Name: Antizipatorische Nahrungsbelohnungs-Auslösung von appetitiven Ultraschalllautbewegungen bei Laborratten und -mäusen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-07-03T14:10:00.000+00:00
Duration: 6 min 5 s
Description: Lernen Sie ein standardisiertes Nahrungsbelohnungsprotokoll zur Auslösung appetitiver 50-kHz-Ultraschalllaute bei Labornagern. Diese Methode minimiert hormonelle Störfaktoren und ermöglicht reproduzierbare Analysen.

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	<li>Brudzynski SM. Principles of rat communication: Quantitative parameters of ultrasonic calls in rats. Behav Genet. 2005;35(1):85-92.</li>
	<li>Johnson AM et al. Ultrasonic output from the excised rat larynx. J Acoust Soc Am. 2010;128(2):EL75-EL79.</li>
	<li>Kelm-Nelson CA, Lenell C, Johnson AM, Ciucci MR. Laryngeal activity for production of ultrasonic vocalizations in rats. In: Brudzynski SM, ed. Handbook of Behavioral Neuroscience. Vol 25. Elsevier; Amsterdam, Netherlands; 2018:37-43.</li>
	<li>Lenell C, Broadfoot CK, Schaen-Heacock NE, Ciucci MR. Biological and acoustic sex differences in rat ultrasonic vocalization. Brain Sci. 2021;11(4):4.</li>
	<li>Shembel AC et al. The role of ultrasonic vocalizations in rat laryngological investigations. Physiol Behav. 2025;294:114887.</li>
	<li>Brenes JC, Schwarting RKW. Individual differences in anticipatory activity to food rewards predict cue-induced appetitive 50-kHz calls in rats. Physiol Behav. 2015;149:107-118.</li>
	<li>McGinnis MY, Vakulenko M. Characterization of 50-kHz ultrasonic vocalizations in male and female rats. Physiol Behav. 2003;80(1):81-88.</li>
	<li>Chabout J et al. Adult male mice emit context-specific ultrasonic vocalizations that are modulated by prior isolation or group rearing environment. PLoS One. 2012;7(1):e29401.</li>
	<li>Mun HS, Lipina TV, Roder JC. Ultrasonic vocalizations in mice during exploratory behavior are context-dependent. Front Behav Neurosci. 2015;9.</li>
	<li>Simola N, Granon S. Ultrasonic vocalizations as a tool in studying emotional states in rodent models of social behavior and brain disease. Neuropharmacology. 2019;159:107420.</li>
	<li>Premoli M et al. Mouse and rat ultrasonic vocalizations in neuroscience and neuropharmacology: State of the art and future applications. Eur J Neurosci. 2023;57(12):2062-2096.</li>
	<li>Scattoni ML, Crawley J, Ricceri L. Ultrasonic vocalizations: A tool for behavioural phenotyping of mouse models of neurodevelopmental disorders. Neurosci Biobehav Rev. 2009;33(4):508-515.</li>
	<li>Venkatraman A et al. Stress-induced ultrasonic vocalization in laboratory rats and mice: A scoping review. Brain Sci. 2024;14(11):1109.</li>
	<li>Johnson AM, Ciucci MR, Connor NP. Vocal training mitigates age-related changes within the vocal mechanism in old rats. J Gerontol Ser A. 2013;68(12):1458-1468.</li>
	<li>Lenell C, Newkirk B, Johnson AM. Laryngeal neuromuscular response to short- and long-term vocalization training in young male rats. J Speech Lang Hear Res. 2019;62(2):247-256.</li>
	<li>Shembel AC, Lenell C, Chen S, Johnson AM. Effects of vocal training on thyroarytenoid muscle neuromuscular junctions and myofibers in young and older rats. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 2021;76(2):244-252.</li>
	<li>Brudzynski SM. Pharmacology of ultrasonic vocalizations in adult rats: Significance, call classification and neural substrate. Curr Neuropharmacol. 2015;13(2):180-192.</li>
	<li>Kelm-Nelson CA, Brauer AFL, Ciucci MR. Vocal training, levodopa, and environment effects on ultrasonic vocalizations in a rat neurotoxin model of Parkinson disease. Behav Brain Res. 2016;307:54-64.</li>
	<li>Grant LM et al. Noradrenergic receptor modulation influences the acoustic parameters of pro-social rat ultrasonic vocalizations. Behav Neurosci. 2018;132(4):269-283.</li>
	<li>Rudisch DM et al. Early ultrasonic vocalization deficits and related thyroarytenoid muscle pathology in the transgenic TgF344-AD rat model of Alzheimer&#8217;s disease. Front Behav Neurosci. 2024;17:1294648.</li>
	<li>Rodgers B, Schaser A. Alpha-synuclein overexpression does not cause vocalization deficits in a mouse model of Parkinsonism. Biol Open. 2025;14(9):bio062120.</li>
	<li>Caruso A, Ricceri L, Scattoni ML. Ultrasonic vocalizations as a fundamental tool for early and adult behavioral phenotyping of Autism Spectrum Disorder rodent models. Neurosci Biobehav Rev. 2020;116:31-43.</li>
	<li>Riede T. Subglottal pressure, tracheal airflow, and intrinsic laryngeal muscle activity during rat ultrasound vocalization. J Neurophysiol. 2011;106(5):2580-2592.</li>
	<li>Riede T. Stereotypic laryngeal and respiratory motor patterns generate different call types in rat ultrasound vocalization. J Exp Zool A Ecol Genet Physiol. 2013;319(4):213-224.</li>
	<li>Riede T, Borgard HL, Pasch B. Laryngeal airway reconstruction indicates that rodent ultrasonic vocalizations are produced by an edge-tone mechanism. R Soc Open Sci. 2017;4(11):170976.</li>
	<li>Inagi K, Schultz E, Ford CN. An anatomic study of the rat larynx: Establishing the rat model for neuromuscular function. Otolaryngol Head Neck Surg. 1998;118(1):74-81.</li>
	<li>H&#229;kansson J et al. Aerodynamics and motor control of ultrasonic vocalizations for social communication in mice and rats. BMC Biol. 2022;20(1):3.</li>
	<li>Lenell C, Johnson AM. The effects of the estrous cycle, menopause, and recording condition on female rat ultrasonic vocalizations. Physiol Behav. 2021;228:113248.</li>
	<li>Lenell C, Sandage MJ, Johnson AM. A tutorial of the effects of sex hormones on laryngeal senescence and neuromuscular response to exercise. J Speech Lang Hear Res. 2019;62(3):602-610.</li>
	<li>Garcia AN et al. The effects of long-term estradiol treatment on social behavior and gene expression in adult female rats. Horm Behav. 2017;87:145-154.</li>
	<li>Matochik JA, White NR, Barfield RJ. Variations in scent marking and ultrasonic vocalizations by Long-Evans rats across the estrous cycle. Physiol Behav. 1992;51(4):783-786.</li>
	<li>Thomas DA, Barfield RJ. Ultrasonic vocalization of the female rat (Rattus norvegicus.) during mating. Anim Behav. 1985;33(3):720-725.</li>
	<li>Hanson JL, Hurley LM. Female presence and estrous state influence mouse ultrasonic courtship vocalizations. PLoS One. 2012;7(7):e40782.</li>
	<li>Opiol H, Pavlovski I, Michalik M, Mistlberger RE. Ultrasonic vocalizations in rats anticipating circadian feeding schedules. Behav Brain Res. 2015;284:42-50.</li>
	<li>Hinchcliffe JK, Jackson MG, Robinson ES. The use of ball pits and playpens in laboratory Lister Hooded male rats induces ultrasonic vocalisations indicating a more positive affective state and can reduce the welfare impacts of aversive procedures. Lab Anim. 2022;56(4):370-379.</li>
	<li>Wright JM, Gourdon JC, Clarke PBS. Identification of multiple call categories within the rich repertoire of adult rat 50-kHz ultrasonic vocalizations: Effects of amphetamine and social context. Psychopharmacology (Berl). 2010;211(1):1-13.</li>
	<li>&#160;Dwenger K et al. Impact of circulating estrogen and dehydration on ultrasonic vocalization in female rats. J Speech Lang Hear Res. 2026;1-21</li>
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<table><tbody><tr><td>70% Ethanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP28184</td><td>Zum Reinigen der Kammer zwischen den Tieren verwendet</td></tr><tr><td>Zusätzliche schmackhafte Leckereien (z. B. geschälte Erdnüsse)</td><td>Bio-Serv</td><td>F6711</td><td>Optionale Belohnungsvariation zur Aufrechterhaltung des Engagements</td></tr><tr><td>Tiertransferstation (falls verwendet)</td><td>NUAIRE</td><td>AllerGard NU-621</td><td>Bietet eine kontrollierte Handhabungsumgebung während der Sozialisierung durch den Experimentator (falls für Ihr Protokoll anwendbar)</td></tr><tr><td>Dunkelvorhang/-laken</td><td>Mainstays (Walmart)</td><td>https://www.walmart.com/ip/Mainstays-Super-Soft-Brushed-Microfiber-Bed-Sheet-Set-Rich-Black-King-4-Piece/12946065251</td><td>Wird verwendet, um Umgebungslicht und externe Geräuschstörungen während des Transfers zu eliminieren</td></tr><tr><td>Wagen (Transport)</td><td>Metro</td><td>13-460-126</td><td>Unterstützt Käfige während des Transfers</td></tr><tr><td>Computer/Akquisitionsschnittstelle</td><td>Windows</td><td>10 Professional 64bit</td><td>Muss die Sonotrack-Softwareanforderungen erfüllen; wird für Aufzeichnung und Datenspeicherung verwendet</td></tr><tr><td>Datenspeichergerät (externe Festplatte/Server)</td><td>Glyph</td><td>BBPR4000</td><td>Für die sichere Speicherung großer akustischer Dateien</td></tr><tr><td>Fruit Loops</td><td>Kellogg's</td><td>4119210032</td><td>Schmackhaftes Essens-Lohn, um Neuheit und Motivation aufrechtzuerhalten</td></tr><tr><td>Garden Veggie Straws</td><td>Sensible Portions</td><td>829515300494</td><td>Schmackhaftes Essens-Lohn, um Neuheit und Motivation aufrechtzuerhalten</td></tr><tr><td>Labordetergens (milde Seife)</td><td>Dawn</td><td>91064</td><td>Verwendet für die Reinigung von Käfigen und Einlagen nach der Sitzung</td></tr><tr><td>Papierhandtuch</td><td>ToolBox</td><td>5520208</td><td>Verwendet mit Ethanol zum Reinigen</td></tr><tr><td>Polycarbonat-Aufnahmekäfige (ohne Einstreu)</td><td>UNO Life Science Solutions</td><td>31200260</td><td>Verwendet mit der Aufnahmekammer zur Minimierung von Rauschartefakten</td></tr><tr><td>PSA: Einweg-Laborkittel</td><td>Fisherbrand</td><td>12-893-005XXL</td><td>Verhindert Kontamination und Geruchsübertragung</td></tr><tr><td>PSA: Nitrilhandschuhe</td><td>Ansell</td><td>19-168-967D</td><td>Verhindert Kontamination und Geruchsübertragung</td></tr><tr><td>Rotlichtsystem</td><td>Kenall</td><td>https://kenall.com/Animal-Research-Lab-Lighting#:~:text=Red%20LED%20lighting%20is%20ideal%20for%20animal%20research,for%20nocturnal%20animals%20such%20as%20mice%20and%20rats.</td><td>Schlecht sichtbares Licht zur Aufrechterhaltung eines umgekehrten Lichtzyklus bei gleichzeitiger Sichtbarkeit für den Experimentator</td></tr><tr><td>Reese's Puffs</td><td>General Mills</td><td>10016000275666</td><td>Schmackhaftes Essens-Lohn, um Neuheit und Motivation aufrechtzuerhalten</td></tr><tr><td>SmartChamber für Mäuse und Ratten</td><td>Metris</td><td>SC-B100</td><td>Schalldämpfte Kammer für die Aufzeichnung von Ultraschall-Vokalisation</td></tr><tr><td>Sonotrack Automatisierte Rufklassifizierungssoftware (v1.4)</td><td>Metris</td><td>ST-S400</td><td>Verwendet für USV-Erkennung, Klassifizierung und Export von akustischen Parametern</td></tr><tr><td>Sonotrack Basiskonfiguration</td><td>Metris</td><td>ST-R2P0-M</td><td>Datenerfassungshardware für Ultraschallaufnahme</td></tr><tr><td>Sonotrack Hochleistungs-Ultraschallmikrofon</td><td>Metris</td><td>ST-B200</td><td>Frequenzbereich ~15-125 kHz für Nagetier-USV-Erkennung</td></tr><tr><td>Standard-Heimkäfige</td><td>Innovive</td><td>M-BTM (Maus); R-BTM-H (Ratte)</td><td>Standard-Unterkunfts-/Transferkäfige</td></tr><tr><td>Timer</td><td>Fisherbrand</td><td>06-664-251</td><td>Sorgt für standardisierte 10-minütige Aufnahmesitzungen</td></tr></tbody></table>

antizipatorische nahrungsbelohnungs-auslösung von appetitiven ultraschalllautbewegungen bei laborratten und -mäusen

Anticipatory Food-Reward Elicitation of Appetitive Ultrasonic Vocalizations in Laboratory Rats and Mice

Antizipatorische Nahrungsbelohnungs-Auslösung von appetitiven Ultraschalllautbewegungen bei Laborratten und -mäusen

Ultrasonic vocalizations (USVs) in laboratory rats and mice provide a valuable model for investigating vocal function, affective behavior, and the ...

Unsere Forschung im Purdue Animal Behavior Core untersucht kraniale sensorimotorische Dysfunktionen, die zugrunde liegende Störungen der Stimme und des Schluckens verursachen, und entwickelt standardisierte Methoden zur Untersuchung von ultraschallartigen Vokalisationen bei Ratten und Mäusen. Da viele USV-Paradigmen auf Fortpflanzungsverhalten basieren, verwendet dieses Protokoll Belohnungsmethoden mit Futter, um soziale und hormonelle Störfaktoren zu reduzieren. Führen Sie die Aufnahmen in einem abgedunkelten Raum oder unter Rotlichtbeleuchtung durch, um sie an den umgekehrten Lichtzyklus des Tieres anzupassen.Begrenzen Sie den Zutritt zum Raum und bleiben Sie während der Sitzungen in einem angrenzenden Bereich, um akustische Störungen zu minimieren. Verwenden Sie schallgedämmte Aufnahmekammern, um externe Geräusche und elektronische Störungen zu reduzieren. Wenn mehrere Kammern verwendet werden, weisen Sie die Tiere den Kammern nach einem randomisierten, gegenläufigen Zeitplan über die Aufnahmetage und experimentellen Bedingungen hinweg zu.Notieren Sie die Kammereinstellung für jede Sitzung, einschließlich der Tierkennung, Gruppe, Kammernummer, Datum und Sitzungsart, in einem Laborbuch. Reinigen Sie jeden Käfig gründlich mit 70 % Ethanol zwischen den Aufnahmen und lassen Sie ihn vollständig trocknen, bevor die nächste Aufnahme erfolgt. Schalten Sie den Aufnahmecomputer ein und starten Sie die Software zur Erfassung ultraschallbasierter Vokalisationen.Klicken Sie auf Datei/Experiment und wählen Sie dann Neu, um ein neues Experiment zu erstellen. Geben Sie unter dem Menü Identifikation den Namen des Experiments ein. Wählen Sie anschließend im Menü Spezies Maus aus.Und im Cages-Menü die Anzahl der Aufnahmekanäle auf vier belassen und dann auf Speichern klicken. Vor jeder Sitzung eine Testaufnahme durchführen, indem nacheinander „Execute Test Session“ und „Preview Ultrasounds“ ausgewählt werden, um die vier Aufnahmekanäle zu öffnen. Durch Klicken auf das Aufnahme-Symbol bestätigen, dass die Multikanal-Schnittstelle erkannt wird, und die Signalqualität, die Funktion der Kanäle sowie das Rauschniveau überprüfen.Erstellen Sie eine Testsession, indem Sie auf „Design Test Session“ und anschließend auf „New Test Session“ klicken, und stellen Sie die Aufzeichnungsdauer auf 10 Minuten ein. Weisen Sie den entsprechenden Kammern Behandlungscodes und Tierkennungen zu und überprüfen Sie die Session-Informationen vor der Aufzeichnung, da die Einstellungen danach nicht mehr geändert werden können. Um die Session zu starten, stellen Sie die Tiere in die Polycarbonat-Käfige und weisen Sie sie den korrekten Kammern zu.Danach schließen Sie die Kammertür. Klicken Sie in der Aufnahmesoftware auf „Testreihe entwerfen“ und anschließend auf „Testreihe öffnen“. Wählen Sie unter „Testreihe ausführen“ die Option „Ultraschall aufzeichnen“.Klicken Sie dann auf die Aufnahmetaste, um die Aufnahme zu starten, und überwachen Sie die Signale in Echtzeit. Lassen Sie die Software kontinuierlich 10 Minuten lang aufzeichnen, wobei die Aufnahme am Ende der Sitzung automatisch gestoppt wird. Speichern Sie die Aufnahme unverzüglich, um Datenverlust zu vermeiden, indem Sie auf die X-Schaltfläche und anschließend auf Speichern klicken.Speichern und sichern Sie die aufgezeichneten Dateien nach jeder Sitzung zur späteren Analyse. Entfernen Sie die Tiere aus den Kammern und bringen Sie sie in ihre Heimkäfige zurück. Geben Sie jedem Tier unverzüglich eine standardisierte, schmackhafte Nahrungsbelohnung.Halten Sie die Belohnungszeitpunkte über alle Sitzungen hinweg konstant. Führen Sie die Aufnahmesitzungen einmal täglich an drei bis fünf aufeinanderfolgenden Tagen nach der Konditionierung durch und achten Sie darauf, dass Zeitpunkt, Handhabungsprozeduren und Umweltbedingungen in allen Sitzungen identisch sind. Repräsentative Aufnahmen einer 15 Monate alten ovariiektomierten weiblichen Sprague-Dawley-Ratte zeigten deutliche Konturen ultrasonischer Vokalisationen.Dazu gehörten flache und frequenzmodulierte Strukturen, die die Extraktion akustischer Parameter ermöglichten. Stellvertretende Klassifizierungsergebnisse aus einer 10-minütigen Basislinienaufnahme eines dreimonatigen, transgenen männlichen Mäuses mit Überexpression von Alpha-Synuclein zeigen einen erfolgreichen Nachweis von Lauten mit der Verteilung der Rufe auf einfache und komplexe Typen. Außerdem werden deutliche Frequenzmodulationsmuster sichtbar, einschließlich flacher, aufsteigender, absteigender und komplexer Verläufe, sowie die Verteilung der Rufe auf separate Dauerintervalle.Konsistente Handhabung, Konditionierung und Aufnahmebedingungen sind entscheidend für eine zuverlässige Auslösung von Vokalisationen und reproduzierbare Ergebnisse. Die Aufnahmen können mit alternativen Methoden analysiert und mit verhaltensbezogenen, histologischen, molekularen oder neurophysiologischen Analysen kombiniert werden. Künftige Studien können Vokalveränderungen in verschiedenen Krankheitsmodellen, unter verschiedenen Interventionen, Arten und experimentellen Bedingungen untersuchen.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Behavior

Verhalten

Drug Selbstverwaltung und Ultraschall-Laute (USV) als Verhaltens-Assessments in Tierversuchen verwendet, aber selten in Kombination. Der Zweck dieses Artikels ist es, die Vorteile der Aufnahme USVs während Droge selbst Verwaltungsverfahren zur affektiven Reaktionen auf Arzneimittel Erfahrungen zu prüfen, zu beschreiben.

Beurteilung der Ultraschall-Vocalizations Während Drug Selbstverwaltung in Ratten

Mäuse und Ratten, die aufgrund ihrer angeborenen Vorsicht, zunächst langsam in Anspruch neuartige Lebensmittel, insbesondere in einem Roman Platz. Diese hyponeophagia leicht im Labor gemessen werden, obwohl Versuchstiere viel weniger ängstlich als ihre wildlebenden Artgenossen...

Hyponeophagia: A Measure of Anxiety in der Maus

Stimmstörungen sind in Alterungs-und Parkinson-Krankheit eine Schwächung. Die Ultraschall-Laute von Ratten, die ebenfalls von diesen Bedingungen betroffen sind, können verwendet werden, um diese Stimmstörungen, ihre neuronalen Substrate und die Art der funktionellen Erholung mit Verhaltenstherapie zu untersuchen.

Gezielte Schulung von Ultraschall Vocalizations in Aged und Parkinson-Ratten

Die vorliegenden Bericht die Protokoll eingesetzt, um die belohnende Wirkung von fettreicher Nahrung bei Mäusen messen mit Hilfe eines progressiven Verhältnis operante Konditionierung Aufgabe.

Progressive-Verhältnis reagiert Palatable für High-Fett-und High-Zucker Lebensmittel in Mäuse

Die aktuelle Studie untersucht ein neues Verfahren für die Beurteilung der verstärkenden Effekte von schmackhaften Lösungen im Laborratten: intraorale Selbstverwaltung. Zu diesem Zweck operante reagiert (also Hebelpressen) für die intraorale Infusionen von süß-Lösungen in unterschiedlichen Konzentrationen wurde die kontinuierliche und progressive Verhältnisse Verstärkungspläne gemessen.

Ein neues Verfahren zur Bewertung der verstärkenden Eigenschaften von Geschmacksstoffe in Labor-Ratten: Operante Intraorale Selbstverwaltung

Dieser Artikel beschreibt eine Reihe von Methoden für die Messung von Lebensmitteln und Lebensmittel Motivation bezogenen Zielwerte bei Menschen.

Studieren Essen Belohnung und Motivation in Humans

Ultraschall-Vokalisationen (USVs) bei Mäusen unterscheiden sich je nach Alter, Geschlecht, Zustand und genetischem Hintergrund. Unter Verwendung von zwei Ultraschallstrahlern, die gleichzeitig an verschiedenen Orten senden, kann dieser Zwei-Auswahl-Test die Erkennung von Mäusen und die Präferenzreaktionen auf unterschiedliche Merkmale von USVs bewerten.

Bestimmen Ultraschall Vocalization Preferences in Mäuse mit einer Zwei-Choice-Test-Playback

Hier stellen wir ein Protokoll vor, um das Pawlowsche konditionierte Annäherungsverhalten bei Ratten hervorzurufen. Dieses Verfahren kann verwendet werden, um individuelle Unterschiede in der Tendenz zur Annäherung an Belohnungsreize zu messen und Anreizsalienz zuzuschreiben und die Suchtvulnerabilität zu untersuchen.

Pavlovian Trainings konditionierten Ansatz bei Ratten

Ultraschall-Vokalisationen von Mäusen werden als Stellvertreter verwendet, um die genetischen Grundlagen von Defiziten der stimmlichen Kommunikation in Mausmodellen für neuropsychiatrische Erkrankungen zu modellieren. Das vorliegende Protokoll beschreibt drei experimentelle Kontexte, die zuverlässig Ultraschalllaute von Jungtieren (während der gesamten Entwicklung) und adulten Mäusen (gleichgeschlechtliche Interaktionen, Männchen-Brunst-Weibchen-Interaktionen) hervorrufen.

Aufnahme Maus Ultraschall Vocalizations soziale Kommunikation zur Bewertung

Das Ziel dieser Studie ist Belohnung bezogenen verteilten Gehirnnetzwerken zu identifizieren, indem eine zuverlässige immunhistologische Technik zelluläre c-fos-Aktivierung begrenze gleichzeitige Änderungen in Dopaminbahnen und Anschlußstellen nach neuartigen Aufnahme von Fett und Zucker in Ratten zu messen.

Gleichzeitige Detektion von c-Fos Aktivierung von mesolimbischen und mesocorticalen Dopamine Belohnung Seiten Nach Naive Zucker und Fett Verschlucken in Ratten

Dieser Artikel beschreibt die standardisierte Anwendung von spielerischen handling, eine kitzelnde Technik entwickelt, um die Ratte rauen Spiel zu imitieren. Dieses Verfahren ist effektiv bei der Reduzierung von ängstlicher Reaktionen auf den Menschen und erzeugen positive beeinflussen, wenn Ratten für gemeinsame Aktivitäten der Tierhaltung und medizinische behandelt werden und Forschung Verfahren wie die Injektion.

Kitzeln, eine Technik zur Induktion positiven Einfluss beim Umgang mit Ratten

Lernen Sie ein standardisiertes Nahrungsbelohnungsprotokoll zur Auslösung appetitiver 50-kHz-Ultraschalllaute bei Labornagern. Diese Methode minimiert hormonelle Störfaktoren und ermöglicht reproduzierbare Analysen.

Antizipatorische Nahrungsbelohnungs-Auslösung von appetitiven Ultraschalllautbewegungen bei Laborratten und -mäusen

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