ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Balakhanlou, E., Webster, J., Borgia, M., Resnik, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frequency+and+severity+of+phantom+limb+pain+in+veterans+with+major+upper+limb+amputation%3A+results+of+a+national+survey%5BTitle%5D)+AND+%22PM+R%22%5BJournal%5D)">Frequency and severity of phantom limb pain in veterans with major upper limb amputation: results of a national survey.</a> PM R. 13 (8), 827-835 (2021).</li>
<li>Resnik, L., Ekerholm, S., Borgia, M., Clark, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+national+study+of+veterans+with+major+upper+limb+amputation%3A+survey+methods%2C+participants%2C+and+summary+findings%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A national study of veterans with major upper limb amputation: survey methods, participants, and summary findings.</a> PLoS One. 14 (3), e0213578(2019).</li>
<li>Ephraim, P. L., Wegener, S. T., MacKenzie, E. J., Dillingham, T. R., Pezzin, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phantom+pain%2C+residual+limb+pain%2C+and+back+pain+in+amputees%3A+results+of+a+national+survey%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Phys+Med+Rehabil%22%5BJournal%5D)">Phantom pain, residual limb pain, and back pain in amputees: results of a national survey.</a> Arch Phys Med Rehabil. 86 (10), 1910-1919 (2005).</li>
<li>R, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prosthesis+satisfaction+in+a+national+sample+of+veterans+with+upper+limb+amputation%5BTitle%5D)+AND+%22Prosthet+Orthot+Int%22%5BJournal%5D)">Prosthesis satisfaction in a national sample of veterans with upper limb amputation.</a> Prosthet Orthot Int. 44 (2), 81-91 (2020).</li>
<li>Kuiken, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+for+real-time+myoelectric+control+of+multifunction+artificial+arms%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation for real-time myoelectric control of multifunction artificial arms.</a> JAMA. 301 (6), 619-628 (2009).</li>
<li>Valerio, I. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preemptive+treatment+of+phantom+and+residual+limb+pain+with+targeted+muscle+reinnervation+at+the+time+of+major+limb+amputation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Surg%22%5BJournal%5D)">Preemptive treatment of phantom and residual limb pain with targeted muscle reinnervation at the time of major limb amputation.</a> J Am Coll Surg. 228 (3), 217-226 (2019).</li>
<li>Chang, B., Mondshine, J., Attinger, C., Kleiber, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+improves+pain+and+ambulation+outcomes+in+highly+comorbid+amputees%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation improves pain and ambulation outcomes in highly comorbid amputees.</a> Plast Reconstr Surg. 148 (2), 376-386 (2021).</li>
<li>Dumanian, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+treats+neuroma+and+phantom+pain+in+major+limb+amputees%3A+a+randomized+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation treats neuroma and phantom pain in major limb amputees: a randomized clinical trial.</a> Ann Surg. 270 (2), 238-246 (2019).</li>
<li>Woo, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerative+peripheral+nerve+interfaces+for+the+treatment+of+postamputation+neuroma+pain%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg+Glob+Open%22%5BJournal%5D)">Regenerative peripheral nerve interfaces for the treatment of postamputation neuroma pain: a pilot study.</a> Plast Reconstr Surg Glob Open. 4 (12), e1038(2016).</li>
<li>Dehdashtian, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sexually+dimorphic+pattern+of+pain+mitigation+following+prophylactic+regenerative+peripheral+nerve+interface+%28RPNI%29+in+a+rat+neuroma+model%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Sexually dimorphic pattern of pain mitigation following prophylactic regenerative peripheral nerve interface (RPNI) in a rat neuroma model.</a> Neurosurgery. 93 (5), 1192-1201 (2023).</li>
<li>Senger, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+direct+comparison+of+targeted+muscle+reinnervation+and+regenerative+peripheral+nerve+interfaces+to+prevent+neuroma+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">A direct comparison of targeted muscle reinnervation and regenerative peripheral nerve interfaces to prevent neuroma pain.</a> Neurosurgery. 93 (5), 1180-1191 (2023).</li>
<li>Kuniak, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prophylactic+regenerative+peripheral+nerve+interfaces+to+prevent+postamputation+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Prophylactic regenerative peripheral nerve interfaces to prevent postamputation pain.</a> Plast Reconstr Surg. 144 (3), 421e-430e (2019).</li>
<li>Decosterd, I., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spared+nerve+injury%3A+an+animal+model+of+persistent+peripheral+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain.</a> Pain. 87 (2), 149-158 (2000).</li>
<li>Hu, P., McLachlan, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+reactions+of+cutaneous+and+muscle+afferent+neurons+to+peripheral+nerve+transection+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Selective reactions of cutaneous and muscle afferent neurons to peripheral nerve transection in rats.</a> J Neurosci. 23 (33), 10559-10567 (2003).</li>
<li>Welin, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+and+regeneration+of+cutaneous+and+muscular+afferent+neurons+after+peripheral+nerve+injury+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Survival and regeneration of cutaneous and muscular afferent neurons after peripheral nerve injury in adult rats.</a> Exp Brain Res. 186 (2), 315-323 (2008).</li>
<li>Jivan, S., Novikova, L. N., Wiberg, M., Novikov, L. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+delayed+nerve+repair+on+neuronal+survival+and+axonal+regeneration+after+seventh+cervical+spinal+nerve+axotomy+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">The effects of delayed nerve repair on neuronal survival and axonal regeneration after seventh cervical spinal nerve axotomy in adult rats.</a> Exp Brain Res. 170 (2), 245-254 (2006).</li>
<li>Garg, R., Uygur, S., Cwykiel, J., Siemionow, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+targeted+muscle+reinnervation+model+in+hind+limb+amputated+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Reconstr+Microsurg%22%5BJournal%5D)">Development of targeted muscle reinnervation model in hind limb amputated rats.</a> J Reconstr Microsurg. 34 (7), 509-513 (2018).</li>
<li>Lago, N., Navarro, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+long-term+regenerative+potential+in+an+experimental+nerve+amputee+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Peripher+Nerv+Syst%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the long-term regenerative potential in an experimental nerve amputee model.</a> J Peripher Nerv Syst. 12 (2), 108-120 (2007).</li>
<li>Hogan, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+pain+models%5BTitle%5D)+AND+%22Reg+Anesth+Pain+Med%22%5BJournal%5D)">Animal pain models.</a> Reg Anesth Pain Med. 27 (4), 385-401 (2002).</li>
<li>Sadler, K. E., Mogil, J. S., Stucky, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innovations+and+advances+in+modelling+and+measuring+pain+in+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Innovations and advances in modelling and measuring pain in animals.</a> Nat Rev Neurosci. 23 (2), 70-85 (2022).</li>
<li>Svientek, S. R., Ursu, D. C., Cederna, P. S., Kemp, S. W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+the+composite+regenerative+peripheral+nerve+interface+%28C-RPNI%29+in+the+adult+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Fabrication of the composite regenerative peripheral nerve interface (C-RPNI) in the adult rat.</a> J Vis Exp. (156), e60841(2020).</li>
<li>Zepeda, J. L., Mraz, G., Roth, E., Weihrauch, D., Hoben, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+hindlimb+amputation+model+shows+analgesia+and+sexually+dimorphic+cold+hypersensitivity+with+immediate+targeted+muscle+reinnervation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pain%22%5BJournal%5D)">Rat hindlimb amputation model shows analgesia and sexually dimorphic cold hypersensitivity with immediate targeted muscle reinnervation.</a> J Pain. 33, 105460(2025).</li>
<li>Roth, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+prevents+and+reverses+rat+pain+behaviors+after+nerve+transection%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation prevents and reverses rat pain behaviors after nerve transection.</a> Pain. 164 (2), 316-324 (2023).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>10-0 Nylon-Mikronaht (Arosurgical)</td><td>AROSurgical</td><td>T04A10N07-13</td><td>Feine Nerven-Koaptationsnaht. 10-0 Mikronaht. </td></tr><tr><td>4-0 Polyglykolsäure-Naht</td><td>Ethicon</td><td>AQ1268</td><td>Verschlussnaht für Muskel und Haut. Resorbierbare 4-0 Naht. </td></tr><tr><td>5-0 Seiden-Chirurginnaht</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Nervenligatur-Naht</td></tr><tr><td>Ausgewachsene Sprague-Dawley-Ratten</td><td>Charles River Laboratories</td><td>Generic</td><td>Experimentelles Tier</td></tr><tr><td>Alkohol-Desinfektionspads</td><td>Dukal Corporation</td><td>Generic</td><td>Hautantiseptikum</td></tr><tr><td>Betadine 10%</td><td>Avrio Health LP</td><td>Generic</td><td>Antiseptikum</td></tr><tr><td>Knochenschere</td><td>FST</td><td>16030</td><td>Knochenschneideinstrument</td></tr><tr><td>Kautergerät</td><td>FST</td><td>18010-00</td><td>Hämostasegerät</td></tr><tr><td>Wattestäbchen-Applikator (ProAdvantage)</td><td>ProAdvantage</td><td>Ref 76100</td><td>Gewebemanipulation</td></tr><tr><td>Gebogene Mikrodissektor-Schere</td><td>FST</td><td>15019-10</td><td>Feinschere für Neurolyse</td></tr><tr><td>Pinzette (feine Dumont)</td><td>FST</td><td>11254-20</td><td>Nervenhandhabungsinstrument</td></tr><tr><td>Pinzette (Sutura-Knoten-Dumont)</td><td>FST</td><td>11063-07</td><td>Nähhandhabungsinstrument</td></tr><tr><td>Gauze USP Typ VII (Cardinal Health)</td><td>Cardinal Health</td><td>Ref 2146</td><td>Erhaltung des sterilen Feldes</td></tr><tr><td>Wärmekissen (TC1000-Temperaturregler)</td><td>Generic</td><td>TC1000</td><td>Temperaturkontrollgerät</td></tr><tr><td>Induktionskammer (Braintree Scientific)</td><td>Braintree Scientific Inc.</td><td>Generic</td><td>Für die Anästhesieeinleitung</td></tr><tr><td>Isofluran (Isospire)</td><td>Phoenix</td><td>Generic</td><td>Anästhetikum</td></tr><tr><td>Meloxicam (Ostilox)</td><td>VetONE</td><td>5 mg/mL</td><td>Analgetikum</td></tr><tr><td>Lineal</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Messinstrument für anatomische Orientierungspunkte</td></tr><tr><td>Sterile Kochsalzlösung</td><td>Baxter</td><td>0,9 Natrium-Lot Y425131</td><td>Spüllösung</td></tr><tr><td>Chirurgisches Messer 15 </td><td>FST</td><td>10015-00</td><td>Hautschnittwerkzeug</td></tr><tr><td>Tuberkulinspritze</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Medikamentengabe</td></tr><tr><td>Verdampfer (Surgivet Modell 100)</td><td>Surgivet</td><td>Modell 100 S/N W2211123</td><td>Für die Anästhesieaufrechterhaltung</td></tr><tr><td>Vetbond Gewebekleber</td><td>World Precision Instruments</td><td>Generic</td><td>Hautkleber</td></tr></tbody></table>

modell der amputation unterhalb des kniens bei ratten und sofortige gezielte muskelwiedernervation

Rat Hindlimb Below-Knee Amputation Model and Immediate Targeted Muscle Reinnervation

Modell der Amputation unterhalb des Kniens bei Ratten und sofortige gezielte Muskelwiedernervation

Amputation-related pain reduces patient quality of life, contributes to opioid use, and can reduce functional rehabilitation and prosthesis use. ...

Eine Studie untersucht Schmerzen im Zusammenhang mit Nervenverletzungen und Amputationen sowie die Auswirkungen einer Umleitung von Nerven auf diese Schmerzen. Die Amputation erschwert herkömmliche Schmerzbeurteilungen. Dieses Protokoll verwendet modifizierte und alternative Tests, um Schmerzverhalten nach einer Amputation zu messen.Als Erstes eine acht bis zehn Wochen alte Sprague-Dawley-Ratte mit einem Gewicht von 250 bis 300 Gramm beschaffen. Die Heizplatte einschalten und ein steriles Operationsfeld vorbereiten. Alle sterilen Instrumente und Materialien, die für die Operation benötigt werden, bereitlegen.Nach der Anästhesie der Ratte mit Isofluran in einer Induktionsdosis von 4 % und einer Erhaltungsdosis von 1 bis 2 % rasieren Sie den Bereich vom unteren Rücken ausgehend entlang der gesamten Länge des Hinterbeins. Reinigen Sie die Operationsstelle mit Povidon-Jod-Lösung, gefolgt von Abwischen mit einem alkoholhaltigen Desinfektionstupfer. Wiederholen Sie diesen Vorgang noch zweimal.Verwenden Sie eine Tuberkulinspritze, um ein Milligramm pro Kilogramm Meloxicam subkutan zu injizieren. Markieren Sie mit einem Lineal die Gelenklinie des Knies. Führen Sie zwei zusätzliche Markierungen zwei Zentimeter und drei Zentimeter distal zum Knie durch.Verwenden Sie ein Skalpell, um eine zirkumferenzielle Hautinzision drei Zentimeter distal zum Knie durchzuführen. Führen Sie eine stumpfe und scharfe Präparation durch, um die Haut zirkumferenziell von den darunterliegenden Muskeln zu lösen, bis sie sich frei zurückzieht. Wiederholen Sie den Unterminierungsprozess durch die tieferen Muskelebenen, um bis zum Knochen zu präparieren, wobei die Gewebeebenen erhalten bleiben.Markieren Sie mit einem Stift Tibia und Fibula einen Zentimeter proximal zum zirkumferenziellen Schnitt. Durchtrennen Sie Tibia und Fibula an der markierten Stelle mit einer kleinen Knohenschere. Verwenden Sie eine Elektrokauterisierung, um die Blutung zu kontrollieren und eine Blutstillung zu erzielen.Untersuchen Sie das Knochenende und stumpfen oder beschneiden Sie scharfe Kanten nach Bedarf ab. Verwenden Sie einen resorbierbaren, geflochtenen 4-O-Nahtfaden, um die vorderen Ränder der Muskelkompartmente über der Tibia aneinander anzunähern, und befestigen Sie ihn mit vier bis sechs gleichmäßig verteilten Einzelknopfnähten. Richten Sie die vorderen und hinteren Muskelkompartmente am Knochen aus und nähen Sie sie zusammen, um ein Muskelkissen zu bilden.Schließen Sie die Haut lateral mit Einzelknopfnähten aus resorbierbarem 4-0-Material, während Sie vermeiden, dass Nähte auf dem belastbaren Stumpf platziert werden. Tragen Sie ein Hautklebemittel entlang der Inzisionslinie auf. Führen Sie einen 1,5 bis zwei Zentimeter langen longitudinalen, glutealen Spalt-Inzision durch, etwa fünf Millimeter posterior zur Femur.Verwenden Sie die stumpfe Dissektion, um die Glutealmuskulatur und die Hamstringmuskulatur zu trennen, und legen Sie den Nervus ischiadicus proximal zur seiner Trifurkation frei. Identifizieren Sie die proximalen motorischen Äste, einschließlich des großen Astes unterhalb des Musculus caudalis femoralis oder CFM und seiner Verzweigungen. Heben Sie den CFM mit einer Pinzette an und durchtrennen Sie ihn.Verwenden Sie feine mikrochirurgische Dumont-Forceps, um die Divisio des Musculus semimembranosus und des Musculus biceps femoris durch stumpfe Dissektion zu neuralisieren. Greifen Sie das Epineurium an und öffnen Sie es mit feinen gebogenen Feder-Scheren longitudinal. Trennen Sie anschließend die Nervenäste voneinander ab.Bewahren Sie den Caudofemoralis-Zweig auf und teilen Sie die übrigen Zweige nahe dem Ischiasstamm. Krümmen Sie die motorischen Zweige kaudal, um die Koaptation zu erleichtern. Verwenden Sie gebogene Feder-Scheren, um den Epineurium zu öffnen und ihn zu durchtrennen, um die trifurkative Versorgung des Ischiasnervs herzustellen.Verwenden Sie feine Pinzetten, um die Nervenäste vorsichtig zu trennen. Greifen Sie mit der Pinzette jeden der drei Äste – gemeinsamen Peronealnerv, Tibialnerv und Suralnerv – fünf bis zehn Millimeter distal zur Trifurkation. Unter Zugbelastung durchtrennen Sie jeden Nerv distal und entfernen ein Segment von fünf bis zehn Millimetern Länge.Verwenden Sie 10-0-Nylon-Nähte, um die Koaptationen durchzuführen, indem Sie zunächst den gemeinsamen perinealen Nerv mit dem Musculus semimembranosus verbinden. Verwenden Sie mindestens drei Knoten pro Naht. Achten Sie auf spannungsfreie Platzierung, vermeiden Sie übermäßiges Anziehen und Faltenbildung des Nervs und führen Sie die Koaptationen ohne scharfe Winkel durch.Verbinden Sie anschließend den Nervus tibialis mit dem großen Ast des Musculus biceps femoris und den Nervus suralis mit dem kleinen Ast des Musculus biceps femoris. Bei Amputation ohne Reinnervation des Zielmuskels werden nach Freilegung der Äste des Nervus ischiadicus der Nervus peronaeus communis, der Nervus tibialis und der Nervus suralis mit einer 5-0-Seidennaht und einer Pinzette ligatiert, wobei sichergestellt werden muss, dass die Ligatur die Nerven eindrückt und mit vier einfachen Knoten befestigt wird. Ziehen Sie vorsichtig jeden Nerv an dem Knoten proximal und durchtrennen Sie ihn ein bis zwei Millimeter distal zur Ligatur.Entfernen Sie 10 Millimeter des distalen Nervensegments und führen Sie anschließend die Amputation wie zuvor gezeigt durch. Nach dem Verschließen des Schnitts tragen Sie Hautkleber entlang der Schnittlinie auf. Überwachen Sie die Ratte sieben Tage lang täglich auf Wundintegrität, Anzeichen einer Infektion, Schmerzen oder Belastung und ergreifen Sie bei Bedarf Maßnahmen gemäß den IACUC-Richtlinien.Die durch den Von-Frey-Test gemessenen mechanischen Reizschwellen waren im Vergleich zum Ausgangswert signifikant vermindert und blieben über alle Zeitpunkte nach der Amputation hinweg erniedrigt. Beim Nadeltest zeigte sich im Vergleich zum Ausgangswert ein Trend zu verstärkten nozizeptiven Reaktionen im Zeitverlauf. Die Kälteüberempfindlichkeit des Stumpfes war ausgeprägt und blieb im Vergleich zum Ausgangswert über alle Zeitpunkte hinweg bestehen.Dieses Protokoll ermöglicht die Bewertung unterschiedlicher Strategien zum Nervenmanagement im Kontext einer Amputation. Die größte Herausforderung bei der Durchführung dieses Protokolls besteht darin, Nerven, die weniger als einen Millimeter breit sind, atraumatisch zu manipulieren. Künftige Studien können diese Arbeit erweitern, um Modelle zu verbessern und zuverlässigere Methoden zur Untersuchung von Phantomschmerzen zu entwickeln.

rat-hindlimb-below-knee-amputation-model-immediate-targeted-muscle

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Hier beschreiben wir die orthotopen Ratten-Hinterteil des Körpers Transplantation Verfahren, das an den Goldstandard zu sein...

Orthotopen Hind-Limb Transplantation in Ratten

Quelle: Brakkee, E. M., et al. Chirurgie und Verhaltenstests im Tibianeurom-Transpositionsmodell bei Ratten. J. Vis. Exp. (2023). Dieses Video zeigt ein Verfahren zur Generierung eines TNT-Modells (Tibianeurinom-Transposition) der Ratte. Nachdem der Nervus tibialis im Hinterbein einer anästhesierten Ratte freigelegt wurde, wird der Nerv durchtrennt. Legen Sie als Nächstes einen subkutanen Tunnel an, fädeln Sie den durchtrennten Nerv durch den Tunnel und nähen Sie ihn fest. In Ermangelung eines...

Generierung eines Rattenmodells der Tibianeurom-Transposition

Die tibiale Nervendurchtrennung Modell ist ein gut verträgliches, validiert und reproduzierbares Modell der Skelettmuskelatrophie. Das Modell chirurgische Protokoll beschrieben und in C57Black6 Mäusen nachgewiesen.

Tibialisnerv Durchtrennung - ein standardisiertes Modell für Denervation-induzierte Skelettmuskelatrophie in Mice

Dieses neuartige Modell für orthotoper hinteren Gliedmaßen Transplantation in der Maus, eine nicht-Naht Manschette Technik für supermikrovaskulären Anastomose Anwendung bietet ein leistungsstarkes Werkzeug für die in-vivo-mechanistisch zu vaskularisiert Verbund Allotransplantationen bezogene immunologische Forschung (VCA).

Orthotopische Hind Gliedmaßen Transplantation in der Maus

Dieses Protokoll stellt ein robustes, reproduzierbares Modell des vaskularisierten Kompositallotransplantats (VCA) dar, das auf die gleichzeitige Untersuchung der Immunologie und funktionellen Erholung ausgerichtet ist. Die In akribische Technik investierte Zeit in eine orthotopische Transplantation mit handgenähten Gefäßanastomosen und neuronaler Koaptation in eine orthotopische Transplantation mit dem rechten Mittelschenkel der Hinterbeine.

Der nächste Schritt: eine neuronale Koaptation Orthotopic Hind Limb Transplantation Modell, um die funktionelle Erholung in Derratzulande zu maximieren

Dieser Artikel stellt ein partielles heterotopes osteomyokutanes Lappentransplantationsprotokoll bei Ratten und seine möglichen Ergebnisse in der mittelfristigen Nachbeobachtung vor.

Partielles heterotopes Hinterbeinein Transplantationsmodell bei Ratten

Diese Arbeit präsentiert ein Protokoll zur Verbesserung der prothetischen Funktion nach einer selektiven Nerventransferoperation. Rehabilitationsmaßnahmen umfassen Patienteninformation und -auswahl, Unterstützung der Wundheilung, kortikale Reaktivierung von sensomotorischen Bereichen der oberen Extremität, Training der selektiven Muskelaktivierung, prothetische Handhabung im täglichen Leben und regelmäßige Nachuntersuchungen.

Therapieinterventionen für Amputierte der oberen Extremitäten, die sich einem selektiven Nerventransfer unterziehen

Dieses Manuskript bietet eine innovative Methode zur Entwicklung einer biologischen peripheren Nervenschnittstelle, die als Muscle Cuff Regenerative Peripheral Nerve Interface (MC-RPNI) bezeichnet wird.  Dieses chirurgische Konstrukt kann die motorischen efferenten Signale des zugehörigen peripheren Nervs verstärken, um eine genaue Erkennung der motorischen Absicht und die potenzielle Kontrolle von Exoskelettgeräten zu ermöglichen.

Die Muskelmanschette Regenerative periphere Nervenschnittstelle zur Verstärkung intakter peripherer Nervensignale

Das Protokoll beschreibt das chirurgische Vorgehen zur Behandlung von Schmerzen nach einer Amputation mittels gezielter Muskelreinnervation (TMR). Die TMR wird im Rahmen einer internationalen, randomisierten kontrollierten Studie mit zwei anderen chirurgischen Techniken verglichen, insbesondere der regenerativen peripheren Nervenschnittstelle (RPNI) und der Neurom-Exzision, gefolgt von einer sofortigen Vergrabung im Muskel.

Gezielte Muskelreinnervation: Chirurgisches Protokoll für eine randomisierte kontrollierte Studie bei Schmerzen nach Amputation

Dieses Protokoll stellt ein reproduzierbares Rattenmodell vor, das sensorische Nerven verwendet, um menschliche Neuromschmerzen nachzuahmen und chirurgische Behandlungen zu bewerten, und bietet ein wertvolles Werkzeug für die translationale Neuromforschung.

Neuartiges chirurgisches Nagetiermodell zur Untersuchung von Behandlungsmöglichkeiten für Neuromschmerzen mit gezielter Muskelreinnervation durch den Nervus saphenus

Medical College of Wisconsin.  Dieses Protokoll zeigt, wie man bei Ratten eine unterknienahe Amputation durchführen und gezielte Muskelrenervation (iTMR) sofort durchführen kann, um Strategien zur Behandlung und Vorbeugung von amputationsbedingten Schmerzen zu untersuchen und die mit der Amputation verbundenen Schmerzmechanismen besser zu verstehen.

Modell der Amputation unterhalb des Kniens bei Ratten und sofortige gezielte Muskelwiedernervation

Weitere Videos entdecken