Name: Ein In-vitro-Blasenmodell für katheterassoziierte Harnwegsinfektionen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-06-24T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 57 s
Description: Lernen Sie ein In-vitro-Blasenmodell für katheterassoziierte Harnwegsinfektionen kennen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Biofilmen und die Evaluierung antimikrobieller Behandlungen.

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<table><tbody><tr><td>313 Schnelllader-Pumpenkopfverlängerung</td><td>Watson-Marlow</td><td>313</td><td>Schlauchpumpe - zusätzliche Pumpenkopfverlängerung&nbsp;</td></tr><tr><td>323S/D manuelle Steuerung Pumpe mit variabler Drehzahl</td><td>Watson-Marlow</td><td>323S/D</td><td>Schlauchpumpe</td></tr><tr><td>3L Bettsäcke, steril mit Hebelhähnen&nbsp;</td><td>Großer Bär Gesundheitswesen&nbsp;</td><td>GDW173</td><td></td></tr><tr><td>platingehärteter Silikonschlauch mit 3 mm Innendurchmesser</td><td>Fisher</td><td>10111801</td><td>Kleine AUM-Schläuche (verbinden Sie die Pumpenschläuche mit den Modellen)</td></tr><tr><td>platingehärtete Silikonschläuche mit 5 mm Innendurchmesser</td><td>Fisher</td><td>10539201</td><td>mittlere AUM-Schläuche (verbinden Sie die Pumpenschläuche mit dem AUM-Reservoir)</td></tr><tr><td>Ammoniumchlorid (NH4Cl)</td><td>Fisher</td><td>11473713</td><td></td></tr><tr><td>wasserfreies Natriumsulfat (Na2SO4)</td><td>Fisher</td><td>11498717</td><td></td></tr><tr><td>Azlon Konischer Verbinder&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>10712807</td><td>Wird verwendet, um verschiedene Längen von Schläuchen im AUM-Kreislauf zu verbinden</td></tr><tr><td>Bettsackaufhänger&nbsp;</td><td>Großer Bär Gesundheitswesen&nbsp;</td><td>10705P</td><td></td></tr><tr><td>Bochem Quetschhahn-Schlauchklemmen, 25 mm Durchmesser</td><td>Fisher</td><td>11805101</td><td></td></tr><tr><td>Calciumchlorid (CaCl2)</td><td>Fisher</td><td>10021681</td><td></td></tr><tr><td>Zitronensäure-Monohydrat&nbsp;</td><td>Merck</td><td>C1909-500G</td><td>Wird verwendet, um kristallinen Biofilm von Modellen nach dem Experimentieren zu entfernen&nbsp;</td></tr><tr><td>Fisherbrand&nbsp; Pipetten aus Glas mit Graduierung Klasse B Typ 1</td><td>Fisher</td><td>11992168</td><td>Wird verwendet, um In-vitro-Blasenmodelle über gebohrte Spundgelatine mit AUM zu versorgen</td></tr><tr><td></td><td>VWR</td><td>24360.233</td><td></td></tr><tr><td>Graphpad Prism 10</td><td>GraphPad</td><td>V10.0</td><td>Analysesoftware für die grafische Darstellung von In-vitro-Blasenmodellergebnissen und statistische Analysen.</td></tr><tr><td>Hanna HI 2211-02 pH-Tischmessgerät</td><td>Phillip Harris&nbsp;</td><td>PP00057414</td><td></td></tr><tr><td>In vitro Blase Modell&nbsp;</td><td>-</td><td>-</td><td>Maßgeschneiderte Ausrüstung, wie zuvor von Nzakizwanayo et al. (2019) beschrieben.</td></tr><tr><td>Instillagel 6 mL Gleitgel</td><td>mydoctorshop.co.uk</td><td>40-006</td><td>Gleitgele, die in Abschnitt 7.1. verwendet werden; andere Anbieter sind verfügbar.</td></tr><tr><td>Kartell Plastilab Ungleichmäßiger konischer Verbinder</td><td>Fisher&nbsp;</td><td>11914289</td><td>Zum Verbinden von Schläuchen mit unterschiedlichen Durchmessern</td></tr><tr><td>MacConkey-Agar ohne Salz (dehydriert)</td><td>Fisher</td><td>10472643</td><td>Zur Zählung einzelner Kolonien von schwärmenden Bakterien, z.B. Proteus mirabilis</td></tr>, <tr><td>Magnesiumchlorid-Hexahydrat (MgCl2.6H2O)</td><td>Fisher</td><td>10386743</td><td></td></tr><tr><td>Monokaliumphosphat (KH2PO4)</td><td>Fisher</td><td>10573181</td><td></td></tr><tr><td>Nalgene Y-förmiger Steckverbinder</td><td>Fisher</td><td>10186070</td><td>Wird verwendet, um mehrere AUM-Stromkreise von einem AUM-Reservoir aus zu betreiben (1-4 Modelle pro Tank)</td></tr><tr><td>Kaliumchlorid (KCl)</td><td>Fisher</td><td>10375810</td><td></td></tr><tr><td>Pyrex Aspiratorflasche mit Schliffglas-Seitensockel, Fassungsvermögen: 5000 mL</td><td>Fisher</td><td>11347884</td><td>AUM Reservoir</td></tr><tr><td>Gummistopfen mit Bohrung, Durchmesser außen: 37mm, rot, Durchmesser: 37mm</td><td>Fisher</td><td>11517612</td><td>Wird im AUM Reservoir und zur Versorgung von In-vitro-Modellen mit AUM</td></tr> <tr><td>verwendetGröße 14 Französischer Foley-Katheter aus 100 % Silikon mit steriler Spritze mit Wasser zum Aufblasen;</td><td>Großer Bär Gesundheitswesen&nbsp;</td><td>4833-0514</td><td></td></tr><tr><td>Natriumchlorid (NaCl)</td><td>Fisher</td><td>10735921</td><td></td></tr><tr><td>Natriumoxalat (Na2C2O4)</td><td>Fisher</td><td>10442211</td><td></td></tr><tr><td>Teknon Biocleanse Konzentrat Biozidreiniger 5L&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>12447580</td><td>Wird zur Sterilisation von Modellen nach Experimenten</td></tr> verwendet <tr><td>Trinatriumcitrat (Na3C6H5O7)</td><td>Fisher</td><td>11434993</td><td></td></tr><tr><td>Trypton-Sojabrühe</td><td>Fisher</td><td>10198002</td><td></td></tr><tr><td>Harnstoff (CH4N2O)</td><td>Fisher</td><td>10404185</td><td></td></tr><tr><td>Uro-Tainer M NaCl 0,9%</td><td>B.Braun</td><td>FB99833</td><td>Kochblasenspülbeutel, verwendet in Abschnitt 7.2.&nbsp;</td></tr><tr><td>Watson-Marlow Pumpsil 1,6 mm Innendurchmesser platingehärteter Silikonschlauch</td><td>Fisher</td><td>12406280</td><td>Dicker AUM-Kreislaufschlauch (für den Einsatz in perstaltischen Pumpen)</td></tr></tbody></table>

ein in-vitro-blasenmodell für katheterassoziierte harnwegsinfektionen

An In Vitro Bladder Model of Catheter-Associated Urinary Tract Infection

Der erfolgreiche Betrieb des in vitro Blasenmodells hängt von der Anwendung einer guten aseptischen Technik und einer sorgfältigen Beobachtung der Medientrübung während des gesamten Experiments ab (Abbildung 3). Vor der Inokulation war das sterile AUM blassgelb gefärbt und in der zentralen Kammer des In-vitro-Blasenmodells transparent (Abbildung 3A). Das AUM im Medienreservoir sollte während des gesamten Experiments klar bleiben, da auftretende Trübungsänderungen auf eine Ausfällung von Salzen aus der Lösung oder eine Kontamination des Mediums hinweisen können. Wenn das verwaltete Vermögen im Medienreservoir oder in den Schläuchen des Medienkreislaufs trüb wird oder eine drastische Farbveränderung aufweist, sollten die Replikate verworfen und wiederholt werden. Nach der Inokulation ist eine Zunahme der Trübung des AUM in der zentralen Kammer des in vitro Blasenmodells deutlich sichtbar (Abbildung 3B). Veränderungen der Trübung sind bei Urease-positiven Organismen wie P. mirabilis oft ausgeprägter, sollten aber auch nach der Inokulation bei Urease-negativen Organismen sichtbar sein. Nachdem der AUM-Fluss initiiert wurde, wird häufig eine Verringerung der AUM-Trübung beobachtet, da die planktonischen Zellen ausgewaschen werden, und deutet nicht auf einen Mangel an lebensfähigen Zellen im Modell hin. Die Beobachtung des Medienspiegels in der zentralen Kammer kann auch zur Bestimmung der Blockadezeit verwendet werden, wenn Urease-positive Organismen verwendet werden (Abbildung 3C). Während des Modellbetriebs sollten das Katheter-Augenloch und die Katheterspitze vollständig sichtbar sein, um eine ordnungsgemäße Entleerung in die Abfallbeutel anzuzeigen. Nach einer Verstopfung steigt der AUM-Spiegel in der zentralen Kammer über die Katheteraugenlöcher und die Katheterspitze, was darauf hinweist, dass das Experiment für alle Endpunktmessungen und den Abbruch bereit ist. Während des Experimentierens können Druckeffekte im Medienkreislauf des In-vitro-Blasenmodells dazu führen, dass die Modelle blockiert erscheinen. Wenn der Verdacht auf eine Verstopfung besteht, überprüfen Sie, ob der AUM-Kreislauf, der Katheter und der Abfallbeutelschlauch gespannt sind, bevor Sie den Test beenden, da mögliche Luftblasen oder Knicke in den Schläuchen "Luftschleusen" verursachen und das Entleeren des Katheters verhindern können.
Während in vitro Blasenmodellexperimenten kann die Planktonprobenahme wertvolle Einblicke in die Wachstumsdynamik innerhalb des Modells sowie in den Verlauf von CAUTI geben. Das Zellwachstum, der pH-Wert und die Biofilmbildung können während des gesamten Experiments überwacht werden, ohne dass Modelle beendet werden müssen (Abbildung 4). Bei Verwendung von Urease-positiven Organismen können die Berechnung der Blockadezeit als Maß für die Geschwindigkeit der Biofilmbildung verwendet und zum Vergleich der Eigenschaften verschiedener Bakterienstämme verwendet werden (Abbildung 4). Der Vergleich eines Wildtyp-Stammes von P. mirabilis und einer LPS-Mutante (mini-tn5-Insertion in waaC) zeigte eine Verlängerung der Zeit bis zur Blockade und damit eine reduzierte Biofilmbildung in der Mutante (Abbildung 4). Urease-negative Organismen blockieren in vitro Blasenmodelle in der Regel nicht, und es wird daher empfohlen, vor dem Experimentieren einen festgelegten Endpunkt zu bestimmen. In einigen Fällen können Urease-negative Organismen zu einer Katheterverstopfung führen. Zum Beispiel können Urease-negative Stämme von Klebsiella pneumoniae ausgedehnte, mukoide Biofilme produzieren, diese brauchen jedoch in der Regel viel länger als Urease-positive Biofilme, um die Drainage zu blockieren, so dass ein festgelegter Endpunkt immer noch empfohlen wird.
Die Messung des pH-Werts im Rahmen von Blasenmodellexperimenten kann auch Aufschluss über die Unterschiede zwischen den Stämmen sowie über den Fortschritt von CAUTI geben. Wenn Urease-negative Organismen verwendet werden, sollte der pH-Wert in der zentralen Kammer des In-vitro-Blasenmodells während des gesamten Experiments weitgehend stabil bleiben, obwohl geringe Schwankungen des pH-Werts zu erwarten sind, da sich die Populationsdynamik im Laufe des Experiments ändert. Die Inokulation von In-vitro-Modellen mit Urease-positiven Organismen führt zu einem signifikanten pH-Anstieg im Laufe der Zeit, wobei der höchste pH-Wert in der Regel zum Zeitpunkt der Verstopfung beobachtet wird, wo pH-Werte von bis zu ~8-9 beobachtet werden können (Abbildung 4B).
Die Zählung der planktonischen KBE/ml ist ein wichtiger Bestandteil der In-vitro-Blasenmodellierung, die es den Anwendern ermöglicht, zu beurteilen, ob die Inokulation erfolgreich war, und den Fortschritt der Experimente zu überwachen. Die Messung von KBE/ml am Ende des Experiments kann Unterschiede in der Blasenbesiedlung zwischen verschiedenen Bakterienstämmen aufzeigen. Beim Vergleich des mini-Tn 5-Mutantenstamms von P. mirabilis mit dem Wildtyp wurde eine signifikante Verringerung der KBE/ml zum Zeitpunkt der Blockade beobachtet (Abbildung 4C). Darüber hinaus kann die Zählung von KBE aus Biofilmen auf der Katheteroberfläche und die Quantifizierung der Biofilmbiomasse Aufschluss über die Fähigkeit verschiedener Krankheitserreger geben, die katheterisierten Harnwege zu besiedeln. Kristallviolett-Färbungen wurden verwendet, um Unterschiede in der Biofilmbildung zwischen einem Wildtyp-P. mirabilis-Stamm HI4320 und in Chlorhexidin passageierten Isolaten zu bestimmen (Abbildung 5). Messungen der optischen Dichte bei 595 nm zeigten, dass Isolate, die in Chlorhexidin passaget wurden, eine Verringerung der Biofilmbildung im Vergleich zu Wildtyp- und Kontrollen, die in Abwesenheit von Chlorhexidin passaget wurden, aufwiesen.
Da das Ziel des In-vitro-Blasenmodells darin besteht, die CAUTI-Nische genau zu replizieren, können Modelle auch verwendet werden, um die Wirkung von antimikrobiellen Therapeutika zu untersuchen, die auf die Behandlung von CAUTI in einem klinisch relevanten Umfeld abzielen. Für Urease-positive Organismen kann der Vergleich der Blockadezeiten von behandelten Modellen mit unbehandelten Modellen einen nützlichen Einblick in die Wirksamkeit der Behandlung geben. Die Behandlung von In-vitro-Blasenmodellen , die mit P. mirabilis mit einer 0,02%igen Chlorhexidin-Blasenspüllösung geimpft wurden, verlängerte die Zeit bis zur Verstopfung signifikant im Vergleich zu Modellen, die unbehandelt oder mit 0,9%iger Kochsalzlösung behandelt wurden (Abbildung 6A). Darüber hinaus kann das in vitro Blasenmodell verwendet werden, um die bakterizide Wirkung von antimikrobiellen Therapeutika zu untersuchen. Die Überwachung der Veränderungen der KBE/ml von planktonischen und Biofilm-assoziierten Zellen nach einer antimikrobiellen Behandlung kann Aufschluss darüber geben, ob die Behandlungen wirksam sind. Die Behandlung von In-vitro-Blasenmodellen , die mit P. mirabilis geimpft wurden, zeigte eine Reduktion der planktonischen KBE/ml um &gt;7 log unmittelbar nach der Behandlung im Vergleich zu unbehandelten und 0,9 % salzig gespülten Modellen, wenn sie gemäß den Anweisungen des Herstellers angewendet wurden (Abbildung 6B).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67966/67966fig01.jpg"> 
Abbildung 1: Schematische Darstellung der Hauptkomponenten des in vitro Blasenmodells. (A) Das Blasenmodell (geschlossenes Drainagesystem): (1) doppelwandige Glaskammer, die die Blase simuliert (2) Medieneinlass, AU wird über eine Peristaltikpumpe der inneren Kammer des Blasenmodells zugeführt (3) Wassereinlass wird über ein zirkulierendes Wasserbad zur äußeren Kammer (4) Wasserauslass (5) Foley-Katheter, eingeführt in die innere Kammer (6) Verbindungspunkt des Drainagelumens; Anschlusspunkt für Abfallbeutel/Spülbeutel (7) Drainagebeutel zum Auffangen des Urinabflusses. (B) Schematische Darstellung des Aufbaus des in vitro Blasenmodells und der Strömungsrichtung von Medien und Wasser durch das Modell. Künstlicher Urin wird in einem Medienreservoir (1) bei Raumtemperatur gelagert und dem Modell über eine Peristaltikpumpe (2) bei einer konstanten Flussrate von ~ 0,75 mL min-1 für die Dauer des Experiments zugeführt. Das Medium strömt in die zentrale Kammer des doppelwandigen Glasgefäßes, das die Blase (3) darstellt, und fließt über das Augenloch eines Foley-Katheters (4) in einen Drainagebeutel (5) ab, wodurch das steril geschlossene Drainagesystem vervollständigt wird. Das in vitro Blasenmodell wird über ein zirkulierendes Wasserbad (6), das durch die äußere Kammer des doppelwandigen Glasgefäßes strömt, auf einer konstanten Temperatur von 37 °C gehalten. Gestrichelte Linien stellen Silikonschläuche dar und Pfeile stellen die Strömungsrichtung dar. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67966/67966fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67966/67966fig02.jpg"> 
Abbildung 2: Durchtrennung von Harnkathetern zur Aufbereitung von Biofilm-assoziierten Zellen. Beispielpunkte auf einem Harnkatheter zur Dissektion für die nachgeschaltete Biofilmquantifizierung. (A) Die Katheter werden zuerst in der 8-cm-Region proximal der Spitze/der Augenlöcher (wo die meiste Biofilmbildung beobachtet wird) latitudinal geschnitten. 1 cm lange Abschnitte werden mit einem Skalpell entfernt, wobei der Bereich, in dem sich der entleerte Katheterballon befindet, aufgrund von Schwierigkeiten bei der Reproduzierbarkeit der Verarbeitung in der Regel vermieden wird (1-3). (B) Nachdem die Katheter zunächst in 1 cm große Stücke geschnitten wurden, wird ein weiterer Längsschnitt entlang des zentralen Lumens vorgenommen, um den vorhandenen Biofilm für eine weitere Biofilmquantifizierung freizulegen, d. h. die KBE/ml-Zählung der Kristallviolettfärbung. Gestrichelte Linien stellen Trennpunkte dar. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67966/67966fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67966/67966fig03.jpg"> 
Abbildung 3: Stadien eines in vitro Blasenmodellversuchs. Bilder der zentralen Kammer des In-vitro-Blasenmodells in verschiedenen Stadien des Experiments. (A) AUM in der zentralen Kammer des In-vitro-Blasenmodells vor der Inokulation. Das Medium in der zentralen Kammer ist vollständig transparent, was auf eine erfolgreiche Sterilisation hinweist, und die Katheterspitze und die Augenlöcher sind oberhalb der Medienlinie sichtbar, was darauf hinweist, dass der Katheter erfolgreich entleert wird. (B) Medien in der zentralen Kammer des In-vitro-Blasenmodells nach Inokulation mit P. mirabilis (4 h nach der Inokulation). Eine erfolgreiche Inokulation wird durch die erhöhte Trübungen des Mediums angezeigt. Die Sichtbarkeit der Katheterspitze und der Augenlöcher deutet darauf hin, dass das verwaltete Vermögen erfolgreich durch den Katheter abfließt und keine Verstopfung aufgetreten ist. (C) Ein Beispiel für ein in vitro blockiertes Blasenmodell. Die Inokulation mit P. mirabilis und die anschließende Biofilmbildung und Mineralisierung führten zu einer Verstopfung der Katheteraugen, was eine Drainage verhinderte und dazu führte, dass der Medienspiegel in der zentralen Kammer über die Katheterspitze anstieg. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67966/67966fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67966/67966fig04.jpg"> 
Abbildung 4: Endpunktmessungen für ein in vitro Blasenmodell, die bis zur Blockade durchgeführt wurden. Beispiele für Endpunktmessungen zum Zeitpunkt der Blockade aus einem in vitro Blasenmodell, das mit einem klinischen Stamm von P. mirabilis, RS47 (WT), und einem mutierten Stamm mit abgeschwächter Biofilmbildung, RS47-2 (Mutante), inokuliert wurde. (A) Blockadezeit (h) von WT und mutierten Stämmen von P. mirabilis. (B) pH-Wert von In-vitro-Blasenmodellen zum Zeitpunkt der Verstopfung. (C) KBE/ml von Planktonzellen in einer in vitro Blasenmodellkammer zum Zeitpunkt der Blockade. Alle Daten stellen den Mittelwert von fünf biologischen Replikaten dar. Fehlerbalken zeigen den Standardfehler des Mittelwerts (SEM) an. *p ≤ 0,05; **p ≤ 0,01. Diese Abbildung wurde von Clarke et al.46 modifiziert. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67966/67966fig04large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67966/67966fig05.jpg"> 
Abbildung 5: Biofilm-assoziierte Zellmessungen aus dem in vitro Blasenmodell. Quantifizierung der Biofilmbildung von P. mirabilis , Vergleich des Wildtyp-Stammes HI4320 mit angepassten Populationen, die mit oder ohne Chlorhexidin (CHD) durchgelassen wurden, mittels Kristallviolett-Färbung und Messung der optischen Dichte (OD) bei 595 nm. WT: P. mirabilis HI4320; 1, 3, 5: Durchgangskontrollen ohne KHK-Exposition; 2, 4, 6: HI4320 in 4 μg/ml CHD. Alle Daten stellen den Mittelwert von fünf biologischen Replikaten dar. Fehlerbalken zeigen SEM. *p ≤ 0,05; **p ≤ 0,01. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67966/67966fig05large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67966/67966fig06.jpg"> 
Abbildung 6: Messungen von in vitro Blasenmodellen nach antimikrobieller Behandlung. Planktonproben wurden aus einem In-vitro-Blasenmodell entnommen, das mit P. mirabilis geimpft wurde, nachdem es mit einer antimikrobiellen Lösung von 0,02 % Chlorhexidin (100 ml) oder einer 0,9 %igen Kochsalzlösung gespült worden war. (A) Blockadezeit von In-vitro-Blasenmodellen nach der Spülung. (B) Planktonische KBE/ml unmittelbar nach der Bewässerungsbehandlung. Alle Daten stellen den Mittelwert von fünf biologischen Replikaten dar. Fehlerbalken zeigen SEM. *p ≤ 0,05; **p ≤ 0,01; *p ≤ 0,0001. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67966/67966fig06large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>

Ein In-vitro-Blasenmodell für katheterassoziierte Harnwegsinfektionen

Catheter-associated urinary tract infections (CAUTIs) are among the most common healthcare-associated infections. Biofilm formation on urinary catheters ...

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

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Quelle: Conover, M. S. et al., J. Etablierung und Charakterisierung von Harnwegsinfektionen und CAUTI in einem Mausmodell. J. Vis. Exp. (2015)Dieses Video zeigt das Verfahren zur Montage und Implantation eines transurethralen Katheter in einer weiblichen Maus, gefolgt von einer bakteriellen Impfung zur Etablierung katheterassoziierter Harnwegsinfektion und zur Untersuchung biofilmvermittelter Wirts-Pathogen-Interaktionen.

Katheterassoziierte Harnwegsinfektion in einem Mausmodell

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Transurethrale Katheterisierung und bakterielle Inokulation zur Erstellung eines Harnwegsinfektionsmodells bei männlichen Mäusen

Etablierung eines Modells für Harnwegsinfektionen bei weiblichen Mäusen

Die Fähigkeit, Harnwegsinfektionen (HWI) zu modellieren, ist entscheidend, um die bakterielle Pathogenese verstehen und die Entwicklung neuartiger Therapeutika vorantreiben zu können. Das Ziel dieser Arbeit ist es, Mausmodelle für experimentelle Harnwegsinfektionen und katheterassoziierte Harnwegsinfektionen zu demonstrieren, die die beim Menschen beobachteten Ergebnisse rekapitulieren und vorhersagen.

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Das etablierte Modell der transurethrale Katheterisierung von Mäusen ermöglicht die Untersuchung von Erkrankungen der Blase, einschließlich urinausscheidende Fläche Infektion, aber kann nur bei Frauen durchgeführt werden. Ein neues Modell der männlichen transurethrale Instillation, das hier vorgestellte wird Forschung in einem Gebiet, geprägt von starken klinischen und epidemiologischen Unterschiede zwischen den Geschlechtern zu ermöglichen.

Urinausscheidende Fläche Infektion in eine kleine Tiermodell: transurethrale Katheterisierung von männlichen und weiblichen Mäusen

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Isolierung der einzelnen intrazelluläre bakterielle Gemeinschaften erzeugt aus einem Mausmodell der urinausscheidende Fläche Infektion nachgelagerten Einzeller Analysezwecken

Ein Mausmodell der uropathogenen transurethralen E. coli (UPEC) -Inokulation zur Etablierung latenter intrazellulärer Blasenreservoirs und einer anschließenden Blasenexposition gegenüber G. vaginalis zur Induktion einer rezidivierenden UPEC-Harnwegsinfektion ist nachgewiesen. Ebenfalls demonstriert werden die Aufzählung von Bakterien, die Urinzytologie und die In-situ-Blasenfixierung und -verarbeitung für die Rasterelektronenmikroskopie.

Rezidivierende Escherichia coli Harnwegsinfektion, ausgelöst durch Gardnerella vaginalis Blasenexposition bei Mäusen

Lernen Sie ein In-vitro-Blasenmodell für katheterassoziierte Harnwegsinfektionen kennen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Biofilmen und die Evaluierung antimikrobieller Behandlungen.

Ein In-vitro-Blasenmodell für katheterassoziierte Harnwegsinfektionen

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