Name: Entnahme von Nasenspülflüssigkeit an der Maus ohne Blutkontamination (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-07-11T15:10:00.000+00:00
Duration: 5 min 12 s
Description: Erfahren Sie eine Methode zur Entnahme von Nasenspülflüssigkeit an Mäusen ohne Blutkontamination. Dieses Protokoll ermöglicht präzise immunologische Analysen und verbessert die Erkennung respiratorischer Pathogene erheblich.

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<ol><li>Cortegano, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-dependent+nasal+immune+responses+in+non-hospitalized+bronchiolitis+children%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Immunol%22%5BJournal%5D)">Age-dependent nasal immune responses in non-hospitalized bronchiolitis children.</a> Front Immunol. 13, 1011607(2022).</li>
<li>Yao, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+pathogenic+effector+T-cell+activities+in+situ+by+PD-L1+expression+on+respiratory+inflammatory+dendritic+cells+during+respiratory+syncytial+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunol%22%5BJournal%5D)">Control of pathogenic effector T-cell activities in situ by PD-L1 expression on respiratory inflammatory dendritic cells during respiratory syncytial virus infection.</a> Mucosal Immunol. 8 (4), 746-759 (2015).</li>
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<li>Hull, J., Skinner, W., Robertson, C., Phelan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elemental+content+of+airway+surface+liquid+from+infants+with+cystic+fibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Elemental content of airway surface liquid from infants with cystic fibrosis.</a> Am J Respir Crit Care Med. 157 (1), 10-14 (1998).</li>
<li>Roponen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+mediators+in+nasal+lavage%2C+induced+sputum+and+serum+of+employees+with+rheumatic+and+respiratory+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Respir+J%22%5BJournal%5D)">Inflammatory mediators in nasal lavage, induced sputum and serum of employees with rheumatic and respiratory disorders.</a> Eur Respir J. 18 (3), 542-548 (2001).</li>
<li>Santos Galvão, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+mediators+in+nasal+lavage+among+school-age+children+from+urban+and+rural+areas+in+S%C3%A3o+Paulo%2C+Brazil%5BTitle%5D)+AND+%22S%C3%A3o+Paulo+Med+J%22%5BJournal%5D)">Inflammatory mediators in nasal lavage among school-age children from urban and rural areas in São Paulo, Brazil.</a> São Paulo Med J. 122 (5), 204(2004).</li>
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<li>Kieran, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+associations+between+viral+titer+measurements+and+disease+outcomes+in+ferrets+inoculated+with+125+contemporary+influenza+A+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Exploring associations between viral titer measurements and disease outcomes in ferrets inoculated with 125 contemporary influenza A viruses.</a> J Virol. 98 (2), e01661-e01723 (2024).</li>
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<li>Laumbach, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nasal+effects+of+a+mixture+of+volatile+organic+compounds+and+their+ozone+oxidation+products%5BTitle%5D)+AND+%22J+Occup+Environ+Med%22%5BJournal%5D)">Nasal effects of a mixture of volatile organic compounds and their ozone oxidation products.</a> J Occup Environ Med. 47 (11), 1182-1189 (2005).</li>
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<li>Cho, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+eosinophilic+nasal+inflammation+in+a+genetically-mutant+mouse%3A+Comparative+study+with+an+allergic+inflammation+model%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Spontaneous eosinophilic nasal inflammation in a genetically-mutant mouse: Comparative study with an allergic inflammation model.</a> PLoS One. 7 (4), e35114(2012).</li>
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<li>Lindahl, M., Ståhlbom, B., Svartz, J., Tagesson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+patterns+of+human+nasal+and+bronchoalveolar+lavage+fluids+analyzed+with+two-dimensional+gel+electrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Protein patterns of human nasal and bronchoalveolar lavage fluids analyzed with two-dimensional gel electrophoresis.</a> Electrophoresis. 19 (18), 3222-3229 (1998).</li>
<li>Lindahl, M., Ståhlbom, B., Tagesson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+new+potential+airway+irritation+marker%2C+palate+lung+nasal+epithelial+clone+protein%2C+in+human+nasal+lavage+fluid+with+two-dimensional+electrophoresis+and+matrix-assisted+laser+desorption%2Fionization-time+of+flight%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Identification of a new potential airway irritation marker, palate lung nasal epithelial clone protein, in human nasal lavage fluid with two-dimensional electrophoresis and matrix-assisted laser desorption/ionization-time of flight.</a> Electrophoresis. 22 (9), 1795-1800 (2001).</li>
<li>Schoenebeck, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+preparation+of+nasal+lavage+fluid+%28NLF%29+as+a+noninvasive+sample+for+proteomic+biomarker+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim+Biophys+Acta+Proteins+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Improved preparation of nasal lavage fluid (NLF) as a noninvasive sample for proteomic biomarker discovery.</a> Biochim Biophys Acta Proteins Proteomics. 1854 (7), 741-745 (2015).</li>
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<li>Olsson, T., Bergström, K., Thore, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+sensitive+method+for+determination+of+serum+hemoglobin+based+on+iso-luminol+chemiluminescence%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Chim+Acta%22%5BJournal%5D)">A sensitive method for determination of serum hemoglobin based on iso-luminol chemiluminescence.</a> Clin Chim Acta. 122 (2), 125-133 (1982).</li>
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<li>Oshiro, I., Takenaka, T., Maeda, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+method+for+hemoglobin+determination+by+using+sodium+lauryl+sulfate+%28SLS%29%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Biochem%22%5BJournal%5D)">New method for hemoglobin determination by using sodium lauryl sulfate (SLS).</a> Clin Biochem. 15 (2), 83-88 (1982).</li>
<li>Hamaguchi, Y., Oshiro, I., Maeda, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+study+on+reaction+mechanism+of+sodium+lauryl+sulfate-hemoglobin+%28SLS-Hb%29%2C+Part+1%5BTitle%5D)+AND+%22Rinsho+Byori%22%5BJournal%5D)">A study on reaction mechanism of sodium lauryl sulfate-hemoglobin (SLS-Hb), Part 1.</a> Rinsho Byori. 40 (6), 649-654 (1992).</li>
<li>McGee, D. W., McMurray, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+protein+malnutrition+on+the+IgA+immune+response+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Immunology%22%5BJournal%5D)">The effect of protein malnutrition on the IgA immune response in mice.</a> Immunology. 63 (1), 25(1988).</li>
<li>Castigli, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+IgA+class+switching+in+APRIL-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Impaired IgA class switching in APRIL-deficient mice.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (11), 3903-3908 (2004).</li>
<li>Matsuo, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CCL28-deficient+mice+have+reduced+IgA+antibody-secreting+cells+and+an+altered+microbiota+in+the+colon%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">CCL28-deficient mice have reduced IgA antibody-secreting cells and an altered microbiota in the colon.</a> J Immunol. 200 (2), 800-809 (2018).</li>
<li>McDonald, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aging+impacts+isolated+lymphoid+follicle+development+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Immun+Ageing%22%5BJournal%5D)">Aging impacts isolated lymphoid follicle development and function.</a> Immun Ageing. 8 (1), 1-12 (2011).</li>
<li>Abolins, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+comparative+immunology+of+wild+and+laboratory+mice%2C+Mus+musculus+domesticus%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">The comparative immunology of wild and laboratory mice, Mus musculus domesticus.</a> Nat Commun. 8 (1), 1-13 (2017).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Fixiernadel für Tiere</td><td>Natsume Seisakusho Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>KN-358-A</td><td>Wir haben eine Maus mit Fixiernadeln für Tiere fixiert. Edelstahl; Gesamtlänge, 23 mm; und Nadelspitze, 15 mm.</td></tr><tr><td>BD OptEIATM&nbsp; TMB Substrat-Reagenzien-Set</td><td>BD Biosciences, San Diego, CA, USA</td><td>555214</td><td>Wir haben 100 μm hinzugefügt. L TMB-Substratlösung pro Vertiefung.</td></tr><tr><td>Glocke</td><td>NA</td><td>NA Wir</td><td>haben eine Glocke für die Anästhesie verwendet.</td></tr><tr><td>Durchsichtige, unsterile 96-Well-Immuno-Platten mit flachem Boden&nbsp;</td><td>ThermoFisher Scientific, Rochester, NY, USA</td><td>442404</td><td>Wir haben durchsichtige, unsterile 96-Well-Platten mit flachem Boden und MaxiSorp-Oberflächenbehandlung für enzymgebundene Immunsorbent-Assays verwendet.</td></tr><tr><td>Wattebausch</td><td>Sansho Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>94-1951</td><td>Wir verwendeten Wattebällchen, um eine Blutkontamination zu vermeiden. Der Durchmesser der Wattebällchen betrug 7 mm.</td></tr><tr><td>Fötales Rinderserum</td><td>Sigma-Aldrich Co., St. Louis, MO, USA</td><td>172012-500 ML</td><td>Wir fügten dem Assay-Verdünnungsmittel 10 % fötales Rinderserum hinzu.</td></tr><tr><td>Pinzetten (Mikropinzette für Forschungsexperimente, gebogene Spitze)</td><td>Sansho Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>91-1506</td><td>Wir haben eine Pinzette zum Sezieren verwendet. Modell, HSC 551-10; und über die gesamte Länge, 105 mm.</td></tr><tr><td>Pinzette (Präzisionspinzette)</td><td>Sansho Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>91-2772</td><td>Wir haben eine Pinzette zum Dissektionieren verwendet. Modell, HSC 607-12; über alle Längen, 120 mm; und Spitzendurchmesser 0,3 mm.</td></tr><tr><td>Anti-Maus-IgA-UNLB für Ziegen</td><td>SouthernBiotech, Birmingham, AL, USA</td><td>1040-01</td><td>Wir haben durchsichtige, unsterile 96-Well-Platten mit flachem Boden und Immuno mit 100 μm beschichtet. L/Well (20 ng/Well) Gesamtimmunglobulin A.</td></tr><tr><td>Isofluran&nbsp;</td><td>Viatris Inc., Canonsburg, PA, USA</td><td>NA Wir</td><td>verwendeten Isofluran für die Anästhesie.</td></tr><tr><td>Luminol Reagenzienset</td><td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation, Osaka, Japan</td><td>124-06511</td><td>Wir haben ein Luminol-Reaktionsreagenzienset verwendet, um Hämoglobin in NLF-Proben nachzuweisen.</td></tr><tr><td>Mikroröhrchen</td><td>Watson Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>131-7155C</td><td>Wir verwenden Mikroröhrchen zum Sammeln von NLF und BALF (1,5-ml-Mikroröhrchen mit Lockining-Kappe, rundem Boden, Soft-Touch-Kappe).</td></tr><tr><td>Milli-Q Wasser</td><td>Merck KGaA, Darmstadt, Deutschland</td><td>Milli-Q Direct 8</td><td>Wir haben MilliQ Wasser verwendet, um eine Luminol-Rektionslösung herzustellen.</td></tr><tr><td>Mini-Shaker PSU-2T</td><td>Biosan Ltd., Riga, Lettland</td><td>PSU-2T</td><td>Wir haben 96-Well-Platten mit dem Mini-Shaler PSU-2T geschüttelt.</td></tr><tr><td>Mausstamm</td><td>CLEA Japan, Inc., Tokio, Japan</td><td>NA</td><td>Wir verwendeten 4 Monate alte männliche C57BL/6-Mäuse.</td></tr><tr><td>Nunc MicroWell 96-Well, Nunclon deltabehandelte Mikroplatte mit flachem Boden</td><td>Thermo Fisher Scientific Nunc A/S . Kamstrupvej, Roskilde, Dänemark</td><td>136101</td><td>Für den Luminol-Test haben wir die NuncTM MicroWellTM 96-Well, Nunclon Delta-behandelte Mikroplatte mit flachem Boden verwendet.</td></tr><tr><td>Peroxidase-konjugiertes AffiniPure F(ab')2 Fragment Ziege Anti-Maus IgG, F(ab')2 Fragmentspezifisch (minimale Kreuzreaktion mit Serumproteinen von Menschen, Rindern und Pferden)</td><td>Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc., West Grove, PA, USA</td><td>115-036-072</td><td>Wir haben 100 μm hinzugefügt L von Peroxidase-konjugiertem AffiniPure F(ab')2-Fragment Ziegen-Anti-Maus-IgG, F(ab')2 Fragment spezifisch, als Nachweisantikörper (10.000-fache Verdünnung) zu jeder Vertiefung.</td></tr><tr><td>Phosphatgepufferte Kochsalzlösung</td><td>Sigma-Aldrich Co., St. Louis, MO, USA</td><td>D8537-500ML</td><td>Wir haben die phosphatgepufferte Kochsalzlösung von Dulbecco (modifiziert ohne Calciumchlorid und Magnesiumchlorid, flüssig, sterilfiltriert, geeignet für die Zellkultur) für die NLF- und BALF-Entnahme verwendet.</td></tr><tr><td>Pipette&nbsp;</td><td>Watson Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>NA</td><td>Wir haben eine 200-&mu; L-Pipette für die Nasenspülung.</td></tr><tr><td>Pipettenspitze</td><td>Watson Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>NA</td><td>Wir haben einen 200-μ; L Multifit-Pipettenspitze für die Nasenspülung.</td></tr><tr><td>Polyoxyethylen(20)-Sorbitan-Monolaurat (Tween 20)</td><td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation, Osaka, Japan</td><td>167-11515</td><td>Wir fügten 0,05 % Tween 20 zum Waschpuffer und 0,2 % Tween 20 zum Assay-Verdünnungsmittel hinzu.</td></tr><tr><td>Gereinigter Ziegen-Anti-Maus-IgG-Antikörper (minimale x-Reaktivität)</td><td>BioLegend, San Diego, CA, USA</td><td>405301</td><td>Wir beschichteten durchsichtigen, unsterilen 96-Well-Immunoplatten mit flachem Boden mit 100 μ; L/Well (10 ng/Well) Gesamtimmunglobulin G.</td></tr><tr><td>Kleine Schere, doppelzackig</td><td>Sansho Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>91-7005</td><td>Wir haben eine Schere zum Disektionieren verwendet. Modell, S-4A; und über die gesamte Länge, 115 mm.</td></tr><tr><td>Schwefelsäure</td><td>Wako Pure Chemical Industries, Ltd, Tokio, Japan</td><td>192-04755</td><td>Wir haben 50 μm hinzugefügt. L von 2 N Schwefelsäure in jede Vertiefung, um die Reaktion zu stoppen.</td></tr><tr><td>Surflo intravenöser Katheter&nbsp;</td><td>Terumo Corporation, Tokio, Japan&nbsp;</td><td>SR-FS2032</td><td>Wir verwendeten einen intravenösen Surflo-Katheter und injizierten PBS in die Luftröhre für die bronchoalveoläre Lavage. Katheter, 20G; Katheterlänge, 32 mm; Innendurchmesser des Katheters, 0,80 mm; Außendurchmesser des Katheters, 1,1 mm; und inneres Nadel, 22G.</td></tr><tr><td>Chirurgische gerade Schere</td><td>Sansho Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>91-7004</td><td>Wir haben eine Schere zum Dissektionieren verwendet. Modell, S-3B; und über die gesamte Länge, 120 mm.</td></tr><tr><td>Surgilcal Platte</td><td>Natsume Seisakusho Co., Ltd., Tokio, Japan</td><td>KN-321-B</td><td>Zum Sezieren haben wir eine Korkplatte verwendet. Tiefe, 20 cm; Breite, 15 cm; und Höhe 3 cm.</td></tr><tr><td>Synergy H1 Hybrid Multi-Mode Mikroplatten-Reader&nbsp;</td><td>Agilent Technologies, Inc., Santa Clara, CA, USA</td><td>NA Wir</td><td>haben die Absorption von Proben bei 450 nm mit dem Synergy H1 Hybrid Multi-Mode Microplate Reader gemessen.</td></tr><tr><td>Spritze</td><td>Terumo Corporation, Tokio, Japan&nbsp;</td><td>SS-01T</td><td>Wir haben eine 1-ml-Spritze für die Blutentnahme aus dem Herzen verwendet.</td></tr><tr><td>Thema</td><td>&nbsp; Niccho Kogyo Co., Ltd. Tokyo Japan</td><td>NA</td><td>Wir haben einen Katheter mit Faden gebunden, um die richtige Positionierung während des Eingriffs zu gewährleisten.</td></tr></tbody></table>

entnahme von nasenspülflüssigkeit an der maus ohne blutkontamination

Murine Nasal Lavage Fluid Collection without Blood Contamination

Unter Verwendung der konventionellen oder neuartigen Methode wurden NLF-Proben von C57BL/6-Mäusen über den transpharyngealen Weg entnommen. Wie in Abbildung 1 gezeigt, waren die NLF-Proben, die mit der herkömmlichen Methode entnommen wurden, leicht rosafarben gefärbt (Abbildung 1A); die NLF-Proben, die mit der neuartigen Methode entnommen wurden, waren eindeutig (Abbildung 1B). Da die Differenz auf die Blutkontamination in den NLF-P...

Entnahme von Nasenspülflüssigkeit an der Maus ohne Blutkontamination

Upper airway samples, including nasal lavage fluid (NLF) and nasal swabs, are useful in detecting pathogens, including viruses and bacteria, which can ...

murine-nasal-lavage-fluid-collection-without-blood-contamination

Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Quelle: Venuprasad, K., et al. Intratracheale Verabreichung von Haemophilus influenzae in Mausmodellen zur Untersuchung von Atemwegsentzündungen. J. Vis. Exp. (2016)Dieses Video zeigt die Entnahme und Verarbeitung von bronchoalveolärer Lavage-Flüssigkeit aus einer euthanasierten Maus, die mit nicht typisierbaren Haemophilus influenzae infiziert war, für die nachgelagerte Analyse.

Entnahme von bronchoalveolärer Lavage-Flüssigkeit aus einem Mausmodell, das mit nicht typisierbarem Haemophilus influenzae infiziert war

Dieses Video zeigt die Verwendung der Durchflusszytometrie zur Identifizierung und Zählung verschiedener Immunzellen in bronchoalveolärer Lavage-Flüssigkeit. Zunächst werden einzelne Immunzellen mit einem Viabilitätsfarbstoff identifiziert, gefolgt von einer differentiellen Färbung von Oberflächenmarkerproteinen, die eine genaue Zählung der einzelnen Zelltypen ermöglicht.

Identifizierung und Zählung von Immunzellen in bronchoalveolärer Lavageflüssigkeit mittels Durchflusszytometrie

Die Kolonisation des murinen Nasopharynx mit Streptococcus pneumoniae und die anschließende Extraktion von anhaftenden oder rekrutierten Zellen wird beschrieben. Diese Technik beinhaltet das Spülen des Nasopharynx und die Sammlung der Flüssigkeit durch die Nares und ist anpassungsfähig für verschiedene Auslesungen, einschließlich Differentialzellquantifizierung und Analyse der mRNA-Expression in situ.

Charakterisierung von Entzündungsreaktionen während der intranasalen Kolonisation mit Streptococcus pneumoniae

Der Gesundheitszustand der Lunge spiegelt sich in der Art und Anzahl der Immunzellen, die in den Bronchiolen der Lunge vorhanden sind. Wir beschreiben eine bronchoalveoläre Lavagetechnik, die die Isolierung und Untersuchung von nichtadhärenten Zellen und löslichen Faktoren aus dem unteren Atemtrakt der Mäuse ermöglicht.

Bronchoalveoläre Lavage von murinen Lungen zur Analyse der entzündlichen Zellinfiltration

Dieses Protokoll beschreibt eine nicht-invasive Technik für die Entnahme von ungestörten Schleimhaut Flüssigkeit aus den oberen Atemwegen. Es kann verwendet werden, die Quantifizierung der in Vivo -Level von Protein Mediatoren wie Zytokine und Chemokine, bei Patienten aller Altersgruppen durchführen.

Nicht-invasive Probenahme von Schleimhaut-Flüssigkeit für die Quantifizierung von In Vivo oberen Atemwegen immun-Mediator-Level

Dieses Manuskript beschreibt die Verwendung von nasalen und bronchialen Absorption Techniken, speziell mit synthetischen absorptive Matrizen (SAM), um die Schleimhaut Flüssigkeit (MLF) der oberen und unteren Atemwege zu probieren. Diese Methoden bieten bessere Standardisierung und Verträglichkeit als bestehende Atemwege Sampling-Techniken.

Aufnahme von nasalen und bronchialen Flüssigkeiten: Precision Sampling der menschlichen Atemwege Schleimhaut und Labor Verarbeitung von Proben

Dieses Protokoll beschreibt eine verbesserte Technik für die reichhaltige Sammlung von zerebrospinale Flüssigkeit (CSF) ohne Kontamination aus Blut. Mit größeren Musterkollektion und Reinheit können weitere Analysen mit CSF, um unser Verständnis von Krankheiten zu fördern, die das Gehirn und das Rückenmark betreffen durchgeführt werden.

Ein verbessertes Verfahren zur Sammlung von Liquor cerebrospinalis aus narkotisierten Mäuse

Diese Mitteilung beschreibt Methoden zur Isolierung und Kultur der alveolären Makrophagen aus Menschen und murinen Modellen zu Versuchszwecken.

Isolation und In-vitro- Kultur von murinen und menschlichen alveoläre Makrophagen

Die salzhaltige Nasenspülung kann verwendet werden, um die Mikroumgebung des nasalen Immunsystems des Hundes zu beproben. Da der Ansatz relativ nicht-invasiv ist und das Nasengewebe nicht stört, kann er seriell durchgeführt werden. Zellen und Proteine, die aus der Nasenspültechnik gewonnen werden, können für verschiedene Laboranalysen aufbereitet werden.

Kochsalzspülung zur Probenahme der nasalen Immunmikroumgebung des Hundes

Hier stellen wir ein Protokoll für eine optimierte Blutentnahmetechnik bei murinen Probanden durch Venenpunktion im Gesicht mit einer Lanzette vor. Wir verwenden diese Technik zusammen mit der durchflusszytometrischen Beurteilung, um zelluläre Phänotypen von transgenen, kongenen und Reporterstämmen zu charakterisieren. Es eignet sich auch für die Serumzytokinanalyse und Diabetesstudien.

Venenpunktion im Gesicht zur Blutentnahme von Mäusen

Erfahren Sie eine Methode zur Entnahme von Nasenspülflüssigkeit an Mäusen ohne Blutkontamination. Dieses Protokoll ermöglicht präzise immunologische Analysen und verbessert die Erkennung respiratorischer Pathogene erheblich.

Entnahme von Nasenspülflüssigkeit an der Maus ohne Blutkontamination

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