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<ol><li>Zhang, S., Sheng, H., Xu, B., Lao, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+external+iliac+artery+thrombosis+following+pelvic+fractures%3A+Two+case+reports%5BTitle%5D)+AND+%22Medicine+%28Baltimore%29%22%5BJournal%5D)">Acute external iliac artery thrombosis following pelvic fractures: Two case reports.</a> Medicine (Baltimore). 100 (6), e24710(2021).</li>
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<li>Zheng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+therapy+for+fracture+healing+by+increasing+lymphatic+drainage%5BTitle%5D)+AND+%22J+Orthop+Translat%22%5BJournal%5D)">A novel therapy for fracture healing by increasing lymphatic drainage.</a> J Orthop Translat. 45, 66-74 (2024).</li>
<li>Thomas, C., Le, J. T., Benson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Managing+lymphedema+in+fracture+care%3A+Current+concepts+and+treatment+principles%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Acad+Orthop+Surg%22%5BJournal%5D)">Managing lymphedema in fracture care: Current concepts and treatment principles.</a> J Am Acad Orthop Surg. 28 (18), 737-741 (2020).</li>
<li>Jiang, X., Nicolls, M. R., Tian, W., Rockson, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphatic+dysfunction%2C+leukotrienes%2C+and+lymphedema%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Physiol%22%5BJournal%5D)">Lymphatic dysfunction, leukotrienes, and lymphedema.</a> Annu Rev Physiol. 80, 49-70 (2018).</li>
<li>Biswas, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphatic+vessels+in+bone+support+regeneration+after+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Lymphatic vessels in bone support regeneration after injury.</a> Cell. 186 (2), 382-397.e24 (2023).</li>
<li>Dimitriou, R., Tsiridis, E., Giannoudis, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+concepts+of+molecular+aspects+of+bone+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Injury%22%5BJournal%5D)">Current concepts of molecular aspects of bone healing.</a> Injury. 36 (12), 1392-1404 (2005).</li>
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<li>Cheon, H., Kim, S. A., Kim, B., Jeon, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigation+of+optimizing+indocyanine+green+solution+for+in+vivo+lymphatic+research+using+near-infrared+fluorescence+indocyanine+green+lymphangiography%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Investigation of optimizing indocyanine green solution for in vivo lymphatic research using near-infrared fluorescence indocyanine green lymphangiography.</a> Sci Rep. 13 (1), 14966(2023).</li>
<li>Polomska, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimally+invasive+method+for+the+point-of-care+quantification+of+lymphatic+vessel+function%5BTitle%5D)+AND+%22JCI+Insight%22%5BJournal%5D)">Minimally invasive method for the point-of-care quantification of lymphatic vessel function.</a> JCI Insight. 4 (4), e126515(2019).</li>
<li>Wang, F., Weng, Y., Geng, J., Zhu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+narrative+review+of+indocyanine+green+near-infrared+fluorescence+imaging+technique%3A+A+new+application+in+thoracic+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Challenges+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">A narrative review of indocyanine green near-infrared fluorescence imaging technique: A new application in thoracic surgery.</a> Curr Challenges Thorac Surg. 3, 35-35 (2021).</li>
<li>Zheng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphatic+platelet+thrombosis+limits+bone+repair+by+precluding+lymphatic+transporting+damps%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Lymphatic platelet thrombosis limits bone repair by precluding lymphatic transporting damps.</a> Nat Commun. 16 (1), 829(2025).</li>
<li>Kim, K. M., Kim, K. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphangiogenesis+after+nonvascularized+lymph+node+transplantation%3A+Lymphangiographic+findings+in+mice+and+minipigs%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Lymphangiogenesis after nonvascularized lymph node transplantation: Lymphangiographic findings in mice and minipigs.</a> PLoS One. 18 (12), e0295836(2023).</li>
<li>Zhang, P. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+pulmonary+lymphatic+drainage+is+necessary+for+inflammation+resolution+in+ARDS%5BTitle%5D)+AND+%22JCI+Insight%22%5BJournal%5D)">Efficient pulmonary lymphatic drainage is necessary for inflammation resolution in ARDS.</a> JCI Insight. 9 (1), e173440(2024).</li>
<li>Kenney, H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Persistent+popliteal+lymphatic+muscle+cell+coverage+defects+despite+amelioration+of+arthritis+and+recovery+of+popliteal+lymphatic+vessel+function+in+TNF-TG+mice+following+anti-TNF+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Persistent popliteal lymphatic muscle cell coverage defects despite amelioration of arthritis and recovery of popliteal lymphatic vessel function in TNF-TG mice following anti-TNF therapy.</a> Sci Rep. 12 (1), 12751(2022).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>10 Microliter Microsyringe</td><td>Hamilton Company</td><td>80330/00</td><td>Die Hamilton 80330/00 Mikrospritze ist ein Präzisionsinstrument mit einem 10<img alt="Gleichung 1" src="/files/ftp_upload/70466/70466eq1.jpg" style="margin: auto;"/>L-Fassungsvermögen, ausgestattet mit einer 26s-Gauge-Nadel, 51 mm Länge und einer Spitze im Stil 2. Sie ist für die genaue Abgabe kleiner Volumina in Chromatographie-, Probenverabreichungs- und Analysenchemie-Anwendungen konzipiert.</td></tr><tr><td>3D-Ultraschall Vevo 3100-Bildgebungssystem</td><td></td><td>Vevo 2100</td><td>Der Vevo 2100 ist ein hochfrequentes Ultraschall-Bildgebungssystem für die präklinische Forschung, das eine Echtzeit-3D-Visualisierung kleiner Tiere ermöglicht. Es bietet überlegene Auflösung für kardiovaskuläre, onkologische und entwicklungsbiologische Studien, integriert mit Vevo LAB-Software für die Datenanalyse.</td></tr><tr><td>75% Ethanol</td><td>Shanghai Titan Scientific Co., Ltd.</td><td>G73537O</td><td>75% Ethanol ist eine Desinfektionslösung, die in Laboratorien häufig zur Oberflächensterilisation, Gerätereinigung und Antisepsis eingesetzt wird. Es tötet Bakterien, Viren und Pilze durch Proteindenaturierung wirksam ab und wird häufig in biologischen und klinischen Umgebungen angewendet.</td></tr><tr><td>Wattestäbchen</td><td>Hebei Kangji Medical Equipment Co., Ltd.</td><td>20250303</td><td>Wattestäbchen sind sterile, saugfähige Applikatoren, die für die präzise Probennahme, das Auftragen von Lösungen oder die Reinigung bei medizinischen, diagnostischen und Laborverfahren verwendet werden. Sie bestehen aus Holz- oder Kunststoffstäben mit Baumwollspitzen für eine hygienische Handhabung.</td></tr><tr><td>Kupplungsmittel</td><td>Tianjin Jinya Technology Development Co., Ltd.</td><td>20241029</td><td>Kupplungsmittel, allgemein bekannt als Ultraschallgel, ist ein wasserbasiertes Medium, das zur Verbesserung der akustischen Übertragung zwischen dem Ultraschallwandler und der Haut verwendet wird. Es beseitigt Lufteinschlüsse für klare Bildgebung, ist nicht reizend und wird in einem 250-ml-Behälter für medizinische und diagnostische Zwecke geliefert.</td></tr><tr><td>Graphpad Prism</td><td>GraphPad Software</td><td>Prism 10</td><td>Eine wissenschaftliche Grafik- und Statistikanalysesoftware, die für Datenanalyse, -visualisierung und -präsentation verwendet wird.</td></tr><tr><td>Image J</td><td>National Institutes of Health</td><td>ImageJ 1.54d</td><td>Ein Public-Domain Java-basiertes Bildverarbeitungs- und Analyseprogramm, das häufig für biologische und medizinische Bildanalyse verwendet wird.</td></tr><tr><td>Indocyaningrün</td><td>Dandong Yichuang Pharmaceutical Co., Ltd.</td><td>8305128</td><td>Indocyaningrün ist ein wasserlöslicher anionischer Farbstoff, der in der medizinischen Diagnostik zur Bestimmung des Herzminutenvolumens, der Leberfunktion, des Leberblutflusses und der Augenhintergrundspiegelung verwendet wird. Es wird in 25-mg-Fläschchen für die intravenöse Verabreichung geliefert und zeigt Fluoreszenz im nahen Infrarotspektrum für Bildgebungszwecke.</td></tr><tr><td>Isofluran&nbsp;</td><td>RWD&nbsp;</td><td>R650-IE</td><td>Isofluran ist ein inhalatives Vollnarkotikum. Es hat einen geringen Blut/Gas-Verteilungskoeffizienten. Bei der Anwendung zur Narkose von Tieren kann es eine glatte, schnelle und angenehme Narkose induzieren, mit einer schnellen Erholung, guter Muskelentspannung und ohne stimulierende Wirkung auf das sympathische Nervensystem. Die Stoffwechselrate von Isofluran in der Leber ist gering, sodass es nur eine geringe Toxizität für die Leber aufweist und selbst bei wiederholter Anwendung keine offensichtlichen Nebenwirkungen auftreten. Um die nachteiligen Auswirkungen von Narkosegasen auf die Umwelt und das Laborpersonal zu vermeiden, wird empfohlen, es zusammen mit einem Gasrückgewinnungssystem zu verwenden.&nbsp;</td></tr><tr><td>Mikrowaage</td><td>Shanghai Precision Scientific Instrument Co., Ltd.</td><td>FA1004B</td><td>Die Mikrowaage FA1004B ist ein hochpräzises Analyseinstrument, das für die genaue Wägung kleiner Proben entwickelt wurde. Sie bietet eine Ablesbarkeit bis zu 0,0001 g und eignet sich für Laboranwendungen, die präzise Messungen in der Forschung und Qualitätskontrolle erfordern.</td></tr><tr><td>Nahinfrarot-Bildgebungssystem</td><td>Olympus</td><td>MVX10</td><td>Der Olympus MVX10 ist ein Makro-Zoom-Fluoreszenzmikroskopsystem, das für die Nahinfrarot-Bildgebung optimiert ist. Es bietet eine hochauflösende Visualisierung großer Proben mit einem großen Zoombereich, fortschrittliche Optiken für tiefe Gewebepenetration und Kompatibilität mit Fluoreszenztechniken in der biologischen und Materialforschung.</td></tr><tr><td>Vevo Lab</td><td>\</td><td>Vevo LAB</td><td>Ein Bildanalysesoftwarepaket, das zur Analyse von Vevo-Bildgebungsdaten verwendet wird, einschließlich Messung, Berechnung und Berichtserstellung.</td></tr></tbody></table>

die beurteilung des lymphatischen abflusses mittels icg-nahinfrarotbildgebung und ultraschall nach einem bruch

The Assessment of Lymphatic Drainage Using ICG Near-Infrared Imaging and Ultrasound After Fracture

Die Beurteilung des lymphatischen Abflusses mittels ICG-Nahinfrarotbildgebung und Ultraschall nach einem Bruch

Traumatic fractures are often accompanied by impaired lymphatic drainage function. Reduced lymphatic drainage and lymph node enlargement after fracture ...

Unsere Forschung bewertet den lymphatischen Reflux nach Frakturen mithilfe der Nahinfrarotbildgebung und der B-Typ-Ultraschalluntersuchung, um die Drainage, Funktion und Schwellung der Lymphknoten zu überwachen. Bestehende Methoden weisen keine standardisierte dynamische In-vivo-Bewertung auf, daher vergleicht unser Protokoll die ICG-Nahinfrarotbildgebung mit der Ultraschalluntersuchung zur reproduzierbaren Überwachung. Beginnen Sie damit, 0,2 Milligramm Indocyaningrün, oder ICG, abzuwiegen.Überführen Sie es in ein 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen und lösen Sie es in einem Milliliter PBS auf, um eine ICG-Lösung mit einer Konzentration von 0,2 Milligramm pro Milliliter herzustellen. Wickeln Sie das Röhrchen mit Aluminiumfolie ein, um es vor Licht zu schützen. Schalten Sie dann das Bildgebungssystem ein und öffnen Sie FluoBeam Version 1.46.Passt die Kamerahöhe nach Bedarf an. Nach der Anästhesie der männlichen C57-Mäuse mit einem Frakturmodell befeuchten Sie einen Wattestäbchen mit 75 % Ethanol und desinfizieren die plantare Fläche der modellierten Hinterpfote. Aspirieren Sie mit einer 10-Mikroliter-Mikrospritze sechs Mikroliter der ICG-Lösung.Führen Sie die Nadel etwa einen Millimeter in die plantare Oberfläche ein und injizieren Sie die Lösung mit konstanter Geschwindigkeit, bis das gesamte Volumen appliziert ist. Aktivieren Sie im Softwareprogramm sowohl die Kamera- als auch die Laserfunktion. Klicken Sie auf Bearbeiten, um einen neuen Ordner anzulegen, und legen Sie diesen als Speicherort fest.Platzieren Sie die Maus in Bauchlage unter der Kamera, wobei das modellierte Hinterglied mittig im Sichtfeld positioniert ist. Stellen Sie die Belichtungszeit für die Aufnahmen zur Zeit null und nach 24 Stunden jeweils auf 30 Millisekunden ein. Nehmen Sie Bilder derselben plantaren Injektionsregion als Region von Interesse zu den Zeitpunkten null und 24 Stunden nach der Injektion auf, um die ICG-Signalintensität zu messen.Wenn die Lymphgefäße der Hinterextremität im Sichtfeld deutlich sichtbar sind, klicken Sie auf Foto, um die Bilder aufzunehmen. Exportieren Sie nach der Bildaufnahme die Daten. Öffnen Sie die Bildanalyse-Software, und importieren Sie die Fluoreszenzbilder, indem Sie auf Datei klicken und Öffnen auswählen.Öffnen Sie das Plantarbild der Nullstunde, das dem gleichen Tier und dem gleichen Untersuchungstag entspricht. Wählen Sie dann Oval, klicken Sie auf Bearbeiten, wählen Sie Auswahl und anschließend Festlegen. Stellen Sie Breite und Höhe auf 30 ein, wählen Sie Oval und klicken Sie auf OK. Plazieren Sie den Kreis über einem Bereich des Hintergrunds.Klicken Sie auf „Analysieren“ und wählen Sie „Messen“. Notieren Sie den Mittelwert im Ergebnisfenster als Hintergrund-Fluoreszenzintensität bei null Stunden. Platzieren Sie dann den Kreis über die Zielbeobachtungsstelle und notieren Sie den Mittelwert, wie zuvor gezeigt.Berechnen Sie die korrigierte Fluoreszenzintensität zur Stunde null als FI0-Stunde. Öffnen Sie das entsprechende 24-Stunden-Bild und wiederholen Sie die vorherigen Schritte, um die korrigierte Fluoreszenzintensität nach 24 Stunden zu erhalten. Berechnen Sie die Clearance-Rate unter Verwendung der hintergrundkorrigierten Fluoreszenzintensität, wie hier dargestellt.Schalten Sie das Ultraschallsystem ein, schließen Sie den Wandler an und positionieren Sie die Maus so, dass die Hinterextremität deutlich sichtbar ist. Unter kontinuierlicher Anästhesie platzieren Sie die Maus in Bauchlage auf dem Bildgebungsstadium, wobei der Kopf vom Bediener weg und der Schwanz zum Bediener hin orientiert ist. Beugen Sie das Knie so, dass die Kniekehle nach oben und leicht lateral zeigt.Positionieren Sie nun den Wandler über der Vertiefung der Kniekehle. Tragen Sie Ultraschall-Kopplungsgel am modellierten Hinterbein auf und drehen Sie den Wandler, sodass sein Winkel parallel zur Längsachse des Hinterbeins bleibt. Stellen Sie die Scan-Distanz auf vier Millimeter und die Schrittgröße auf 0,04 Millimeter ein.Identifizieren Sie den poplitealen Lymphknoten auf dem Bild entsprechend seiner anatomischen Lage. Stabilisieren Sie die Maus, indem Sie mit beiden Händen den Schwanz und das modellierte Hinterbein festhalten, um jegliche Bewegung während der Abtastung mit dem Schallkopf zu vermeiden. Erstellen Sie Bilder und identifizieren Sie den poplitealen Lymphknoten als kleine ovale oder bohnenförmige Struktur mit mittlerer bis geringer Echogenität.Exportieren Sie die Bilder in die Software für die dreidimensionale Rekonstruktion zur Verarbeitung der dreidimensionalen Bilder. Notieren Sie die Tieridentifikation, die Gruppenkennung und den Zeitpunkt bei 0 Stunden oder 24 Stunden. Öffnen Sie die Software für die dreidimensionale Rekonstruktion.Klicken Sie auf „Studie“, um das Modul zu betreten, und wählen Sie „Importieren“. Klicken Sie anschließend auf den Datenordner, markieren Sie die zu importierenden Daten und öffnen Sie diesen durch Doppelklick. Wählen Sie im Anzeigemodus „Bildverarbeitung“.Danach wählen Sie „In 3D laden“ aus. Wählen Sie „Queransicht“. Wählen Sie „Volumenmessung“ und klicken Sie auf „Start“.Überprüfen Sie, ob die Schnittrichtung und Schrittparameter mit den Aufnahmeeinstellungen übereinstimmen. Verwenden Sie dann das Mausrad oder den Schnittregler, um vom proximalen zum distalen Ende zu scrollen, und identifizieren Sie den ersten Schnitt, in dem der popliteale Lymphknoten erscheint. Beginnen Sie mit der Konturzeichnung auf dem ersten Schnitt, in dem der popliteale Lymphknoten sichtbar ist, indem Sie links klicken, um die Kontur zu starten.Verfolgen Sie punktgenau eine geschlossene Kontur entlang der Lymphknotenbegrenzung, wobei diese nahe an der äußeren Kapsel verlaufen und umgebendes Fettgewebe sowie Gefäßlumen ausgeschlossen werden sollen. Benutzen Sie das Mausrad, um zur Schicht zu wechseln, die die maximale Querschnittsfläche des poplitealen Lymphknotens zeigt, und wiederholen Sie den vorherigen Schritt der Konturverfolgung, um die zweite Kontur abzuschließen. Gehen Sie anschließend zur Schicht direkt vor dem Verschwinden des poplitealen Lymphknotens und wiederholen Sie erneut die Konturverfolgung, um die dritte Kontur zu vervollständigen.Klicken Sie dann auf „Fertig stellen“, um das dreidimensionale segmentierte Volumen zu generieren und die Volumenmessung auszugeben. Notieren Sie das Volumen des Kniekehlenlymphknotens in Kubikmillimetern im Ergebnisbereich. Wählen Sie im Bereich Messergebnisse „Exportieren“ und exportieren Sie die Ergebnisse als CSV- oder XLS-Datei.Wählen Sie den Dateityp aus und exportieren Sie das Bild als TIFF-Bilddatei. Am Ende des Experiments stellen Sie die Maus auf eine Wärmeprobe und lassen Sie aus der Anästhesie aufwachen. An den Tagen eins, sieben und 14 nach der Erstellung des Frakturmodells war die 24-Stunden-Fluoreszenzintensität des plantaren ICG in der Frakturgruppe durchgängig höher als in der Scheinoperationgruppe.Die lymphatische ICG-Clearance-Rate in der Frakturgruppe war signifikant niedriger als in der Schein-Operationsgruppe. Das Volumen des poplitealen Lymphknotens bei Mäusen der Frakturgruppe war am ersten, siebten und 14. Tag signifikant größer als in der Kontrollgruppe. Dieses Protokoll misst die Effizienz des lymphatischen Abflusses und die Vergrößerung des poplitealen Lymphknotens nach einer Fraktur bei Mäusen.Die Schlüsselherausforderung besteht darin, konsistente Bildgebungsparameter, Injektionsgenauigkeit und eine stabile Lampenpositionierung während der Ultraschalluntersuchung aufrechtzuerhalten. Zukünftige Studien können immunologische Marker und die Histologie kombinieren, um lymphatische Mechanismen während der Knochenbruchheilung zu validieren.

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Forschung

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Medicine

Medizin

Fluoreszenz-Bildgebung ist eine viel versprechende innovative Modalität für die Bild-Chirurgie in der chirurgischen Onkologie. In diesem Video, das wir beschreiben die technischen Verfahren zur Detektion der Sentinel-Lymphknoten mittels Fluoreszenz-Bildgebung als in gynäkologischen oncologicy präsentiert. Eine multispektrale Fluoreszenz-Kamera-System, zusammen mit dem fluoreszierenden Indocyaningrün, angewendet wird.

Multispectral Real-time Fluoreszenz-Imaging für die intraoperative Detektion des Sentinel Lymph Node in Gynäkologische Onkologie

Kürzlich entwickelte Bildgebungsverfahren mittels Nah-Infrarot-Fluoreszenz (NIRF) kann helfen erläutern die Rolle spielt das Lymphsystem in Krebsmetastasen, Immunantwort, Wundheilung und anderen lymphatischen-assoziierten Krankheiten.

Nicht-invasive optische Abbildung des lymphatischen Gefäßsystem eines Maus

Dieses Video verwendet Ultraschall für Diagnose- und Nachuntersuchungen, um die Behandlungswirksamkeit von Progressive Resistance Exercise (PRE) bei Brustkrebs-bedingtem Lymphödem (BCRL) zu bestimmen. Ultraschall kann effektiv angewendet werden, um die Diagnose und Behandlung von Lymphödemen sicherzustellen.

Lymphödem-Ultraschall: Eine Technik zur Messung der Veränderung der Dicke eines betroffenen Gewebes

Dieses Protokoll beschreibt die Anwendung von Hochfrequenz-Ultraschall (HFUS) zum Abbilden der Maus Lymphknoten. Diese Technik optimiert die Visualisierung und Quantifizierung der zervikalen Lymphknoten-Morphologie, Volumen und Durchblutung. Bild-geführte Biopsie der Lymphknoten und Verarbeitung von Lymphgewebe zur histologischen Auswertung wird auch gezeigt.

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Diese Studie verwendete Ultraschall für die Diagnose und Follow-up-Tests die Wirksamkeit der Behandlung von Progressive Widerstand Übung (PRE) bei Brustkrebs im Zusammenhang mit Lymphödem (BCRL) zu bestätigen. Ultraschall kann effektiv Diagnose und Behandlung von Lymphödemen, um sicherzustellen, angewendet werden.

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Die Mikro-Computertomographie (μCT) ist ein zerstörungsfreies bildgebendes Verfahren, das in präklinischen Studien zur Beurteilung der Knochenstruktur beiträgt, jedoch gibt es keinen Konsens über μCT-Verfahren zur Analyse der knochenheilenden Kallus. Diese Studie bietet ein schrittweises μCT-Protokoll, das die Überwachung der Frakturheilung ermöglicht.

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108 Aufrufe.  Shanghai University of Traditional Chinese Medicine. Unsere Forschung bewertet den lymphatischen Reflux nach Frakturen unter Verwendung von Nah-Infrarot-Bildgebung und B-Typ-Ultraschall, um Drainage, Funktion und Lymphknotenschwellung zu überwachen. Bestehende Methoden haben keine standardisierte dynamische In-vivo-Bewertung, daher vergleicht unser Protokoll die ICG-Nahbildgebung mit dem Ultraschall für eine reproduzierbare Überwachung. Um zu beginnen, wiegen Sie 0,2 Milligramm Indocyanin-Grün oder ICG.Übertragen Sie es in ein 1,5 M...

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