24. Februar 2026
Dieser Artikel beschreibt intrathekale Verabreichungsmethoden für ZNS-gezielte Therapeutika bei erwachsenen Mäusen, mit Fokus auf Protokollpräzision und der Ermöglichung wiederholter Injektion. Sie enthält Ergebnisse einer Validierungsstudie, in der Antisense-Oligonukleotide die mutierte SOD1-Expression in SOD1-ALS-Modellmäusen reduzierten, was den Nutzen dieses Ansatzes in der präklinischen Forschung zu neurodegenerativen Erkrankungen unterstützt.
Diese Arbeit konzentriert sich auf freihändige lumbale intrathekale Injektionen, um Therapeutika direkt in die Rückenmarksflüssigkeit von Mäusen zu verabreichen. Diese minimalinvasive schnelle Technik bietet eine überlegene translationale Relevanz im Vergleich zu invasiveren Ansätzen wie intrazerebroventrikulären Injektionen. Zu Beginn wird unmittelbar nach der Anästheseinleitung ein Augenschmiermittel auf beide Augen der Maus aufgetragen, um eine Hornhauttrocknung zu verhindern.
Dann positioniert die Maus in ventraler Liegende auf dem Heizkissen, um Unterkühlung zu verhindern, physiologischen Stress zu minimieren und während des gesamten Eingriffs normale Herz-Kreislauf- und Atemfunktionen zu unterstützen. Injizieren Sie vor dem Eingriff 0,05 Milliliter Buprenorphin pro 20 Gramm Körpergewicht mit einer sterilen Spritze und einer 25-Gauge-Nadel. Nach dem Rasieren des Lendenraumbereichs von der mittleren Flanke bis zum Beckengürtel desinfizieren Sie den Bereich mit abwechselnden Abstupfern von Isopropylalkohol und Povidon-Jod.
Wiederholen Sie das dreimal und lassen Sie die Stelle vollständig an der Luft trocknen. Stabilisieren Sie den Beckengürtel, indem Sie den Beckengürtel sanft zwischen Daumen und Zeigefinger einer Hand greifen und mit der anderen Hand die dorsale Mittellinie abtasten, um den Zielraum zwischen L4 bis L5 oder L5 bis L6 zu lokalisieren. Richten Sie die antisense-oligonukleotidhaltige sterile 0,3-Milliliter-Insulinspritze aus, die mit einer 29-Zoll-Nadel mit einer 29-Zoll-Nadel senkrecht oder in einem Winkel von 70 bis 80 Grad zur dorsalen Hautoberfläche steht, mit dem Schädel kranial ausgerichtet. Schieben Sie die Nadel vor, bis beim Eindringen in die Dura Mater ein leichter Widerstand auftritt.
Dann gehe weiter in den intrathekalen Raum, um die Lösung zu injizieren. Beachten Sie den Schwanz-Flick-Reflex, der auf einen erfolgreichen intrathekalen Eintritt hinweist. Evans Blue Farbstoff, intrathekal injiziert für grundlegende Validierungsexperimente bei 20, 30 und 50 Mikrolitern Volumen, zeigte bei allen Mäusen eine konsistente dorsale bis ventrale Rückenmarksfärbung, wobei höhere Volumen eine intensivere rostro-kaudale Farbstoffsättigung erzielten.
Mäuse, die mit steriler Kochsalzlösung statt Evans Blue Farbstoff injiziert wurden, zeigten keine Rückenmarksfärbung oder Hintergrundverfärbung. Im Alter von 10 Wochen, entsprechend fünf Wochen nach der Behandlung, war die Amplitude des zusammengesetzten Muskelaktionspotenzials bei Mäusen, die mit SOD1 behandelt wurden, das Antisense-Oligonukleotid mittels intrathekaler oder intrathekaler Injektion zielte, signifikant höher, im Vergleich zu Mäusen, die mit inaktivem Antisense-Oligonukleotid behandelt wurden. Serumspiegel der phosphorylierten Neurofilament-Schwerkette waren sowohl bei intrathekalen als auch bei intrathekalen und intracerebroventrikulären SOD1-Antisense-Oligonukleotid-Mäusen im Vergleich zu inaktiven ASO-Kontrollpersonen signifikant reduziert.
Eine quantitative PCR-Analyse zeigte, dass die intrathekale Abgabe von SOD1, das auf Antisense-Oligonukleotid zielt, etwa 60 % des Knockdowns der humanen SOD1-mRNA im Rückenmarkgewebe erreichte, während die intrazerebrale ventrikuläre Abgabe etwa 35 % Knockdown erzielte. Beides unterscheidet sich deutlich von der inaktiven Kontrolle. Die größte prozedurale Herausforderung besteht darin, den anatomischen Eintrittspunkt genau zu bestimmen, um die lumbale Zisterne zu erreichen.
Zukünftige Studien könnten die zelltypspezifische Verteilung oder Effekte der injizierten Therapeutika zwischen intrathekaler Verabreichung und anderen intra-CSF-Methoden vergleichen.
Dieser Artikel stellt eine minimalinvasive, reproduzierbare Technik zur intrathekalen (IT) Applikation von Wirkstoffen bei erwachsenen Mäusen mittels einer manuellen Lumbalpunktion mit Nadel vor. Die Methode ermöglicht die direkte Verabreichung von Therapeutika in den Liquor cerebrospinalis (CSF) und bietet damit translative Relevanz sowie Verträglichkeit sowohl für Einzel- als auch für wiederholte Dosisregime. Die Methode wurde in einem transgenen Mausmodell der amyotrophen Lateralsklerose (ALS) anhand von Antisense-Oligonukleotiden (ASOs) getestet, die das SOD1-Gen targeten, und zeigte eine effektive Genunterdrückung sowie eine Besserung der Krankheitssymptome.
Die direkte lumbale intrathekale Injektion bei Mäusen ermöglicht eine präzise ZNS-Zielgerichtetheit für antisense-Oligonukleotid-(ASO-)Therapeutika und unterstützt so die vorhersagbare Wirksamkeit sowie die Übereinstimmung mit klinischen Protokollen am Menschen. Diese minimalinvasive, reproduzierbare Methode behebt einen kritischen Engpass bei der präklinischen ZNS-Wirkstoffabgabe und fördert eine robuste Zielstrukturenbindung sowie biomarkerbasierte Entscheidungsfindung. Ihre Anwendung stärkt die translationale Brücke von der frühen Entdeckung bis zur präklinischen Validierung für zns-gerichtete Wirkstoffportfolios.
Diese intrathekale Injektionsmethode ist in den Übergang von der Entdeckung zur präklinischen Forschung integriert und ermöglicht eine direkte ZNS-Applikation für die Zielvalidierung, die Optimierung von Wirkstoffkandidaten sowie translative Biomarker-Studien.