Name: Eine einfache Doppelzentrifugationsröhrchenmethode zur Gewinnung von plättchenreichem Plasma aus Pferdeblut (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-08-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 10 s
Description: Lernen Sie eine kostengünstige Doppelzentrifugationsmethode zur Gewinnung von plättchenreichem Plasma aus Pferdeblut. Diese Technik ermöglicht die Behandlung muskuloskelettaler Erkrankungen in der Pferdepraxis.

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Diese Studie wurde in Übereinstimmung mit den internen Protokollen für die Vorbereitung und Anwendung von PRP bei Pferden am Veterinärkrankenhaus der Universidad de Caldas, Manizales, Kolumbien, durchgeführt. Für diese Studie war keine Genehmigung des Internal Animal Care Committee erforderlich, da die Daten von lahmen Pferden stammten, die in unserer Einrichtung klinisch behandelt wurden. Für die Entwicklung dieses Protokolls wurden Daten von sechs kolumbianischen kreolischen Pferden, drei Stuten und drei Wallachen mit einem Durchschnittsalter von 7,4 (± 2,6) Jahren verwendet. Die Besitzer der Pferde wurden über die Art der Studie informiert und unterschrieben eine Einverständniserklärung. Alle in die Studie eingeschlossenen Pferde waren klinisch gesund, mit Ausnahme des zu behandelnden Muskel-Skelett-Problems. Es wurden nur Tiere mit einer basalen Thrombozytenzahl von mehr als 100 × 103/ml Vollblut eingeschlossen. Es ist wichtig zu beachten, dass Pferde mit niedrigeren Thrombozytenkonzentrationen als thrombozytopenisch angesehen werden können14. Darüber hinaus wiesen diese Tiere ein normales Blutbild, klinische biochemische Parameter für Leber und Niere sowie Urinanalysewerte auf, die im normalen Bereich für die Pferdearten lagen.
1. Pferderestriktion und Hautdesinfektion
<ol>
	<li>Zur Sicherheit sowohl des Pferdes als auch des Tierarztes sollte das Pferd (Eqqus caballus) je nach Verhalten des Tieres sicher in einem klinischen Untersuchungsschacht oder mit einem Zaumzeug (Abbildung 1A) fixiert werden. Schneiden Sie als Nächstes eine 5 cm x 5 cm große Haarpartie mit einem Elektrorasierer im mittleren Drittel einer Seite des Halses über die Halsvene. HINWEIS: Einige Besitzer bevorzugen es, dass das Pferd nicht geschoren wird. Eine Studie zeigt, dass ein Haarschnitt an der Venenpunktionsstelle nicht notwendig ist, um eine bakterielle Kontamination von P-PRP21 zu verhindern. Daher liegt dieses Verfahren im Ermessen des Tierarztes.</li>
	<li>Führen Sie eine vorbereitende unsterile Hautaufbereitung über den abgeschnittenen Bereich der Halsvene für mindestens 10 cm mit unsteriler Gaze und Handschuhen für ca. 3 min durch. Tragen Sie mehrere Stücke in antiseptischem Schaum getränkte Gaze in einem kreisförmigen Muster auf (Abbildung 1B).</li>
	<li>Bereiten Sie die Venenpunktionsstelle aseptisch vor, indem Sie sowohl sterile Handschuhe als auch in Desinfektionsmittel getränkte Gaze verwenden. Schrubben Sie die Haut im Halsbereich in kreisenden Bewegungen für ca. 5 min. Reinigen Sie den Bereich mit steriler Gaze, die in 95%igem Ethylalkohol getränkt ist.</li>
</ol>
2. Aseptische Blutentnahme
<ol>
	<li>Legen Sie 16 4,5-ml-Natriumcitratröhrchen, die zuvor mit in 95%igem Ethylalkohol getränkter Gaze gereinigt wurden, in ein sauberes Plastikgestell. Imprägnieren Sie die Gummikappen der Vakuumröhren mit 95%igem Ethylalkohol, insbesondere in der Aussparung für die Nadelkupplung. HINWEIS: Im Allgemeinen sind acht 4,5-ml-Natriumcitrat-Röhrchen erforderlich, um 2,5 mL PRP zu erhalten. Die Anzahl der im Einzelfall verwendeten Schläuche hängt von den zu behandelnden Weichteilen oder dem spezifischen Gelenk ab.</li>
	<li>Führen Sie steril eine Schmetterlingsnadel in die desinfizierte Halsschlagader ein (Abbildung 2A) und befestigen Sie 4,5-ml-Natriumcitratröhrchen an der Halterung (Abbildung 2B). Schütteln Sie die Röhrchen vorsichtig und legen Sie sie in ein Plastikgestell. HINWEIS: Ein 4,5-ml-Natriumcitrat-Röhrchen wird für automatisierte Hämogramme und zur Vorbereitung von Plasma nach der Hard-Spin-Zentrifugation verwendet. Dieses Plasma wird dann als Negativkontrolle für Vergleiche der Wachstumsfaktor- und Zytokinanreicherung mit PRP verwendet.</li>
</ol>
3. Beschaffung von plättchenreichem Plasma
<ol>
	<li>Die 4,5 mL Natriumcitratröhrchen mit Vollblut werden in einem Winkel von 90° in einer Tischzentrifuge in einen viersitzigen Ausschwingrotor gegeben. Die Röhrchen bei 120 × g 5 min bei Raumtemperatur zentrifugieren. Positionieren Sie nach der Zentrifugation die 4,5-ml-Röhrchen mit Citratblut und zwei weitere 10-ml-Normalröhrchen in einem Gestell und platzieren Sie das Gestell auf der nicht dominanten Handseite des Bedieners in einer Laminar-Flow-Haube der Klasse II über einem sterilen, undurchlässigen Tuch. HINWEIS: Eine Studie legt nahe, dass eine Laminar-Flow-Haube der Klasse II nicht unbedingt erforderlich ist, um eine bakterielle Kontamination bei der PRP-Beschaffung zu verhindern21. Stattdessen kann PRP in einem Reinraum hergestellt werden, der frei von Luftströmungen und Staub ist. In diesem Szenario kann das Blutröhrchengestell auf einen Tisch gestellt werden, der mit einem sterilen, undurchlässigen Tuch bedeckt ist.</li>
	<li>Erste Zentrifugation: Mit einer Gesichtsmaske und sterilen Handschuhen eine sterile 10-ml-Luer-Spritze in Verbindung mit einer sterilen Nadel (21 G 5/8") an der dominanten Handseite in der Innenseite der Laminar-Flow-Haube platzieren. HINWEIS: Von diesem Moment an bleibt die dominante behandschuhte Hand immer steril, während die Gummikappen der Natriumcitratröhrchen mit der behandschuhten, nicht dominanten Hand entfernt werden sollten.</li>
	<li>Führen Sie die sterile Nadel in jedes zentrifugierte Citrat-Blutröhrchen 3 mm über dem Buffy Coat ein (Abbildung 3A) und saugen Sie vorsichtig 50 % der Plasmafraktion ab, um Flüssigkeitsturbulenzen und Blutaspiration zu vermeiden. Sobald 10 ml Plasma aus vier 4,5-ml-Röhrchen aspiriert sind, verteilen Sie es in sterilen 5-10 ml-Röhrchen (Abbildung 3B). HINWEIS: Entfernen Sie die Gummikappen dieser Schläuche mit der nicht dominanten Hand und legen Sie sie über eine sterile Stelle des Tuchs oder halten Sie sie, um eine bakterielle Kontamination zu vermeiden.</li>
	<li>Zweite Zentrifugation: Die Röhrchen wieder mit den Gummistopfen verschließen und im ausgeglichenen Zustand in einen vierfach ausschwingenden Rotor in einem Winkel von 90° in die Tischzentrifuge legen und diese Röhrchen bei 240 × g für 5 min bei Raumtemperatur drehen. HINWEIS: Die Wahl der relativen Zentrifugationskraft (RCF oder g) basiert auf einer bahnbrechenden Studie14 , in der diese Methode zur Gewinnung von PRP aus Pferdeblut erstmals beschrieben wurde. Darüber hinaus wurde diese Methode von anderen Autoren auf ihre Reproduzierbarkeit hin evaluiert22.</li>
	<li>Legen Sie die Röhrchen in ein Gestell und positionieren Sie sie auf der nicht dominanten Seite innerhalb der Laminar-Flow-Haube der Klasse II auf dem zuvor verlegten, sterilen, undurchlässigen Tuch.</li>
	<li>Verwenden Sie die nicht-dominante Hand, um die Gummikappen zu entfernen, und die sterile dominante Hand, um die ersten 75 % des Plasmas langsam mit einer 18 G und 90 mm starken Spinalnadel zu aspirieren, die an einer sterilen 10-ml-Luer-Spritze befestigt ist (Abbildung 3C). Entsorgen Sie diese Spritze oder bewahren Sie sie für andere experimentelle oder klinische Anwendungen auf, da sie plättchenarmes Plasma (PPP) enthält. Befestigen Sie anschließend die zuvor verwendete sterile Spinalnadel an einer sterilen 5- oder 10-ml-Luer-Spritze, um das restliche Plasma (25 %) aus dem sterilen 5-10-ml-Röhrchen abzusaugen. Diese Fraktion wird als P-PRP bezeichnet (Abbildung 3D). HINWEIS: Unter bestimmten klinischen und experimentellen Bedingungen wird ein Aliquot von 0,5-1 ml PRP für automatisierte Hämogramme verwendet, gefolgt von einer Wachstumsfaktor-Analyse (TGF-β1 und PDGF-BB) mittels enzymgebundenem Immunosorbent-Assay. Die Messung dieser Mediatoren kann 3 Stunden nach Aktivierung von P-PRP mit Calciumsalzen oder Thrombin23 oder nach Induktion einer Zellschädigung durch Temperaturänderung oder Zugabe von nichtionischen Detergenzien24 durchgeführt werden.</li>
	<li>Wickeln Sie die sterile Luer-Spritze, die PRP enthält, in ein kleines, undurchlässiges steriles Tuch mit einer daran befestigten sterilen Nadel oder Kappe ein, um eine bakterielle Kontamination des orthobiologischen Produkts zu verhindern (Abbildung 4A). HINWEIS: Die anatomische Struktur des zu behandelnden Pferdes sollte für die aseptische Injektion vorbereitet werden, wie in Abschnitt 1 dieses Protokolls beschrieben. Das Pferd sollte ausreichend zurückgehalten und sediert werden, um Beschwerden zu minimieren und die Sicherheit sowohl des Pferdes als auch des Tierarztes zu gewährleisten. Das PRP-Produkt sollte mit sterilen Handschuhen und Nadeln gehandhabt werden und kann je nach Präferenz des Arztes aktiviert werden oder nicht (Abbildung 4B).</li>
</ol>
4. Statistische Auswertung
<ol>
	<li>Sammeln Sie Daten zur Thrombozyten- und Leukozytenzahl in Vollblut und PRP. Werten Sie die Daten auf Normalität mit dem Kolmogorov-Smirnov-Test aus. Wenn die Daten normalverteilt sind (P &gt; 0,05), vergleichen und analysieren Sie die Zelldaten mit dem t-Test. Wenn die Daten zur Thrombozyten- und Leukozytenkonzentration nicht normalverteilt sind (P &lt; 0,05), vergleichen und analysieren Sie die Daten mit einem Wilcoxon-Test.</li>
	<li>Bestimmen Sie die Thrombozyten- und Leukozyteneffizienzkonzentration in P-PRP gemäß den folgenden Formeln25: Effizienz der Thrombozytenentnahme = <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/67985/67985eq01.jpg" style="margin: auto;"> × 100 Effizienz der Leukozytensammlung = <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/67985/67985eq02.jpg" style="margin: auto;"> × 100</li>
	<li>Erfassung von Daten zu TGF-β1 - und PDGF-BB-Konzentrationen in Plasma- (Negativkontrolle), PRP-Überständen (nach 3 h Aktivierung mit Calciumgluconat) und PRP-Lysaten, die durch Zugabe einer nichtionischen Detergenzlösung erhalten wurden.</li>
	<li>Verwenden Sie ein verallgemeinertes lineares gemischtes Modell, um die Wachstumsfaktorkonzentrationen zwischen Plasma, PRP-Überständen und PRP-Lysat zu vergleichen. Bei signifikanten statistischen Unterschieden wenden Sie einen Tukey-Post-hoc-Test an.</li>
	<li>Betrachten Sie p &lt; Werte von 0,05 für alle Tests als statistisch signifikant.</li>
</ol>

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<li>Castillo-Franz, C., López, C., Carmona, J. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+catabolic+and+anabolic+gene+expression+effects+and+histology+changes+induced+by+platelet-rich+gel+supernatants+in+equine+suspensory+ligament+explants+challenged+with+lipopolysaccharide%5BTitle%5D)+AND+%22MLTJ-Muscles+Ligaments+and+Tendons%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the catabolic and anabolic gene expression effects and histology changes induced by platelet-rich gel supernatants in equine suspensory ligament explants challenged with lipopolysaccharide.</a> MLTJ-Muscles Ligaments and Tendons. 11 (1), 1-14 (2021).</li>
<li>Argüelles, D., Carmona, J. U., Climent, F., Muñoz, E., Prades, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+platelet+concentrates+as+a+treatment+for+musculoskeletal+lesions+in+five+horses%5BTitle%5D)+AND+%22Vet+Rec%22%5BJournal%5D)">Autologous platelet concentrates as a treatment for musculoskeletal lesions in five horses.</a> Vet Rec. 162 (7), 208-211 (2008).</li>
<li>Carmona, J. U., Argüelles, D., Climent, F., Prades, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+platelet+concentrates+as+a+treatment+of+horses+with+osteoarthritis%3A+a+preliminary+pilot+clinical+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Equine+Vet+Sci%22%5BJournal%5D)">Autologous platelet concentrates as a treatment of horses with osteoarthritis: a preliminary pilot clinical study.</a> J Equine Vet Sci. 27 (4), 167-170 (2007).</li>
<li>Dejnek, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Content+of+blood+cell+components%2C+inflammatory+cytokines+and+growth+factors+in+autologous+platelet-rich+plasma+obtained+by+various+methods%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Orthop%22%5BJournal%5D)">Content of blood cell components, inflammatory cytokines and growth factors in autologous platelet-rich plasma obtained by various methods.</a> World J Orthop. 13 (6), 587-602 (2022).</li>
<li>Giraldo, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+the+breed%2C+sex+and+age+on+cellular+content+and+growth+factor+release+from+equine+pure-platelet+rich+plasma+and+pure-platelet+rich+gel%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Vet+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of the breed, sex and age on cellular content and growth factor release from equine pure-platelet rich plasma and pure-platelet rich gel.</a> BMC Vet Res. 9, 29(2013).</li>
<li>Zimmermann, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sample+preparation+technique+and+white+cell+content+influence+the+detectable+levels+of+growth+factors+in+platelet+concentrates%5BTitle%5D)+AND+%22Vox+Sang%22%5BJournal%5D)">Sample preparation technique and white cell content influence the detectable levels of growth factors in platelet concentrates.</a> Vox Sang. 85 (4), 283-289 (2003).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>10 mL einfache venöse Blutentnahmeröhrchen&nbsp;</td><td>BD Vacutainer, Franklin Lakes, NJ, Vereinigte Staaten von Amerika</td><td>Nr. 366430</td><td>Dies ist nur ein Beispiel, es können Röhren anderer Marken verwendet werden.</td></tr><tr><td>4,5 mL Natriumcitrat-Röhrchen (105 M/3,2%)&nbsp;</td><td>BD Vacutainer, Franklin Lakes, NJ, Vereinigte Staaten von Amerika</td><td>107451</td><td>Dies ist nur ein Beispiel, es können Röhren anderer Marken verwendet werden.</td></tr><tr><td>Tisch-Zentrifuge</td><td>Rotofix 32A, Hettich GmbH, Tuttlingen, Deutschland</td><td></td><td>Es können auch andere Tischzentrifugen verwendet werden.</td></tr><tr><td>Schmetterlingsnadel (21 G & mal 0,75 Zoll) mit 12 Zoll Schläuche und vormontierte Halterung&nbsp;</td><td>Safety-Lok Blutentnahme-Set, BD Vacutainer, Franklin Lakes, NJ, USA</td><td>Referenz 367296</td><td>Dies ist nur ein Beispiel, es können Schmetterlingsnadeln anderer Marken verwendet werden.</td></tr><tr><td>Chlorhexidin-Schaumlösung bei 2,3-4%&nbsp;</td><td></td><td></td><td>Die Marken- oder Handelsnamen dieser Produkte können von Land zu Land variieren.</td></tr><tr><td>Laminar-Flow-Haube der Klasse II</td><td>Thermo Fischer Scientific, Waltham, MA, USA</td><td></td><td>Andere Laminar-Flow-Hauben der Klasse II können verwendet werden</td></tr><tr><td>ELISA-Lesegerät</td><td>Thermo Fischer Scientific, Waltham, MA, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ethylalkohol bei 95%</td><td></td><td></td><td>Die Marken- oder Handelsnamen dieser Produkte können von Land zu Land variieren.</td></tr><tr><td>Humaner PDGF-BB DuoSet ELISA</td><td>Forschung & Forschung D Systems, Inc., McKinley Place, MN, USA</td><td>DY220</td><td></td></tr><tr><td>Humaner TGF-beta 1 DouSet ELISA</td><td>Forschung & Forschung D Systems, Inc., McKinley Place, MN, USA</td><td>DY240</td><td></td></tr><tr><td>Povidon-Jod-Schaumlösung bei 4-10%&nbsp;</td><td></td><td></td><td>Die Marken- oder Handelsnamen dieser Produkte können von Land zu Land variieren.</td></tr><tr><td>SPSS 25.0 Software</td><td>IBM Corp, SPSS, NY, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterile Luer-Spritzen mit verschiedenen Volumina&nbsp;</td><td>Discardit-Spritze, BD Vacutainer, Franklin Lakes, NJ, USA</td><td></td><td>Dies ist nur ein Beispiel, es können Spritzen anderer Marken verwendet werden.</td></tr><tr><td>Sterile Spinalnadel (18 G & mal 90 mm) &nbsp;</td><td>BD Quincke Spinell Needle, Franklin Lakes, NJ, USA</td><td></td><td>Dies ist nur ein Beispiel, es können Spinalnadeln anderer Marken verwendet werden.</td></tr></tbody></table>

eine einfache doppelzentrifugationsröhrchenmethode zur gewinnung von plättchenreichem plasma aus pferdeblut

A Simple Double Centrifugation Tube Method to Obtain Platelet-rich Plasma from Equine Blood

Die mittlere Thrombozytenzahl (Thrombozyten × 103/μl) war bei PRP signifikant höher als bei Vollblut (p &lt; 0,001). Im Gegensatz dazu war die mittlere Leukozytenkonzentration (Leukozyten × 103/μl) im PRP signifikant niedriger als im Vollblut (p &lt; 0,001) (Tabelle 1). Insbesondere war die Thrombozytenzahl in PRP 2,41x höher als im Vollblut, während die Leukozytenkonzentration in PRP 0,44x niedriger war. Die Sammeleffizienz für PLT bei PRP betrug 17 %, während die Effizienz der Leu...

Eine einfache Doppelzentrifugationsröhrchenmethode zur Gewinnung von plättchenreichem Plasma aus Pferdeblut

Platelet-rich plasma (PRP) is widely utilized as a routine treatment for chronic musculoskeletal conditions in horses, such as osteoarthritis, ...

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Research

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Medicine

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Menschliche Thrombozyten-Lysat ist eine reiche Quelle von Wachstumsfaktoren und eine starke Ergänzung in der Zellkultur. Dieses Protokoll stellt den Prozess der Vorbereitung einen großen Pool an menschlichen Thrombozyten-Lysat ausgehend von platelet rich plasma, Durchführung mehrerer Gefrier-Auftau-Zyklen und zum Abbau der Thrombozyten-Fragmente.

Vorbereitung der gepoolten menschlichen Thrombozyten-Lysat (PHPL) als effiziente Ergänzung zum tierischen Serum-freien menschlichen Stammzell-Kulturen

Dieses Video zeigt die Herstellung von hochwertigem plättchenreichem Plasma (PRP) durch Screening der Thrombozytenzahl, Entnahme und Zentrifugation von Blut und Isolierung von Blutplättchen. Dieses PRP wird in therapeutischen Anwendungen zur Geweberegeneration und -heilung eingesetzt.

Aufbereitung von plättchenreichem Plasma aus menschlichem peripherem Blut

Wir skizzieren eine Methodik für die Verarbeitung von Vollblut, um eine Vielzahl von Komponenten für die weitere Analyse zu erhalten. Wir haben ein optimiertes Protokoll optimiert, das eine schnelle gleichzeitige Verarbeitung von Vollblutproben mit hohem Durchsatz in einer nicht-klinischen Umgebung ermöglicht.

Schnelle Fraktionierung und Isolierung von Vollblutkomponenten in Proben aus einer Gemeinschaft basierende Einstellung Erhalten

Leucocyte-Platelet Rich Fibrin (L-PRF) stellt ein von der FDA zugelassenes Präparat für autologe Thrombozytenkonzentrate dar, das eine einzigartige Fibrinarchitektur, angereicherte Thrombozyten und reichlich Wachstumsfaktoren besitzt. In diesem Artikel stellen wir ein Protokoll für die chair-side-Generierung von L-PRF vor und bewerten seine mechanischen Eigenschaften, einschließlich uniaxialer Tests und Nahthaltefestigkeitstests.

Charakterisierung von Leukozyten-Thrombozyten-Rich-Fibrin, ein neuartiges Biomaterial

Wir beschreiben eine einfache Methode zur Isolierung von gewaschenen Thrombozyten aus menschlichem Blut, gefolgt von Agonisten induzierte Thrombozytenaggregation Messungen durch Turbidimetrie. Als Beispiel verwenden wir diese Methode zur Untersuchung der Aggregationsreaktion von menschlichen Blutplättchen an Kollagen nach einer Vorinkubation mit dem Pannexin1 Kanalinhibitor Brilliant Blue FCF.

Turbidimetrie Menschen Gewaschene Thrombozyten: Die Wirkung des Pannexin1-Inhibitor Brilliant Blue FCF auf Collagen-induzierte Aggregation

In diesem Artikel beschreiben wir eine Methode zur Bestimmung der endothelialen von Willebrand Faktor Release und das anschließende Plättchen erfassen unter Fluid Schubspannung in Reaktion auf entzündliche Reize mit einer in-Vitro -Fluss-Kammer-System.

Untersuchung von Willebrand Faktor Pathophysiologie mit einem Flow-Kammer-Modell des von Willebrand-Faktor-Thrombozyten String Bildung

Hier wurde in Anwesenheit eines Antikoagulanten Mausblut gesammelt. Die Blutplättchen wurden mit einer niedrigen Drehzahlenzentrifugation durch Iohexol-Gradientenmedium gereinigt. Die Blutplättchen wurden mit Thrombin aktiviert, um zu untersuchen, ob sie lebensfähig sind. Die Qualität der gereinigten Blutplättchen wurde durch Strömungszytometrie und Mikroskopie analysiert.

Reinigung von Plateletten aus dem Mausblut

Dieses Protokoll beschreibt die klinisch implementierbare Vorbereitung von hochwertigen PBMC- und Plasma-Bioproben am klinischen Studienort, die für die translationale Biomarkeranalyse verwendet werden können.

Herstellung von peripheren mononukleären Blutzellpellets und Plasma aus einer einzigen Blutentnahme an klinischen Studienstellen für die Biomarkeranalyse

Die Bildung von prokoagulanzien Blutplättchen wurde mit einem erhöhten Thromboserisiko korreliert. Hier wird ein präzises Protokoll zur Isolierung von gewaschenen Blutplättchen aus menschlichem Blut vorgestellt, das dazu bestimmt ist, die Exposition von Phosphatidylserin und Mikrovesikelfreisetzung zu quantifizieren, die charakteristische Merkmale von Prokoagulanzienthrombozyten sind.

Charakterisierung von Prokoagulanzien-Thrombozyten durch Messung der Phosphatidylserin-Exposition und der Mikrovesikelfreisetzung aus humanen gereinigten Blutplättchen

Der Thrombozytenstoffwechsel ist von Interesse, insbesondere da er sich auf die Rolle der Hyper- und Hypoaktivität von Blutplättchen bei Blutungen und thrombotischen Erkrankungen bezieht. Die Isolierung von Blutplättchen aus dem Plasma ist für einige metabolische Assays notwendig. Hier wird ein Verfahren zur Isolierung intrazellulärer Metaboliten aus gewaschenen Blutplättchen vorgestellt.

Vorbereitung von gewaschenen menschlichen Blutplättchen für quantitative Stoffwechselflussstudien

Lernen Sie eine kostengünstige Doppelzentrifugationsmethode zur Gewinnung von plättchenreichem Plasma aus Pferdeblut. Diese Technik ermöglicht die Behandlung muskuloskelettaler Erkrankungen in der Pferdepraxis.

Eine einfache Doppelzentrifugationsröhrchenmethode zur Gewinnung von plättchenreichem Plasma aus Pferdeblut

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