Name: Mausmodell der thorakalen Aortendissektion, induziert durch orale β-Aminopropionitril- und subkutane Angiotensin-II-Infusion (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-05-16T14:50:00.000+00:00
Duration: 5 min 31 s
Description: Lernen Sie die Induktion einer thorakalen Aortendissektion bei Mäusen durch orale β-Aminopropionitril- und subkutane Angiotensin-II-Infusion. Dieses Protokoll ermöglicht kontrollierte Studien zur Pathogenese und Therapieentwicklung.

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</ol>

<table><tbody><tr><td>3-Aminopropionitri-Fumarat-Salz</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Nr. A3134</td><td></td></tr><tr><td>Analytische Waage</td><td>Radwag</td><td>ALS 220.R2</td><td></td></tr><tr><td>Anästhesiegerät</td><td>Shanghai Renyi Biological Technology Co. Ltd.</td><td>MSS-3</td><td></td></tr><tr><td>Angiotensin II</td><td>MCE</td><td>HY-13948</td><td></td></tr><tr><td>C57BL/6J Männliche Mäuse</td><td>GemPharmatech GmbH</td><td>N000013</td><td></td></tr><tr><td>Chow-Diät</td><td>Sibeifu Beijing Biotechnologie Co., Ltd</td><td>Lichtschutzfaktor F02-002</td><td></td></tr><tr><td>Elektrothermischer Wassertank mit konstanter Temperatur</td><td>Yiheng Technische Co., Ltd.</td><td>DK-8D</td><td></td></tr><tr><td>EVG-Färbe-Kit</td><td>Solarbio GmbH</td><td>Nr. G1590</td><td></td></tr><tr><td>GraphPad Prisma</td><td>Grafikblock</td><td>Version 10.0.2</td><td></td></tr><tr><td>H& E Färbe-Set</td><td>Servicebiografie</td><td>Nr. G1076</td><td></td></tr><tr><td>Gefäßklemme</td><td>Shinva Medical Instrument Co. Ltd.</td><td>ZH240RN</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>RWD</td><td>Nr. R510-22-10</td><td></td></tr><tr><td>Mikroröhrchen</td><td>Axygen Scientific, Inc.</td><td>MCT-150-C</td><td></td></tr><tr><td>Nadelzange</td><td>Shinva Medical Instrument Co. Ltd.</td><td>ZM234R/RN/RB</td><td></td></tr><tr><td>Osmotische Pumpe</td><td>Alzet</td><td>1003D</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Servicebiografie</td><td>Nr. G1101</td><td></td></tr><tr><td>PBS, 1x</td><td>Servicebiografie</td><td>Nr. G4202</td><td></td></tr><tr><td>Salzhaltig</td><td>Servicebiografie</td><td>Nr. G4702</td><td></td></tr><tr><td>Skalpell</td><td>Shinva Medical Instrument Co. Ltd.</td><td>ZB084R/RN</td><td></td></tr><tr><td>Schere</td><td>Shinva Medical Instrument Co. Ltd.</td><td>ZC480RN/RB/RNj/RNh</td><td></td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Leica</td><td>EZ4</td><td></td></tr><tr><td>Naht</td><td>Jinhuan Medical Supplies Co. Ltd.</td><td>Nr. F604</td><td></td></tr><tr><td>Pinzette</td><td>Shinva Medical Instrument Co. Ltd.</td><td>ZO022RB</td><td></td></tr></tbody></table>

mausmodell der thorakalen aortendissektion, induziert durch orale β-aminopropionitril- und subkutane angiotensin-ii-infusion

Murine Model of Thoracic Aortic Dissection Induced by Oral &#946;-Aminopropionitrile and Subcutaneous Angiotensin II Infusion

Insgesamt wurden 70 männliche C57BL/6J-Mäuse im Alter von 3 Wochen in diese Studie eingeschlossen und nach dem Zufallsprinzip in vier Gruppen eingeteilt: Kontrolle (n = 10), BAPN (n = 20), BAPN + Kochsalzlösung (n = 20) und BAPN + Ang II (n = 20). In der BAPN-Gruppe entwickelten 11 von 20 Mäusen 28 Tage nach der BAPN-Verabreichung eine thorakale Aortendissektion (TAD), wobei 4 Mäuse an einer Aortenruptur starben. In der BAPN + Kochsalzlösung Gruppe entwickelten 12 von 20 Mäusen eine TAD, ...

Mausmodell der thorakalen Aortendissektion, induziert durch orale β-Aminopropionitril- und subkutane Angiotensin-II-Infusion

Thoracic aortic dissection (TAD) is a highly fatal cardiovascular disease that lacks efficient medical treatment. Replication of animal models of TAD ...

Diese Studie etabliert ein Mausmodell der thorakalen Aortendissektion (TAD) durch BAPN- und Angiotensin-II-Induktion und bietet ein detailliertes Verfahren, das ein wertvolles Werkzeug für die Erforschung der TAD-Pathogenese oder therapeutischer Ansätze bietet. Die BAPN-Angiotensin-II-Kombination bietet eine Methode zur Etablierung von murinen TAD-Modellen, die eine hohe TAD-Inzidenzrate erreichen und pathophysiologische Merkmale replizieren, die denen ähneln, die bei humanen TAD beobachtet werden. In Zukunft wird unser Forschungsteam klinische und Grundlagenforschung integrieren, um die kardiovaskuläre Pathogenese zu veranschaulichen, wobei die Entdeckung neuartiger therapeutischer Strategien durch mechanistische Erkenntnisse und translationale Innovation im Vordergrund steht.[Moderator] Wiegen Sie jede Maus und notieren Sie das maximale Körpergewicht, um die für das Experiment erforderliche Angiotensin-II-Masse zu berechnen. Verwenden Sie die Berechnungsvorlage, um die Angiotensin-II-Masse für jede Maus anhand des maximalen Körpergewichts zu bestimmen. Berechnen Sie dann die Gesamtmasse von Angiotensin II, die erforderlich ist, um 130 Mikroliter Angiotensin II-Lösung pro Maus herzustellen. Verwenden Sie die mitgelieferte Vorlage, um das für das Experiment benötigte Füllvolumen von Angiotensin-II-Lösung und Kochsalzlösung zu bestimmen. Wiegen Sie die berechnete Menge an Angiotensin II in einem sterilen Mikroröhrchen mit einer Analysenwaage. Geben Sie das berechnete Volumen normaler Kochsalzlösung in das Mikroröhrchen. Mit einem Wirbelmischer das Pulver gründlich auflösen, bis keine sichtbaren Partikel mehr übrig sind. Wiegen Sie jede osmotische Pumpe, einschließlich des Pumpenkörpers und des Strömungsmoderators, mit einer Analysenwaage. Befestigen Sie ein Füllröhrchen an einer frisch geöffneten sterilen 1-Milliliter-Spritze und aspirieren Sie vorsichtig die vorbereitete Angiotensin-II-Lösung. Halten Sie das Füllrohr nach oben und entfernen Sie alle Luftblasen aus der Spritze. Führen Sie das Ende des Füllrohrs vorsichtig in die obere Öffnung der Osmosepumpe ein, bis das Rohr nicht mehr eingeführt werden kann. Halten Sie die Pumpe aufrecht und drücken Sie langsam auf den Spritzenkolben, bis die Angiotensin-II-Lösung am Auslass erscheint. Halten Sie dann an und entfernen Sie das Füllrohr vorsichtig. Setzen Sie anschließend den Strömungsdämpfer vorsichtig und langsam in die Pumpenöffnung ein, bis kein Spalt mehr zwischen dem Moderator und der Oberseite der Pumpe übrig bleibt. Wiegen Sie die beladene Pumpe mit der Analysenwaage und notieren Sie den Wert. Legen Sie die gefüllten Pumpen vor der Implantation mindestens sechs Stunden lang mit dem Moderatorkopf nach oben bei 37 Grad Celsius in sterile Kochsalzlösung. Platzieren Sie die Maus in Bauchlage auf der Operationsfläche. Verwenden Sie ein Skalpell, um vorsichtig einen 1 Zentimeter langen Querschnitt in die Haut zu machen. Verwenden Sie eine gebogene Pinzette, um den Schneiderand zu greifen, und ein anderes Paar Pinzetten, um das Unterhautgewebe stumpf zu präparieren, um eine Tasche für die osmotische Pumpe zu schaffen. Führen Sie die gefüllte Pumpe so in die Tasche ein, dass der Kopf des Strömungsmoderators zum kaudalen Ende der Maus zeigt. Richten Sie die Schneideränder sauber aus und schließen Sie die Haut mit 6-0 nicht resorbierbaren Nähten. Diese Abbildung veranschaulicht die Inzidenz von Aortendissektion und -ruptur in allen Versuchsgruppen. Eine Aortendissektion trat bei 100 % der Mäuse in der BAPN-plus-Angiotensin-II-Gruppe auf, wobei 35 % eine Ruptur erlitten und damit die in der BAPN- oder BAPN-plus-Kochsalzlösung-Gruppe beobachtete Inzidenz von 55 % oder 60 % übertraf, während bei den Kontrollen keine Dissektion oder Ruptur auftrat. Die Morphologie der groben Aorta zeigte eine fortschreitende Deformation in den Gruppen BAPN, BAPN plus Kochsalzlösung und BAPN plus Angiotensin II im Vergleich zu den Aorten bei den Kontrollen. Die maximalen thorakalen Aortendurchmesser waren in allen BAPN-behandelten Gruppen im Vergleich zu den Kontrollen signifikant größer, wobei es keine signifikanten Unterschiede zwischen den behandelten Gruppen gab. Hämatoxylin- und Eosin-Färbungen zeigten bei den Kontrollen dünne, gleichmäßige Aortenwände, während alle BAPN-behandelten Gruppen eine Verdickung und entzündliche Infiltration aufwiesen. Die Elastin-Van-Gieson-Färbung zeigte intakte elastische Fasern bei den Kontrollen und eine fortschreitende Faserfragmentierung mit falscher Lumenbildung in allen BAPN-behandelten Gruppen.

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Forschung

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Medizin

Dieses Video zeigt, wie man abdominalen Aortenaneurysmen (AAA) in Mäusen über vorübergehende intraluminale Infusion von Schweine-Pankreas-Elastase in der infrarenalen Segment der abdominalen Aorta induzieren. Das Modell verfügt über die Fähigkeit zur umfassenden Einblick in die Pathobiologie von AAA durch die Entstehung zahlreicher transgenen und Knockout-Mäuse hinzu.

Erstellung von Murine Experimental Bauchaortenaneurysmen mit Elastase

Histologischen und biochemischen Modifikationen nach Aneurysma endograft Ausgrenzung sind noch unklar. Wir beschreiben ein neues Modell der endograft Implantation auf einem Maus-Aneurysma. Durch Thrombus Analyse mit und ohne persistant zirkulierenden Blutstrom Schnittstelle und neue endovaskuläre Biomaterialien Auswertung, wird dieses Modell zu einem besseren Verständnis endovaskuläre Aneurysma Ausschluss Pathobiologie.

Ein neues Mausmodell der endovaskuläre Aortenaneurysma Repair

Subkutane Implantation von osmotischen Pumpen bietet eine praktische Vorgehensweise für eine längere und konsistente Bereitstellung von Verbindungen. Dieser Ansatz wurde ausgiebig verwendet, um sowohl in Bauch- und Brust Aortenaneurysmen in Mäusen untersucht werden.

Subkutane Angiotensin-II-Infusion mit osmotischen Pumpen induziert Aortenaneurysmen bei Mäusen

die zellulären und molekularen Mechanismen der Reendothelialisierung nach einer arteriellen Verletzung Denudation zu verstehen, ist von größter Bedeutung, Thrombose und Restenose von Arterien zu verhindern. Hier beschreiben wir ein Protokoll für eine reproduzierbare arterielle denudation Verletzung der infraBauchAorta. Das Verfahren wurde entwickelt, um die zugrunde liegenden Mechanismen zu untersuchen, die endotheliale Regeneration unter Verwendung von Maus-Modellen regulieren.

Reproduzierbare Arterielle Denudation Verletzung von Infra Abdominal Aortic Spannen in einem Mausmodell

Restenose nach Herz-Kreislauf-Verfahren (Bypass-Chirurgie, Angioplastie oder Stenting) ist ein wichtiges Problem der Verringerung der Haltbarkeit dieser Verfahren. Eine ideale Therapie würde die Proliferation der glatten Muskelzelle (VSMC) hemmen und gleichzeitig die Regeneration des Endothels fördern. Wir beschreiben ein Modell zur gleichzeitigen Beurteilung der VSMC-Proliferation und Endothelfunktion in vivo.

Murine Aortic Crush Injury: Eine effiziente<em&gt; In vivo</em&gt; Modell der glatten Muskelzellproliferation und Endothelfunktion

Dieser Artikel beschreibt ein Mausmodell zur Untersuchung der Entwicklung der Myointimal Hyperplasie (MH) nach Verletzung der Aorta Ballon.

Ballon-basierte Verletzungen induzieren Myointimal Hyperplasie in der Bauchschlagader Maus

Dieser Artikel beschreibt eine detaillierte Methode mit einem röntgendichten bleihaltigen Silikon-Kautschuk zu das murine Gefäßsystem zur Quantifizierung der Aorta Durchmesser in einem Mausmodell der Aortenaneurysma und Dissektion durchspülen.

Quantitative Micro-CT-Analyse der Aortopathy in einem Mausmodell der β-Aminopropionitrile-induzierte Aortenaneurysma und Dissektion

Wir beschreiben ein chirurgisches Protokoll, um bei Mäusen konsequent robuste absteigende thorakale Aortenaneurysmen zu induzieren. Das Verfahren beinhaltet linke Thorakotomie, thorakale Aorta-Exposition und Platzierung eines Schwamms, der in schweinepankreasischer Elastase auf der Aortenwand getränkt ist.

Murine chirurgisches Modell der topischen Elastase induzierte absteigende Thorax Aortenaneurysm

Dieses neuartige Modell erzeugt robuste infrarote abdominale Aortenaneurysmen bei Schweinen mit einer Kombination aus Ballonangioplastie, Elastase/Kollagennase-Perfusion, topischer Elastase-Anwendung und oraler Verbindung--Aminopropionitril-Verabreichung, die die Kollagenvernetzung stört.

Porcine Modell des Infrarot abdominalen Aortenaneurysmus

Dieses Protokoll beschreibt die konsekutive Implantation einer osmotischen Pumpe zur Induktion eines Bauchaortenaneurysmas durch Angiotensin-II-Freisetzung bei Mäusen mit Apolipoprotein E (ApoE)-Mangel und eines vaskulären Zugangsports mit einem Jugularvenenkatheter zur wiederholten medikamentösen Behandlung. Die Überwachung der Aneurysmaentwicklung durch 3D-Ultraschall wird trotz dorsaler Implantate effektiv durchgeführt.

Medikamentöse Behandlung mittels zentralvenösem Katheter in einem Mausmodell des Angiotensin-II-induzierten Bauchaortenaneurysmas und Überwachung mittels 3D-Ultraschall

Dieses Protokoll beschreibt einen methodischen chirurgischen Ansatz zur Modellierung fortgeschrittener Bauchaortenaneurysmen bei Mäusen durch eine Kombination aus direkter Applikation von Elastase auf die infrarenale Aorta und Verabreichung von ß-Aminopropionitril über das Trinkwasser.

Fortgeschrittene Modellierung des abdominalen Aortenaneurysmas bei Mäusen durch Kombination von topischer Elastase und oralem ß-Aminopropionitril

Lernen Sie die Induktion einer thorakalen Aortendissektion bei Mäusen durch orale β-Aminopropionitril- und subkutane Angiotensin-II-Infusion. Dieses Protokoll ermöglicht kontrollierte Studien zur Pathogenese und Therapieentwicklung.

Mausmodell der thorakalen Aortendissektion, induziert durch orale β-Aminopropionitril- und subkutane Angiotensin-II-Infusion

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