1. August 2025
Dieser Artikel bietet ein optimiertes Protokoll für die Dissektion und Dissoziation von murinem Geruchsepithel zum Zwecke der Einzelkern-RNA-Sequenzierung.
Hier stellen wir ein Protokoll zur Verfügung, das die schnelle Dissektion des olfaktorischen Epithels zum Zwecke der Einzelzell- oder Einzelkernsequenzierung unterstützen soll. Unser Protokoll legt Wert auf Geschwindigkeit und Leichtigkeit des Lernens und ist ideal für Einzelzellanwendungen, bei denen das Gewebe homogenisiert wird und eine schnelle Dissektion im Gegensatz zu früheren Methoden wichtiger ist als die Erhaltung der anatomischen Integrität. Unser Protokoll ermöglicht eine schnelle und benutzerfreundliche Dissektion des Riechepithels, um Einzelzellsequenzierungsstudien zu erleichtern und die Erforschung der genetischen Grundlagen des Geruchssystems zu fördern.
Besorge dir zunächst den enthäuteten Kopf einer Maus. Verwenden Sie eine feine, scharfe Schere, um zwei Schnitte zu machen, um die Jochbögen beidseitig vom Plattenepithelknochen zu lösen, indem Sie eine Scherenspitze in die hintere Orbita und die andere neben den Gehörgang setzen. Machen Sie einen flachen Schnitt von Orbita zu Orbita entlang der vordersten Seite des Stirnbeins und schneiden Sie nur die dorsale Oberfläche des Stirnbeins bis zu einer Tiefe von etwa einem bis zwei Millimetern ein.
Schneiden Sie nun entlang der Mittellinie des Schädels vom Foramen magnum durch die sagittalen und interfrontalen Nähte bis zu dem zuvor vorgenommenen interorbitalen Schnitt. Führen Sie eine Pinzette in den Mittellinienschnitt ein und ziehen Sie eine Halbkugel des Schädelgewölbes seitlich fest. Während Sie das Nasenbein und die Schneidezähne festhalten, verwenden Sie eine Pinzette, um das kontralaterale Schädelgewölbe zu lösen.
Lassen Sie zu, dass das Gehirn, einschließlich der Riechkolben, mit der Knochenhälfte entfernt wird, während es weggerissen wird. Verwenden Sie anschließend eine Knochenzange oder einen Rongeurs, um das verbleibende Stirnbein und den Prämaxillarknochen bis zur Basis der Schneidezähne zu entfernen. Entlang der frontonasalen Naht mit einer Knochenzange schneiden, um das Nasenbein von der cribriformen Platte zu lösen.
Heben Sie dann mit einer Pinzette das Nasenbein von der cribriformen Platte ab, um das Riechepithel freizulegen. Wenn übrig gebliebener Prämaxillarknochen das dorsale Riechepithel verstopft, entfernen Sie ihn, bevor Sie fortfahren. Befestigen Sie nun mit einer Pinzette mit feiner Spitze vorsichtig den dorsalen Aspekt des Nasenseptums an seiner Verbindung mit der cribriformen Platte und ziehen Sie ihn nach hinten.
Das wichtigste olfaktorische Epithel bricht als völlig intakte Struktur aus. Die bildgebende Durchflusszytometrie ergab, dass 53,69 % aller Ereignisse Zellkerne waren. Von den Einzelkernen wiesen 53,89 % eine hohe Zirkularität auf.
Die Qualitätskontrollplots bestätigten eine konsistente Sequenzierungsqualität über vier Proben hinweg mit einheitlichen Verteilungen der Gen- und Mitochondrienzahl. Die Markergene des Datensatzes stimmen mit vielen der gut etablierten Markergene für jeden Zelltyp überein.
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In diesem Artikel wird ein Protokoll für die schnelle Dissektion und Dissociation des murinen Riechepithels beschrieben, das auf die Durchführung einer Einzelkern-RNA-Sequenzierung abzielt. Die Methode legt den Schwerpunkt auf Schnelligkeit und einfache Durchführung und eignet sich daher für Anwendungen, bei denen eine Gewebehomogenisierung erforderlich ist.
Schnelle und reproduzierbare Herstellung von Einzelkern-Suspensionen aus dem murinen Riechepithel ermöglicht eine hochauflösende molekulare Charakterisierung unterschiedlicher neuronaler und Vorläuferpopulationen. Dieses Protokoll behebt einen zentralen Engpass in der Einzelzell-Genomik, indem es die Gewebeentnahmedauer minimiert und die Integrität der Zellkerne erhält, was eine zuverlässige Zielvalidierung und mechanistische Ent风险bewertung in sensorischen Neurowissenschafts-Pipelines unterstützt. Die Methode steigert die Vorhersagesicherheit für frühe Entdeckungen und translationsorientierte Forschung, die auf der genetischen Grundlage von Riechfunktion und Regeneration basiert.
Dieses Protokoll verbindet den Bereich der frühen Entdeckung mit der Leitstrukturfeststellung und ermöglicht einen nahtlosen Übergang von der Gewebeextraktion zur Einzelkernsequenzierung und nachfolgenden Analysen.