17. Juni 2025
Hier stellen wir ein Protokoll für die Entnahme und Verarbeitung einer Bindehautbiopsie zur Identifizierung von Schleimhautpemphigoiden vor.
Wir versuchen, die Einführung der Bindehautbiopsie für die Diagnose von Schleimhautpemphigoiden zu erhöhen, bei denen es sich um eine chronische vernarbende Konjunktivitis handelt, die unbehandelt zur Erblindung führen kann. Die direkte Immunfluoreszenzfärbung der Bindehautbiopsie zur Ablagerung von Immunkomplexen in der Patientenmembran ist eine Diagnostik für MMP, wird aber in vielen Zentren auf der ganzen Welt nicht durchgeführt. Das vorliegende Methodenpapier beschreibt die Techniken der Entnahme, der Bindehautbiopsie und der Verwendung eines mit Kartuschen gefüllten Mediums mit optimaler Schnitttemperatur für den Probentransfer und die Blutaufbereitung, wodurch die Probenhandhabung reduziert wird.
Planen Sie zunächst eine Biopsie von beiden Augen des Patienten mit Verdacht auf Pemphigoid unter topischer oder örtlicher Betäubung unter Verwendung eines Operationsmikroskops. Holen Sie die Einverständniserklärung des Patienten ein und erklären Sie klar die möglichen Nebenwirkungen, einschließlich Blutungen, Narbenbildung und die mögliche Notwendigkeit, nach der Operation mit topischen Steroiden zu beginnen. Bereiten Sie vor der Entnahme einer Biopsie die Kartuschen vor, indem Sie sie mit normaler Kochsalzlösung reinigen und mit optimaler Schnitttemperatur oder OCT-Medium separat für jedes Auge füllen.
Platzieren Sie nun ein Spekulum in das ausgewählte Auge, entweder rechts oder links. Wenn der Patient nach dem Auftragen von topischem Proparacain immer noch Schmerzen hat, injizieren Sie 0,2 Milliliter 2% Lidocain subkonjunktival mit einer 1 Milliliter Tuberkulinspritze. Nachdem Sie die Bindehaut mit einer Gliedmaßenzange von der Sklera abgehoben haben, führen Sie mit einer Westcott-Schere eine lineare Exzision von etwa 4 bis 5 Millimetern Länge und 2 bis 3 Millimetern Breite durch.
Übertragen Sie die gesamte Biopsie sofort in ein Medium mit optimaler Schnitttemperatur. Frieren Sie die eingebetteten Proben mit flüssigem Stickstoff oder Trockeneis ein. Anschließend lagern Sie sie über Nacht bei 80 Grad Celsius.
Schneiden Sie das gefrorene Gewebe mit einem Kryostaten, der bei 20 bis 25 Grad Celsius gehalten wird, in 4-6 Mikrometer dicke Scheiben. Montieren Sie die Schnitte auf positiv geladene polylysinbeschichtete Objektträger, um die Haftung zu gewährleisten. Wickeln Sie die Objektträger dann in Alufolie ein, bevor Sie sie bei 80 Grad Celsius lagern, bis sie fleckig werden.
Tauen Sie die Objektträger 10 Minuten bei Raumtemperatur auf. Fixieren Sie dann das Gewebe für weitere 10 Minuten in 100%igem Kaltaceton, um Antigene zu erhalten und Gewebeschäden zu minimieren. Spülen Sie nun die Objektträger dreimal mit OBS aus, jeweils fünf Minuten lang, um restliches OCT-Medium und Aceton zu entfernen.
Tragen Sie verdünnte konjugierte Antikörper, Anti-IgG, Anti-IgA, Anti-IgM und Anti-IgC3 auf die Objektträger auf. Die Antikörper für den negativen Kontrollobjektträger dürfen nicht angewendet werden. Inkubieren Sie nun die Objektträger in einer befeuchteten Kammer bei 37 Grad Celsius für 45-60 Minuten.
Waschen Sie dann die Objektträger dreimal für jeweils fünf Minuten mit PBS, um ungebundene Antikörper zu entfernen. Gegenfärbung mit einem Einbettmedium, das DAPI enthält, für die nukleare Visualisierung. Legen Sie zum Schluss einen Decklader über jeden Objektträger und lassen Sie ihn 20 Minuten lang aushärten.
Untersuchen Sie die Objektträger mit einem Fluoreszenzmikroskop, das mit den entsprechenden Filtern ausgestattet ist, einschließlich eines grünen Anregungsfilters bei 488 Nanometern für die Fluorophordetektion. Die Basalmembran wurde in Bindehautbiopsien mittels PAS-Färbung bestätigt und zeigte sich als durchgehende hellrosa Bande an der Basis des Epithels. Die direkte Immunfluoreszenz-Positivität wurde als hellgrüne Fluoreszenz entlang der Basalmembran visualisiert.
Direkte Immunfluoreszenz-positive Biopsien zeigten eine Fluoreszenz für die Immunglobuline IgM, IgA und IgG, während negative Biopsien keine Fluoreszenz aufwiesen. Die Positivkontrolle zeigte eine starke grüne Fluoreszenz an der Basalmembran.
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In diesem Artikel wird ein Protokoll zur Entnahme und Bearbeitung einer Bindehautbiopsie zur Diagnose der Schleimhaut-Pemphigoid (MMP), einer schweren Erkrankung, die unbehandelt zur Erblindung führen kann, vorgestellt.
Die direkte Immunfluoreszenz (DIF) einer Konjunktivabioptat ist ein entscheidendes diagnostisches Verfahren für die Schleimhaut-Pemphigoid (MMP), eine Erkrankung mit hohem ungedecktem Bedarf aufgrund des Risikos einer irreversiblen Erblindung. Standardisierte Biopsie- und DIF-Protokolle ermöglichen einen zuverlässigen Nachweis von Immunkomplexen und unterstützen so eine frühzeitige Intervention sowie eine Reduktion diagnostischer Unsicherheiten in ophthalmologischen und immunpathologischen Abläufen. Die Anwendung dieser Methoden erhöht die Vorhersagesicherheit im diagnostischen Wendepunkt und leitet damit nachfolgende therapeutische Strategien und die Priorisierung von Therapieansätzen ein.
Dieses Biopsie- und DIF-Protokoll integriert an der Schnittstelle zwischen Diagnose und Entdeckung und liefert Erkenntnisse sowohl für klinische als auch präklinische Forschungsabläufe.