Name: Einfache und zugängliche Ei-Schlüpf-Assays in Caenorhabditis elegans: Anpassungsfähige Formate für Drogentests (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-07-03T14:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 11 s
Description: Lernen Sie drei Ei-Schlüpf-Assays in Caenorhabditis elegans für Parasitologie und Toxikologie kennen. Diese flexiblen Methoden ermöglichen präzise Drogentests, skalierbare Screening-Verfahren und den Einsatz in der Lehre.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

<ol>
	<li>Bizimenyera ES, Githiori JB, Eloff JN, Swan GE. In vitro activity of Peltophorum africanum Sond. (Fabaceae) extracts on the egg hatching and larval development of the parasitic nematode Trichostrongylus colubriformis. Vet Parasitol. 2006;142(3&#8211;4):336-43.</li>
	<li>Demeler J et al. Phylogenetic characterization of &#946;-tubulins and development of pyrosequencing assays for benzimidazole resistance in cattle nematodes. PLoS One. 2013;8(8):e70212.</li>
	<li>von Samson-Himmelstjerna G et al. Standardization of the egg hatch test for the detection of benzimidazole resistance in parasitic nematodes. Parasitol Res. 2009;105(3):825-34.</li>
	<li>Easland E, Biendl S, Keiser J. Development of a hookworm egg hatching assay to&#160;determine the&#160;ovicidal effects of anthelminthics. Parasit Vectors. 2023;16(1):157.</li>
	<li>Abriola L et al. Development and optimization of a high-throughput screening method utilizing Ancylostoma ceylanicum egg hatching to identify novel anthelmintics. Moraes J de, editor. PLoS One. 2019;14(6):e0217019.</li>
	<li>Zaj&#237;&#269;kov&#225; M, Nguyen LT, Sk&#225;lov&#225; L, Raisov&#225; Stuchl&#237;kov&#225; L, Matou&#353;kov&#225; P. Anthelmintics in the future: current trends in the discovery and development of new drugs against gastrointestinal nematodes. Drug Discov Today. 2020;25(2):430-7.</li>
	<li>Banerjee T et al. Ovicidal and larvicidal effects of extracts from leaves of Andrographis paniculata (Burm. f.) Wall.ex Nees against field isolates of human hookworm (Ancylostoma duodenale). J Ethnopharmacol. 2019;235:489-500.</li>
	<li>Mickiewicz M et al. Inhibitory effect of dimethyl sulfoxide on the development of gastrointestinal nematode larvae in the larval development test. J Vet Res. 2025;69(1):83-90.</li>
	<li>Lanusse CE, Alvarez LI, Lifschitz AL. Gaining Insights Into the Pharmacology of Anthelmintics Using Haemonchus contortus as a Model Nematode. In: Advances in Parasitology. Vol. 93. Academic Press; England; 2016:465-518.</li>
	<li>Mir&#243; MV et al. Phytochemical-Mediated Modulation of Doramectin Pharmacology in Sheep: Exploring the Cinnamaldehyde&#8211;Pink Grapefruit Combination. Animals. 2025;15(17):2539.</li>
	<li>Kaewintajuk K et al. Anthelmintic activity of KSI-4088 against Caenorhabditis elegans. Parasitol Res. 2010;107(1):27-30.</li>
	<li>Oliveira JG et al. Chemical profile and antiparasitic effects of Lippia origanoides essential oil against Rhipicephalus microplus, Haemonchus contortus, and Caenorhabditis elegans. Revista Brasileira de Parasitologia Veterin&#225;ria. 2025;34(4):e014825.</li>
	<li>Liu C, Chen Y, Li Z, Xu X. Design, Synthesis, Nematicidal Activity Evaluation, and Mode of Action Study of Novel Trifluorobutene Ester Derivatives as Potential Nematicides. J Agric Food Chem. 2025;73(18):10736-50.</li>
	<li>Zain MM, Zary Yahaya ZS, Him NAIIN. The Effect of Macrocyclic Lactones-Ivermectin Exposure on Egg Hatching and Larval Development of Caenorhabditis elegans. Trop Life Sci Res. 2016;27(Supp. 1):3-8.</li>
	<li>Harlow PH et al. The nematode Caenorhabditis elegans as a tool to predict chemical activity on mammalian development and identify mechanisms influencing toxicological outcome. Sci Rep. 2016;6(1):22965.</li>
	<li>do Nascimento PM et al. Activity of essential oils against Caenorhabditis elegans: Showing anthelmintic potential for new products. Vet Parasitol. 2026;344:110766.</li>
	<li>AlOkda A, Van Raamsdonk JM. Effect of DMSO on lifespan and physiology in C. elegans: Implications for use of&#160;DMSO as a solvent for compound delivery. MicroPubl Biol. 2022;2022.</li>
	<li>Hernando G, Bouzat C. Caenorhabditis elegans neuromuscular junction: GABA receptors and ivermectin action. Phillips W, editor. PLoS One. 2014;9(4):e95072.</li>
	<li>Hernando G, Turani O, Rodriguez Araujo N, Pulido Carrasquero A, Bouzat C. Unraveling anthelmintic targets and mechanisms of action of trans-cinnamaldehyde from cinnamon essential oil. Sci Rep. 2025;15(1):5422.</li>
	<li>Hernando G, Turani O, Rodriguez Araujo N, Bouzat C. The diverse family of Cys-loop receptors in Caenorhabditis elegans: insights from electrophysiological studies. Biophys Rev. 2023;15(4):733-50.</li>
	<li>Olson SK et al. Hierarchical assembly of the eggshell and permeability barrier in C. elegans. J Cell Biol. 2012;198(4):731-48.</li>
	<li>Stein KK, Golden A. The C. elegans eggshell. WormBook. 2018 Aug;2018:1-36.</li>
	<li>Hernando G, Turani O, Bouzat C. Caenorhabditis elegans muscle Cys-loop receptors as novel targets of terpenoids with potential anthelmintic activity. Greenberg RM, editor. PLoS Negl Trop Dis. 2019;13(11):e0007895.</li>
	<li>Hernando G, Bouzat C. Evaluating anthelmintic activity through Caenorhabditis elegans egg hatching assay. MethodsX. 2024;12:102743.</li>
	<li>Bianchi L, Driscoll M. Culture of embryonic C. elegans cells for electrophysiological and pharmacological analyses. WormBook. 2006;1-15.</li>
	<li>Stiernagle T. Maintenance of C. elegans. WormBook. 2006;1-11.</li>
	<li>Fire A et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 1998;391(6669):806-11.</li>
	<li>Hernando G, Bouzat C. Drug combination assays using Caenorhabditis elegans as a model system. J Pharmacol Toxicol Methods. 2025;131:107583.</li>
	<li>Christensen M et al. A primary culture system for functional analysis of C. elegans neurons and muscle cells. Neuron. 2002;33(4):503-14.</li>
	<li>G&#252;rel G et al. Receptors and other signaling proteins required for serotonin control of locomotion in Caenorhabditis elegans. Genetics. 2012;192(4):1359-71.</li>
	<li>Rodriguez Araujo N, Hernando G, Corradi J, Bouzat C. The nematode serotonin-gated chloride channel MOD-1: A novel target for anthelmintic therapy. J Biol Chem. 2022;298(9):102356.</li>
	<li>Porta-de-la-Riva M, Fontrodona L, Villanueva A, Cer&#243;n J. Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation. JoVE. 2012;(64):e4019.</li>
	<li>Baugh LR. To grow or not to grow: nutritional control of development during Caenorhabditis&#160;elegans L1 arrest. Genetics. 2013;194(3):539-55.</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Bacteriologisches Agar</td><td>Britania&nbsp;</td><td>B0101406</td><td>sollte frisch zubereitet werden (1,7 gr in 100 mL&nbsp;H2O)</td></tr><tr><td>Bleichlösung</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>1,2 % (v/v) NaOH und 0,5 M NaOH</td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>ThermoScientific.&nbsp;</td><td>Sorvall ST16R.&nbsp;&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>BiofugePICO zu Eppendorf-Röhrchen</td><td>Heraeus 75003235&nbsp;&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Digitalkamera</td><td>ToupCam&nbsp;</td><td>TP605100A</td><td>Industrielle Digitalkamera. Einstellbare Brennweite USB 2.0</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>BioBasic&nbsp;</td><td>RAS#7-68-5</td><td>MW: 78,13</td></tr><tr><td>Linalylacetat&nbsp;</td><td>SIGMA</td><td>Nr.CAS: 115-95-7</td><td>sollte frisch zubereitet werden</td></tr><tr><td>Lysogeneriebouillon (LB) Medium</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>10 g Bacto-Tryptone, 5 g Hefeextrakt, 10 g NaCl auf 1 L destilliertes Wasser&nbsp;</td></tr><tr><td>M9 Puffer&nbsp;</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>3 g KH2PO4, 6 g Na2HPO4, 5 g&nbsp; NaCl, 0,25 g MgSO4 auf 1 L destilliertes Wasser</td></tr><tr><td>Mini-Rotator &nbsp;</td><td>BioSan</td><td>Bio RS-24</td><td></td></tr><tr><td>Nematodenwachstumsmedium (NGM)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>3 g NaCl, 17 g Agar, 2,5 g&nbsp; Bacto-Pepton auf 1 L destilliertes Wasser. Durch Autoklavieren sterilisieren. Ergänzt um 1 mL Cholesterin (5 mg/mL),&nbsp; 1 mL CaCl2 (1 M), 25 mL Kaliumphosphatpuffer (1 M, pH 6,0) und 1 mL&nbsp; MgSO4 (1 M)</td></tr><tr><td>Petrischale (3 - 5 mm)</td><td>ThermoScientific. Nunclon DeltaSurface&nbsp;</td><td>153066</td><td></td></tr><tr><td>Petrischale (90 mm x 15 mm)</td><td>ExtraGene&nbsp;</td><td>1026160305</td><td>Nur für den Laborgebrauch, Polystyrol.&nbsp;</td></tr><tr><td>Pipette</td><td>Fisherbrand</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>SigmaPlot 12.0</td><td>Systat Software</td><td>N/A</td><td>Version 12.0</td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>ARCANO</td><td>ZTX-T 1:4 LED</td><td>Trinoculaires Stereomikroskop (10x&ndash;40x Gesamtvergrößerung; LED-Schein- und Durchlichtbeleuchtung)</td></tr><tr><td>Saccharose&nbsp;</td><td>Laboratorio Cicarelli&nbsp;</td><td>Art 841</td><td>60 % (v/v) Saccharose&nbsp;</td></tr><tr><td>Gewebekulturplatte 96-Well&nbsp;</td><td>Biofil&nbsp;</td><td>TCP 012096</td><td>Polystyrol, Deckel mit geringer Verdunstung.&nbsp;</td></tr><tr><td>ToupView&nbsp;</td><td>ToupTek Photonics</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Transcinnamaldehyd (TCA)</td><td>Santa Cruz Biotechnology&nbsp;</td><td>J1712</td><td>Sollte frisch zubereitet werden</td></tr></tbody></table>

einfache und zugängliche ei-schlüpf-assays in caenorhabditis elegans: anpassungsfähige formate für drogentests

Simple and Accessible Egg-Hatching Assays in Caenorhabditis elegans: Adaptable Formats for Drug Screening

Einfache und zugängliche Ei-Schlüpf-Assays in Caenorhabditis elegans: Anpassungsfähige Formate für Drogentests

Egg-hatching assays (EHA) are widely used to evaluate the effects of chemical compounds on early developmental stages of nematodes, particularly in ...

Wir entwickeln einfache und skalierbare C. elegans-Ei-Ausbrütsassays, um die Wirkung von Verbindungen auf die embryonale Entwicklung zu bewerten. Bestehende Methoden weisen keinen standardisierten, anpassungsfähigen Arbeitsablauf auf. Dieses Protokoll beschreibt eine skalierbare und standardisierte Vorgehensweise, die sowohl für Screeningverfahren mit geringer als auch hoher Durchsatzleistung geeignet ist.Beginnen Sie mit drei bis fünf Nematoden-Wachstumsmedium-Platten, die dichte Kulturen gravider erwachsener Tiere enthalten. Wählen Sie Platten mit einer hohen Anzahl gravider Würmer und sichtbaren Eiern, was auf eine aktive Fortpflanzung hinweist. Geben Sie destilliertes Wasser zu jeder Platte hinzu und überführen Sie die Würmer vorsichtig in ein 15-Milliliter-Konischglas. Vermeiden Sie das Abkratzen der Agaroberfläche, um Verunreinigungen zu minimieren. Zentrifugieren Sie bei 266 g für drei Minuten, um die Würmer zu pelletieren, entfernen Sie den bakterienhaltigen Überstand und wiederholen Sie den Waschschritt dreimal. Um die Eier zu isolieren, resuspendieren Sie das Wurmpellet in frisch zubereiteter Bleichlösung. Schütteln Sie das Gefäß kräftig, um die Zerstörung der adulten Kör

simple-accessible-egg-hatching-assays-caenorhabditis-elegans

Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Ein Verfahren zur Flüssig-Kultivierung und die Abgabe...

High-Throughput-Screening und Biosensorik mit Fluorescent C. elegans Die Stämme

C. elegans Eiablageverhalten kann wichtige Informationen in Entwicklungs-, Reproduktions- und anatomischen Studien liefern. Dieses Video stellt die wichtigen Schritte eines Eiablageassays vor und zeigt ein Beispielexperiment, in dem ein Medikament auf Reproduktionstoxizität getestet wird.

Egg Laying Assay: Eine Methode zur Quantifizierung des Eiablageverhaltens von C. elegans

Quelle: Anderson, Q. L. et al. Ein Pathosystem von C. elegans mit hohem Durchsatz und hohem Gehalt auf Flüssigkeitsbasis. J. Vis. Exp. (2018)Dieses Video zeigt eine Hochdurchsatz-Screening-Methode mit Caenorhabditis elegans , um Gen-Knockdowns während Wirt-Pathogen-Interaktionen zu untersuchen. Es beschreibt das Verfahren zur Aufbereitung von Knockdown-Würmern und deren Übertragung auf Testplatten, um die Auswirkungen der erregerinduzierten Wurmabtötung zu bewerten.

Ein flüssiger Multiwell-Assay für das Screening von C. elegans-Knockdowns

Verfahren zur quantitativen Bewertung der chemotaktischen Reaktion...

C. elegans Chemotaxis-Assay

Wir beschreiben die detaillierten Schritte eines chemischen Hochdurchsatz-Assays im Fadenwurm Caenorhabditis elegans, der zur Beurteilung der Keimbahntoxizität verwendet wird. In diesem Assay wird die Störung der Keimbahnfunktion nach chemischer Exposition mit einem fluoreszierenden Reporter überwacht, der spezifisch für aneuploide Embryonen ist.

Umfassende Beurteilung der Keimbahn Chemical Toxicity Mit der Nematode<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Wir stellen ein Verhaltensaufzeichnungs-Setup und -Protokoll vor, das eine automatisierte Analyse des Nematoden ermöglicht, Caenorhabditis elegans 'Präferenz für lösliche Verbindungen in einem Populations-basierten Assay. Dieser Artikel beschreibt den Aufbau einer Verhaltenskammer, das Verhaltenstestprotokoll und die Analyse der Videoanalyse.

Automatisierte Analyse eines Nematoden-Populations-basierten Chemosensorischen Präferenzassays

Hier beschreiben wir ein einfaches Protokoll zur Herstellung von schnell Hunderte von Nematoden Wachstum Medien Agar, 96-Well-Kultur-Platten mit einer konsistenten Anzahl von Caenorhhabditis Elegans pro Bohrloch. Diese Kulturen sind nützlich für das phänotypische Screening von ganzen Organismen. Wir konzentrieren uns hier auf dieser Kulturen zu Bildschirm Chemikalien für pro-Langlebigkeit-Effekte verwenden.

Eine einfache Methode zur chemischen Hochdurchsatz-Screening in Caenorhabditis Elegans

Um Chaperon-Chaperon- und Chaperon-Substrat-Interaktionen zu untersuchen, führen wir synthetische Interaktionsscreens bei Caenorhabditis elegans mit RNA-Interferenz in Kombination mit leichten Mutationen oder Überexpression von Chaperonen durch und überwachen gewebespezifische Proteindysfunktion auf organismischer Ebene.

Verwendung von Caenorhabditis elegans zum Screening auf gewebespezifische Chaperon-Interaktionen

Der genetisch traktierbare Fadenwurm Caenorhabditis elegans kann als einfaches und kostengünstiges Modell für die Wirkstoffforschung verwendet werden. Hier wird ein Protokoll zur Identifizierung von Krebsmedikamenten beschrieben, die die nachgeschaltete Signalübertragung von RAS- und EGFR-Proteinen hemmen.

Identifizierung von EGFR- und RAS-Inhibitoren mittels Caenorhabditis elegans

In dieser Arbeit stellen wir eine allgemeine Methode vor, um die embryonale Lebensfähigkeit und die Gesamtzahl der produzierten Embryonen (Brut) mit dem Modellorganismus C. elegans zu bestimmen.

Messung der Embryonalviabilität und Brutgröße bei Caenorhabditis elegans

Dieses Protokoll bietet ein einfaches, kostengünstiges Verfahren zur Quantifizierung der embryonalen Lethalität bei Caenorhabditis elegans. Es ermöglicht eine einfache Erkennung embryonaler Anomalien in verschiedenen Populationen ohne spezielle Geräte oder Wurmpflücken-Expertise. Das Protokoll kann verwendet werden, um die Auswirkungen genetischer Mutationen, RNA-Interferenz-vermittelter Gen-Knockdowns und der Ernährung zu quantifizieren.

Quantifizierung der embryonalen Letalitätsrate bei Caenorhabditis elegans

Lernen Sie drei Ei-Schlüpf-Assays in Caenorhabditis elegans für Parasitologie und Toxikologie kennen. Diese flexiblen Methoden ermöglichen präzise Drogentests, skalierbare Screening-Verfahren und den Einsatz in der Lehre.

Einfache und zugängliche Ei-Schlüpf-Assays in Caenorhabditis elegans: Anpassungsfähige Formate für Drogentests

Weitere Videos entdecken