%5D)">A protocol for simultaneous Ca2+ and morphology imaging of brain endothelial tip cells in larval zebrafish.</a> STAR Protoc. 2 (1), 100388(2021).</li>
<li>Wong, H. C., Drerup, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+fluorescent+indicators+for+in+vivo+quantification+of+spontaneous+or+evoked+motor+neuron+presynaptic+activity+in+transgenic+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22STAR+Protoc%22%5BJournal%5D)">Using fluorescent indicators for in vivo quantification of spontaneous or evoked motor neuron presynaptic activity in transgenic zebrafish.</a> STAR Protoc. 3 (4), 101766(2022).</li>
<li>Graeden, E., Sive, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+the+zebrafish+embryonic+brain+by+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Live imaging of the zebrafish embryonic brain by confocal microscopy.</a> J Vis Exp. (26), e1217(2009).</li>
<li>Hirsinger, E., Steventon, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+mounting+method+for+long+term+imaging+of+zebrafish+development%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A versatile mounting method for long term imaging of zebrafish development.</a> J Vis Exp. (119), e55210(2017).</li>
<li>Renaud, O., Herbomel, P., Kissa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studying+cell+behavior+in+whole+zebrafish+embryos+by+confocal+live+imaging%3A+application+to+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Studying cell behavior in whole zebrafish embryos by confocal live imaging: application to hematopoietic stem cells.</a> Nat Protoc. 6 (12), 1897-1904 (2011).</li>
<li>Roberts, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+short-term+sensitization+by+an+aversive+chemical+stimulus+in+zebrafish+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22eNeuro%22%5BJournal%5D)">Induction of short-term sensitization by an aversive chemical stimulus in zebrafish larvae.</a> eNeuro. 7 (6), (2020).</li>
<li>Prober, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+TRPA1+channels+are+required+for+chemosensation+but+not+for+thermosensation+or+mechanosensory+hair+cell+function%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Zebrafish TRPA1 channels are required for chemosensation but not for thermosensation or mechanosensory hair cell function.</a> J Neurosci. 28 (40), 10102-10110 (2008).</li>
<li>Freeman, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+brain+activity+at+scale+with+cluster+computing%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Mapping brain activity at scale with cluster computing.</a> Nat Methods. 11, 941-950 (2014).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Niedriger Schmelzpunkt Agarose</td><td>Invitrogen</td><td>16520-100</td><td>Verdünnt auf 3%</td></tr><tr><td>Allylisothiocyanat (AITC)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>377430</td><td>Chemisches Stimulans</td></tr><tr><td>E3</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Wasser-Medium für Zebrafischlarven</td></tr><tr><td>Glasbodenschalen</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12-567-400</td><td>Wird verwendet, um Zebrafische während bildgebender Experimente</td></tr> <tr><td>zu haltenMikropipette (10-100 μl)</td><td>Cole-Parmer</td><td>21600-14</td><td>Apparatur zur Erstellung von AITC-Verdünnungen</td></tr><tr><td>Objektträger</td><td>Fisherbrand</td><td>12-550-A3</td><td>Zur Untersuchung des Phänotyps</td></tr><tr><td>Hochglanzpinzette</td><td>DUMONT</td><td>11251-23</td><td>Zur Orientierung von Zebrafischen in Agarose</td></tr><tr><td>myTEMP Mini Digital Incubators</td><td>Benchmark</td><td>H2200-HC</td><td>Haltebereich für Zebrafische; eingestellt auf 28,5°; C</td></tr><tr><td>Nitrilhandschuhe</td><td>MedPRIDE</td><td>MPR-50504</td><td>Basic PSA</td></tr><tr><td>Petrischalen</td><td>VWR</td><td>89107-632</td><td>Behälter für Zebrafische</td></tr><tr><td>Posi-Click-Röhrchen</td><td>DENVILLE</td><td>C-2171</td><td>Verwendet für die AITC-Verdünnung</td></tr><tr><td>Samco Polyurethan-Transferpipetten</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>225</td><td>Gerät zur Auswahl von Tieren/Verabreichen von verdünntem Bolus von AITC</td></tr><tr><td>Stemi SV11 Apo Mikroskop</td><td>Zeiss</td><td>1.25496E+11</td><td>Zur Inszenierung von Zebrafischen</td></tr><tr><td>Transgene Larven Zebrafische (2 bis 7 DPF)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Tierexperimentiere; Tg(elav3:GCaMP6s) Stamm</td></tr><tr><td>Zeiss Konfokalmikroskop (Modell LSM9)</td><td>Zeiss</td><td>3523004097</td><td>Bildgebung von Fischen</td></tr></tbody></table>

im lebenden organismus konfokale fluoreszenzbildgebung der durch sensorische stimulation induzierten neuronalen aktivität bei teilweise gefesselten zebrafischlarven

In Vivo Confocal Fluorescence Imaging of Neural Activity Induced by Sensory Stimulation in Partially Restrained Larval Zebrafish

Die Verabreichung von Allylisothiocyanat verursacht ein Kalzium-assoziiertes neuronales Signal in Zebrafischlarven Die Verabreichung von AITC (Schritt 2.6) führt zu einem weit verbreiteten Anstieg der GCaMP6s-assoziierten neuronalen Aktivität im Gehirn der Zebrafischlarven11,30. Wir beobachteten ein erhöhtes Fluoreszenzsignal in einer kleinen Region des Gehirns nach der Anwendung von AITC, wie in Abbildung 4 gezei...

Im lebenden Organismus Konfokale Fluoreszenzbildgebung der durch sensorische Stimulation induzierten neuronalen Aktivität bei teilweise gefesselten Zebrafischlarven

Zebrafish larvae are a promising vertebrate model system for studying the neural mechanisms of behavior. Their translucence and relatively simple neural ...

in-vivo-confocal-fluorescence-imaging-neural-activity-induced-sensory

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Dieses Protokoll beschreibt Abbildung von einzelnen Neuronen oder Neuralleistenzellen in lebenden Zebrafisch-Embryonen. Diese Methode wird verwendet, um zelluläre Verhaltensweisen und Aktin-Lokalisierung mittels Fluoreszenz konfokalen Zeitraffer-Mikroskopie zu untersuchen.

Live-Imaging von Zellbewegung und Aktin-Zytoskelett von einzelnen Neuronen und Zellen der Neuralleiste in Zebrafisch-Embryos

Dieses Video demonstriert die Methode zur Untersuchung der visuellen Beuteerkennung in transgenen Zebrafischlarven unter Verwendung von Kalziumindikator-basierter Fluoreszenzbildgebung, wobei ihre Neuronen fluoreszierende Kalziumindikatorkomplexe exprimieren.

Analyse der beuteevozierten neuronalen Aktivität in einer transgenen Zebrafischlarve

Dieses Video zeigt die Aufzeichnung von elektrischen Signalen von den afferenten Neuronen in einer gelähmten Zebrafischlarve, indem eine Mikropipette in der Nähe des Ganglions der Seitenlinie positioniert und eine lose Dichtung für die Signalerfassung gebildet wird. Die extrazelluläre Lösung erhält während dieses Prozesses die neuronale Lebensfähigkeit.

Überwachung der elektrischen Signale der afferenten Neuronen in einer immobilisierten Zebrafischlarve

Quelle: Schramm, P. et al. In vivo Bildgebung von voll aktivem Hirngewebe bei wachen Zebrafischlarven und Jungtieren durch Schädel- und Hautentfernung. J. Vis. Exp. (2021)Dieses Video zeigt die In-vivo-Bildgebung von Kleinhirnneuronen in transgenen Zebrafischlarven, die fluoreszierende Proteine in Purkinje-Neuronen exprimieren. Der Prozess beinhaltet die Betäubung der Larven, die Immobilisierung in Agarose und die vorsichtige Entfernung der pigmentierten Haut, um die Lichtdurchdringung und die...

In vivo Bildgebung des Gehirns von Zebrafischlarven zur Visualisierung von Kleinhirnneuronen

Die hier beschriebenen Protokolle ermöglichen die Untersuchung der elektrischen Eigenschaften erregbarer Zellen unter den meisten nicht-invasiven physiologischen Bedingungen, indem Zebrafischembryonen in einem in vivo-System zusammen mit einem auf Fluoreszenz-Resonanz-Energietransfer (FRET) basierenden genetisch kodierten Spannungsindikator (GEVI) verwendet werden, der selektiv in dem interessierenden Zelltyp exprimiert wird.

Biosensing Motor Neuron Membran Potenzial in Live Zebrafisch Embryos

Hier präsentieren wir ein Protokoll, um eine genetisch beschrifteten Subpopulation von Neuronen durch einen zwei-Photonen-Laser von Zebrafisch-Larven abtragen.

Ablation von neuronalen Einwohner mit einem zwei-Photonen-Laser und ihre Bewertung mit Kalzium Imaging und Verhaltensstörungen Aufnahme in Zebrafischlarven

Der Zebrabärbling ist ein Modell, das hat viele wertvolle Eigenschaften einschließlich optischen Klarheit, schnelle externe Entwicklung und von besonderer Bedeutung auf dem Gebiet der Gehör und Gleichgewicht befindet sich extern sensorischen Haarzellen. Dieser Artikel beschreibt wie transgene Zebrafisch Haarzelle Mechanosensation und präsynaptischen Funktion in toto assay genutzt werden.

In Vivo Calcium Imaging der Seitenlinie Haarzellen im Larvenstadium Zebrafisch

Hier stellen wir eine Methode vor, um das embryonale Gehirn des Zebrafischs in vivo bis hin zu Larven- und Juvenilenstadien abbilden zu können. Dieses mikroinvasive Verfahren, das von elektrophysiologischen Ansätzen adaptiert wurde, bietet Zugang zu zellulären und subzellulären Details reifer Neuronen und kann mit optogenetischen und neuropharmakologischen Studien zur Charakterisierung der Gehirnfunktion und der medikamentösen Intervention kombiniert werden.

In vivo Bildgebung von vollaktivem Hirngewebe bei wachen Zebrafischlarven und Jungtieren durch Schädel- und Hautentfernung

Hier wird ein Protokoll für die in vivo Ganzhirnbildgebung von Zebrafischlarven mittels dreidimensionaler Fluoreszenzmikroskopie vorgestellt. Das experimentelle Verfahren umfasst die Probenvorbereitung, die Bildaufnahme und die Visualisierung.

Im lebenden Organismus Ganzhirnbildgebung von Zebrafischlarven mittels dreidimensionaler Fluoreszenzmikroskopie

In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll zur Durchführung von Zwei-Photonen-Kalzium-Bildgebung im dorsalen Vorderhirn von erwachsenen Zebrafischen vor.

Zwei-Photonen-Kalzium-Bildgebung der Vorderhirnaktivität bei sich verhaltenden erwachsenen Zebrafischen

Die neuromuskuläre Verbindung der Zebrafischlarve ist ein attraktives Modell für die Untersuchung der synaptischen Physiologie. Es ist für viele experimentelle Techniken zugänglich, einschließlich Elektrophysiologie und optischer Bildgebung. Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Abbildung der synaptischen Übertragung mit einer pHluorin-basierten Sonde unter einem aufrechten Epifluoreszenzmikroskop.

Live-Bildgebung des synaptischen Vesikelrecyclings in der neuromuskulären Verbindung von sezierten Zebrafischlarven

Lernen Sie die konfokale Fluoreszenzbildgebung neuronaler Aktivität in transgenen Zebrafischlarven mit GCaMP-Indikatoren. Diese Methode ermöglicht die Echtzeit-Analyse von Calciumdynamiken im lebenden Organismus.

Im lebenden Organismus Konfokale Fluoreszenzbildgebung der durch sensorische Stimulation induzierten neuronalen Aktivität bei teilweise gefesselten Zebrafischlarven (Video) | JoVE Journal

Im lebenden Organismus Konfokale Fluoreszenzbildgebung der durch sensorische Stimulation induzierten neuronalen Aktivität bei teilweise gefesselten Zebrafischlarven

Weitere Videos entdecken