Este video muestra la forma de medir la invasión de las células a través de insertos de cultivo celular utilizando una metodología basada en fluorescencia.
Artículo de método
Un In vitro Tumor FluoroBlok invasión de ensayo
En este artículo
Resumen
Resumen
La característica distintiva de las células metastásicas es su capacidad para invadir a través de la membrana basal y migrar a otras partes del cuerpo. Las células deben ser capaces de secretar tanto proteasas que rompen la membrana basal, así como la migración con el fin de ser invasivo. BD tumor BioCoat Sistema invasión provee a las células con las condiciones que permitan la evaluación de sus propiedades invasivas
Protocolo
Post-etiquetado y la medición con BD calceína AM tinte fluorescente
Las células están etiquetados para la cuantificación después de haber invadido a través de la matriz BD Matrigel y pasa a través de la membrana BD FluoroBlok. Como resultado, sólo medición de la variable de la invasión de células se pueden obtener.
- Se cultivan las células en la confluencia ~ 80%.
- Preparar y rehidratar el sistema de inserción.
- Retire el paquete de -20 ° C de almacenamiento y permitir que llegue a temperatura ambiente.
- Abra el paquete de aluminio y añadir 500 l tibia (37 ° C) los medios de comunicación al interior de los pozos de inserción. Dejar la placa para rehidratar durante 2 horas a 37 ° C, 5% de CO 2.
Nota: No es necesario rehidratar la BD Falcon sin recubrimiento FluoroBlok 24 Multiwell sistema de inserción que se utilizará como control de la migración celular. - Después de la rehidratación, retire con cuidado el medio de los pozos de inserción sin afectar la capa de BD Matrigel matriz de la membrana. El sistema está ahora listo para usar.
- Preparar las suspensiones de células por trypsinizing monocapas de células y resuspender las células en DMEM libre de suero de 5 x 10 4 células / ml.
Nota: Si utiliza un tipo de células diferentes que usted necesita para determinar la densidad de siembra óptima. Para determinar la densidad de siembra óptima para su tipo de célula en una superficie porosa crecimiento, utilizan una gama de densidades de siembra (células / cm 2) que pone entre paréntesis la densidad de siembra utilizado en superficies no porosas (por ejemplo, frascos, platos y bandejas). Por ejemplo, si actualmente las semillas de 2,5 x 10 5 células / cm 2, la semilla en las concentraciones de células, entre 5 x 10 4 y 5 x 10 5 células / cm 2 para determinar la densidad óptima de siembra inicial. - Añadir 500 l de suspensión de células (2,5 x 10 4 células) de las cámaras apical.
- Añadir 750 l de quimioatrayente (5% de SFB en DMEM) a cada una de las cámaras basal, utilizando los puertos de muestreo para el acceso.
- Incubar la BioCoat BD tumor del sistema y la invasión sin recubrimiento BD Falcon FluoroBlok 24 Multiwell Plate de Inserción de 20-22 horas a 37 ° C, 5% de CO2 la atmósfera.
- Después de la incubación, retire con cuidado medio de las cámaras apical. Esto se puede lograr simplemente accionando el contenido en un recipiente de residuos. No toque la superficie inferior del sistema de inserción.
- Transferir el sistema de insertar en un segundo 24 y placa con 500 l / pocillo de 4 mg / mL calceína AM en HBSS. Incubar durante 1 hora a 37 ° C, 5% de CO 2. La solución calceína AM no se elimina de la cámara baja antes de la lectura de fluorescencia, ya que es un colorante no fluorescente vital que se convierte en calceína verde fluorescente por las esterasas citosólicas.
- Fluorescencia de las células invadidas se lee en longitudes de onda de 494/517 nm (Ex / Em) en un lector de placas de abajo hacia la lectura fluorescente. El ajuste de la ganancia posible que tenga que ser determinada empíricamente, pero una ganancia del punto medio debe ser un punto de partida suficiente. Un ajuste de la ganancia que es demasiado alto puede conducir a la saturación del detector con una muestra altamente fluorescente, lo que puede impedir la adquisición de resultados significativos. El uso de AutoGain (si es compatible en el lector) no es recomendable. Un microscopio de fluorescencia invertido se puede utilizar para comprobar los resultados, es especialmente útil para ello la primera vez que ejecute esta prueba.
Nota: Es de suma importancia que los sistemas de inserción se leen con el mapa de la placa correcta. Para obtener información sobre mapas de placa de carga BD ver Boletín Técnico N º 436 de www.bdbiosciences.com o póngase en contacto con BD de Apoyo Técnico (labware@bd.com). Orientación de la placa adecuada es con el pocillo A1 en la esquina superior izquierda y el logotipo de BD Flacon orientada a la derecha de la placa se introduce en el lector.
Reducción de datos
Los datos se expresan como en la siguiente ecuación: 
De fondo se puede restar antes de la invasión de cálculo del porcentaje de células
RFU = fluorescentes unidades relativas.
Divulgaciones
Los autores son empleados de BD Biosciences, que produce los reactivos y las herramientas utilizadas en este artículo.
Materiales
| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Sistema de Invasión Tumoral BD BioCoat | BD Biosciences | 354165 o 354166 | |
| Células HT-1080 y NIH/3T3 | ATCC | ||
| Dulbecco’Medio Dulbecco de Eagle modificado (DMEM; sin suero) | |||
| Dulbecco’s Solución salina tamponada con fosfato, sin calcio ni magnesio (DPBS) | |||
| Sistema BD Falcon FluoroBlok de 24 pocillos con insertos para su uso como control de migración celular | BD Biosciences | 351157 o 351158 | |
| 5% suero bovino fetal en DMEM | |||
| BD Calcein AM Colorante Fluorescente | BD Biosciences | 354216 o 354217 | |
| Hanks’ Solución salina equilibrada (HBSS) | |||
| Placas BD Falcon de 24 pocillos para la etiqueta posterior a la invasión celular | BD Biosciences | 351147 | |
| Lector de placas de fluorescencia con capacidad de lectura por la parte inferior | PerkinElmer EnVision (R), TECAN Infinite (R), Molecular Devices SpectraMax (R), BioTek Synergy (TM), BMG LABTECH PHERAstar. |
Referencias
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